JPS6262151B2 - - Google Patents
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- JPS6262151B2 JPS6262151B2 JP11223882A JP11223882A JPS6262151B2 JP S6262151 B2 JPS6262151 B2 JP S6262151B2 JP 11223882 A JP11223882 A JP 11223882A JP 11223882 A JP11223882 A JP 11223882A JP S6262151 B2 JPS6262151 B2 JP S6262151B2
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Description
【発明の詳細な説明】
本発明はアルスロバクタ属に属するグリセロー
ルキナーゼ生産性菌株を培養し、該培養物からグ
リセロールキナーゼを採取することを特徴とする
グリセロールキナーゼの製造法に関する。DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION The present invention relates to a method for producing glycerol kinase, which comprises culturing a glycerol kinase-producing strain belonging to the genus Arthrobacter and collecting glycerol kinase from the culture.
グリセロールキナーゼ(Glycerol kinase.E.
C.2.7.1.30,以下GKと略す)は、グリセロール+
ATP→L→α―グリセロリン酸+ADPの反応を
触媒する酵素で血清中のグリセロール、トリグリ
セライドおよびリン脂質の定量などに利用され
る。 Glycerol kinase (Glycerol kinase.E.
C.2.7.1.30, hereinafter abbreviated as GK) is glycerol +
It is an enzyme that catalyzes the reaction of ATP → L → α-glycerophosphate + ADP and is used for quantifying glycerol, triglyceride, and phospholipids in serum.
従来GKを生産する微生物としてはキヤンジダ
属、アエロバクター属、プロピオニバクテリウム
属、アセトバクター属、ストレプトマイセス属、
バチルス属、セルロモナス属、コリネバクテリウ
ム属などが知られている。 Microorganisms that conventionally produce GK include Candida, Aerobacter, Propionibacterium, Acetobacter, Streptomyces,
Known species include Bacillus, Cellulomonas, and Corynebacterium.
本発明者らは、工業的に安価にGKを産生する
微生物を求めて検索した結果、上記の種々の微生
物とその属を異にするアルスロバクタ属に属する
菌株が著量のGKを生産することを見出した。 As a result of searching for microorganisms that produce GK industrially at low cost, the present inventors found that strains belonging to the genus Arthrobacter, which is a different genus from the various microorganisms mentioned above, produce a significant amount of GK. I found it.
本発明は、上記の知見に基いて完成されたもの
で、アルスロバクタ属に属し、GKを生産する能
力を有する菌株を培地に培養し、その培養物より
GKを採取することを特徴とするGKの製造法に関
する。 The present invention was completed based on the above knowledge, and involves culturing a bacterial strain belonging to the genus Arthrobacter and having the ability to produce GK in a medium, and
This invention relates to a method for producing GK, which is characterized by collecting GK.
本発明においてGKの製造に用いられるアルス
ロバクタ属に属する菌株とは例えば、アルスロバ
クタ・ルテウス(Arthrobacter Iuteus)
ATCC21606,アルスロバクタ・アルトロシアネ
ウス(Arthrobacter artrocyaneus)IAM12339な
どが挙げられるが、これらの菌の他、アルスロバ
クタ属に属しGK生産能を有する菌株はすべて本
発明の方法に使用することができる。 The strain belonging to the genus Arthrobacter used in the production of GK in the present invention is, for example, Arthrobacter Iuteus.
Examples include ATCC21606 and Arthrobacter artrocyaneus IAM12339, but in addition to these bacteria, any strain belonging to the genus Arthrobacter and having GK-producing ability can be used in the method of the present invention.
本発明の方法における菌株の培養方法として
は、細菌の通常の培養方法が適用できる。栄養源
としては、通常用いられるものが広く利用され得
る。例えば炭素源としては、グルコース、シユク
ロース、ラクトース、キシロース、マルトースな
どの糖類、マニトール、ソルビトールなどの糖ア
ルコール、ピルビン酸、酢酸、クエン酸などの有
機酸、又はエタノール、グリセロールなどのアル
コール類が使用される。窒素源としては利用可能
な窒素化合物であればよく、例えば酵母エキス、
ペプトン、ポリペプトン、肉エキス、大豆粉など
が用いられる。その他リン酸塩、硫酸塩、ナトリ
ウム、カリウム、マグネシウム、マンガン、鉄な
どの塩類が必要に応じて使用される。 As a method for culturing the bacterial strain in the method of the present invention, a conventional culture method for bacteria can be applied. As a nutrient source, a wide variety of commonly used nutrients can be used. For example, as a carbon source, sugars such as glucose, sucrose, lactose, xylose, and maltose, sugar alcohols such as mannitol and sorbitol, organic acids such as pyruvic acid, acetic acid, and citric acid, or alcohols such as ethanol and glycerol are used. Ru. The nitrogen source may be any available nitrogen compound, such as yeast extract,
Peptone, polypeptone, meat extract, soybean flour, etc. are used. Other salts such as phosphates, sulfates, sodium, potassium, magnesium, manganese, and iron are used as necessary.
培養温度は菌が生育しGKを生産する範囲内で
あればいずれの温度でも良いが、好ましくは25〜
30℃が良い。また、培養時間はGKが最高収量に
達する時間に培養を終了すれば良く、通常16〜28
時間程度である。 The culture temperature may be any temperature within the range that allows the bacteria to grow and produce GK, but preferably 25~25°C.
30℃ is good. In addition, as for the culture time, it is sufficient to finish the culture at the time when the maximum yield of GK is reached, which is usually 16 to 28 hours.
It takes about an hour.
本発明で使用される菌株はグリセロール又はグ
リセロール類を培地に添加することにより、より
多量のGKを生産せしめることができる。 The strain used in the present invention can be made to produce a larger amount of GK by adding glycerol or glycerols to the culture medium.
この様にして得られた培養物からGKを採取す
るには公知の方法を適宜組合せて行うことができ
る。例えば、培養液を遠心分離などして菌株を集
め、次いでこの菌体を種々の機械的方法にて破砕
し、さらに遠心分離して清澄酵素液を得る。この
酵素液から硫安などによる塩析により不純物を除
去した後、吸着クロマトグラフイー、イオン交換
クロマトグラフイー、ゲル過などの常法により
精製する。 GK can be collected from the culture thus obtained by appropriately combining known methods. For example, a culture solution is centrifuged to collect a bacterial strain, then the bacterial cells are disrupted by various mechanical methods, and further centrifuged to obtain a clear enzyme solution. After removing impurities from this enzyme solution by salting out with ammonium sulfate or the like, it is purified by conventional methods such as adsorption chromatography, ion exchange chromatography, and gel filtration.
次に本発明の方法におけるGKの活性測定法、
およびアルスロバクタ・アルトロシアネウス
IAM12339の生産するGKの理化学的性質について
述べる。 Next, the method for measuring GK activity in the method of the present invention,
and Arthrobacter altocyaneus
We will describe the physical and chemical properties of GK produced by IAM12339.
活性測定法 0.2Mグリシン―ヒドラジン緩衝液
(2μM、MgCl2含、PH9.8)3ml、14mMNAD
(ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド)0.1
ml、0.1M ATP(アデノシン三リン酸)0.05
ml、グリセロリン酸デヒドロゲナーゼ(ベーリ
ンガー社製:1mg/ml、170u/ml)10μ、
1Mグリセロール10μおよび本発明のGK溶液
30μを混合して25℃で反応し、NADの変化
を340nmにおける吸光度の増加により測定し
た。活性は、1分間に1マイクロモルのNAD
を還元するのに要する酵素量を1単位とした。Activity measurement method 3ml of 0.2M glycine-hydrazine buffer (2μM, containing MgCl2 , PH9.8), 14mMNAD
(nicotinamide adenine dinucleotide) 0.1
ml, 0.1M ATP (adenosine triphosphate) 0.05
ml, glycerophosphate dehydrogenase (Boehringer: 1mg/ml, 170u/ml) 10μ,
1M glycerol 10μ and GK solution of the invention
30μ was mixed and reacted at 25°C, and the change in NAD was measured by the increase in absorbance at 340nm. Activity is 1 micromole of NAD per minute
The amount of enzyme required to reduce was defined as 1 unit.
理化学的性質
(1) 作用 本酵素は少なくとも次式に示す反応を
触媒する。Physical and chemical properties (1) Action This enzyme catalyzes at least the reaction shown in the following formula.
グリセロール+ATP→L―α―グリセロリ
ン酸+ADP
(2) 基質特異性 0.2Mリン酸緩衝液(PH7.5)、
10mM ATP 0.1ml、3mM ホスホエノールピ
ルビン酸 0.1ml、2mM NADH 0.1ml、0.1M
MgCl220μ、ピルビン酸キナーゼー乳酸脱水
素酵素混合物(ベーリンガー社製)10μおよ
び基質として0.2Mグリセロール、0.2Mジヒド
ロキシアセトンまたはDL―グリセロアルデヒ
ドの0.1mlを混合し、これに本酵素液を加えて
最終1mlとしたのち25℃で反応しNADHの減少
速度を測定した。各基質の相対活性は次の通り
である。 Glycerol + ATP → L-α-glycerophosphate + ADP (2) Substrate specificity 0.2M phosphate buffer (PH7.5),
10mM ATP 0.1ml, 3mM phosphoenolpyruvate 0.1ml, 2mM NADH 0.1ml, 0.1M
Mix 20μ of MgCl 2 , 10μ of pyruvate kinase-lactate dehydrogenase mixture (manufactured by Boehringer), and 0.1ml of 0.2M glycerol, 0.2M dihydroxyacetone or DL-glyceraldehyde as a substrate, and add this enzyme solution to the final solution. After the volume was reduced to 1 ml, the reaction was carried out at 25°C and the rate of decrease in NADH was measured. The relative activity of each substrate is as follows.
基 質 相対活性
グリセロール 100%
ジヒドロキシアセトン 97%
DL―グリセロアルデヒド 55%
(3) 至適PH 本酵素の至適PHは第1図に示すよう
にPH9.5〜10付近にある。 Substrate Relative activity Glycerol 100% Dihydroxyacetone 97% DL-glyceraldehyde 55% (3) Optimal PH The optimal PH of this enzyme is around PH9.5-10 as shown in Figure 1.
(4) PH安定性 本酵素のPH安定性は、第2図に示
すように37℃、1時間の処理でPH5.5〜9.5であ
る。(4) PH stability The PH stability of this enzyme is PH5.5 to 9.5 when treated at 37°C for 1 hour, as shown in Figure 2.
(5) 熱安定性 本酵素は第3図に示すようにPH
7.0、15分の処理において45℃以下の温度で安
定である。(5) Thermostability This enzyme has a pH of
7.0, stable at temperatures below 45°C in a 15 minute treatment.
(6) 至適温度 本酵素の至適温度はPH7.0の条件
で第4図に示すように50℃付近にある。(6) Optimal temperature The optimal temperature for this enzyme is around 50°C as shown in Figure 4 under the condition of pH 7.0.
(7) 分子量 約82000(セフアデツクスG―100ゲ
ル過による)
(8) 等電点 PH4.3付近(アンフオラインを用い
る焦点電気泳動法による)
(9) 基質親和性 本酵素のグリセロールに対する
ミハエリス定数(Km値)は3.5×10-5Mで、
ATPに対するKm値は3.7×10-5Mであつた。(7) Molecular weight Approximately 82,000 (by Cephadex G-100 gel filtration) (8) Isoelectric point around PH4.3 (by focused electrophoresis using ampholine) (9) Substrate affinity Michaelis constant (Km) for glycerol of this enzyme value) is 3.5×10 -5 M,
The Km value for ATP was 3.7×10 -5 M.
次に、本発明を実施例によつてさらに詳細に説
明する。 Next, the present invention will be explained in more detail with reference to Examples.
実施例 1
グリセロール0.5%、ポリペプトン0.5%、酵母
エキス0.3%、消泡剤アデカノールLG―126(旭
電化製)0.02%の組成の培地(PH7.0)2を3
容のジヤーフアーメンターにとり、120℃、20
分間オートクレーブ殺菌した後、アルスロバク
タ・アルトロシアネウスIAM12339を植菌し、30
℃で20時間培養した。Example 1 Culture medium (PH7.0) with the composition of 0.5% glycerol, 0.5% polypeptone, 0.3% yeast extract, and 0.02% antifoaming agent Adekanol LG-126 (manufactured by Asahi Denka) 2 to 3
In a jar of water, heat at 120℃, 20℃.
After autoclaving for 30 minutes, inoculation with Arthrobacter althrocyaneus IAM12339 was carried out for 30 minutes.
Cultured at ℃ for 20 hours.
得られた培養液を遠心分離して菌体を集め、こ
れを20mMリン酸緩衝液(PH7.0)に懸濁した
後、セルミル(エムエス機器社製)で破砕し、遠
心分離により粗酵素抽出液150mlを得た。本酵素
液の活性は8.8U/mlであつた。しかる後、硫安
20〜60%飽和の沈澱画分を集め、これを前記と同
じリン酸緩衝液に溶解後、同緩衝液に対し一晩透
析した。 The resulting culture solution was centrifuged to collect bacterial cells, which were suspended in 20mM phosphate buffer (PH7.0), crushed using Cellmil (manufactured by MS Kiki Co., Ltd.), and crude enzymes were extracted by centrifugation. 150 ml of liquid was obtained. The activity of this enzyme solution was 8.8 U/ml. After that, ammonium sulfate
The precipitated fractions at 20 to 60% saturation were collected, dissolved in the same phosphate buffer as above, and then dialyzed against the same buffer overnight.
該酵素液を、予め20mMリン酸緩衝液で平衡化
したアミノヘキシルセフアロースカラム(130ml
容)に通した。カラムに吸着した本酵素を
0.4MNaCl含有20mMリン酸緩衝液(PH7.0)で溶
出した。溶出液130mlをホローフアイバーHI6000
限外過膜(旭化成製)で脱塩濃縮し、次いでこ
れを20mMリン酸緩衝液(PH7.0)で平衡化した
DEAE―セフアロースカラム(150ml容)に通し
た。 The enzyme solution was transferred to an aminohexyl sepharose column (130ml) equilibrated with 20mM phosphate buffer in advance.
I passed it through (Yong). This enzyme adsorbed on the column
Elution was performed with 20mM phosphate buffer (PH7.0) containing 0.4M NaCl. Transfer 130ml of eluate to Hollow Eye Bar HI6000
It was desalted and concentrated using an ultrafiltration membrane (manufactured by Asahi Kasei), and then equilibrated with 20mM phosphate buffer (PH7.0).
It was passed through a DEAE-Sepharose column (150 ml volume).
0〜0.5MNaClによる直線濃度勾配法で溶出を
行い活性画分を集めた。これを前記ホローフアイ
バーにて脱塩濃縮した後凍結乾燥した。かくして
比活性30U/mgのGKを15mg得た。 Elution was performed using a linear concentration gradient method using 0 to 0.5M NaCl, and active fractions were collected. This was desalted and concentrated using the hollow eye bar, and then freeze-dried. In this way, 15 mg of GK with a specific activity of 30 U/mg was obtained.
実施例 2
アルスロバクタ・ルテウスATCC21606を実施
例1と同様に培養し、菌体破砕により粗酵素抽出
液170mlを得た。本酵素液の活性は3.7U/mlであ
つた。Example 2 Arthrobacter luteus ATCC21606 was cultured in the same manner as in Example 1, and 170 ml of crude enzyme extract was obtained by disrupting the cells. The activity of this enzyme solution was 3.7 U/ml.
第1は本発明の方法において、アルスロバク
タ・アルトロシアネウスIAM12339の生産するグ
リセロールキナーゼの至適PHを示す図であり、同
じく第2図はPH安定性を、第3図は熱安定性を、
第4図は至適温度を示す図である。
The first is a diagram showing the optimal PH of glycerol kinase produced by Arthrobacter althrocyaneus IAM12339 in the method of the present invention; similarly, Figure 2 shows the PH stability, and Figure 3 shows the thermostability.
FIG. 4 is a diagram showing the optimum temperature.
Claims (1)
ゼ生産能力を有する菌株を培養し、該培養物から
グリセロールキナーゼを採取することを特徴とす
るグリセロールキナーゼの製造法。1. A method for producing glycerol kinase, which comprises culturing a strain belonging to the genus Arthrobacter and having the ability to produce glycerol kinase, and collecting glycerol kinase from the culture.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP11223882A JPS592688A (en) | 1982-06-28 | 1982-06-28 | Preparation of glycerol kinase |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP11223882A JPS592688A (en) | 1982-06-28 | 1982-06-28 | Preparation of glycerol kinase |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS592688A JPS592688A (en) | 1984-01-09 |
| JPS6262151B2 true JPS6262151B2 (en) | 1987-12-24 |
Family
ID=14581696
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP11223882A Granted JPS592688A (en) | 1982-06-28 | 1982-06-28 | Preparation of glycerol kinase |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS592688A (en) |
-
1982
- 1982-06-28 JP JP11223882A patent/JPS592688A/en active Granted
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS592688A (en) | 1984-01-09 |
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