【発明の詳細な説明】[Detailed description of the invention]
本発明の目的は病原性連鎖球菌由来のエステラ
ーゼaに対する抗体d、すなわち抗エステラーゼ
抗体dの新規定量用試薬を提供することにある。
従来、抗エステラーゼ抗体dを定量した例とし
ては、本発明者らの一人である早野がInfection
and Immunity15(1)295〜299(1977)に報告した
方法が知られている。この方法は重複向流電気泳
動法〔Repetitive counterelectrophoresis〕とも
いうべき方法で、抗エステラーゼ抗体dと抗原で
あるエステラーゼaとをゲル板上に接近して平行
にスポツトし、これを電気泳動にかけ一夜放置後
再び電気泳動を行ない、ついでゲル板上に発色試
薬をスプレーして顕在化する移動スポツトの大き
さから抗エステラーゼ抗体の量を知ることをその
骨子としている。この方法は被検体量が少なくて
済み、しかも板上の結果を保存できる利点がある
が、操作が面倒で結果を得るまでに約48時間を要
し、しかも結果はスポツトの大小で判定するので
いわば定性的な方法である。
これに対し本発明の定量用試薬を用いる方法は
被検体の量が少なくて済むほか、極めて定量的な
結果が約1〜2時間という短時間に得られる優れ
た方法である。
本発明は次の試薬1,2および3からなる抗エ
ステラーゼ抗体dの定量用試薬に関する。
試薬 1
病原性連鎖球菌由来のエステラーゼa
試薬 2
病原性連鎖球菌由来のエステラーゼaに対する
抗体dと結合でき、かつ不溶性担体を結合してい
るタンパク質b。
試薬 3
エステラーゼaの定量用試薬c
ここにおいて、試薬1として用いられるエステ
ラーゼa〔以下、抗原ということもある〕は、例
えば特開昭49−132288号公報記載の方法によつて
病原性連鎖球菌の培養物から得られる。病原性連
鎖球菌としては例えば後記実施例に記載した溶血
性連鎖球菌〔Streptococcus pyogenes〕〔公知〕
が挙げられるが、これに限定されるものではな
く、その溶血性の有無にかかわらず、エステラー
ゼ生産能を喪失していないものであればいずれも
使用でき、各種菌寄託機関から入手できる。エス
テラーゼaは病原性連鎖球菌の種類に応じてA−
型,A−型,B型,C型等の血清学的に異な
る型に分類されるが、これらはすべて本発明に使
用できる。本発明の試薬を用いればエステラーゼ
の血清学的な型に応じた型の抗エステラーゼ抗体
dを分別定量することができる。例えばA−型
エステラーゼaを用いれば抗A−型エステラー
ゼ抗体dを定量することができるが、抗A−型
エステラーゼや抗B型エステラーゼ抗体dは定量
できず、抗B型エステラーゼ抗体dを定量するに
はB型エステラーゼaを用いなければならない。
この様な分別定量ができることは本発明の特徴の
一つとして数えられる。
また試薬2として用いられる抗エステラーゼ抗
体dと結合でき、かつ不溶性担体と結合している
タンパク質〔以下、捕捉剤ということもある〕と
しては、例えば細菌細胞壁やガラスビーズの如き
公知の不溶性担体を結合させた抗エステラーゼ抗
体dに対する抗体、あるいは黄色ぶどう状球菌
〔Staphylococcus aureus〕の如き免疫グロブリ
ンと結合できる「プロテイン−A」を含む細菌の
細胞壁をそのまま使用できるが、分離精製した
「プロテイン−A」とセフアデツクス〔フアルマ
シア社製〕の如き不溶性担体とを結合させたもの
等も使用できる。抗エステラーゼ抗体dに対する
抗体は、該抗体dを生産した動物とは異なる動物
に該抗体dを非経口的に投与しても得られるが、
好ましくは該抗体dを生産した動物の免疫グロブ
リンを他の動物に非経口的に投与し、生産される
抗体を分離することにより得られる。得られる抗
エステラーゼ抗体dに対する抗体と不溶性担体と
の結合は、例えば特開昭52−117419号公報の開示
に従つて行なえうる。「プロテイン−A」の単離
精製法および「プロテイン−A」と不溶性担体と
の結合は、例えば特開昭49−133597号および同49
−133518号公報の記載に従つて行なうことができ
る。
なお、「プロテイン−A」はStaphylococcus
aureus Cowan の如き細菌の細胞壁に存在
し、免疫グロブリンと非特異的に結合できるタン
パク質である。従つて前記の如き細菌細胞壁にお
ける「タンパク−A」部分は抗エステラーゼ抗体
dと結合できるタンパク質に相当し、その残余部
分は不溶性担体に相当する。
試薬3として用いられるエステラーゼ定量用試
薬としてはS−アセチルチオフエノールの如きエ
ステラーゼaに対する基質、5,5′−ジチオビス
−2−ニトロ安息香酸〔以下、DTNBという〕の
如き基質の分解産物と反応して呈色する発色剤、
アセトンの如き酵素反応停止剤、緩衝化剤等の公
知の試薬が挙げられる。
これらの試薬1,2および3は、その性状に応
じ、液体または粉末の状態でキツト化するのが取
り扱いに便利である。
本発明の試薬を用いて被検体中の抗エステラー
ゼ抗体dを定量するには次の各工程を順次行なう
ことにより実施できる。
第1工程 〔抗原抗体反応工程〕
被検体に、抗原たるエステラーゼaを含有する
試薬1を加えて反応〔抗原抗体反応〕させて抗原
抗体複合物eを生成させる工程。
第2工程 〔抗原抗体複合物捕捉工程〕
抗原抗体複合物eに試薬2〔補捉剤〕を反応さ
せて該複合物eを沈殿として捕捉する工程。
第3工程 〔エステラーゼ活性測定工程〕
前工程で得られた沈殿中のエステラーゼの活性
を測定する工程。
第1工程は、抗エステラーゼ抗体dを含有する
と思われる被検体にエステラーゼaを、好ましく
は過剰量のエステラーゼaを反応させることによ
り実施できる。本反応は通常緩衝液〔PH6〜8〕
中において5〜40分間、20〜40℃、好ましくは37
℃前後の温度で温置することにより行なわれる。
未反応のエステラーゼaを除去る目的で、つい
で行なわれる本発明の抗原抗体複合物捕捉工程
〔第2工程〕は前記第1工程で生成する抗抗原抗
体複合物eに試薬2〔捕捉剤〕を反応させ、つい
で遠心等の手段より生じる沈殿を分離することに
より実施できる。本反応は通常緩衝液〔PH6〜
8〕中において5〜40分間、20〜40℃、好ましく
は37℃前後の温度で温置することにより実施でき
る。
最後に行なわれるエステラーゼ活性測定工程
〔第3工程〕は公知のエステラーゼ定量用試薬c
を用いることにより実施できる。例えば本工程
は、前工程で得られた沈殿に基質であるS−アセ
チルチオフエノールを反応させ、生成するチオフ
エノールにチオール基発色試薬であるDTNBを反
応させて生じる黄色色素を比色することにより実
施できる。
また、本発明の抗体定量用試薬を用いる抗エス
テラーゼ抗体dの定量は、被検体に試薬2〔捕捉
剤〕を加えて被検体中の抗エステラーゼ抗体dを
沈殿として捕捉し、これに試薬1〔エステラーゼ
a〕を加えて抗原抗体反応を行なつた後、沈殿中
のエステラーゼ活性を測定することによつても実
施できる。本法はすでに述べた方法における試薬
1および2の検体への添加順序を逆にした方法で
ある。
更に、抗エステラーゼ抗体dは、試薬1および
2を同時的に加えて温置し、ついで生じる沈殿物
中のエステラーゼ活性を測定することによつても
定量できる。この方法は前記二方法よりも操作が
更に簡便で、しかも両者の結果はよく一致する。
かくして本発明は抗エステラーゼ抗体dの定量
用試薬として、また病原性連鎖球菌感染症、なか
んずく溶血性連鎖球菌感染症〔以下、溶連菌感染
症という〕の診断剤として有用である。
次に実施例を挙げて本発明を更に詳細に説明す
る。
実施例 1
エステラーゼ〔抗原〕の製造
0.025%ブドウ糖、0.3%ビーフハートインフユ
ージヨン、2%ポリペプトン、0.2%食塩、0.2%
乾燥酵母、0.4%リン酸第二ナトリウムからなる
培地〔PH7.4〕10にStreptococcus pyogenes
SS 379〔A−40型〕を植菌し、37℃で16時間静
置培養した後遠心分離して菌体を除去する。液
に固形硫安を加えて60%飽和となし6000×gで20
分間遠心分離して沈殿を得る。これを少量の
0.02Mリン酸緩衝液(PH7.0)に溶解し8時間同
液で透析し、凍結乾燥し、1.2gの粗A−型エ
ステラーゼを得る。
同様にして、Streptococcus pyogenes 69882
〔A−49型〕およびStreptococcus sp H36B〔B
−1−b型〕をそれぞれ培養してA−型および
B型エステラーゼをそれぞれ得る。
実施例 2
細菌細胞壁〔捕捉剤〕の製造
2%バクトカザミノ酸、2%酵母エキス、0.7
%乳酸ナトリウム、2%グリセロリン酸ナトリウ
ム、0.02%硫酸マグネシウム、0.001%硫酸マン
ガン、0.32%硫酸第一鉄、0.32%クエン酸ナトリ
ウム、0.4%リン酸第一カリウムおよび6.25%リ
ン酸第二ナトリウムからなる培地〔PH7.0〕50
を含む100容醗酵タンクにStaphylococcus
aureus Cowan を植菌し、37℃において毎分
50の通気、150回転/分の撹拌速度で20時間培
養する。培養物を遠心して菌体を分離し、水に分
散させてダイノーミルで菌体を破細し、1Mの食
塩水で2回、ついで水で洗滌し凍結乾燥し「プロ
テイン−A」含有細胞壁58gを得る。
実施例 3
不溶性抗体(捕捉剤)の製造
ヒト免疫グロブリンをウサギに免疫して得た抗
ヒト免疫グロブリンウサギ抗血清50mlに、0.1M
リン酸カリウム緩衝液〔PH7.0〕150mlを加えて希
釈し、200mlの飽和硫安液を徐々に加え、氷冷下
で20分間撹拌したのち1100×gで20分間遠心分離
を行なう。ついで沈殿を0.1Mリン酸カリウム緩
衝液〔PH7.0〕に溶解して全量を100mlとする。こ
れに43mlの飽和硫安液を徐々に添加し、さらに氷
冷下で20分間撹拌したのち再び遠心分離を行な
う。上清をとり、飽和硫安液39mlを徐々に添加し
て氷冷下で20分間撹拌し遠心して沈殿を分取す
る。この沈殿を0.02Mリン酸カリウム緩衝液〔PH
7.0〕100mlに溶解し、透析チユーブに入れて
0.02Mリン酸緩衝液10に対して一夜透析する。
この透析を2回行なつたのち内液をタンパク濃度
が1g/50mlになるように同一緩衝液で調節し、
次いでLactobacillus plantarum ATCC−8014の
細胞壁〔不溶性担体〕1gを含む水懸濁液20mlと
1M酢酸ナトリウム緩衝液〔PH5.0〕10mlを加えて
混和する。これに室温で0.8%グルタールアルデ
ヒド水溶液120mlを撹拌し乍ら少しずつ加えた
後、さらに2時間撹拌を続ける。次いで反応混合
液を6000×gで10分間遠心分離し、沈殿物を0.1
%BSA−0.9%NaCl−0.04Mリン酸カリウム緩衝
液〔PH7.0〕500mlに懸濁し19KCで30秒間超音波
処理し、遠心分離して沈殿を集める。この沈殿に
先と同一の緩衝液100mlを加えて再度超音波処理
と遠心分離をくり返す。この操作を2回行なつた
後、沈殿を上記BSA−NaCl−リン酸カリウム緩
衝液100mlに加え、超音波処理して、細菌細胞壁
結合免疫グロブリン・ウサギ抗体〔不溶性抗体〕
懸濁液を得る。
この不溶性抗体懸濁液を捕捉剤として後記実施
例において用いた。
実施例 4
抗A−型エステラーゼ抗体の定量
試薬1:実施例1で得たA−型エステラーゼ50
mgを水に溶解して全量を10mlとなす。
試薬2:実施例2で得たStaphylococcus aureus
Cowanの細胞壁750mgを水に分散させて全量を
10mlとなす。
試薬3−1:0.3mM−DTNB−0.05Mトリス塩酸
緩衝液〔PH8.0〕
試薬3−2:10mM−S−アセチルチオフエノー
ル−エタノール溶液
試薬3−3:アセトン
緩衝液:0.02Mリン酸緩衝液〔PH7.0〕
緩衝液:0.02Mトリス−塩酸緩衝液〔PH8.0〕
抗エステラーゼ抗体dを含有すると思われる溶
連菌感染症の患者血清〔AおよびB〕を57℃で30
分間加熱する。試験管に緩衝液で20倍に希釈し
た血清0.1mlを加え、さらに試薬1〔抗原〕50μ
l加えて37℃で10分間温置して抗原抗体反応を行
なわせしめる。ついで試薬2〔捕捉剤〕を0.1ml
加えて再び37℃で30分間温置する。その後、緩衝
液で2回洗滌しながら遠心する。沈殿物は試薬
3−1〔発色剤〕の1mlに分散し、さらに試薬3
−2〔基質〕40μlを加えて37℃で30分間温置す
る。ついで試薬3−3〔酵素反応停止剤〕2mlを
加えた後1700×g、10分間遠心し、黄色を呈する
上清液の412nmにおける吸光度を光路1cmのセル
中で測定した結果、被検体中の抗A−型エステ
ラーゼ抗体の力価は血清Aの場合380であり、血
清Bの場合320であつた。なお抗体力価は5μl
の血清を用いて30分間の酵素反応で得られる
412nmにおける吸光度を1000倍した値で表わし
た。
実施例 5
抗A−型エステラーゼ抗体の定量
試薬1として実施例1で得たA−型エステラ
ーゼを用い、試薬2として実施例3で得た不溶性
抗体を用いるほかは実施例4と同様にして溶連菌
感染症患者血清〔CおよびD〕中の抗A−型エ
ステラーゼ抗体の力価を定量し、それぞれ852お
よび662の値を得た。
実施例 6
抗B型エステラーゼ抗体の定量
試薬1として実施例1で得たB型エステラーゼ
を用いるほかは実施例4と同様にして溶連菌感染
症患者血清E中の抗B型エステラーゼ抗体の力価
を定量し924の値を得た。
実施例 7
分別定量
溶連菌感染症患者血清Fおよび正常人血清Gに
試薬1としてのA−型,A−型またはB型エ
ステラーゼをそれぞれ個別的に加えるほかは実施
例4と同様にしてそれぞれ3種の抗エステラーゼ
抗体の力価を定量し、次表の結果を得た。
An object of the present invention is to provide a novel reagent for quantifying antibody d against esterase a derived from pathogenic streptococci, that is, anti-esterase antibody d. As an example of conventionally quantifying anti-esterase antibody d, Hayano, one of the present inventors, reported that
and Immunity 15(1) 295-299 (1977) is known. In this method, which can be called repetitive counterelectrophoresis, anti-esterase antibody d and esterase a, which is an antigen, are spotted close to each other in parallel on a gel plate, subjected to electrophoresis, and left overnight. After that, electrophoresis is performed again, and then a coloring reagent is sprayed onto the gel plate, and the main point is to determine the amount of anti-esterase antibody from the size of the moving spots that appear. This method requires a small amount of sample and has the advantage of being able to save the results on the board, but it is cumbersome and takes about 48 hours to obtain results, and the results are determined based on the size of the spot. This is, so to speak, a qualitative method. On the other hand, the method using the quantitative reagent of the present invention is an excellent method that not only requires a small amount of analyte but also provides highly quantitative results in a short time of about 1 to 2 hours. The present invention relates to a reagent for quantifying anti-esterase antibody d consisting of the following reagents 1, 2 and 3. Reagent 1 Esterase a derived from pathogenic Streptococcus Reagent 2 Protein b capable of binding to antibody d against esterase a derived from Pathogenic Streptococcus and binding an insoluble carrier. Reagent 3 Reagent c for quantitative determination of esterase a Here, esterase a (hereinafter also referred to as antigen) used as reagent 1 is prepared by the method described in JP-A-49-132288, for example. Obtained from culture. Examples of pathogenic streptococci include hemolytic streptococcus [Streptococcus pyogenes] [known] described in Examples below.
However, the present invention is not limited to these, and any bacteria can be used as long as it has not lost its esterase production ability, regardless of whether it is hemolytic or not, and can be obtained from various bacterial depository institutions. Esterase a is A- depending on the type of pathogenic streptococcus.
They are classified into serologically different types such as type A, type B, type C, etc., but all of these can be used in the present invention. By using the reagent of the present invention, it is possible to differentially quantify anti-esterase antibodies d according to the serological type of esterase. For example, anti-A-type esterase antibody d can be quantified using A-type esterase a, but anti-A-type esterase or anti-B-type esterase antibody d cannot be quantified, and anti-B-type esterase antibody d cannot be quantified. Type B esterase a must be used for this purpose.
The ability to perform such fractional quantification can be counted as one of the features of the present invention. In addition, as a protein that can bind to the anti-esterase antibody d used as reagent 2 and is bound to an insoluble carrier (hereinafter also referred to as a capture agent), for example, a known insoluble carrier such as a bacterial cell wall or glass beads can be bound to the insoluble carrier. Antibodies against the anti-esterase antibody d, which have been purified, or bacterial cell walls containing "Protein-A" that can bind to immunoglobulins such as Staphylococcus aureus can be used as they are, but isolated and purified "Protein-A" and Those bound with an insoluble carrier such as Cephadex (manufactured by Pharmacia) can also be used. Antibodies against anti-esterase antibody d can be obtained by parenterally administering the antibody d to an animal different from the animal that produced the antibody d,
Preferably, it is obtained by parenterally administering the immunoglobulin of the animal that produced the antibody d to another animal, and then separating the produced antibody. The resulting antibody against anti-esterase antibody d can be bound to an insoluble carrier, for example, according to the disclosure of JP-A-52-117419. The isolation and purification method of "Protein-A" and the binding of "Protein-A" to an insoluble carrier are described, for example, in JP-A-49-133597 and JP-A-49-133597.
It can be carried out according to the description in JP-A-133518. In addition, "Protein-A" is Staphylococcus
It is a protein that exists in the cell wall of bacteria such as P. aureus Cowan and can nonspecifically bind to immunoglobulins. Therefore, the "protein-A" portion in the bacterial cell wall as described above corresponds to a protein that can bind to anti-esterase antibody d, and the remaining portion corresponds to an insoluble carrier. The esterase quantitative reagent used as reagent 3 reacts with a substrate for esterase a such as S-acetylthiophenol, and a decomposition product of the substrate such as 5,5'-dithiobis-2-nitrobenzoic acid [hereinafter referred to as DTNB]. color forming agent,
Known reagents include enzyme reaction terminators such as acetone, buffering agents, and the like. It is convenient to handle these reagents 1, 2, and 3 if they are made into a kit in the form of liquid or powder, depending on their properties. The anti-esterase antibody d in a specimen can be quantified using the reagent of the present invention by sequentially performing the following steps. First step [Antigen-antibody reaction step] A step of adding reagent 1 containing esterase a, which is an antigen, to the subject and causing a reaction [antigen-antibody reaction] to generate an antigen-antibody complex e. Second step [Antigen-antibody complex capturing step] A step of reacting the antigen-antibody complex e with reagent 2 [capture agent] and capturing the complex e as a precipitate. Third step [Esterase activity measurement step] A step of measuring the activity of esterase in the precipitate obtained in the previous step. The first step can be carried out by reacting a specimen suspected of containing anti-esterase antibody d with esterase a, preferably with an excess amount of esterase a. This reaction is usually carried out in a buffer [PH6-8]
for 5 to 40 minutes at 20 to 40°C, preferably at 37°C.
This is done by incubating at a temperature around ℃. In order to remove unreacted esterase a, the subsequent antigen-antibody complex capturing step [second step] of the present invention involves adding reagent 2 [capture agent] to the anti-antigen antibody complex e produced in the first step. This can be carried out by reacting and then separating the resulting precipitate by means such as centrifugation. This reaction is usually carried out using a buffer solution [PH6~
8) for 5 to 40 minutes at a temperature of 20 to 40°C, preferably around 37°C. The final esterase activity measurement step [third step] is carried out using a known esterase quantitative reagent c.
This can be done by using For example, in this step, the precipitate obtained in the previous step is reacted with S-acetylthiophenol, which is a substrate, and the produced thiophenol is reacted with DTNB, which is a thiol-based coloring reagent, and the resulting yellow pigment is color-compared. Can be implemented. Furthermore, in quantifying anti-esterase antibody d using the antibody quantification reagent of the present invention, reagent 2 [capture agent] is added to the sample to capture the anti-esterase antibody d in the sample as a precipitate, and reagent 1 [capture agent] is added to the sample to capture the anti-esterase antibody d in the sample as a precipitate. It can also be carried out by adding esterase a] to perform an antigen-antibody reaction, and then measuring the esterase activity in the precipitate. This method is a method in which the order of addition of reagents 1 and 2 to the sample is reversed in the previously described method. Furthermore, anti-esterase antibody d can also be quantified by simultaneously adding reagents 1 and 2, incubating the mixture, and then measuring the esterase activity in the resulting precipitate. This method is easier to operate than the above two methods, and the results of both methods are in good agreement. Thus, the present invention is useful as a reagent for quantifying anti-esterase antibody d, and as a diagnostic agent for pathogenic streptococcal infections, especially hemolytic streptococcal infections (hereinafter referred to as hemolytic streptococcal infections). Next, the present invention will be explained in more detail with reference to Examples. Example 1 Production of esterase [antigen] 0.025% glucose, 0.3% beef heart infusion, 2% polypeptone, 0.2% salt, 0.2%
Streptococcus pyogenes in a medium [PH7.4] consisting of dry yeast and 0.4% dibasic sodium phosphate.
SS 379 [A-40 type] was inoculated and cultured for 16 hours at 37°C, followed by centrifugation to remove the bacterial cells. Add solid ammonium sulfate to the liquid to make it 60% saturated.
Centrifuge for a minute to obtain the precipitate. A small amount of this
Dissolve in 0.02M phosphate buffer (PH7.0), dialyze against the same solution for 8 hours, and freeze-dry to obtain 1.2 g of crude A-type esterase. Similarly, Streptococcus pyogenes 69882
[A-49 type] and Streptococcus sp H36B [B
-1-b type] to obtain A-type and B-type esterases, respectively. Example 2 Production of bacterial cell wall [capture agent] 2% bactocazamino acid, 2% yeast extract, 0.7
Consisting of % sodium lactate, 2% sodium glycerophosphate, 0.02% magnesium sulfate, 0.001% manganese sulfate, 0.32% ferrous sulfate, 0.32% sodium citrate, 0.4% potassium phosphate and 6.25% dibasic sodium phosphate. Medium [PH7.0] 50
Staphylococcus in a 100 volume fermentation tank containing
aureus Cowan and at 37℃ every minute.
Incubate for 20 hours at 50 °C aeration and 150 revolutions/min stirring speed. The culture was centrifuged to separate the bacterial cells, dispersed in water, crushed with a Dyno Mill, washed twice with 1M saline and then with water, and freeze-dried to obtain 58 g of protein-A-containing cell walls. obtain. Example 3 Production of insoluble antibody (capture agent) 0.1 M of anti-human immunoglobulin rabbit antiserum obtained by immunizing rabbits with human immunoglobulin was added
Dilute by adding 150 ml of potassium phosphate buffer [PH7.0], gradually add 200 ml of saturated ammonium sulfate solution, stir on ice for 20 minutes, and centrifuge at 1100 x g for 20 minutes. Then, dissolve the precipitate in 0.1M potassium phosphate buffer [PH7.0] to make a total volume of 100ml. 43 ml of saturated ammonium sulfate solution was gradually added to this, and the mixture was further stirred for 20 minutes under ice cooling, and then centrifuged again. Remove the supernatant, gradually add 39 ml of saturated ammonium sulfate solution, stir for 20 minutes under ice cooling, and centrifuge to separate the precipitate. This precipitate was dissolved in 0.02M potassium phosphate buffer [PH
7.0〕Dissolve in 100ml and put in dialysis tube.
Dialyze overnight against 0.02M phosphate buffer 10.
After performing this dialysis twice, the internal solution was adjusted with the same buffer so that the protein concentration was 1 g/50 ml.
Next, 20 ml of an aqueous suspension containing 1 g of Lactobacillus plantarum ATCC-8014 cell wall [insoluble carrier] was added.
Add 10 ml of 1M sodium acetate buffer [PH5.0] and mix. 120 ml of 0.8% glutaraldehyde aqueous solution was added little by little at room temperature while stirring, and stirring was continued for an additional 2 hours. The reaction mixture was then centrifuged at 6000 x g for 10 minutes to remove the precipitate at 0.1
Suspend in 500 ml of %BSA-0.9% NaCl-0.04M potassium phosphate buffer [PH7.0], sonicate at 19KC for 30 seconds, and centrifuge to collect the precipitate. Add 100 ml of the same buffer solution to this precipitate and repeat the sonication and centrifugation again. After performing this operation twice, the precipitate was added to 100 ml of the above BSA-NaCl-potassium phosphate buffer and treated with ultrasound to prepare bacterial cell wall-bound immunoglobulin/rabbit antibody [insoluble antibody].
Obtain a suspension. This insoluble antibody suspension was used as a capture agent in the Examples below. Example 4 Anti-A-type esterase antibody quantitative reagent 1: A-type esterase 50 obtained in Example 1
Dissolve mg in water to make a total volume of 10 ml. Reagent 2: Staphylococcus aureus obtained in Example 2
Disperse 750 mg of Cowan's cell wall in water and dissolve the entire amount.
10ml and eggplant. Reagent 3-1: 0.3mM-DTNB-0.05M Tris-HCl buffer [PH8.0] Reagent 3-2: 10mM-S-acetylthiophenol-ethanol solution Reagent 3-3: Acetone buffer: 0.02M phosphate buffer Solution [PH7.0] Buffer: 0.02M Tris-HCl buffer [PH8.0] Sera from patients with streptococcal infection [A and B] thought to contain anti-esterase antibody d were incubated at 57°C for 30 minutes.
Heat for a minute. Add 0.1ml of serum diluted 20 times with buffer to the test tube, and add 50μ of reagent 1 [antigen].
1 and incubated at 37°C for 10 minutes to allow antigen-antibody reaction to occur. Next, add 0.1ml of reagent 2 [capture agent].
Add and incubate again at 37°C for 30 minutes. Then, centrifuge while washing twice with buffer. The precipitate was dispersed in 1 ml of reagent 3-1 [coloring agent], and then added with reagent 3.
-2 [Substrate] Add 40 μl and incubate at 37°C for 30 minutes. Next, 2 ml of reagent 3-3 [enzyme reaction stopper] was added and centrifuged at 1700 x g for 10 minutes, and the absorbance of the yellow supernatant was measured at 412 nm in a cell with a 1 cm optical path. The titer of anti-A-type esterase antibody was 380 for serum A and 320 for serum B. The antibody titer is 5 μl.
Obtained by enzymatic reaction for 30 minutes using serum of
It is expressed as the absorbance at 412 nm multiplied by 1000. Example 5 Quantification of anti-A-type esterase antibody Hemolytic streptococcus was isolated in the same manner as in Example 4, except that the A-type esterase obtained in Example 1 was used as reagent 1, and the insoluble antibody obtained in Example 3 was used as reagent 2. The titers of anti-A-type esterase antibodies in the infectious disease patient sera [C and D] were determined and values of 852 and 662 were obtained, respectively. Example 6 Quantification of anti-B esterase antibody The titer of anti-B esterase antibody in serum E of a patient with streptococcal infection was determined in the same manner as in Example 4, except that the B esterase obtained in Example 1 was used as reagent 1. It was quantified and a value of 924 was obtained. Example 7 Differential determination Three types of esterases were prepared in the same manner as in Example 4, except that A-type, A-type, or B-type esterase was individually added as reagent 1 to streptococcal infection patient serum F and normal human serum G. The titer of anti-esterase antibody was quantified and the results shown in the following table were obtained.
【表】
実施例 8
抗A−型エステラーゼ抗体の定量
溶連菌感染症の患者血清〔HおよびJ〕を57℃
30分間加熱する。これを実施例4の緩衝液で20
倍に希釈し、その0.1mlを試験管にとり、これに
実施例4の試薬2〔捕捉剤〕を0.1ml加え、37℃
で30分間温置し、生じる沈殿を遠心分離し実施例
4の緩衝液で遠心洗滌する。これに実施例4の
緩衝液を0.1ml加えて撹拌し、更に実施例4の
試薬1を50μl加えて37℃で温置する。10分後実
施例4の緩衝液で遠心しながら洗滌し、得られ
る沈殿について実施例4と同様にしてエステラー
ゼ活性を測定した結果、被検体中の抗A−型エ
ステラーゼ抗体の力価は血清Hの場合720であ
り、血清Jの場合は430であつた。
実施例 9
抗A−型エステラーゼ抗体の定量
溶連菌感染症患者血清Kを57℃で30分間加熱す
る。
これを実施例4の緩衝液で20倍に希釈し、そ
の0.1mlを試験管にとり、これに実施例4の試薬
1を50μlおよび試薬2を0.1ml加えて37℃で10
分間温置し、生じる沈殿について実施例4と同様
に処理し、抗体力価として475の値を得た。
実施例 10
各定量法の比較
溶連菌感染症の患者血清L,M,N,O,P中
の抗A−型エステラーゼ抗体の力価を実施例
4、実施例8および実施例9に記載した方法で定
量し、次表の結果を得た。[Table] Example 8 Quantification of anti-A-type esterase antibody Sera from patients with streptococcal infection [H and J] were incubated at 57°C.
Heat for 30 minutes. This was mixed with the buffer of Example 4 for 20 minutes.
Dilute it twice, take 0.1 ml of it into a test tube, add 0.1 ml of reagent 2 [capture agent] from Example 4, and hold it at 37°C.
The resulting precipitate is centrifuged and centrifugally washed with the buffer of Example 4. Add 0.1 ml of the buffer solution of Example 4 to this and stir, and then add 50 μl of Reagent 1 of Example 4 and incubate at 37°C. After 10 minutes, the precipitate was washed with the buffer of Example 4 while being centrifuged, and the esterase activity of the resulting precipitate was measured in the same manner as in Example 4. As a result, the titer of anti-A-type esterase antibody in the subject was found to be lower than serum H. For serum J, it was 720, and for serum J it was 430. Example 9 Quantification of anti-A-type esterase antibody Serum K of a patient suffering from streptococcal infection is heated at 57°C for 30 minutes. This was diluted 20 times with the buffer solution of Example 4, 0.1 ml of it was put into a test tube, 50 μl of Reagent 1 of Example 4 and 0.1 ml of Reagent 2 were added, and the mixture was heated at 37°C for 10 minutes.
After incubation for a minute, the resulting precipitate was treated in the same manner as in Example 4 to obtain an antibody titer of 475. Example 10 Comparison of various quantitative methods The titer of anti-A-type esterase antibodies in serum L, M, N, O, and P of patients with streptococcal infection was determined using the method described in Example 4, Example 8, and Example 9. The results are shown in the following table.
【表】
表わす。
実施例 11
抗A−型エステラーゼ抗体の定量
実施例7で用いた血清Fを実施例4の緩衝液
で倍数希釈したものについて、実施例4と同様に
して抗A−型エステラーゼ抗体を定量し次の結
果を得た。[Table] Represents.
Example 11 Quantification of anti-A-type esterase antibody The anti-A-type esterase antibody was quantified in the same manner as in Example 4 using the serum F used in Example 7 diluted multiple times with the buffer of Example 4. The results were obtained.
【表】【table】