JPS6212792B2 - - Google Patents
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- JPS6212792B2 JPS6212792B2 JP9908380A JP9908380A JPS6212792B2 JP S6212792 B2 JPS6212792 B2 JP S6212792B2 JP 9908380 A JP9908380 A JP 9908380A JP 9908380 A JP9908380 A JP 9908380A JP S6212792 B2 JPS6212792 B2 JP S6212792B2
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Description
本発明は強い突然変異阻害活性を有する新規物
質環状イミノ酸およびその製造方法に関する。
本発明者らは微生物の代謝産物中に突然変異阻
害物質(以下阻害物質と略記する)を系統的にジ
ヤーナル・オブ・アンチバイオチツクス
(Journal of Antibiotics)第32巻、第1118頁
(1979年)に記載された方法により探索し、フア
ボラス・ブラジリエンシス(Fr.)Fr.〔Favolus
brasiliensis(Fr.)Fr.(日本名ミナミアシグロ
タケ)〕K2013株の培養液から、一般式
(式中nは2または3である)
で示される2種類の阻害物質を採取し、これらの
理化学的性状およびX線結晶回析により、物質の
構造を式
の5−シアノプロリン(以下と略記する)およ
び式
の6−シアノピペコリン酸(以下と略記する)
と決定し、これらの化合物は新規化合物であるこ
とを確認した。
本発明によつて得られる環状イミノ酸は細菌な
ど微生物の突然変異を阻害する性質により、有用
微生物(例えば抗生物質、生理活性物質、酵素、
アミノ酸等の生産能力を有する微生物)の突然変
異による生産能力の低下あるいは喪失を阻止し、
有用な性質を保持させるのに有効な物質であり、
さらに、ニワトリ肉腫ウイルスによるニワトリ胎
児線維芽細胞の腫瘍化を阻害する性質により、発
癌の予防剤としての有用性が期待される。
本発明により得られる環状イミノ酸および
の理化学的性状は次に示すとおりである。
は無色針状結晶として得られ、160℃以上で
徐々に褐変分解するが融解しない。水に溶けるが
有機溶媒にはほとんど溶けない。pKa′は2.3およ
び5.5に観察された。比旋光度は〔α〕26 D=−93゜
(C1.0、H2O)である。呈色反応ではニンヒドリ
ン反応、ライドン・スミス反応およびテトラゾリ
ウム反応に陽性であり、また、過マンガン酸カリ
ウムを脱色する。紫外部吸収は末端吸収のみを示
す。赤外部吸収曲線は第1図に示すごとくであ
り、波数3450、3060、2950、2250、2100、1620、
1500、1445、1390、1320、1285、1150、1060、
1025、940、880、760および675に主な吸収帯を示
す。元素分析値は下記のとおりであつた。
C6H8N2O2として
計算値:
C 51.42%、H 5.75%、N 19.99%
実測値:
C 51.54%、H 5.77%、N 19.76%
マススペクトルは第2図に示す如くである。こ
れらのデータから分子式C6H8N2O2が決定され、
X線結晶回析の結果は5−シアノプロリンと決
定された。
は無色針状結晶として得られ、160℃以上で
徐々に褐変するが融解しない。水に溶けるが有機
溶媒にはほとんど溶けない。比旋光度は〔α〕26 D
=−45゜(C1.0、H2O)である。呈色反応ではニ
ンヒドリン反応、ライドン・スミス反応およびテ
トラゾリウム反応に陽性であり、また、過マンガ
ンカリウムを脱色する。紫外部吸収は末端吸収の
みを示す。赤外部吸収曲線は第3図に示すごとく
であり、波数3430、2950、2700、2500、2100、
1625、1590、1440、1405、1330、1305、1285、
1195、1165、1120、1090、1050、1030、985、
920、800および780に主な吸収帯を示す。元素分
析値は下記のとおりであつた。
C7H10N2O2として
計算値:
C 53.84%、H 6.35%、N 18.12%
実測値:
C 54.12%、H 6.45%、N 18.17%
マススペクトルは第4図に示す如くである。こ
れらのデータから分子式C7H10N2O2が決定され、
X線結晶回析の結果は6−シアノペピコリン酸
と決定された。
本発明に使用される環状イミノ酸生産菌の1例
としてフアボラス・ブラジリエンシス(Fr.)Fr.
(日本名ミナミアシグロタケ)K2013株がある。
本菌株は昭和50年沖縄県において採取され培養さ
れた。本菌株の子実体は有茎(まれに茎が少な
い)、傘形、単生または集合して生ずる。生時肉
質であるが、乾燥するとコルク質となり脆くな
る。茎はコルク質で淡黄桃色ないし桃褐色、平滑
で輪紋はない。肉は桃黄色、コルク質、厚さ約2
mm、子実層の表面は淡黄褐色で孔は大きく、1〜
3μ×0.5〜1.5μ。孔壁は薄い。担子基は棍棒
状、幅5〜7μ。担子胞子は無色透明、薄膜、長
橢円型、内部に1〜2個の油滴があり、その大き
さは8〜10μ×3〜4.5μである。以上のような
菌学的性質から本菌株はバクシ(Bakshi)著
「インデイアン・ポリポアーズ(Indian
Polypores)」〔1970年、インデイアン・アグリカ
ルチヤー・リサーチ(Indian Agriculture
Research)発行〕第21〜22頁に記載されたフア
ボラス・ブラジリエンシス(Fr.)Fr.と同定さ
れ、K2013の菌株番号が与えられた。本菌株は昭
和55年3月22日に工業技術院微生物工業技術研究
所に保管委託を申請し、その寄託番号は第5458号
である。
本発明の環状イミノ酸の製造方法を実施するに
当つては、フアボラス属に属する当該物質生産菌
をキノコの公知の培養法で好気的に培養し、培養
物中に目的物質を生産せしめればよい。生産菌の
1例としてフアボラス・ブラジリエンシス(Fr.
)Fr.K2013株を用いた場合の培養法について以
下に説明する。
本発明では、生産培養法として固体培養法を用
いることもできるが、大量生産のためには液体培
養法を用いるのが有利である。接種源としては、
馬鈴薯寒天培地に断代培養されたK2013株の生育
した菌糸をそのまま用いても良いが、これを生産
培地に接種後2〜20日間静置培養し、菌糸の発育
を待つてから振盪培養したものを接種源とするほ
うが好ましい。K2013株は15〜45℃で発育する
が、培養温度は25〜30℃が好ましい。培地の栄養
源としては、キノコその他の微生物の培養に公知
の栄養源であり、K2013株が利用できるものがす
べて使用できる。炭素源としては、例えば、グル
コース、マルトース、サツカロース、デキストリ
ンおよび澱粉などを使用できる。さらに大豆油等
の植物油やラード等の動物性脂肪も消泡剤として
ばかりでなく炭素源として用いられる。窒素源と
しては、例えば、ペプトン、肉エキス、乾燥酵
母、酵母エキス、大豆粉、綿実粉、コーン・スチ
ープ・リカー、米糠および無機窒素などを使用で
きる。その外に、リン酸二水素カリウム、硫酸マ
グネシウムなどの無機塩類や必要に応じて微量の
金属塩類を用いればよい。
培養条件は、通常の微生物の培養に用いられる
条件でよく、培養時間は環状イミノ酸が実質的に
蓄積される時間を選べばよい。例えば、グルコー
ス2%、ペプトン0.5%、酵母エキス0.3%、リン
酸二水素カリウム0.3%、硫酸マグネシウム7水
和物0.1%の培地にK2013株を接種して28℃で好
気的に培養した場合の培養時間は3〜6日間であ
つた。
培養終了液は過あるいは遠心分離などの手段
により菌体を除き、得られた培養液は環状イミ
ノ酸を採取するための材料に用いられる。
培養液より環状イミノ酸を採取するには、イ
オン交換樹脂を用いたクロマトグラフイーによる
のが有利である。およびを結晶として単離す
る方法について以下に説明する。K2013の培養
液に活性炭を加え不純物を吸着させた後、活性炭
を別し、液を得る。液をダウエツクス1×
4(酢酸型、ダウケミカル社製)のカラムにとお
し、阻害物質を吸着させ、樹脂を水洗した後、
0.5規定酢酸で溶出する。活性画分を減圧下で濃
縮乾固し、得られる飴状物質を水に溶解する。溶
解液をアンバーライトIRA68(酢酸型、オルガノ
株式会社製)のカラムにとおし阻害物質を吸着さ
せ、0〜0.2規定まで直線的に濃度を高めた酢酸
で溶出する。活性画分を減圧下で濃縮乾固し、得
られる飴状物質を0.01モル酢酸ソーダに溶解す
る。溶解液を0.01モル酢酸ソーダで平衡化したダ
ウエツクス1×4のカラムにとおし阻害物質を吸
着させ、0.01モル酢酸ソーダで樹脂を洗浄した
後、0.15モル酢酸ソーダで溶出する。このとき、
先にが溶出され、続いてが溶出されるので
各々の画分に分取する。またはを含む画分
は、それぞれ別にダウエツクス1×4(OH型)
のカラムにとおし、阻害物質を吸着させ、0.1規
定酢酸で溶出する。活性画分を減圧下で濃縮乾固
し、得られる飴状物質を温水に溶解し、冷蔵庫に
放置するとき生じる結晶を過して集め、乾燥す
るとまたはの純粋な結晶が得られる。
上述したイオン交換クロマトグラフイー以外の
精製手段としては高速液体クロマトグラフイーが
有効であり、これによればさらに容易に収率よく
精製できる。
以上述べたように本発明によりおよびはイ
オン交換クロマトグラフイー等の手段により抽
出、精製され、粗製の固体あるいは溶液として、
純粋の結晶あるいは溶液として、あるいはその塩
として純粋または粗製の状態で採取される。
次に、本発明により明らかにされたおよび
の生物学的活性について記載する。活性の測定
は、前述のジヤーナル・オブ・アンチバイオチツ
クスに記載された方法により行なつた。および
は化学変異剤によるサルモネラ・チフイムリウ
ム(Salmonella typhimurium)TA1535あるいは
サルモネラ・チフイムリウム(Salmonella
typhimurium)TA100の突然変異を強く阻害し、
さらにニワトリ肉腫ウイルスによるニワトリ胎児
線維芽細胞の腫瘍化を阻害する化合物である。
The present invention relates to a new substance, cyclic imino acid, which has strong mutation-inhibiting activity, and a method for producing the same. The present inventors have systematically identified mutation inhibitors (hereinafter referred to as inhibitors) in the metabolites of microorganisms in Journal of Antibiotics, Vol. 32, p. 1118 (1979). ), Favolus brasiliensis (Fr.) Fr.
brasiliensis (Fr.) Fr. (Japanese name: Minamia Shigurotake)] From the culture solution of K2013 strain, the general formula (In the formula, n is 2 or 3) We collected two types of inhibitors, and based on their physical and chemical properties and X-ray crystal diffraction, we determined the structure of the substance using the formula 5-cyanoproline (abbreviated below) and the formula 6-cyanopipecolic acid (abbreviated as below)
It was determined that these compounds are new compounds. The cyclic imino acid obtained by the present invention has the property of inhibiting the mutation of microorganisms such as bacteria, and is therefore useful for use in microorganisms such as antibiotics, physiologically active substances, enzymes, etc.
Preventing the decline or loss of production capacity due to mutations in microorganisms that have the ability to produce amino acids, etc.
It is a substance that is effective in retaining useful properties,
Furthermore, it is expected to be useful as a preventive agent for carcinogenesis due to its ability to inhibit tumorigenesis of chicken fetal fibroblasts caused by chicken sarcoma virus. The physicochemical properties of the cyclic imino acid obtained by the present invention are as shown below. is obtained as colorless needle-shaped crystals, which gradually turn brown and decompose at temperatures above 160°C, but do not melt. Soluble in water but almost insoluble in organic solvents. The pKa′ was observed to be 2.3 and 5.5. The specific optical rotation is [α] 26 D = -93° (C1.0, H 2 O). It is positive in color reactions such as ninhydrin reaction, Lydon-Smith reaction, and tetrazolium reaction, and also decolorizes potassium permanganate. Ultraviolet absorption shows only terminal absorption. The infrared absorption curve is as shown in Figure 1, with wave numbers of 3450, 3060, 2950, 2250, 2100, 1620,
1500, 1445, 1390, 1320, 1285, 1150, 1060,
The main absorption bands are shown at 1025, 940, 880, 760 and 675. The elemental analysis values were as follows. Calculated value as C 6 H 8 N 2 O 2 :
C 51.42%, H 5.75%, N 19.99% Actual values:
C 51.54%, H 5.77%, N 19.76% The mass spectrum is as shown in FIG. From these data, the molecular formula C 6 H 8 N 2 O 2 was determined,
The result of X-ray crystal diffraction determined it to be 5-cyanoproline. is obtained as colorless needle-shaped crystals that gradually turn brown at temperatures above 160°C but do not melt. Soluble in water but almost insoluble in organic solvents. The specific optical rotation is [α] 26 D
= −45° (C1.0, H 2 O). In color reactions, it is positive for ninhydrin reaction, Lydon-Smith reaction, and tetrazolium reaction, and also decolorizes potassium permanganese. Ultraviolet absorption shows only terminal absorption. The infrared absorption curve is as shown in Figure 3, with wave numbers of 3430, 2950, 2700, 2500, 2100,
1625, 1590, 1440, 1405, 1330, 1305, 1285,
1195, 1165, 1120, 1090, 1050, 1030, 985,
The main absorption bands are shown at 920, 800 and 780. The elemental analysis values were as follows. Calculated value as C 7 H 10 N 2 O 2 :
C 53.84%, H 6.35%, N 18.12% Actual values:
The mass spectrum of C 54.12%, H 6.45%, N 18.17% is shown in FIG. From these data, the molecular formula C 7 H 10 N 2 O 2 was determined,
The result of X-ray crystal diffraction determined it to be 6-cyanopepicolinic acid. An example of the cyclic imino acid producing bacterium used in the present invention is Fabolus brasiliensis (Fr.) Fr.
(Japanese name: Minamia Shigurotake) There is K2013 strain.
This bacterial strain was collected and cultured in Okinawa Prefecture in 1975. The fruiting bodies of this strain are stalked (rarely stalkless), umbrella-shaped, and occur singly or in clusters. Fleshy when fresh, but becomes corky and brittle when dried. The stems are corky, pale yellow-pink to pink-brown, and smooth with no ring marks. The flesh is pink-yellow, corky, and about 2 inches thick.
mm, the surface of the fruiting layer is pale yellowish brown, the pores are large, 1~
3μ×0.5~1.5μ. The pore walls are thin. The basidium is club-shaped, 5-7μ wide. The basidiospores are colorless and transparent, thin film, long oval shape, with 1-2 oil droplets inside, and the size is 8-10μ x 3-4.5μ. Based on the mycological properties mentioned above, this strain has been classified as "Indian Polypores" by Bakshi.
Indian Agriculture Research (1970)
The strain was identified as Phaebolus brasiliensis (Fr.) Fr., which was described on pages 21-22 of [Research], and was given the strain number K2013. This strain was submitted to the Institute of Microbial Technology, Agency of Industrial Science and Technology for storage on March 22, 1980, and its deposit number is No. 5458. In carrying out the method for producing a cyclic imino acid of the present invention, the substance-producing bacteria belonging to the genus Fabolus is aerobically cultured using a known cultivation method for mushrooms, and the target substance is produced in the culture. Bye. An example of a producing bacterium is Huabolus brasiliensis (Fr.
) The culture method when using the Fr.K2013 strain is explained below. In the present invention, although a solid culture method can be used as a production culture method, it is advantageous to use a liquid culture method for mass production. As a source of inoculation,
The mycelium grown by the K2013 strain grown on a potato agar medium may be used as is, but it is better to inoculate the production medium, culture it statically for 2 to 20 days, wait for the growth of the mycelium, and then culture it with shaking. It is preferable to use it as an inoculum source. The K2013 strain grows at 15-45°C, but the culture temperature is preferably 25-30°C. As the nutrient source for the medium, any nutrient source known for culturing mushrooms and other microorganisms that can be used by the K2013 strain can be used. As the carbon source, for example, glucose, maltose, sutucarose, dextrin, starch, etc. can be used. Furthermore, vegetable oils such as soybean oil and animal fats such as lard are used not only as antifoaming agents but also as carbon sources. As the nitrogen source, for example, peptone, meat extract, dry yeast, yeast extract, soybean flour, cottonseed flour, corn steep liquor, rice bran, and inorganic nitrogen can be used. In addition, inorganic salts such as potassium dihydrogen phosphate and magnesium sulfate, and trace amounts of metal salts may be used as necessary. The culture conditions may be those normally used for culturing microorganisms, and the culture time may be selected such that the cyclic imino acid is substantially accumulated. For example, when strain K2013 is inoculated into a medium containing 2% glucose, 0.5% peptone, 0.3% yeast extract, 0.3% potassium dihydrogen phosphate, and 0.1% magnesium sulfate heptahydrate, and cultured aerobically at 28°C. The culture time was 3 to 6 days. The bacterial cells are removed from the culture solution by means such as filtration or centrifugation, and the obtained culture solution is used as a material for collecting cyclic imino acids. In order to collect the cyclic imino acid from the culture solution, it is advantageous to use chromatography using an ion exchange resin. A method for isolating and as a crystal will be described below. After adding activated carbon to the K2013 culture solution to adsorb impurities, the activated carbon is separated to obtain a liquid. Dowex the liquid 1x
4 (acetic acid type, manufactured by Dow Chemical Company) to adsorb the inhibitor, and after washing the resin with water,
Elute with 0.5N acetic acid. The active fraction is concentrated to dryness under reduced pressure, and the resulting candy-like substance is dissolved in water. The solution is passed through a column of Amberlite IRA68 (acetic acid type, manufactured by Organo Co., Ltd.) to adsorb the inhibitory substance, and eluted with acetic acid whose concentration is linearly increased from 0 to 0.2 normal. The active fraction is concentrated to dryness under reduced pressure, and the resulting candy-like substance is dissolved in 0.01M sodium acetate. The solution was passed through a Dowex 1×4 column equilibrated with 0.01M sodium acetate to adsorb the inhibitor, the resin was washed with 0.01M sodium acetate, and then eluted with 0.15M sodium acetate. At this time,
The first is eluted and the second is eluted, so separate them into their respective fractions. Fractions containing
The inhibitors are adsorbed through the column and eluted with 0.1N acetic acid. The active fraction is concentrated to dryness under reduced pressure, the resulting candy-like substance is dissolved in warm water, and the crystals that form when left in the refrigerator are collected by filtration and dried to obtain pure crystals of or. High performance liquid chromatography is effective as a purification method other than the above-mentioned ion exchange chromatography, and purification can be carried out more easily and with a higher yield. As described above, according to the present invention, the phthalate is extracted and purified by means such as ion-exchange chromatography, and as a crude solid or solution.
It is collected in pure or crude form as pure crystals or solutions, or as its salts. Next, the biological activities of and revealed by the present invention will be described. The activity was measured by the method described in the aforementioned Journal of Antibiotics. and Salmonella typhimurium TA1535 or Salmonella typhimurium by chemical mutagens.
typhimurium) strongly inhibits the mutation of TA100,
Furthermore, it is a compound that inhibits tumorigenesis of chicken fetal fibroblasts caused by chicken sarcoma virus.
【表】
表1に示すようにおよびはN−エチル−
N′−ニトロ−N−ニトロソグアニジン(ENNG)
によるサルモネラ・チフイムリウムTA1535に突
然変異を阻害し、一方、1mcg/mlの濃度では菌
の生育をほとんど阻害しない。また、および
はアルキル化剤による置換型変異ばかりでなく、
4−ニトロキノリン−1−オキシドまたは2(2
−フリル)−3−(5−ニトロ−2−フリル)アク
リルアミド(AF−2)によるフレイムシフト型
変異も阻害する。即ち、は8mcg/mlで4−ニ
トロキノリン−1−オキシドおよびAF−2によ
るサルモネラ・チフイムリウムTA100の突然変
異をそれぞれ55%および66%阻害し、この濃度で
は菌の生育をほとんど阻害しない。
さらに、およびは細菌の突然変異ばかりで
はなく、ニワトリ肉腫ウイルスによるニワトリ胎
児線維芽細胞の腫瘍化を阻害する。[Table] As shown in Table 1, and are N-ethyl-
N'-nitro-N-nitrosoguanidine (ENNG)
It inhibits the mutation caused by Salmonella typhimurium TA1535, while at a concentration of 1mcg/ml it hardly inhibits the growth of the bacteria. In addition, and are not only substitutional mutations caused by alkylating agents, but also
4-nitroquinoline-1-oxide or 2(2
-Furyl)-3-(5-nitro-2-furyl)acrylamide (AF-2)-induced flameshift mutation is also inhibited. That is, at 8 mcg/ml, it inhibited the mutation of Salmonella typhimurium TA100 by 4-nitroquinoline-1-oxide and AF-2 by 55% and 66%, respectively, and the growth of the fungus was hardly inhibited at this concentration. Moreover, and inhibit not only bacterial mutations but also tumorigenesis of chicken fetal fibroblasts by chicken sarcoma virus.
【表】
表2に示すようにおよびはニワトリ胎児線
維芽細胞に対し、生育をほとんど阻害しない濃度
でニワトリ肉腫ウイルスによる腫瘍化を阻害す
る。
およびのマウスに対する毒性は静注で25
mg/Kgでは全く異常をみとめなかつた。
以上記したように、およびこれらの関連化
合物は細菌など微生物の突然変異を阻害すること
により、微生物の有する有用な特性を安定的に保
持させるのに有効な物質である。
以下およびの製造方法について実施例を示
すが、本発明によりおよびの性状、生産方
法、抽出精製法が明らかにされたのでこの明細書
に書かれた方法を修飾した方法が容易に設定され
る。本発明はそのすべての修飾法を包括し、実施
例に限定されるものではない。
実施例 1
フアボラス・ブラジリエンシス(Fr.)Fr.
K2013株の寒天斜面(馬鈴薯−グルコース培地)
培養の生育した菌糸を約0.2〜0.3cm2かきとり、こ
れをグルコース2.0%、ペプトン0.5%、酵母エキ
ス0.3%、リン酸二水素カリウム0.3%、硫酸マグ
ネシウム7水和物0.1%(PHは修正せず、通常5.6
〜5.8)を含む液体培地(500ml容坂口フラスコに
培地125mlを入れる)に接種し、28℃で4日間静
置培養後、さらに4日間振盪培養(130回転往復
振盪/分、振幅8cm)したものを接種源とした。
500ml容坂口フラスコに上記組成の液体培地125ml
ずつ分注し、120℃、20分間滅菌し、これに上記
接種源5mlずつを接種して、28℃、6日間上記と
同様振盪培養した。培養後、菌体を別し、この
液10に100gの活性炭を加え、ゆつくり撹拌
しながら30分間放置した。活性炭を別後、得ら
れた液を強塩基性アニオン交換樹脂ダウエツク
ス1×4(酢酸型、50〜100メツシユ、ダウケミ
カル社製)1を詰めたカラムにとおし、およ
びを吸着させた。水洗後、0.5規定酢酸で溶出
し、活性画分を減圧濃縮、乾固した。得られた飴
状の粗物質1.4gを水200mlに溶解し、PH6.0に調
節後、中塩基性アニオン交換樹脂アンバーライト
IRA68(酢酸型、オルガノ株式会社製)200mlを
詰めたカラムにとおし、阻害物質を吸着させた。
水洗後、0(1)〜0.2(1)規定の範囲で
直線的に酢酸の濃度を上げつつ溶出した。活性画
分を減圧濃縮、乾固し、およびの混合物595
mgを得た。これを水100mlに溶解し、PH6.0に調節
後0.01モル酢酸ソーダで平衡化したダウエツクス
1×4(100〜200メツシユ)200mlのカラムにと
おし阻害物質を吸着させ、0.15モル酢酸ソーダで
溶出した。先に溶出される活性画分はを含み、
後で溶出される活性画分はを含む。両画分を
別々にダウエツクス1×4(OH型、50〜100メ
ツシユ)500mlを詰めたカラムにとおし、また
はを吸着させ、水洗後、0.1規定酢酸で溶出し
た。活性画分を減圧濃縮、乾固し、得られた飴状
物質を温水に溶解後、冷蔵庫に放置しておよび
の針状結晶をそれぞれ117mgおよび10mgを得
た。
実施例 2
実施例1と同様にして得られた培養液40に
活性炭200gを加え、30分間放置後、活性炭を
別し、液をダウエツクス1×4(酢酸型、50〜
100メツシユ)4を詰めたカラムにとおした。
0.5規定酢酸で溶出し、活性画分を減圧濃縮、乾
固した。得られた飴状物質6gを1の水に溶解
し、PH6.0に調節後、ダウエツクス1×4(酢酸
型、100〜200メツシユ)600mlを詰めたカラムに
とおし、0.2規定酢酸で溶出した。活性画分を減
圧濃縮、乾固して得られた淡黄色飴状物質を水10
mlに溶解し、高速液体クロマトグラフイー(ウオ
ータース社製システム500、逆相シリカゲル、展
開溶媒は水)を行ない、およびの針状結晶を
それぞれ810mgおよび885mg得た。
実施例 3
30容ジヤーフアーメンターに実施例1の組成
の液体培地10を入れ、120℃、20分間滅菌後、
これに実施例1と同様にして得た接種源600mlを
接種し、28℃、通気量5/分、撹拌回転数250
回転/分で4日間培養後、実施例1と同様の操作
を行ない、の結晶105mg、の結晶7mgを得
た。[Table] As shown in Table 2, and inhibit chicken sarcoma virus-induced tumorigenesis of chicken fetal fibroblasts at concentrations that hardly inhibit growth. Toxicity to mice with intravenous injection of 25
No abnormality was observed in mg/Kg. As described above, and these related compounds are effective substances for stably retaining the useful properties of microorganisms such as bacteria by inhibiting their mutation. Examples of the production method of and will be shown below, but since the properties, production method, extraction and purification method of and have been clarified according to the present invention, a modified method of the method described in this specification can be easily established. The present invention includes all modifications thereof and is not limited to the examples. Example 1 Huabolus brasiliensis (Fr.) Fr.
Agar slope of K2013 strain (potato-glucose medium)
Scrape off about 0.2 to 0.3 cm2 of the mycelia that have grown in the culture, and add 2.0% glucose, 0.5% peptone, 0.3% yeast extract, 0.3% potassium dihydrogen phosphate, and 0.1% magnesium sulfate heptahydrate (PH should not be corrected). No, usually 5.6
- 5.8) was inoculated into a liquid medium (125 ml of medium placed in a 500 ml Sakaguchi flask), statically cultured at 28°C for 4 days, and then cultured with shaking (130 revolutions/minute, amplitude 8 cm) for an additional 4 days. was used as the inoculation source.
125ml of liquid medium with the above composition in a 500ml Sakaguchi flask
The mixture was sterilized at 120°C for 20 minutes, inoculated with 5 ml of the above inoculum, and cultured with shaking at 28°C for 6 days in the same manner as above. After culturing, the bacterial cells were separated, 100 g of activated carbon was added to this solution 10, and the mixture was left to stand for 30 minutes with gentle stirring. After separating the activated carbon, the resulting liquid was passed through a column packed with strongly basic anion exchange resin DOWEX 1×4 (acetic acid type, 50-100 mesh, manufactured by Dow Chemical Company) to adsorb and. After washing with water, it was eluted with 0.5N acetic acid, and the active fraction was concentrated under reduced pressure and dried. Dissolve 1.4 g of the obtained candy-like crude substance in 200 ml of water, adjust the pH to 6.0, and add medium basic anion exchange resin Amberlite.
The inhibitor was adsorbed through a column packed with 200 ml of IRA68 (acetic acid type, manufactured by Organo Co., Ltd.).
After washing with water, elution was carried out while linearly increasing the concentration of acetic acid within the normal range of 0(1) to 0.2(1). The active fraction was concentrated under reduced pressure to dryness, and a mixture of 595 and
I got mg. This was dissolved in 100 ml of water, adjusted to pH 6.0, passed through a 200 ml column of Dowex 1x4 (100-200 mesh) equilibrated with 0.01 molar sodium acetate to adsorb the inhibitor, and eluted with 0.15 molar sodium acetate. . The active fraction eluted first contains;
The active fraction, which is eluted later, contains. Both fractions were separately passed through a column packed with 500 ml of Dowex 1×4 (OH type, 50-100 mesh) to adsorb or. After washing with water, the column was eluted with 0.1N acetic acid. The active fraction was concentrated under reduced pressure to dryness, and the resulting candy-like substance was dissolved in warm water and left in a refrigerator to obtain 117 mg and 10 mg of needle-like crystals, respectively. Example 2 200 g of activated carbon was added to the culture solution 40 obtained in the same manner as in Example 1, and after standing for 30 minutes, the activated carbon was separated and the liquid was poured into Dowex 1×4 (acetic acid type, 50 to
100 mesh) was passed through a column packed with 4.
Elution was performed with 0.5N acetic acid, and the active fraction was concentrated under reduced pressure and dried. 6 g of the obtained candy-like substance was dissolved in 1.0 m water, and after adjusting the pH to 6.0, it was passed through a column packed with 600 ml of Dowex 1 x 4 (acetic acid type, 100-200 mesh) and eluted with 0.2N acetic acid. The active fraction was concentrated under reduced pressure and the resulting pale yellow candy-like substance was mixed with water for 10 minutes.
ml and subjected to high performance liquid chromatography (Waters System 500, reverse phase silica gel, developing solvent was water) to obtain 810 mg and 885 mg of needle-like crystals of and, respectively. Example 3 10 of the liquid medium having the composition of Example 1 was placed in a 30-volume jar fermenter, and after sterilization at 120°C for 20 minutes,
This was inoculated with 600 ml of the inoculum obtained in the same manner as in Example 1, and the temperature was 28°C, the aeration rate was 5/min, and the stirring speed was 250.
After culturing at rotation/min for 4 days, the same operation as in Example 1 was carried out to obtain 105 mg of crystals and 7 mg of crystals.
第1図は5−シアノプロリンを臭化カリ錠とし
てとつた赤外部吸収スペクトル曲線を示し、第2
図は1−アセチル−5−シアノプロリンと1−ア
セチル−5−シアノプロリンメチルエステル混合
物のマススペクトルを示し、第3図は6−シアノ
ピペコリン酸を臭化カリ錠としてとつた赤外部吸
収スペクトル曲線を示し、第4図は1−アセチル
−6−シアノピペコリン酸と1−アセチル−6−
シアノピペコリン酸メチルエステルの混合物のマ
ススペクトルを示す。
Figure 1 shows the infrared absorption spectrum curve of 5-cyanoproline taken as a potash bromide tablet;
The figure shows the mass spectrum of a mixture of 1-acetyl-5-cyanoproline and 1-acetyl-5-cyanoproline methyl ester, and Figure 3 shows the infrared absorption spectrum curve of 6-cyanopipecolic acid as a potash bromide tablet. Figure 4 shows 1-acetyl-6-cyanopipecolic acid and 1-acetyl-6-
1 shows a mass spectrum of a mixture of cyanopipecolic acid methyl ester.
Claims (1)
ノ酸。 3 式 で示される特許請求の範囲第1項記載の環状イミ
ノ酸。 4 フアボラス属に属し、一般式 (式中nは2または3である) で示される環状イミノ酸を生産する能力を有する
菌を好気的に培養し、培養物より環状イミノ酸を
採取することを特徴とする一般式 (式中nは2または3である) で示される環状イミノ酸の製造方法。 5 環状イミノ酸の生産菌がフアボラス・ブラジ
リエンシス(Fr.)Fr.(日本名ミナミアシグロタ
ケ)K2013株である特許請求の範囲第4項記載の
製造方法。 6 環状イミノ酸が5−シアノプロリンである特
許請求の範囲第4項または第5項記載の製造方
法。 7 環状イミノ酸が6−シアノピペコリン酸であ
る特許請求の範囲第4項または第5項記載の製造
方法。 8 フアボラス属に属する環状イミノ酸生産菌の
培養物より環状イミノ酸を採取するに当り、塩基
性アニオン交換樹脂を用いて5−シアノプロリン
および6−シアノピペコリン酸を分別する採取方
法。[Claims] 1. General formula (wherein n is 2 or 3) A cyclic imino acid represented by: 2 formulas The cyclic imino acid according to claim 1, which is represented by: 3 formulas The cyclic imino acid according to claim 1, which is represented by: 4 Belongs to the genus Fabolus, general formula: A general formula characterized by culturing aerobically a bacterium capable of producing a cyclic imino acid represented by (wherein n is 2 or 3) and collecting the cyclic imino acid from the culture. (In the formula, n is 2 or 3.) A method for producing a cyclic imino acid represented by the following formula. 5. The production method according to claim 4, wherein the cyclic imino acid producing bacterium is Phaebolus brasiliensis (Fr.) Fr. (Japanese name: Minamia Shigurotake) strain K2013. 6. The manufacturing method according to claim 4 or 5, wherein the cyclic imino acid is 5-cyanoproline. 7. The manufacturing method according to claim 4 or 5, wherein the cyclic imino acid is 6-cyanopipecolic acid. 8. A method for collecting cyclic imino acids from a culture of a cyclic imino acid-producing bacterium belonging to the genus Fabolus, in which 5-cyanoproline and 6-cyanopipecolic acid are separated using a basic anion exchange resin.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP9908380A JPS5724358A (en) | 1980-07-18 | 1980-07-18 | Cyclic imino acid having activity capable of inhibiting mutation and its preparation |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP9908380A JPS5724358A (en) | 1980-07-18 | 1980-07-18 | Cyclic imino acid having activity capable of inhibiting mutation and its preparation |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS5724358A JPS5724358A (en) | 1982-02-08 |
| JPS6212792B2 true JPS6212792B2 (en) | 1987-03-20 |
Family
ID=14238007
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP9908380A Granted JPS5724358A (en) | 1980-07-18 | 1980-07-18 | Cyclic imino acid having activity capable of inhibiting mutation and its preparation |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS5724358A (en) |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP4762637B2 (en) * | 2005-08-08 | 2011-08-31 | 株式会社クラベ | Packing |
-
1980
- 1980-07-18 JP JP9908380A patent/JPS5724358A/en active Granted
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS5724358A (en) | 1982-02-08 |
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