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JPS6331200B2 - - Google Patents
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JPS6331200B2 - - Google Patents

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Publication number
JPS6331200B2
JPS6331200B2 JP55074968A JP7496880A JPS6331200B2 JP S6331200 B2 JPS6331200 B2 JP S6331200B2 JP 55074968 A JP55074968 A JP 55074968A JP 7496880 A JP7496880 A JP 7496880A JP S6331200 B2 JPS6331200 B2 JP S6331200B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
callus
sterine
chrysanthemine
plant
medium
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired
Application number
JP55074968A
Other languages
Japanese (ja)
Other versions
JPS572697A (en
Inventor
Yoshikazu Yamamoto
Ryuzo Mizuguchi
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Nippon Paint Co Ltd
Original Assignee
Nippon Paint Co Ltd
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Filing date
Publication date
Application filed by Nippon Paint Co Ltd filed Critical Nippon Paint Co Ltd
Priority to JP7496880A priority Critical patent/JPS572697A/en
Publication of JPS572697A publication Critical patent/JPS572697A/en
Publication of JPS6331200B2 publication Critical patent/JPS6331200B2/ja
Granted legal-status Critical Current

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  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

【発明の詳細な説明】[Detailed description of the invention]

本発明はユーホルビア属植物のハナキリンの植
物組織から誘導したカルスを培養してステリンお
よび赤色色素クリサンテミン(シアニジン−3−
グルコシド)を併産させる方法に関する。 ステリンは植物成分として植物中に広汎に含ま
れている成分の一つであつて、近年、コルチコス
テロイド又はピル等のステロイドホルモンの合成
原料に使用され、また化粧品、界面活性剤などの
フアインケミカル品の合成原料として脚光を浴び
つつある。一方、色素は食品着色剤などとして食
品に美感などを付与するため多用されているが、
合成着色剤はその毒性、例えば突然変異原性等の
点で発ガン性物質としていろいろ問題を起してい
る。従つて、食品等に用いられる着色剤としては
その安全性の面から天然物に由来する色素の使用
が望まれている。しかしながら、天然栽培は季
節、気候、温度、緯度等の自然環境の制約を受け
易いために、天然植物からの採取では安定した供
給を続けることができない。また、耕地を利用し
た大量の栽培は、当然食糧生産と拮抗するのでそ
の供給に限界があり、しかもその生産性にも自か
ら限界があり著しく高価なものとなる。 然るに、近年、植物成分を生産する手法とし
て、植物細胞培養の研究が進められている。植物
細胞培養は、年単位又は月単位で生育する天然植
物に比べ、はるかに速い速度で生育するので短時
間に目的とする成分を生産することができ、また
天然栽培と違つて天候等の影響を受けず、採取に
も多くの人手を煩わすことなく、しかも工業的規
模で計画生産することができるという利点を有す
る。 本発明者等は先きにハギクソウ以外のユーホル
ビア属および/またはユーカリ属の植物組織培養
カルスからステリンを分離採取することに成功し
(特開昭55−26813号公報参照)、また最近ユーホ
ルビア属のハナキリンの植物組織から誘導したカ
ルスを2,4−Dなどを植物ホルモンとして含む
培地中で培養せしめることによつて赤色天然色素
クリサンテミンを生産させることに成功した。 本発明者等はかかる観点から植物細胞培養によ
り上記ステリンおよび天然赤色色素クリサンテミ
ンを工業的に有利に併産することを可能にすべく
更に研究を進めた結果、ここにユーホルビア属植
物のハナキリンの植物組織から誘導したカルスを
α−ナフタレン酢酸(NAA)を10-4〜10-7M、
好ましくは10-4〜10-6Mの濃度で含む培地中で培
養せしめることにより前記ステリンおよび天然赤
色色素クリサンテミンを高収量で併産できること
を見出し本発明をするに至つた。 本発明によつてステリンと共に生産される赤色
色素は下記構造式をもつクリサンテミン(シアニ
ジン−3−グルコシド)であり、しかも多成分系
の色素ではなく、色素としてはクリサンテミン一
種のみであるので生産された色素の抽出精製操作
も容易である。 本発明において使用する植物培養細胞はユーホ
ルビア属植物ハナキリンを原料として、これから
常法に従つて誘導することによつて得られる。以
下にその一例を説明する。 先ず、ハナキリンの葉を脱イオン水で充分洗浄
した後、70%エチルアルコールに5〜10分間、次
いで10%さらし粉溶液に5〜10分間浸漬して表面
に付着している雑菌を殺菌した後、無菌蒸留水で
残存殺菌剤を洗浄除去する。 次に、殺菌した葉を適当な大きさに滅菌メスで
切断して小片とし、2,4−ジクロルフエノキシ
酢酸(2,4−D)、α−ナフタレン酢酸
(NAA)などのオーキシン作用物質を含む合成
培地(例えば、ムラシゲースクーグ培地)上に置
床する。 置床後、20〜30℃、好ましくは28℃前後の一定
温度条件下の明所、好ましくは100ルツクス以上、
更に好ましくは3000〜100000ルツクスの光照射下
において培養する。かかる培養により一週間経過
後頃にはハナキリンの葉から前記赤色色素を生産
するカルスが形成されるので、これを適当な組成
の新しい寒天培地上に移植し、20〜30℃、好まし
くは28℃前後の一定温度下、明所、好ましくは
100ルツクス以上、更に好ましくは3000〜100000
ルツクスの光照射下において培養をつづける。な
お、工業的規模でカルスを得るには、上記カルス
を一般微生物の培養と同じ操作で静置培養法又は
液体培養法によつて培養増殖させればよい。液体
培養法としては、例えば振とう式培養機上で培養
する振とう培養法、或いはガラス、金属等の密閉
した槽に無菌空気を通気して培養する方法などを
目的に応じて適宜選択することができる。 本発明に従つて前記カルスを培養するのに用い
られる培地としては、各種既知の無機合成寒天培
地を基本とし、これにビタミン等の微量有機物、
炭素源、植物ホルモンおよび各種天然抽出物質を
添加したものを用いる。 前記無機合成寒天培地の代表例としては、ホワ
イト培地、ヒルデブランド培地、リンスマイヤー
−スクーグ培地、ムラシゲ−スクーグ培地等があ
げられる。その他、これらの培地の組成を改良し
たものも使用することができる。 前記ビタミン等の微量有機物としては、チアミ
ン塩酸塩、ピリドキシン塩酸塩、ニコチン酸等の
ビタミン;グリシン、アスパラギン等のアミノ
酸;イノシツト、ソルビツト等の6価アルコール
をあげることができるが、これらの微量有機物は
培地に添加しなくても良好な生育を示す場合があ
る。 前記炭素源としては、シヨ糖、ブドウ糖、麦芽
糖などの炭水化物;酢酸などの有機酸;メタノー
ル、グリセリンなどのアルコールなどを使用する
ことができるが、特にシヨ糖の使用が色素生産性
が高く好ましい。使用濃度は1〜10%w/v、好
ましくは4〜7%w/vである。 植物ホルモンとしては、カルスを誘導する際は
2,4−ジクロルフエノキシ酢酸(3,4−D)、
β−インドール酢酸(IAA)、α−ナフタレン酢
酸(NAA)などのオーキシン作用物質やカイネ
チシなどのサイトカイニン類などを使用すること
ができるが、クリサンテミンの生産性及び選択性
などの点からみれば、2,4−Dの使用が好まし
く、好ましい濃度は10-4〜10-7M、更に好ましく
は10-6〜10-7Mである。しかしながら、誘導した
カルスを培養して本発明の目的に従つてステリン
及びクリサンテミンを高収量で併産させるために
は、前述の如く、α−ナフタレン酢酸(NAA)
を使用しなければならない。NAAの使用濃度は
10-4〜10-7M、好ましくは10-4〜10-6Mであり、
この濃度が高過ぎると、カルスが生育しないので
好ましくなく、逆に低過ぎる場合には緑化した
り、生育しなかつたりするので好ましくない。 前記各種天然抽出物質としては、例えばカゼイ
ン加水分解物(0〜2%w/v)、ココナツツミ
ルク(0〜25%w/v)、酵母エキス(0〜2%
w/v)、麦芽エキス(0〜2%w/v)などを
単独又は任意に組み合せて使用することができ
る。 本発明方法においては前述の如くカルスの培養
は、カルスを内蔵した培養器を100ルツクス以上、
好ましくは3000〜100000ルツクスの光照射下に設
置して実施する。光源としては、太陽光、螢光
灯、白熱電灯、水銀灯などを用いることができ
る。光照射を実施しない場合には色素が生産され
ない。 このようにして培養したカルスからステリンお
よび赤色色素クリサンテミンを分離採取するに
は、公知の方法、例えば溶媒抽出法によつて行な
うことができる。以下にその一例を説明する。 先ず、塩酸、酢酸、ギ酸などの酸を0.01〜5重
量%程度の濃度で含む溶媒、好ましくは水又はメ
タノール、エタノールなどのアルコール系溶媒に
培養細胞、好ましくは常法に従つて凍結乾燥した
培養細胞を−5〜10℃の温度において浸漬し、生
産されたステリンおよび赤色色素を抽出する。次
に得られた抽出液を、ロ過などの操作で固形分を
除去した後、40℃以下の温度(この温度が高過ぎ
ると赤色色素が分解しやすくなるので好ましくな
い)で減圧濃縮し、この濃縮液を分液ロートに移
し、例えばエーテル(エーテルに代えてヘキサ
ン、ヘプタン、石油エーテル、クロロホルム、二
塩化メチレン、酢酸エチルなどを用いることもで
きる)で数回抽出して濃縮液中に含まれるステリ
ンを抽出する。エーテル抽出後の残液を減圧乾燥
することによつて目的とする赤色色素クリサンテ
ミンを得ることができ、更にセルロース薄層クロ
マトグラフイー、セルロースカラムクロマトグラ
フイー、ペーパークロマトグラフイーなどによつ
て精製することができる。なお得られたクリサン
テミンは以下の実施例に示したようにペーパーク
ロマトやUV吸収スペクトルによつて標品クリサ
ンテミンと比較することによつて同定できる。一
方、エーテル抽出したステリンは、エーテル抽出
層からエーテルを留去し、残渣を例えばn−ヘキ
サンで再結晶することによつて目的とするステリ
ンの結晶を得ることができる。なお、再結晶に代
えて、例えばカラムクロマトグラフイー、薄層ク
ロマトグラフイーなどを用いることもできる。得
られたステリンは約137℃の融点をもち、また各
種溶媒系を展開溶媒とする薄層クロマトグラフイ
ーや赤外吸収スペクトル、核磁気共鳴スペクトル
によつて標品ステリンと比較することによつて同
定することができる。 以上説明したように、本発明方法に従えば、ユ
ーホルビア属植物のハナキリンの植物組織から誘
導したカルスを特定の培地中で培養させることに
よりフアインケミカル品の合成原料として貴重な
ステリンおよび食品着色剤などとして好適な天然
赤色色素クリサンテミンを純粋な形で併産するこ
とができ、しかも天然植物から製造する場合に比
較して極めて効率よく生産することができる。 以下に本発明の実施例を説明するが、本発明の
範囲を以下の実施例に限定するものでないことは
いうまでもない。 実施例 ハナキリンの葉を充分に水洗し、広さ4cm2程度
に切断した。次いで、これらの切片を70%エチル
アルコールに5分間浸漬し、更に10%さらし粉溶
液に10分間浸漬して殺菌処理した後、無菌箱内で
無菌蒸留水中に数回浸漬して洗蒸し、充分に残存
殺菌剤を除去した。これらの葉切片を減菌メスを
用いて広さ1cm2程度の小片に切断し、得られたハ
ナキリンの葉の小切片を以下の組成の合成寒天培
地に無菌的に置床した。 培地としては、ムラシゲ−スクーグの無機塩培
地に、シヨ糖3%w/v、麦芽エキス0.2%w/
v、2,4−D10-6M、チアミン塩酸塩0.1ppm、
ピリドキシン塩酸塩0.5ppm、ニコチン酸
0.5ppm、グリシン2ppmおよびイノシトール
100ppmを加えてPH6.0に調整し、寒天0.8%w/
vを加え常法通り殺菌した培地を用いた。 このような培地に置床したハナキリンの葉の小
片を培養温度25℃で3000ルツクスの光照射下培養
した。1週間経過した頃から葉の切口周辺から赤
色のカルスが生じた。1ケ月経過後、大きく生長
したカルスを細かく分割し、植物ホルモン2,4
−D10-6MをNAA10-5Mに替えた以外は、上記
のカルス誘導の際に用いたのと同一組成の培地に
無菌的に移植し、培養温度25℃で3000ルツクスの
光照射下カルスの培養を、同様の操作を4〜6週
間毎に繰返し乍ら、合計6ケ月間実施した。 このようにして増殖したハナキリンの培養細胞
を固形培地から分離し、真空凍結乾燥機において
水分を除去し、乾燥カルス10.6gを得た。この乾
燥カルスを乳鉢で磨砕後、2%塩酸性メタノール
に冷所において24時間浸漬した。ロ過後得られた
抽出液を40℃以下の温度で50ml程度まで濃縮し、
分液ロートに移した後、得られたステリンとクリ
サンテミンを分離するために100mlのエーテルを
加え、充分振とう後エーテル層と分離した(この
エーテル層にステリンが移る)。かかるエーテル
抽出操作を数回繰り返した後、残存液を更に40℃
以下で減圧濃縮して乾固させた。この乾固物を少
量の0.01%塩酸性メタノールに溶解し、セルロー
スTLC(20cm×20cm)に帯状に塗布し、塩酸/酢
酸/水=5/1/5の展開溶媒を用いて展開させ
た。赤色のバンドをかき取り、2%塩酸性メタノ
ールに浸漬し、赤色色素を抽出した。この抽出液
を40℃以下で減圧乾固して黒赤色粉末87.5mgを得
た。 この色素のペーパークロマト(東洋ロ紙No.51、
以下同じ)(溶媒:n−ブタノール/酢酸/水=
4/1/5上層、n−ブタノール/塩酸/水=
5/1/4上層、1%塩酸および酢酸/塩酸/水
=15/3/82)のRf値は下記第1表に示す如く
標品クリサンテミン(デラウエア種ブドウより抽
出単離して構造決定したもの)とよく一致した。
The present invention cultivates callus derived from the plant tissue of Hanakirin, a plant belonging to the genus Euphorbia, and produces sterin and red pigment chrysanthemin (cyanidin-3-3-
This invention relates to a method for co-producing glucosides. Sterine is one of the components widely contained in plants.In recent years, it has been used as a synthetic raw material for steroid hormones such as corticosteroids and pills, and it is also used as a pharmaceutical ingredient in cosmetics, surfactants, etc. It is attracting attention as a synthetic raw material for chemical products. On the other hand, dyes are often used as food coloring agents to add aesthetic appeal to foods.
Synthetic coloring agents have caused various problems as carcinogens due to their toxicity, such as mutagenicity. Therefore, from the viewpoint of safety, it is desired to use pigments derived from natural products as coloring agents for foods and the like. However, since natural cultivation is easily subject to constraints of the natural environment such as season, climate, temperature, latitude, etc., it is not possible to maintain a stable supply by collecting from natural plants. In addition, large-scale cultivation using arable land naturally competes with food production, so there is a limit to its supply, and there is also a limit to its productivity, making it extremely expensive. However, in recent years, research on plant cell culture has been progressing as a method for producing plant components. Plant cell culture grows at a much faster rate than natural plants, which grow on a yearly or monthly basis, so it is possible to produce the desired ingredients in a short period of time, and unlike natural cultivation, it is less susceptible to the effects of weather etc. It has the advantage of being able to be produced in a planned manner on an industrial scale without the need for much labor for collection. The present inventors previously succeeded in separating and collecting sterin from plant tissue culture callus of the genus Euphorbia and/or the genus Eucalyptus (see Japanese Patent Application Laid-open No. 55-26813). By culturing callus derived from Hanakirin plant tissue in a medium containing 2,4-D as a plant hormone, we succeeded in producing the red natural pigment chrysanthemin. From this point of view, the present inventors have conducted further research to enable industrially advantageous co-production of the above-mentioned sterin and the natural red pigment chrysanthemine through plant cell culture. Callus derived from tissues was treated with α-naphthalene acetic acid (NAA) at 10 -4 to 10 -7 M.
The inventors have discovered that the above-mentioned sterin and the natural red pigment chrysanthemine can be co-produced in high yield by culturing in a medium containing preferably a concentration of 10 -4 to 10 -6 M, leading to the present invention. The red pigment produced together with sterine according to the present invention is chrysanthemine (cyanidin-3-glucoside) having the following structural formula, and it is not a multi-component pigment, but only one type of chrysanthemine. The extraction and purification operation of the pigment is also easy. The cultured plant cells used in the present invention are obtained by deriving Hanakirin, a plant of the genus Euphorbia, according to a conventional method. An example will be explained below. First, after thoroughly washing the leaves of Hanakirin with deionized water, they were immersed in 70% ethyl alcohol for 5 to 10 minutes, then in a 10% bleaching powder solution for 5 to 10 minutes to sterilize the bacteria attached to the surface. Wash away residual disinfectant with sterile distilled water. Next, the sterilized leaves are cut into small pieces with a sterile scalpel to an appropriate size and treated with auxin-active substances such as 2,4-dichlorophenoxyacetic acid (2,4-D) and α-naphthaleneacetic acid (NAA). The cells are placed on a synthetic medium containing (for example, Murashige-Skoog medium). After placing on the bed, store in a bright place under constant temperature conditions of 20 to 30℃, preferably around 28℃, preferably 100 lux or more,
More preferably, the culture is carried out under light irradiation of 3,000 to 100,000 lux. After one week of such culture, a callus that produces the red pigment is formed from the leaves of Hanakirin, which is then transplanted onto a new agar medium with an appropriate composition and incubated at 20 to 30°C, preferably at 28°C. Under constant temperature before and after, in a bright place, preferably
100 lux or more, more preferably 3000 to 100000
Continue culturing under lux light irradiation. In order to obtain callus on an industrial scale, the callus may be cultured and propagated by a static culture method or a liquid culture method in the same manner as in the culture of general microorganisms. As a liquid culture method, for example, a shaking culture method in which culture is performed on a shaking culture machine, or a method in which sterile air is aerated in a closed tank made of glass, metal, etc. may be selected as appropriate depending on the purpose. Can be done. The medium used for culturing the callus according to the present invention is based on various known inorganic synthetic agar media, and contains trace amounts of organic substances such as vitamins, etc.
A carbon source, plant hormones, and various natural extracts are added. Representative examples of the inorganic synthetic agar medium include White medium, Hildebrand medium, Linsmeyer-Skoog medium, Murashige-Skoog medium, and the like. In addition, these media with improved compositions can also be used. Examples of trace organic substances such as vitamins include vitamins such as thiamine hydrochloride, pyridoxine hydrochloride, and nicotinic acid; amino acids such as glycine and asparagine; and hexahydric alcohols such as inosite and sorbitol. It may show good growth even without being added to the medium. As the carbon source, carbohydrates such as sucrose, glucose, and maltose; organic acids such as acetic acid; and alcohols such as methanol and glycerin can be used. Among them, sucrose is particularly preferred because of its high pigment productivity. The concentration used is 1-10% w/v, preferably 4-7% w/v. As a plant hormone, when inducing callus, 2,4-dichlorophenoxyacetic acid (3,4-D),
Auxin-acting substances such as β-indoleacetic acid (IAA) and α-naphthaleneacetic acid (NAA) and cytokinins such as Kinetic can be used, but from the viewpoint of chrysanthemine productivity and selectivity, , 4-D, the preferred concentration being 10 -4 to 10 -7 M, more preferably 10 -6 to 10 -7 M. However, in order to co-produce sterine and chrysanthemine in high yield according to the purpose of the present invention by culturing the induced callus, α-naphthaleneacetic acid (NAA) must be used as described above.
must be used. The concentration of NAA used is
10 -4 to 10 -7 M, preferably 10 -4 to 10 -6 M,
If this concentration is too high, callus will not grow, which is undesirable; if it is too low, callus may turn green or not grow, which is undesirable. Examples of the various natural extracts include casein hydrolyzate (0-2% w/v), coconut milk (0-25% w/v), yeast extract (0-2%
w/v), malt extract (0 to 2% w/v), etc. can be used alone or in any combination. In the method of the present invention, as described above, the callus is cultured in a culture vessel containing callus at a temperature of 100 lux or more.
It is preferably carried out by installing under light irradiation of 3,000 to 100,000 lux. As a light source, sunlight, a fluorescent lamp, an incandescent lamp, a mercury lamp, etc. can be used. If no light irradiation is performed, no dye will be produced. Sterlin and the red pigment chrysanthemine can be separated and collected from the calli thus cultured by a known method, such as a solvent extraction method. An example will be explained below. First, cells are cultured in a solvent containing an acid such as hydrochloric acid, acetic acid, or formic acid at a concentration of about 0.01 to 5% by weight, preferably water or an alcoholic solvent such as methanol or ethanol, and the culture is preferably lyophilized according to a conventional method. The cells are soaked at a temperature of -5 to 10°C to extract the produced stelline and red pigment. Next, the obtained extract is subjected to an operation such as filtration to remove the solid content, and then concentrated under reduced pressure at a temperature of 40°C or lower (too high a temperature is not preferable because the red pigment easily decomposes). Transfer this concentrated solution to a separating funnel and extract it several times with, for example, ether (hexane, heptane, petroleum ether, chloroform, methylene dichloride, ethyl acetate, etc. can also be used instead of ether) to remove the Extract the sterine. The desired red pigment chrysanthemine can be obtained by drying the residual liquid after ether extraction under reduced pressure, and further purified by cellulose thin layer chromatography, cellulose column chromatography, paper chromatography, etc. be able to. The obtained chrysanthemine can be identified by comparing it with standard chrysanthemine using paper chromatography or UV absorption spectrum, as shown in the following examples. On the other hand, the desired sterine crystals can be obtained by distilling off the ether from the ether-extracted layer and recrystallizing the residue with, for example, n-hexane. Note that instead of recrystallization, for example, column chromatography, thin layer chromatography, etc. can also be used. The obtained sterine has a melting point of about 137°C, and it was determined by comparing it with standard sterine by thin layer chromatography using various solvent systems as a developing solvent, infrared absorption spectrum, and nuclear magnetic resonance spectrum. Can be identified. As explained above, according to the method of the present invention, by culturing callus derived from the plant tissue of Hanakirin, a plant belonging to the genus Euphorbia, in a specific medium, sterine and food colorants, which are valuable as synthetic raw materials for fine chemical products, can be produced. It is possible to co-produce chrysanthemine, a natural red pigment suitable as a natural red pigment, in pure form, and moreover, it can be produced extremely efficiently compared to the case where it is produced from natural plants. Examples of the present invention will be described below, but it goes without saying that the scope of the present invention is not limited to the following examples. Example The leaves of Hanakirin were thoroughly washed with water and cut into approximately 4 cm 2 pieces. Next, these sections were sterilized by immersing them in 70% ethyl alcohol for 5 minutes and then in a 10% bleaching powder solution for 10 minutes, and then immersed in sterile distilled water several times in a sterile box to wash and steam them thoroughly. Removed residual disinfectant. These leaf sections were cut into small pieces with a width of about 1 cm 2 using a sterile scalpel, and the obtained small pieces of Hanakirin leaves were placed aseptically on a synthetic agar medium having the following composition. The medium was Murashige-Skoog's inorganic salt medium, 3% w/v sucrose, and 0.2% w/v malt extract.
v, 2,4-D10 -6 M, thiamine hydrochloride 0.1 ppm,
Pyridoxine hydrochloride 0.5ppm, nicotinic acid
0.5ppm, glycine 2ppm and inositol
Add 100ppm and adjust to PH6.0, agar 0.8%w/
A medium was used which had been sterilized in a conventional manner by adding V. Small pieces of Hanakirin leaves placed on such a medium were cultured at a culture temperature of 25°C under light irradiation of 3000 lux. After one week, a red callus appeared around the cut end of the leaf. After one month, the callus that has grown large is divided into small pieces and treated with plant hormones 2 and 4.
-D10 -6 M was replaced with NAA10 -5 M, but the callus was transplanted aseptically into a medium with the same composition as used for callus induction above, and the callus was irradiated with light at 3000 lux at a culture temperature of 25°C. The culture was carried out for a total of 6 months, repeating the same operation every 4 to 6 weeks. The cultured Hanakirin cells grown in this way were separated from the solid medium, and water was removed in a vacuum freeze dryer to obtain 10.6 g of dry callus. This dried callus was ground in a mortar and then immersed in 2% hydrochloric methanol in a cold place for 24 hours. The extract obtained after filtration is concentrated to about 50ml at a temperature below 40℃,
After transferring to a separating funnel, 100 ml of ether was added to separate the obtained sterine and chrysanthemine, and after thorough shaking, the mixture was separated from the ether layer (sterine was transferred to this ether layer). After repeating this ether extraction operation several times, the remaining liquid was further heated at 40°C.
It was concentrated to dryness under reduced pressure. This dried product was dissolved in a small amount of 0.01% methanol with hydrochloric acid, applied in a strip on cellulose TLC (20 cm x 20 cm), and developed using a developing solvent of hydrochloric acid/acetic acid/water = 5/1/5. The red band was scraped off and immersed in 2% methanol with hydrochloric acid to extract the red pigment. This extract was dried under reduced pressure at 40° C. or lower to obtain 87.5 mg of black-red powder. Paper chromatography of this dye (Toyoro Paper No. 51,
Same below) (Solvent: n-butanol/acetic acid/water =
4/1/5 upper layer, n-butanol/hydrochloric acid/water=
The Rf values of 5/1/4 upper layer, 1% hydrochloric acid and acetic acid/hydrochloric acid/water = 15/3/82) are as shown in Table 1 below. ) was in good agreement.

【表】 また、得られた色素と標品クリサンテミンの
UV吸収スペクトルを測定したところ、第1図A
及びBに示すように、上記赤色色素のUV吸収ス
ペクトルは標品クリサンテミンのものとよく一致
した。 次に、上で得た赤色色素を20%塩酸で5分間煮
沸し、加水分解して得たアグリコンのペーパーク
ロマト(溶媒:n−ブタノール/酢酸/水=4/
1/5上層、n−ブタノール/塩酸/水=5/
1/4上層、酢酸/塩酸/水=5/1/5および
ギ酸/塩酸/水=2/1/2)のRf値も下記第
2表に示すように標品シアニジン(標品クリサン
テミンを加水分解して得たもの)の結果とよく一
致した。
[Table] Also, the obtained pigment and standard chrysanthemin
When we measured the UV absorption spectrum, we found that Figure 1A
As shown in and B, the UV absorption spectrum of the red dye was in good agreement with that of standard chrysanthemin. Next, the red pigment obtained above was boiled in 20% hydrochloric acid for 5 minutes, and the aglycone obtained by hydrolysis was subjected to paper chromatography (solvent: n-butanol/acetic acid/water = 4/
1/5 upper layer, n-butanol/hydrochloric acid/water = 5/
The Rf values of 1/4 upper layer, acetic acid/hydrochloric acid/water = 5/1/5 and formic acid/hydrochloric acid/water = 2/1/2) are also shown in Table 2 below. The results were in good agreement with those obtained by decomposition.

【表】【table】

【表】 更に上記赤色色素の糖部分のペーパークロマト
(溶媒:フエノール/水=4/1およびピリジ
ン/ブタノール/水=3/6/1)の結果も、以
下の第3表に示すように、グルコースと一致し
た。これらの結果から上で得た赤色色素がクリサ
ンテミンであることが同定できる。
[Table] Furthermore, the results of paper chromatography (solvent: phenol/water = 4/1 and pyridine/butanol/water = 3/6/1) of the sugar moiety of the red pigment are as shown in Table 3 below. Consistent with glucose. From these results, it can be identified that the red pigment obtained above is chrysanthemine.

【表】 一方、ステリンを含む前記エーテル抽出液はす
べて集合して濃縮し、エーテルを留去し、エーテ
ル抽出分を得る。このエーテル抽出分を少量のヘ
キサンに溶解させて再結晶し、ステリン970mgを
得た。この結晶の融点は136.5℃であり、またそ
の赤外吸収スペクトルおよび核磁気共鳴スペクト
ルは標品ステリン(シトステロールとスチグマス
テロールの混合物)のスペクトルとよく一致し
た。更にこの結晶のクロロホルム/酢酸エチル=
9/1およびn−ヘキサン/酢酸エチル=7/3
の展開溶媒によるシリカゲルG薄層プレートを硫
酸噴霧した後105℃で5分間させて生じたスポツ
トのRf値(第4表参照)および発色も、以下の
第4表に示すように、標品ステリンと一致した。
これらの結果から上で得た結晶がステリンである
ことが同定できる。
[Table] On the other hand, all the ether extracts containing sterine are collected and concentrated, and the ether is distilled off to obtain an ether extract. This ether extract was dissolved in a small amount of hexane and recrystallized to obtain 970 mg of sterine. The melting point of this crystal was 136.5°C, and its infrared absorption spectrum and nuclear magnetic resonance spectrum matched well with the spectrum of authentic sterin (a mixture of sitosterol and stigmasterol). Furthermore, this crystal of chloroform/ethyl acetate =
9/1 and n-hexane/ethyl acetate = 7/3
The Rf value (see Table 4) and color development of spots generated when a silica gel G thin layer plate was sprayed with sulfuric acid using a developing solvent of matched.
From these results, it can be identified that the crystals obtained above are sterine.

【表】 比較例 上記実施例において、ハナキリンの葉から誘導
したカルスの培養用の植物ホルモンとして
NAA10-5Mに代えて2,4−D10-6Mを用いた
以外は実施例と同様にしてカルスの培養を行な
い、乾燥カルス9.8gを得た。この乾燥から実施
例と同様にしてクリサンテンミンとステリンを分
離したところ、黒赤色粉末クリサンテミン79.4mg
を得たが、ステリンは10.8mgに過ぎなかつた。
[Table] Comparative example In the above example, as a plant hormone for culturing callus derived from Hanakirin leaves.
Callus was cultured in the same manner as in Example except that 2,4-D10 -6 M was used instead of NAA10 -5 M, and 9.8 g of dry callus was obtained. From this drying, chrysanthemin and sterine were separated in the same manner as in the example, and 79.4 mg of black-red powder chrysanthemin was found.
However, the amount of sterine was only 10.8 mg.

【図面の簡単な説明】[Brief explanation of drawings]

第1図は実施例でカルスから得た赤色色素と標
品クリサンテミンのUV吸収スペクトルのチヤー
ト図であり、図Aがカルスの赤色色素の吸収スペ
クトルを示し、図Bが標品クリサンテミンの吸収
スペクトルを示す。
Figure 1 is a chart of the UV absorption spectra of the red pigment obtained from callus in the example and standard chrysanthemin. Figure A shows the absorption spectrum of the red pigment of callus, and Figure B shows the absorption spectrum of standard chrysanthemin. show.

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1 ユーホルビア属植物のハナキリンの植物組織
から誘導したカルスを、α−ナフタレン酢酸
(NAA)を10-4〜10-7Mの濃度で含む培地中で培
養させてステリンおよび赤色色素クリサンテミン
を併産させることを特徴とするステリンおよび赤
色色素クリサンテミンの併産方法。 2 前記カルスの培養を100ルツクス以上の光照
射下で実施する特許請求の範囲第1項記載の方
法。 3 前記カルスの培養を、シヨ糖を1〜10重量%
の濃度で含む培地中で実施する特許請求の範囲第
1項又は第2項記載の方法。
[Scope of Claims] 1 Callus derived from the plant tissue of Hanakirin, a plant of the genus Euphorbia, is cultured in a medium containing α-naphthalene acetic acid (NAA) at a concentration of 10 -4 to 10 -7 M to produce sterine and red color. A method for co-producing sterine and red pigment chrysanthemine, characterized by co-producing the pigment chrysanthemine. 2. The method according to claim 1, wherein the callus is cultured under light irradiation of 100 lux or more. 3 The callus was cultured with 1 to 10% by weight of sucrose.
The method according to claim 1 or 2, which is carried out in a medium containing a concentration of .
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