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JPS6326988B2 - - Google Patents
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JPS6326988B2 - - Google Patents

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Publication number
JPS6326988B2
JPS6326988B2 JP56068652A JP6865281A JPS6326988B2 JP S6326988 B2 JPS6326988 B2 JP S6326988B2 JP 56068652 A JP56068652 A JP 56068652A JP 6865281 A JP6865281 A JP 6865281A JP S6326988 B2 JPS6326988 B2 JP S6326988B2
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JP
Japan
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medium
cells
culture
fibronectin
serum albumin
Prior art date
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Expired
Application number
JP56068652A
Other languages
Japanese (ja)
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JPS57186491A (en
Inventor
Isao Yamane
Mikio Suga
Hiroyoshi Hoshi
Yoshiki Minamoto
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Ajinomoto Co Inc
Original Assignee
Ajinomoto Co Inc
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Publication date
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  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

【発明の詳細な説明】 ヒトなどの各種哺乳動物の繊維芽細胞にはイン
ターフエロン、酵素、多糖類などの有用物質を産
生するものが知られており、その細胞を培養する
ことによつてこれらの有用物質を取得することが
実施され、あるいは検討されている。
[Detailed Description of the Invention] Fibroblasts of various mammals such as humans are known to produce useful substances such as interferon, enzymes, and polysaccharides, and these can be obtained by culturing these cells. The acquisition of useful substances has been implemented or is being considered.

たとえば、ヒト繊維芽細胞はヒトの皮膚やヒト
胎児の各臓器とか包皮などから培養することがで
き最近インターフエロンを製造する手段としてこ
の細胞を用いる方法が広く研究されている。
For example, human fibroblasts can be cultured from human skin, human fetal organs, foreskin, etc., and recently the use of these cells as a means of producing interferon has been widely studied.

これらの細胞の培養には通例牛胎児血清や仔牛
血清を大量に添加した培地が用いられているが、
大量培養を行う場合にはこの血清が非常に高価な
ことと原因不明のロツト差があることが大きな問
題点であつた。また、分離精製したインターフエ
ロン等の製品のなかに牛血清蛋白が混入している
ためにヒトに繰返し投与するとこの蛋白に対する
抗体が体内に形成されるという問題点もあつた。
A medium supplemented with large amounts of fetal bovine serum or calf serum is usually used to culture these cells.
When performing large-scale culture, major problems were that this serum was extremely expensive and there were unexplained differences between lots. Another problem was that since bovine serum proteins were mixed in isolated and purified products such as interferon, repeated administration to humans would lead to the formation of antibodies against these proteins in the body.

本発明者らは先に培地に哺乳動物血清アルブミ
ンを添加すれば血清を添加しなくとも哺乳動物細
胞用培地として用いうることを見出したが、その
後繊維芽細胞の場合には哺乳動物血清アルブミン
の特に高濃度側では細胞が培養容器に付着し難く
なつてその定着伸展が阻害されることを見出し
た。低濃度側ではもともと細胞の増殖速度が遅い
ことから、工場生産においてはアルブミンの高濃
度域で細胞を培養する必要がある。
The present inventors previously discovered that if mammalian serum albumin was added to the medium, it could be used as a medium for mammalian cells without adding serum; however, in the case of fibroblasts, mammalian serum albumin was added to the medium. It has been found that especially at high concentrations, cells become difficult to adhere to the culture vessel and their colonization and expansion are inhibited. In factory production, it is necessary to culture cells in a high concentration range of albumin, since the growth rate of cells is originally slow at low concentrations.

そこで本発明者らはこの牛血清アルブミンとか
ヒト血清アルブミンなどによる細胞の定着伸展を
阻害する作用を排除すべく種々検討の結果、培地
に通気する気体の酸素濃度を12%以下とし、かつ
哺乳動物由来のフイブロネクチンを培養素に加え
れば、この阻害作用を排除して哺乳動物血清アル
ブミンの細胞増殖促進作用を充分に発揮させるこ
とができることを見出したものである。すなわ
ち、本発明は哺乳動物の繊維芽細胞を血清から分
離された哺乳動物血清アルブミンを含有する培地
に培養する際に、培地と接触させる気体の酸素濃
度を3〜12容量%とし、かつ哺乳動物由来のフイ
ブロネクチンを培養容器にコーテイングするか又
は当該培地に添加することを特徴とする哺乳動物
の繊維芽細胞の培養方法に関するものである。
Therefore, the present inventors conducted various studies to eliminate the effect of bovine serum albumin, human serum albumin, etc. that inhibits cell colonization and spread. As a result, the present inventors determined that the oxygen concentration of the gas aerated into the culture medium was 12% or less, and that The inventors have discovered that by adding fibronectin derived from fibronectin to the culture medium, this inhibitory effect can be eliminated and the cell proliferation-promoting effect of mammalian serum albumin can be fully exerted. That is, the present invention provides that when mammalian fibroblasts are cultured in a medium containing mammalian serum albumin separated from serum, the oxygen concentration of the gas brought into contact with the medium is 3 to 12% by volume, and The present invention relates to a method for culturing mammalian fibroblasts, which comprises coating a culture container with fibronectin derived from the present invention or adding it to the culture medium.

フイブロネクチンは間充織細胞の表面や血液中
に存在する接着性糖蛋白で、血漿成分の場合には
一般にはコールド・インソルユブル・グロブリン
(cold insoluble globulin)と呼ばれるが、アン
チ・ゼラチン・フアクター(anti―gelatin
factor)、ミクロフイブリラー・プロテイン
(microfibrillar protein)、オプソニツク・プロ
テイン(opsonic protein)などとも呼ばれ、血
清成分の場合にはセル・アタツチメント・フアク
ター(Cell attachment factor,CAF,c―
CAP)、セル・スプレツデインク・フアクター
(Cell spreading factor)などと、そして繊維芽
細胞表面成分の場合にはフイブロブラスト・サー
フエイス・アンチゲン(fibroblast surface
antiger,SFA)、ガラクトプロテイン a
(galactoprotein a)、セル・サーフエイス・プ
ロテイン(Cell surface protein,CSP)、ゼータ
などとも呼ばれている。
Fibronectin is an adhesive glycoprotein that exists on the surface of mesenchymal cells and in blood, and when it is a plasma component, it is generally called cold insoluble globulin, but it is also an anti-gelatin factor. gelatin
Also called factor), microfibrillar protein, opsonic protein, etc. In the case of serum components, cell attachment factor (CAF, c-
CAP), cell spreading factor, and in the case of fibroblast surface components, fibroblast surface antigen.
antiger, SFA), galactoprotein a
It is also called galactoprotein a, cell surface protein (CSP), zeta, etc.

本発明においてはヒト、牛、馬、羊、豚、マウ
スなどの哺乳動物由来のフイブロネクチンを用い
る。フイブロネクチンの由来と細胞の由来は異な
つていてもよく、例えば牛血清から分離したフイ
ブロネクチンをヒト繊維芽細胞の培養に用いるこ
とができる。フイブロネクチンの製造方法はゼラ
チンアフイニテイークロマトグラフイー、セフア
ロースを用いたカラムクロマトグラフイーなど公
知の方法による。原料は血漿又は血清が簡便であ
る。純度は95%以上にすることが望ましい。
In the present invention, fibronectin derived from mammals such as humans, cows, horses, sheep, pigs, and mice is used. The origin of fibronectin and the origin of cells may be different; for example, fibronectin isolated from bovine serum can be used to culture human fibroblasts. Fibronectin can be produced by known methods such as gelatin affinity chromatography and column chromatography using Sepharose. The raw material is simply plasma or serum. It is desirable that the purity be 95% or higher.

フイブロネクチンを培養容器にコーテイングす
る方法としては、例えばリン酸バツフアー生理食
塩溶液(phosphate buffer seline、以下PBSと
略記する。)等の緩衝液に溶かし、濾過滅菌のの
ちこの溶液をガラスとかプラスチツク製の培養容
器に入れて一夜放置し、あるいは容器内の器壁を
広くぬらすように一夜ゆつくりまわしてから容器
から抜き出し、容器内を緩衝液で1回ないし数回
洗浄すればよい。容器はその器壁がフイブロネク
チンを接着して被膜を構成しうるものであればよ
く、例えばコラーゲン、ゼラチン、プロコラーゲ
ン、フイブリン、フイブリノゲン、プロテオグリ
カン等を培養容器の器壁にコーテイングしたもの
であつてもよい。フイブロネクチンの量は器壁面
積1平方米当り1〜100mg程度でよい。
To coat a culture container with fibronectin, for example, it is dissolved in a buffer solution such as phosphate buffer seline (hereinafter abbreviated as PBS), and after sterilization by filtration, this solution is coated in a culture container made of glass or plastic. You can put it in a container and leave it overnight, or you can swirl it around overnight so that the walls of the container are widely wetted, then remove it from the container, and wash the inside of the container once or several times with a buffer solution. The container may be of any type as long as its wall can adhere fibronectin to form a coating; for example, the container wall of the culture container may be coated with collagen, gelatin, procollagen, fibrin, fibrinogen, proteoglycan, etc. good. The amount of fibronectin may be about 1 to 100 mg per square meter of vessel wall area.

一方、フイブロネクチンを培地に添加する場合
には、一旦PBS等の緩衝液に溶かしてから濾過
滅菌して投入するのがよい。添加量は1mg/以
上がよく、5〜100mg/程度が好適である。フ
イブロネクチンは前記の方法でガラスビーズ、プ
ラスチツクビーズなどにコーテイングして培養容
器内に投入してもよい。コーテイングして用いた
場合には、培養容器壁、ビーズ等を問わず2〜5
回程度の繰返し使用が可能である。
On the other hand, when adding fibronectin to a culture medium, it is best to dissolve it in a buffer solution such as PBS and then sterilize it by filtration before adding it. The amount added is preferably 1 mg/or more, preferably about 5 to 100 mg/. Fibronectin may be coated on glass beads, plastic beads, etc. by the method described above, and then introduced into a culture vessel. When used with coating, 2 to 5
Can be used repeatedly several times.

培地は血清から分離された哺乳動物血清アルブ
ミンを含有するものである。本発明の特徴とする
ところはあくまで無血清ないし低血清濃度の培地
の使用にあり、そのために血清アルブミンを哺乳
動物血清から他の血清成分を分離して使用する。
哺乳動物血清アルブミンは、例えばヒト血清アル
ブミン、牛血清アルブミン、馬血清アルブミンの
如きものである。これらの分離は、エタノール分
画法、硫安分画法、ゲル濾過法等の血清アルブミ
ンを分離する公知の方法によつて行えばよい。結
晶アルブミンやコーン(Cohn)のフラクシヨン
Vなどの市販品をそのまま用いることができる。
添加量としては無血清培地の場合には0.1〜1重
量%程度が適当である。血清を含む培地の場合に
は血清中に既に血清アルブミンが含まれているか
ら、これよりももつと少なくてもよいことはいう
までもない。
The medium contains mammalian serum albumin separated from serum. The feature of the present invention lies in the use of a serum-free or low serum concentration medium, and for this purpose, serum albumin is used after separating other serum components from mammalian serum.
Mammalian serum albumins include, for example, human serum albumin, bovine serum albumin, and equine serum albumin. These separations may be performed by known methods for separating serum albumin, such as ethanol fractionation, ammonium sulfate fractionation, and gel filtration. Commercially available products such as crystalline albumin and Cohn's Fraction V can be used as they are.
The appropriate amount to be added is about 0.1 to 1% by weight in the case of a serum-free medium. In the case of a medium containing serum, since serum albumin is already contained in the serum, it goes without saying that it may be necessary to have less than this.

他の培地成分としては、インシユリンとかヒト
トランスフエリンの如き細胞増殖因子、グルコー
スの如き糖源、アミノ酸、ビタミン類、無機塩お
よび通常の細胞増殖用の培地に含まれるその他の
栄養源を含む。必要により核酸前駆体を加えても
よい。
Other medium components include cell growth factors such as insulin and human transferrin, sugar sources such as glucose, amino acids, vitamins, inorganic salts, and other nutritional sources normally included in cell growth media. A nucleic acid precursor may be added if necessary.

細胞増殖因子の濃度としては1〜50mg/の程
度が適当であり、培養する細胞の種類に応じて1
種又は2種以上を適宜組合せて用いる。糖源には
通常グルコースが0.5〜10g/程度で用いられ
る。そのほか、ピルビン酸などを適宜加えてよ
い。アミノ酸な蛋白質構成成分アミノ酸であつて
例えばアラニン、アルギニン、グタミン、シスチ
ン、スレオニン、リジン、バリン、フエニルアラ
ニンの如きものである。
The appropriate concentration of the cell growth factor is 1 to 50 mg/kg, depending on the type of cells to be cultured.
Use one species or a combination of two or more as appropriate. Glucose is usually used as a sugar source at about 0.5 to 10 g/g. In addition, pyruvic acid and the like may be added as appropriate. Amino acids are protein constituent amino acids, such as alanine, arginine, glutamine, cystine, threonine, lysine, valine, and phenylalanine.

通常の培地においては必須アミノ酸が中心に添
加されているが、本発明の培地の場合には必須ア
ミノ酸ばかりでなく非必須アミノ酸も巾広く添加
するのがよい。添加量は全アミノ酸の濃度として
0.5〜5g/程度がよい。ビタミン類としては
アスコルピン酸、リボフラビン、チアミン塩酸
塩、パントテン酸カルシウム、ニコチン酸アミ
ド、ピリドキサール塩酸塩、i―イノシトール、
葉酸、VB12、ビオチンなど、そして無機塩とし
ては塩化ナトリウム、塩化カリウム、塩化カルシ
ウム、硫酸マグネシウム、リン酸二水素ナトリウ
ム、硫酸第一鉄、硫酸亜鉛、亜セレン酸ナトリウ
ムなどを例として挙げることができる。そのほ
か、重酒石酸コリン、グルタチオン、プトレシン
二塩酸塩などの代謝中間体や、重曹、グリセロリ
ン酸二ナトリウム、N―2―ヒドロキシエチルピ
ペラジン―N―2―エタンスルホン酸などのバツ
フアーを適宜添加する。
In ordinary media, essential amino acids are mainly added, but in the case of the medium of the present invention, it is preferable to add not only essential amino acids but also a wide range of non-essential amino acids. The amount added is based on the concentration of total amino acids.
Approximately 0.5 to 5 g/approx. Vitamins include ascorbic acid, riboflavin, thiamine hydrochloride, calcium pantothenate, nicotinamide, pyridoxal hydrochloride, i-inositol,
Examples include folic acid, VB 12 , biotin, and inorganic salts such as sodium chloride, potassium chloride, calcium chloride, magnesium sulfate, sodium dihydrogen phosphate, ferrous sulfate, zinc sulfate, and sodium selenite. can. In addition, metabolic intermediates such as choline bitartrate, glutathione, and putrescine dihydrochloride, and buffers such as baking soda, disodium glycerophosphate, and N-2-hydroxyethylpiperazine-N-2-ethanesulfonic acid are added as appropriate.

培地組成の決定方法としては、通常の細胞増殖
用培地を基礎培地として、これに血清アルブミ
ン、細胞増殖因子、核酸前駆体等を添加していく
のがよい。基礎培地の例としては、ダルベツコ変
法イーグル培地(Dulbeccos′ Modified Eagle
Medium)、RPMI―1640培地、Eagles′MEM培
地、Ham F―12培地など既知の細胞増殖用培地
のいかなるものであつてもよい。
As a method for determining the medium composition, it is preferable to use a normal cell growth medium as a basal medium, and to add serum albumin, cell growth factors, nucleic acid precursors, etc. An example of a basal medium is Dulbecco's Modified Eagle Medium.
Any known cell growth medium may be used, such as RPMI-1640 medium, Eagle's MEM medium, and Ham F-12 medium.

培地の作成方法としては、例えば血清アルブミ
ンを除くすべての成分を所定の濃度になるように
水に溶解してから、これに血清アルブミンを添加
して溶解しつつINNaOHを用いてPH7.2〜7.4に調
整し、得られた溶液をメンブレンフイルタにで加
圧下に濾過して滅菌すればよい。
To prepare a medium, for example, all components except serum albumin are dissolved in water to a predetermined concentration, and then serum albumin is added and dissolved while adjusting the pH to 7.2 to 7.4 using INNaOH. The resulting solution may be sterilized by filtering it through a membrane filter under pressure.

本発明の方法で培養する細胞は哺乳動物の繊維
芽細胞である。哺乳動物の細胞は、ヒト、牛、
馬、豚、マウス、ラツトなどの細胞であり、例と
してWI―38細胞、FS―7細胞、Vero細胞、3T3
細胞、BHK―21細胞、及びSIRC細胞を挙げるこ
とができる。培養の際に通気する気体は酸素濃度
を3〜12容量%、好ましくは5〜10%程度にす
る。その他の成分としては、炭酸ガスを4〜6容
量%含み、残りはほとんどが窒素ガスである。こ
のような気体の調製方法としては、例えばボンベ
入の窒素ガス及び炭酸ガスを準備し、これらと高
圧空気とを上記の組成になるように混合すればよ
い。
The cells cultured in the method of the present invention are mammalian fibroblasts. Mammalian cells include humans, cows,
Cells from horses, pigs, mice, rats, etc. Examples include WI-38 cells, FS-7 cells, Vero cells, and 3T3 cells.
BHK-21 cells, and SIRC cells. The gas aerated during culture has an oxygen concentration of 3 to 12% by volume, preferably about 5 to 10%. Other components include 4 to 6% by volume of carbon dioxide gas, and the remainder is mostly nitrogen gas. As a method for preparing such a gas, for example, nitrogen gas and carbon dioxide gas in cylinders may be prepared, and these and high pressure air may be mixed to have the above composition.

培養方法はこのほかは哺乳動物の繊維芽細胞を
培養する通常の方法に準じて行えばよく。例えば
培養タンクに前記の培地を入れて細胞を104〜106
セル/ml程度になるように加え、前記気体を通気
しつつ35〜37℃で培養すればよい。
Other than this, the culturing method may be carried out according to the usual method for culturing mammalian fibroblast cells. For example, put the above medium into a culture tank and add 10 4 to 10 6 cells.
The cells may be added at a concentration of about 100 cells/ml, and cultured at 35 to 37° C. while aerating the gas.

培養終了後は培養液から増殖した細胞あるいは
インターフエロン等の有用物質を常法によつて取
得できる。
After completion of the culture, the proliferated cells or useful substances such as interferon can be obtained from the culture solution by conventional methods.

本発明の方法を用いれば、血清を大量に添加し
た培地を使用した従来の方法にほぼ匹敵する速度
で繊維芽細胞の増殖を行わせ、かつ長期間にわた
つて継代培養することができる。また、従来培地
においてはマウス由来のEGF(Epidermal
Growth Factor,MW6000,ペプチド)や3,
3′,5―トリヨード―L―チロニンが必要とさ
れ、これらが異種ペプチドであることと高価であ
ることがひとつの問題点であつたが、本発明法に
おける培地ではこれらが不要になつた。血清を全
く添加しないかあるいは添加量が少ないことから
目的物質の分離精製が容易であり、特にヒト血清
アルブミンを用いた培地にヒト由来の細胞を培養
した場合には培養液中の蛋白成分がすべてヒト由
来になり培養液中に産生した目的物を完全に精製
しなくともヒトに投与可能になるという利点があ
る。
Using the method of the present invention, fibroblasts can be grown at a rate comparable to the conventional method using a medium supplemented with a large amount of serum, and can be subcultured over a long period of time. In addition, mouse-derived EGF (Epidermal
Growth Factor, MW6000, peptide) and 3,
3',5-triiodo-L-thyronine was required, and one problem was that these were foreign peptides and expensive, but these are no longer necessary in the culture medium of the present invention. Since serum is not added at all or in a small amount, it is easy to separate and purify the target substance, and especially when human-derived cells are cultured in a medium containing human serum albumin, all the protein components in the culture medium are removed. This method has the advantage that a target product derived from humans and produced in a culture solution can be administered to humans without having to be completely purified.

実施例 1 ヒト血漿より得られたフイブロネクチンをゼラ
チンアフイニテイークロマトグラフイーで精製し
純度95%以上のものを得た。このフイブロネクチ
ンを20μg/mlになるようにPBS溶液に溶かし、
その1mlを直径35mmのプラスチツクシヤーレ
(Lux社製)に入れて一夜放置した。
Example 1 Fibronectin obtained from human plasma was purified by gelatin affinity chromatography to obtain a product with a purity of 95% or more. Dissolve this fibronectin in a PBS solution to a concentration of 20 μg/ml.
1 ml of the solution was placed in a plastic jar (manufactured by Lux) with a diameter of 35 mm and left overnight.

シヤーレからフイブロネクチン溶液を吸引除去
しPBS溶液で3回洗浄してフイブロネクチンを
コーテイングしたシヤーレを得た。
The fibronectin solution was removed from the shear dish by suction and washed three times with a PBS solution to obtain a shear dish coated with fibronectin.

培地にはR―7培地からマウス―EGF及び3,
3′,5―トリヨード―L―チロニンを除いたR―
7E,T(−)培地に各種濃度になるように牛血清
アルブミン(BSA)を添加して用いた。牛血清
アルブミンはシグマ社製のコーン・フラクシヨ
ン・フアイブ(Cohn Fraction V)を用いた。
培地の組成を次に示す。
The medium contains R-7 medium to mouse-EGF and 3,
R- excluding 3',5-triiodo-L-thyronine
Bovine serum albumin (BSA) was added to 7E,T(-) medium at various concentrations and used. As bovine serum albumin, Cohn Fraction V manufactured by Sigma was used.
The composition of the medium is shown below.

MEM(Minimun Essential Medium,日水製
薬(株)製) 9400 mg/ L―アスパラギン 13.3 〃 L―グルタミン 292 〃 グリシン 7.5 〃 L―グルタミン酸 0.15 〃 L―プロリン 3.5 〃 L―セリン 10.5 〃 ホリニン酸 0.00005 〃 ヒトトランスフエリン 10 〃 インシユリン 1 〃 VB12 0.02 〃 ビオチン 0.02 〃 プトレシン二塩酸塩 0.02 〃 ピルビン酸ナトリウム 110 〃 塩化コリン 16 〃 チミジン 0.07 〃 ヒポキサンチン 0.24 〃 CuSO4・5H2O 0.0000025 〃 FeSO4・7H2O 0.8 〃 MnSO4・7H2O 0.0000024 〃 (NH4)Mo7O24・H2O 0.0012 〃 NiCl2・6H2O 0.000012 〃 NH4VO3 0.000058 〃 H2SeO3 0.00039 〃 N―2―ヒドロキシエチルピペラジン―N―2
―エタンスルホン酸 3300 mg/ NaOH 300 〃 NaHCO3 1400 〃 MEM培地(日水製薬(株)製)に牛胎児血清を10
容量%添加した培地で15〜25代継代したHEL
(Human Embryonic Lung Fibroblast)細胞を
前記の培地に3,3′,5―トリヨード―L―チロ
ニン0.0002mg/及びマウス―EGF0.01mg/を
加えたR―7合成培地で1代培地した。この細胞
を結晶トリプシンを30U/ml含むPBS溶液で0〜
4℃で3回処理して分散させ、PBS溶液で3回
洗浄して分散HEL細胞浮遊液を得た。
MEM (Minimun Essential Medium, manufactured by Nissui Pharmaceutical Co., Ltd.) 9400 mg/ L-Asparagine 13.3 L-Glutamine 292 Glycine 7.5 L-Glutamic acid 0.15 L-Proline 3.5 L-Serine 10.5 Folinic acid 0.00005 human Transferrin 10 Insulin 1 VB 12 0.02 Biotin 0.02 Putrescine dihydrochloride 0.02 Sodium pyruvate 110 Choline chloride 16 Thymidine 0.07 Hypoxanthine 0.24 CuSO 4・5H 2 O 0.0000025 〃 FeSO 4・7H 2 O 0.8 〃 MnSO 4・7H 2 O 0.0000024 〃 (NH 4 )Mo 7 O 24・H 2 O 0.0012 〃 NiCl 2・6H 2 O 0.000012 〃 NH 4 VO 3 0.000058 〃 H 2 SeO 3 0.00039 〃 N-2-hydroxyethyl Piperazine-N-2
- Ethanesulfonic acid 3300 mg/ NaOH 300 〃 NaHCO 3 1400 〃 10% of fetal bovine serum in MEM medium (manufactured by Nissui Pharmaceutical Co., Ltd.)
HEL passaged for 15-25 generations in medium supplemented with volume%
(Human Embryonic Lung Fibroblast) cells were cultured for one generation in R-7 synthetic medium prepared by adding 0.0002 mg of 3,3',5-triiodo-L-thyronine and 0.01 mg of mouse EGF to the above-mentioned medium. The cells were incubated in a PBS solution containing 30 U/ml of crystalline trypsin for 0 to 10 minutes.
The cells were treated at 4° C. three times for dispersion, and washed three times with PBS solution to obtain a dispersed HEL cell suspension.

前記のフイブロネクチンをコーテイングしたシ
ヤーレ及び無処理のシヤーレ各3枚にR―7E,
T(−)培地に所定量の牛血清アルブミンを添加
した培地を1.5ml宛入れて分散HEL細胞を2×104
セル/シヤーレになるように播いて、空気と炭酸
ガスと窒素ガスを混合して調製した酸素7容量%
及び炭酸ガス5容量%を含む飽和湿度の気体を通
気しつつ37℃で7日間培養した。
R-7E, 3 sheets each of the fibronectin coated and untreated sheets
Pour 1.5 ml of T(-) medium supplemented with a predetermined amount of bovine serum albumin and disperse 2 x 10 4 HEL cells.
Oxygen 7% by volume prepared by mixing air, carbon dioxide gas, and nitrogen gas, sown in cells/shears.
The cells were cultured at 37° C. for 7 days while aerating a saturated humidity gas containing 5% by volume of carbon dioxide.

培養結果を第1図に示す。図中の黒丸はフイブ
ロネクチンコーテイング処理したシヤーレを用い
た場合で、白丸は無処理のシヤーレを用いた場合
を示している。図の右端の棒グラフは対照として
MEM培地(日水製薬(株)製)に牛胎児血清を10容
量%添加した培地に同じ細胞を同じ条件で培養し
た結果を示すものである。尚、図の縦軸は各シヤ
ーレの培養液中の細胞数を示し、横軸は牛血清ア
ルブミンの濃度を示している。
The culture results are shown in Figure 1. The black circles in the figure show the case where a fibronectin coated shear is used, and the white circles show the case where an untreated shear is used. The bar graph on the right side of the figure is a control.
This shows the results of culturing the same cells under the same conditions in MEM medium (manufactured by Nissui Pharmaceutical Co., Ltd.) with 10% by volume of fetal bovine serum added. In addition, the vertical axis of the figure shows the number of cells in the culture solution of each strain, and the horizontal axis shows the concentration of bovine serum albumin.

実施例 2 5系列各3枚の直径35mmのプラスチツクシヤー
レ(Lux社製)に、R―7E,T(−)培地、これ
に実施例1と同じフイブロネクチンを15μg/ml
になるように添加した培地、シグマ社製のコー
ン・フラクシヨン・フアイブのヒト血清アルブミ
ンを5mg/mlになるように添加した培地、この両
方を添加した培地、及び対照としてMEM培地
(日水製薬(株)製)に牛胎児血清を10容量%添加し
た培地をそれぞれ1.5mlづつ入れて、実施例1と
同じように継代して得られたヒトの包皮由来の
FS―7細胞の分散細胞を2.5×104セル/シヤーレ
になるように播いて、実施例1と同様に培養し、
毎日細胞数を計測した。
Example 2 R-7E, T(-) medium was added to three plastic bottles (manufactured by Lux) in each of the five series with a diameter of 35 mm, and the same fibronectin as in Example 1 was added at 15 μg/ml.
A medium supplemented with human serum albumin of Cone Fraction Fiber (Sigma) at a concentration of 5 mg/ml, a medium supplemented with both of these, and a MEM medium (Nissui Pharmaceutical Co., Ltd.) as a control. 1.5 ml of culture medium supplemented with 10% by volume of fetal bovine serum (manufactured by Co., Ltd.) was added to each culture medium, and human foreskin-derived cells obtained by passage in the same manner as in Example 1 were added.
Dispersed cells of FS-7 cells were seeded at 2.5 × 10 4 cells/shear and cultured in the same manner as in Example 1.
Cell numbers were counted daily.

培養結果を第2図に示す。尚、図の縦軸は各シ
ヤーレの細胞数を示し、横軸は培養日数を示して
おり、図の白丸はR―7E,T(−)培地、黒三角
はこれにフイブロネクチンを添加した培地、白三
角はヒト血清アルブミンを添加した培地、黒丸は
その両方を添加した培地、そして白四角はMEM
培地に牛胎児血清を添加した培地をそれぞれ用い
た場合を表わしている。
The culture results are shown in Figure 2. The vertical axis of the figure shows the number of cells in each strain, and the horizontal axis shows the number of culture days. The white circles in the figure are R-7E, T(-) medium, the black triangles are medium to which fibronectin has been added, Open triangles are medium supplemented with human serum albumin, black circles are medium supplemented with both, and open squares are MEM.
The cases are shown in which a medium containing fetal bovine serum was used.

実施例 3 3系列各3枚の直径60mmのプラスチツクシヤー
レ(Lux社製)に、R―7E,T(−)培地、これ
に実施例1と同じフイブロネクチンを15μg/ml
にそして牛血清アルブミンを5mg/mlになるよう
にそれぞれ添加した培地、及び対照としてMEM
培地(日水製薬(株)製)に牛胎児血清を10容量%添
加した培地をそれぞれ3mlづつ入れて実施例1と
同じ細胞を5×104セル/シヤーレになるように
播いて実施例1と同様に培養した。培養中は5日
毎に前の2種の培地のものについては30U/mlの
結晶トリプシンのPBS溶液で4〜5℃で分散処
理し、MEM培地を用いた培養液については
300U/mlの結晶トリプシンのPBS溶液で4〜5
℃で処理して細胞を分散させて継代培養を続け
た。
Example 3 R-7E, T(-) medium and 15 μg/ml of the same fibronectin as in Example 1 were added to three plastic bottles (manufactured by Lux) with a diameter of 60 mm in each of three series.
and medium supplemented with bovine serum albumin at 5 mg/ml, and MEM as a control.
Example 1 The same cells as in Example 1 were seeded at 5 x 10 4 cells/shear in 3 ml of each culture medium (manufactured by Nissui Pharmaceutical Co., Ltd.) supplemented with 10% by volume of fetal bovine serum. It was cultured in the same way. During culture, the two types of media used in the previous two types were dispersed at 4-5°C with a 30 U/ml crystalline trypsin solution in PBS, and the culture liquid using MEM medium was treated with a PBS solution of 30 U/ml of crystallized trypsin.
4-5 with 300U/ml crystalline trypsin in PBS
℃ treatment to disperse the cells and continue subculturing.

培養結果を第3図に示す。図の縦軸は平均分裂
回数を示し、図の横軸は培養日数を示している。
尚、図の白丸はR―7E,T(−)培地、黒丸はこ
れにフイブロネクチン及び牛血清アルブミンを添
加した培地、そして白四角はMEM培地に牛胎児
血清を添加した培地をそれぞれ用いた場合を表わ
している。
The culture results are shown in Figure 3. The vertical axis of the figure shows the average number of divisions, and the horizontal axis of the figure shows the number of culture days.
In addition, the white circles in the figure represent the cases in which R-7E, T(-) medium was used, the black circles in this medium with fibronectin and bovine serum albumin added, and the white squares in MEM medium supplemented with fetal bovine serum. It represents.

【図面の簡単な説明】[Brief explanation of drawings]

第1図はフイブロネクチンコーテイング処理し
た溶器としない容器について牛血清アルブミン濃
度と細胞増殖の関係を示したものであり、第2図
及び第3図は各種の培地について細胞増殖速度を
表わしたものである。
Figure 1 shows the relationship between bovine serum albumin concentration and cell proliferation for vessels with and without fibronectin coating, and Figures 2 and 3 show the cell proliferation rate for various media. It is something.

Claims (1)

【特許請求の範囲】[Claims] 1 哺乳動物の繊維芽細胞を血清から分離された
哺乳動物血清アルブミンを含有する培地に培養す
る際に、培地と接触させる気体の酸素濃度を3〜
12容量%とし、かつ哺乳動物由来のフイブロネク
チンを培養容器にコーテイングするか又は当該培
地に添加することを特徴とする哺乳動物の繊維芽
細胞の培養方法。
1. When culturing mammalian fibroblasts in a medium containing mammalian serum albumin separated from serum, the oxygen concentration of the gas brought into contact with the medium should be adjusted to 3 to 3.
A method for culturing mammalian fibroblasts, the method comprising coating a culture container with mammalian-derived fibronectin or adding it to the culture medium at a concentration of 12% by volume.
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