JPS6348021B2 - - Google Patents
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- JPS6348021B2 JPS6348021B2 JP14462782A JP14462782A JPS6348021B2 JP S6348021 B2 JPS6348021 B2 JP S6348021B2 JP 14462782 A JP14462782 A JP 14462782A JP 14462782 A JP14462782 A JP 14462782A JP S6348021 B2 JPS6348021 B2 JP S6348021B2
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- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
- G01N33/543—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
- G01N33/544—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals the carrier being organic
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Description
本発明は抗原とか抗体の感作あるいは酵素の固
定などに広く利用しうる新規な人工担体に関す
る。抗原、抗体反応を利用する臨床検査等の分野
において、抗原または抗体をある適当な大きさの
粒子を担体としてそれに吸着もしくは結合させ、
それぞれに対応する抗体または抗原の存在によつ
てこの感作された担体の凝集を起させる方法は間
接受身凝集反応と呼ばれている。そして、この間
接受身凝集反応は被検液中の抗体や抗原を高感度
に検出できるので、いろいろの疾患の血清学的診
断や血液学的診断に広く用いられている。
この反応に用いられる担体としては、ポリスチ
レンラテツクス、カオリン、炭末などの非生物学
的粒子と、動物赤血球、細菌菌体のような生物学
的粒子とがある。一般に非生物学的粒子の担体
は、化学的に安定で、それ自身抗原活性を有しな
いなどの利点はあるが、抗原あるいは抗体が密に
吸着されにくいという欠点がある。たとえば、保
存のために凍結乾燥すると抗原や抗体が担体から
遊離してしまうのである。そのために、やむなく
液体中で冷暗所に保存するという手段がとられて
いるが、その結果長期間保存することができな
い。また、非生物学的担体のうち、炭末とカオリ
ンは一定の大きさの粒子を選出することが困難で
あり、ポリスチレンラテツクスは反応の媒質とし
て望ましい中性域では非特異凝集である自然凝集
をおこす危険がある。
一方、生物学的担体である動物赤血球や細菌菌
体はそれぞれの大きさが一定であるという利点は
あるものの、生物の種類によつて粒子の大きさは
定まつており、目的に応じた任意の大きさの粒子
を得ることはできない。たとえば、動物赤血球は
大きさの一定した最も入手しやすい担体である
が、血球表面に固有の抗原を有しており、抗体と
の間で非特異凝集反応である交差反応を起こして
目的とする凝集反応に誤まりを与える可能性があ
る。さらに、赤血球の生物学的、化学的および物
理的特性値が動物の個体間でばらついてしまつて
常に一定品質の血球を入手することが難しいとい
う欠点がある。
本発明者らはこれらの欠点のないすぐれた担体
を開発すべく種々検討の結果、ゼラチン、水溶性
多糖類、およびメタリン酸塩を原料として新規な
活性蛋白固定化用担体の製造に成功し、この担体
は従来の欠点を尽く解消したすぐれたものである
ことを見出して、これに基いて本発明を完成し
た。
すなわち本発明は、ゼラチン、水溶性多糖類お
よびメタリン酸イオンを含み、ゼラチンのアミノ
基間がアルデヒドによつて架橋され、25℃で測定
したPH7.2の0.15Mリン酸塩緩衝生理食塩水中の
電気泳動度が−1.3〜−0.5μm/sec/V/cmにあり、
粒径が1〜100μの球形であつて親水性つ不溶性
の粒子であることによつて特徴づけられた活性蛋
白固定化用担体に関するものである。
まず、本発明の担体はゼラチン、水溶性多糖類
およびメタリン酸イオンを構成成分として含むも
のである。
ゼラチンは蛋白質の一種であつてコラーゲンよ
り得られたものである。ゼラチンのなかでは酸性
ゼラチンが特に好ましい。
水溶性多糖類は増粘剤または糊料として使用し
うるものであり、多糖類の誘導体および塩も含ま
れる。例としては、アラビアゴム、カルボキシメ
チルセルロース、アルギン酸ナトリウム、寒天、
カラゲーナンなどを挙げることができるが、特に
アラビアゴムが好適である。
メタリン酸イオンはメタリン酸塩の一部の陽イ
オンが離脱して形成される陰イオンであり、その
荷電数は担体粒子が形成されるPH、原料に用いた
メタリン酸塩の種類などに応じて定まる。メタリ
ン酸塩は化学式:
(MPO3)o M:陽イオン
n=3〜6
で表わされる物質であり、たとえば三メタリン酸
ナトリウム、ヘキサメタリン酸ナトリウムの如き
ものである。
担体粒子においては、ゼラチンのアミノ基間が
アルデヒドによつて架橋されており、水溶性多糖
類とメタリン酸イオンはゼラチンと静電的に結合
している。そして、メタリン酸イオンは粒子の内
部にも含まれているが、特に表面を取り巻いて電
気二重層を形成しているものと思われる。
このような担体粒子の大部分は水であり、組成
としてはゼラチンが1〜15%程度、水溶性多糖類
が0.5〜8%程度、メタリン酸イオンが0.05〜3
%程度、そして水分が70〜90%程度である。担体
粒子は着色されている場合には色素を含み、ま
た、製法に応じて界面活性剤、親水性有機溶媒な
どが混入している場合もある。
本発明の担体粒子の物性を次に示す。
(1) 電気泳動度
25℃におけるPH7.2の0.15Mリン酸塩緩衝生
理食塩水(以下、PBSと略記する。)中での本
発明の担体粒子の電気泳動度は−1.3〜−0.5μ
m/sec/V/cmにある。
(2) 外形
直径1〜100μの球形である。
(3) 色
特に着色しなければ無色不透明である。
(4) 水に対する態度
親水性
(5) 活性蛋白の固定化
本発明の担体粒子は抗原あるいは抗体をヒツジ
赤血球に感作する公知の方法によつてこれらを感
作することができ、酵素、リンホカイン等の他の
活性蛋白を固定化することができる。このような
感作方法の例としてはタンニン酸、ホルマリン、
グルタルアルデヒド、ピルビツクアルデヒド、ビ
ス―ジアゾ化ベンジジン、トルエン―2,4―ジ
イソシアナートなどを用いる方法を挙げることが
できる。また、本発明の担体粒子はアミノ基、カ
ルボキシル基、水酸基などを活用して酵素を固定
化する公知の方法によつて酵素、あるいは抗原、
抗体など各種の活性蛋白を固定化することもでき
る。このような固定化法の例として、ジアゾカツ
プリング法、酸アジド化法などを挙げることがで
きる。
このような本発明の担体粒子は、前述のゼラチ
ン、水溶性多糖類およびメタリン酸塩を含む水溶
液を撹拌しつつそこに酸を加えてPH2.5〜6.0に調
整し、その後アルデヒド系架橋剤を作用せしめて
不溶化することによつて製造することができる。
この場合、PH調整前の溶液におけるこれら各物
質の濃度としては、ゼラチン0.01〜2%程度、好
ましくは0.05〜1.0%程度、そして水溶性多糖類
0.01〜2%程度、好ましくは0.05〜1.0%程度であ
る。メタリン酸塩はゼラチン乾燥重量の3〜15%
程度を含有させるようにするのがよい。各物質は
これらの濃度範囲において、所望の粒子の粒径お
よび物性に応じて適宜定めればよい。
PH調整前の溶液にはそのほかのものとして、親
水性有機溶媒、界面活性剤、着色剤などを適宜加
える。
親水性有機溶剤は生成する粒子の物性、特に分
散性および硬さなどを改善することができる。親
水性有機溶媒の例としては、低級アルコール、た
とえばメチルアルコール、エチルアルコール、プ
ロピルアルコール等、およびアセトンなどを用い
ることができ、濃度は4〜25容量%程度が好適で
ある。
界面活性剤は生成した粒子の凝集を防止して分
散を維持するためであり、陰イオン系または非イ
オン系のものがよい。
陰イオン系界面活性剤の例としては、アルキル
スルホコハク酸、アルキルスルホマレイン酸、ア
ルキル硫酸エステル、ポリオキシエチレンアルキ
ルエーテル硫酸エステルなど、そして非イオン系
界面活性剤の例としては、ポリオキシエチレン脂
肪酸エステル、ポリオキシエチレンアルキルエー
テル、ポリオキシエチレンアルキルフエニルエー
テル、ポリエチレングリコール脂肪酸エステルな
どを挙げることができる。PH調整前の溶液におけ
る濃度としては、陰イオン系界面活性剤の場合は
0.001〜0.01%程度、非イオン系界面活性剤の場
合は0.01〜0.1%程度で凝集防止効果が得られる。
溶液を冷却すればもつと低い濃度で凝集を防止す
ることができる。
担体を着色する場合には、着色剤を粒子形成前
に溶液に加えておくのがよい。着色を必要とする
例としては、本発明品を間接受身凝集反応の担体
として用いる場合を挙げることができる。すなわ
ち、本発明品は通常は無色不透明であるところか
ら、これを着色することによつて凝集像の判定を
容易にすることができる。着色剤としては、たと
えば食用赤色3号、ローダミン、ローズベンガ
ル、ポンソー3R、ボルド―S、フクシン、エオ
シン、およびニユートラルレツドなどの赤色色
素、あるいはクリスタルバイオレツト、トルイジ
ンブルーおよびメチレンブルーなどの青色色素等
を用いうる。しかしながら、リアクテイブ・レツ
ド、ダイレクト・ブルーなどの反応性染料で着色
すれば色落ちしないことから、反応性染料が特に
好適である。着色剤を添加する場合には、通常は
0.005〜0.5%程度であるが、反応性染料を用いれ
ばゼラチン乾燥重量の1〜5%程度で足りる。
このような溶液を調製する過程は問うところで
はなく、例えば各々を温水に溶解してから混合し
てもよく、各々を一緒に溶解してもよい。しかし
ながら、各物質の溶解を容易にするために親水性
有機溶媒はあとから加えるのがよく、また水溶性
多糖類には不溶成分も少量含まれていることが多
いところから、別途に溶解して添加するのがよ
い。一方、ゼラチンは等電点以下のPHでは水溶性
多糖類と反応して白濁を生ずるので酸性ゼラチン
を用いる場合にはアルカリを加えて溶液のPHを少
なくともその付近にまで高めておくのがよい。し
かしながら、この白濁は生じた後でもアルカリを
添加することによつて消すことができる。いずれ
にせよ、溶液は酸の添加を開始するまえには白濁
のない状態にしておかなければならない。
溶液の温度はゼラチンのゲル化温度以上でなけ
ればならない。この温度はゼラチンの濃度等によ
つて異なるが通例25〜30℃程度である。良好な粒
子形成の観点から特に35〜50℃程度がよい。
次に、この溶液を撹拌しながら酸を加えてPH
2.5〜6.0に調整する。この工程は粒子を生成させ
るところである。均一な粒子を形成させるため
に、35〜50℃に加温を続け、適度に撹拌しながら
酸を滴下していくのがよい。PH2.5〜6.0の範囲に
おける至適のPHは原料溶液の組成および目的とす
る粒径によつて異なるので予め実験を行なつて定
めるのがよい。たとえば得られた粒子を抗原感作
用担体に用いる場合には2〜10μ程度の粒径にす
るのがよく、その場合至適のPHは4.0〜5.5の範囲
にある。このPH調整に使用する酸は特に限定され
るものではなく無機酸でも有機酸でもよいが、な
るべくおだやかなものがよく、たとえば酢酸など
が好適である。
本工程で生成した粒子は系の温度をゼラチンの
ゲル化温度以下に下げても消失しないので母液と
の平衡関係はない。
酸の添加後は生成した粒子の凝集を防止するた
めに速かに粒子分散液を冷却するのがよい。そし
て、液温がゲル化温度以下になつたところでアル
デヒド系架橋剤を添加して粒子を不溶化する。こ
の架橋剤の添加量はゼラチン乾燥重量の0.1〜200
%程度であり、添加後は一夜程度放置して架橋反
応を充分に行なわせる。架橋剤の例としては、グ
ルタルアルデヒド、ホルムアルデヒド、グリオキ
ザール、クロトンアルデヒド、アクロレイン、ア
セトアルデヒドなどを挙げることができるが、特
にグルタルアルデヒドが好適である。
アルデヒド系架橋剤で処理後は粒子を遠心分離
等で回収して、必要により洗浄する。洗浄液は粒
子分散のために用いた界面活性剤と同じものを同
濃度で含む水で2〜3回行なえばよい。
このようにして得られた担体を種々の用途に供
すればよいが、架橋が不充分な場合には塩類溶液
中で膨潤することがある。そこでこのような用途
に用いる場合にはアルデヒド系架橋剤で処理して
膨潤を防止するのがよい。例えば、抗原を感作す
る場合にはリン酸緩衝液中で行なうので、赤血球
を固定化する条件でホルマリン処理する。この処
理によつて膨潤を防止するとともにホルマリンの
殺菌効果によつて長期間の保存に耐える担体が得
られる。
本発明の担体は例えば間接受身凝集反応の担体
として従来最もすぐれているとされていた動物赤
血球と同等な性能を有し、さらに化学的、物理的
に均質かつ安定であり、抗原活性がなく任意の粒
径のものを容易かつ安価に大量生産できるなど動
物赤血球にない幾多の利点を有するものである。
以下、担体の製造例および使用例を示す。な
お、本明細書において、%は特に記載がなければ
重量%を表わしている。
製造例 1
等電点がPH9であるゼラチン4gを40℃の温水
に100mlになるように溶解し、10%の水酸化ナト
リウム溶液を用いてPH9に調整した。アラビアゴ
ム4gを100mlになるように水に溶解し、不溶物
を別した後40℃に加温した。
このようにして得られたゼラチン溶液50mlとア
ラビアゴム溶液50mlを混合し、この混合液をあら
かじめ40℃に加温した30容量%のメチルアルコー
ル溶液300mlに注ぎ入れ、よく撹拌した。これに
10%ヘキサメタリン酸ナトリウム溶液1.6ml、1
%アルキルスルホマレイン酸(商品名デモール
Ep、花王石鹸(株)製品溶液2ml、および1%
ダイレクトブルー溶液6mlを加えてよく撹拌し
た。
次いで、40℃に保ちながら10容量%の酢酸溶液
を滴下してPH4.8に調整し、粒子を生成させた。
このPH調整によつて得られた粒子分散液を永冷
して5℃にしてからグルタールアルデヒド1.3g
を加え、よく撹拌後この温度で一夜静置した。そ
れからこの粒子分散液を2000rpmで10分間遠心分
離して粒子をペレツトとして回収した。この粒子
を0.005%デモールEp溶液に懸濁して遠心分離す
る洗浄操作を3回繰返してから、4容量%ホルマ
リン溶液に分散し、5℃で1週間放置した。
本例で得られた担体粒子は7.7gであり、その
75%が3〜6μの範囲にあつた。
この担体粒子の電気泳動度を測定した。装置に
は米国ペン・ケン社(Pen Ken Inc.)製のレー
ザー・ジー・システム3000(Laser Zee
system3000)を用い、25℃で測定を行なつた。
測定方法としては、この粒子をPH7.2の0.15M
PBS中に懸濁し、その1mlを直径1mmで長さが
20mmの円筒状電気泳動セルに入れ、1m当り
1048Vの電圧勾配をかけて泳動速度を測定した。
その結果、この粒子の電気泳動度は−0.969±
0.009μm/sec/V/cmであつた。一方、同じ条件で
製造した着色していない粒子についても電気泳動
度を測定したところ、−0.972±0.012μm/sec/V/
cmであつた。
製造例 2
下記の点を除いて製造例1と同様にして担体粒
子を調製した。
すなわち、まずアラビアゴム4gのかわりにカ
ルボキシメチルセルロース1gを、そして30容量
%のメチルアルコール溶液のかわりに30容量%エ
チルアルコール溶液を用いた。それから、添加量
についても、ゼラチン10%ヘキサメタリン酸ナト
リウム溶液、1%デモールEp溶液、1%ダイレ
クトブルー溶液、およびグルタルアルデヒドをい
ずれも4分の1にした。また、PHも4.8から4.6に
した。
このようにして得られた担体粒子は3.8gであ
り、その90%が1〜2μの範囲にあつた。
製造例 3
下記の点を除いて製造例1と同様にして担体粒
子を調製した。
すなわち、ゼラチン溶液を50mlから40mlにし、
アラビアゴム溶液を50mlから60mlに変えた。それ
から、10%ヘキサメタリン酸ナトリウム溶液を
1.6mlから1.2mlに、1%ダイレクトブルー溶液を
6mlから4.8mlに、そしてグルタルアルデヒドを
1.3gから1.0gにそれぞれ変えた。また、酢酸滴
下終了PHを4.6とした。
本例で得られた担体粒子は6.4gであり、その
90%が1〜2μの範囲にあつた。
この担体粒子の電気泳動度を製造例1と同様に
して測定したところ−0.939±0.059μm/sec/V/cm
であつた。
製造例 4
下記の点を除いて製造例1と同様にして担体粒
子を調製した。
すなわち、ゼラチン溶液を50mlから60mlにしア
ラビアゴム溶液を50mlから40mlに変えた。それか
ら、10%ヘキサメタリン酸ナトリウム溶液を1.6
mlから2mlに、1%ダイレクトブルー溶液を6ml
から7.2mlに、そしてグルタルアルデヒドを1.3g
から1.8gにそれぞれ変えた。また、酢酸滴下終
了PHを4.8とした。
本例で得られた担体粒子の収量は8.6gであり
得られた粒子の75%が3〜6μの範囲にあつた。
この担体粒子の電気泳動度を製造例1と同様に
して測定したところ−0.996±0.040μm/sec/V/cm
であつた。
製造例 5
等電点がPH9であるゼラチン4gを40℃の温水
に100mlになるように溶解し、10%の水酸化ナト
リウム溶液を用いてPH9に調整した。アラビアゴ
ム4gを400mlになるように水に溶解し、不溶物
を別後40℃に加温した。
上記のゼラチン溶液50mlおよびアラビアゴム溶
液50mlを混合し、これに30容量%エチルアルコー
ル溶液300ml、10%ヘキサメタリン酸ナトリウム
溶液1.6ml、および1%リアクテイブレツド溶液
6mlを加えてよく撹拌し、全体を40℃に加温し
た。
次いで、この混合液を撹拌しながら10容量%の
酢酸溶液を滴下してPH5.0に調整した。
PH調整により生成した粒子分散液を氷浴中でた
だちに5℃まで冷却し、グルタルアルデヒド1.3
gを加えた。そして、よく撹拌した後5℃で一夜
静置した。それからこの粒子分散液を2000rpmで
10分間遠心分離して粒子をペレツトとして回収し
た。この粒子を0.005%のデモールEp溶液に懸濁
して遠心分離する洗浄操作を3回繰返してから4
容量%ホルマリン溶液に分散し、5℃で1週間静
置した。
こうして得られた担体粒子の収量は6.4gであ
り、得られた粒子の75%は3〜6μの範囲にあつ
た。
製造例 6
等電点がPH9であるゼラチン4gを40℃の温水
に100mlになるように溶解し、10%の水酸化ナト
リウム溶液でPH9に調整した。アラビアゴム4g
を100mlになるように水に溶解し、不溶物を∬別
した後40℃に加温した。
ゼラチン溶液50mlとアラビアゴム溶液50mlを混
合し、これに40℃の蒸溜水300ml、10%ヘキサメ
タリン酸ナトリウム溶液1.6ml、および1%ダイ
レクトブルー溶液6mlを加えた。
次いで、この溶液を40℃に保ち、撹拌しながら
10容量%酢酸溶液を滴下してPH4.8に調整し、粒
子を生成させた。
粒子分散液を氷冷して5℃にしてからグルター
ルアルデヒド1.3gを加え、よく撹拌後この温度
で一夜静置した。それからこの粒子分散液を
2000rpmで10分間遠心分離して粒子をペレツトと
して回収した。この粒子を粒子濃度が5%になる
ように4容量%のホルマリン溶液に分散し、5℃
で1週間静置した。
本例で得られた粒子は7.5gであり、その75%
が2〜3.2μの範囲にあつた。
使用例 1
製造例1で得られた担体粒子を、下表に示す濃
度のタンニン酸を含むPH7.2のリン酸塩緩衝生理
食塩水(以下、PBSと略記する。)中に粒子濃度
が2.5%になるように分散し、37℃で15分間加温
した。粒子を遠心分離して生理食塩水で充分洗浄
した。
梅毒病原体トレポネーマ・パリーダム(以下、
TPと略記する。)菌体をPH6.4のPBS中に浮遊さ
せ超音波で菌体を破壊してTP抗原液とした。
前記のタンニン酸処理粒子をPBSに5%の濃
度に分散し、この分散液を下表に示す倍数で希釈
したTP抗原液と等容づつ混合した。混合液を37
℃で40分間加温して、粒子にTP抗原を感作した。
TP抗原感作粒子を遠心分離してPH6.4のPBSで
充分洗浄し、分散用メデイウムに濃度が5%にな
るように分散した。
このようにして得られたTP抗原感作粒子分散
液を用い、マイクロプレート法で梅毒陽性血清と
反応させたところ下表に示す如き結果が得られ
た。なお、対照としてヒツジ赤血球を担体に用い
た場合の結果もあわせて下表に示す。
The present invention relates to a novel artificial carrier that can be widely used for sensitizing antigens and antibodies, immobilizing enzymes, etc. In fields such as clinical tests that utilize antigen and antibody reactions, antigens or antibodies are adsorbed or bound to particles of an appropriate size as carriers,
The method of causing agglutination of this sensitized carrier by the presence of the respective antibodies or antigens is called indirect passive agglutination. Since this indirect passive agglutination reaction can detect antibodies and antigens in a sample liquid with high sensitivity, it is widely used in serological and hematological diagnosis of various diseases. Carriers used in this reaction include non-biological particles such as polystyrene latex, kaolin, and charcoal powder, and biological particles such as animal red blood cells and bacterial cells. In general, non-biological particle carriers have advantages such as being chemically stable and having no antigenic activity themselves, but have the disadvantage that antigens or antibodies are difficult to adsorb closely. For example, when freeze-drying for storage, antigens and antibodies are released from the carrier. For this reason, it is unavoidable to store it in a liquid in a cool, dark place, but as a result, it cannot be stored for a long period of time. Furthermore, among non-biological carriers, it is difficult to select particles of a certain size for charcoal powder and kaolin, and for polystyrene latex, natural aggregation occurs due to non-specific aggregation in the neutral region, which is desirable as a reaction medium. There is a risk of causing On the other hand, although animal red blood cells and bacterial cells, which are biological carriers, have the advantage of having a constant size, the particle size is fixed depending on the type of organism, and can be adjusted to suit the purpose. It is not possible to obtain particles of size . For example, animal red blood cells are the most readily available carrier with a constant size, but they have unique antigens on the surface of the blood cells, and cross-react with antibodies, which is a non-specific agglutination reaction. This may cause errors in the agglutination reaction. Furthermore, the biological, chemical, and physical properties of red blood cells vary among individual animals, making it difficult to obtain blood cells of constant quality. As a result of various studies to develop an excellent carrier free of these drawbacks, the present inventors succeeded in producing a novel carrier for immobilizing active proteins using gelatin, water-soluble polysaccharide, and metaphosphate as raw materials. The present invention was completed based on the discovery that this carrier is excellent in that it overcomes all the drawbacks of the conventional carrier. That is, the present invention contains gelatin, a water-soluble polysaccharide, and a metaphosphate ion, and the amino groups of gelatin are cross-linked with aldehyde, and the gelatin is dissolved in 0.15M phosphate buffered saline with a pH of 7.2 measured at 25°C. The electrophoretic mobility is between −1.3 and −0.5 μm/sec/V/cm,
The present invention relates to a carrier for immobilizing an active protein, which is characterized by being spherical, hydrophilic and insoluble particles with a particle size of 1 to 100 microns. First, the carrier of the present invention contains gelatin, a water-soluble polysaccharide, and metaphosphate ions as constituent components. Gelatin is a type of protein obtained from collagen. Among gelatins, acidic gelatin is particularly preferred. Water-soluble polysaccharides can be used as thickeners or thickeners, and also include derivatives and salts of polysaccharides. Examples include gum arabic, carboxymethyl cellulose, sodium alginate, agar,
Examples include carrageenan, and gum arabic is particularly preferred. Metaphosphate ions are anions that are formed when some cations of metaphosphate are separated, and the number of charges depends on the pH at which the carrier particles are formed, the type of metaphosphate used as a raw material, etc. Determined. Metaphosphate is a substance represented by the chemical formula: (MPO 3 ) o M: cation, n=3 to 6, and includes, for example, sodium trimetaphosphate and sodium hexametaphosphate. In the carrier particles, the amino groups of gelatin are crosslinked with aldehyde, and the water-soluble polysaccharide and metaphosphate ion are electrostatically bonded to gelatin. Although metaphosphate ions are contained inside the particles, they are thought to surround the surface in particular to form an electric double layer. Most of these carrier particles are water, and their composition is approximately 1 to 15% gelatin, approximately 0.5 to 8% water-soluble polysaccharide, and 0.05 to 3% metaphosphate ion.
%, and the water content is about 70-90%. When the carrier particles are colored, they contain a dye, and depending on the manufacturing method, they may also contain a surfactant, a hydrophilic organic solvent, and the like. The physical properties of the carrier particles of the present invention are shown below. (1) Electrophoretic mobility The electrophoretic mobility of the carrier particles of the present invention in 0.15M phosphate buffered saline (hereinafter abbreviated as PBS) with a pH of 7.2 at 25°C is -1.3 to -0.5μ.
m/sec/V/cm. (2) External shape: Spherical shape with a diameter of 1 to 100μ. (3) Color Colorless and opaque unless specifically colored. (4) Attitude towards water Hydrophilicity (5) Immobilization of active proteins The carrier particles of the present invention can be used to sensitize sheep red blood cells with antigens or antibodies, and can be used to sensitize sheep red blood cells with antigens or antibodies. Other active proteins such as can be immobilized. Examples of such sensitization methods include tannic acid, formalin,
Examples include methods using glutaraldehyde, pyruvitaldehyde, bis-diazotized benzidine, toluene-2,4-diisocyanate, and the like. In addition, the carrier particles of the present invention can be used to immobilize enzymes or antigens by a known method of immobilizing enzymes using amino groups, carboxyl groups, hydroxyl groups, etc.
Various active proteins such as antibodies can also be immobilized. Examples of such immobilization methods include diazo coupling method and acid azidization method. Such carrier particles of the present invention can be prepared by adding an acid to an aqueous solution containing gelatin, a water-soluble polysaccharide, and a metaphosphate while stirring to adjust the pH to 2.5 to 6.0, and then adding an aldehyde crosslinking agent. It can be produced by insolubilizing it by acting on it. In this case, the concentration of each of these substances in the solution before pH adjustment is about 0.01 to 2% of gelatin, preferably about 0.05 to 1.0%, and water-soluble polysaccharide.
It is about 0.01 to 2%, preferably about 0.05 to 1.0%. Metaphosphate is 3-15% of gelatin dry weight
It is preferable to include a certain degree. Each substance may be appropriately determined within these concentration ranges depending on the particle size and physical properties of the desired particles. Other ingredients such as a hydrophilic organic solvent, a surfactant, and a coloring agent are added as appropriate to the solution before pH adjustment. Hydrophilic organic solvents can improve the physical properties of the particles produced, particularly their dispersibility and hardness. Examples of hydrophilic organic solvents that can be used include lower alcohols such as methyl alcohol, ethyl alcohol, propyl alcohol, and acetone, and the preferred concentration is about 4 to 25% by volume. The purpose of the surfactant is to prevent agglomeration of the generated particles and maintain dispersion, and an anionic or nonionic surfactant is preferable. Examples of anionic surfactants include alkyl sulfosuccinic acids, alkyl sulfomaleic acids, alkyl sulfates, polyoxyethylene alkyl ether sulfates, and examples of nonionic surfactants include polyoxyethylene fatty acid esters. , polyoxyethylene alkyl ether, polyoxyethylene alkyl phenyl ether, polyethylene glycol fatty acid ester, and the like. In the case of anionic surfactants, the concentration in the solution before pH adjustment is
Agglomeration prevention effects can be obtained at about 0.001 to 0.01%, and in the case of nonionic surfactants, about 0.01 to 0.1%.
By cooling the solution, aggregation can be prevented at lower concentrations. If the carrier is to be colored, it is preferable to add a coloring agent to the solution before particle formation. An example where coloring is required is when the product of the present invention is used as a carrier for an indirect passive aggregation reaction. That is, since the product of the present invention is normally colorless and opaque, by coloring it, the agglomerated image can be easily determined. Coloring agents include, for example, red pigments such as Food Red No. 3, Rhodamine, Rose Bengal, Ponceau 3R, Bordeaux-S, Fuchsin, Eosin, and Neutral Red, or blue pigments such as Crystal Violet, Toluidine Blue and Methylene Blue. etc. can be used. However, reactive dyes such as Reactive Red and Direct Blue do not cause color fading, so reactive dyes are particularly suitable. When adding colorants, usually
The amount is about 0.005 to 0.5%, but if a reactive dye is used, about 1 to 5% of the dry weight of gelatin is sufficient. The process for preparing such a solution is not critical; for example, each may be dissolved in warm water and then mixed, or each may be dissolved together. However, in order to facilitate the dissolution of each substance, it is best to add a hydrophilic organic solvent later, and since water-soluble polysaccharides often contain small amounts of insoluble components, they must be dissolved separately. It is good to add it. On the other hand, gelatin reacts with water-soluble polysaccharides and becomes cloudy at a pH below its isoelectric point, so when using acidic gelatin, it is advisable to add an alkali to raise the pH of the solution to at least around that point. However, even after this cloudiness occurs, it can be eliminated by adding an alkali. In any case, the solution must be free from cloudiness before starting the addition of acid. The temperature of the solution must be above the gelatin temperature. This temperature varies depending on the concentration of gelatin, etc., but is usually about 25 to 30°C. From the viewpoint of good particle formation, the temperature is preferably about 35 to 50°C. Next, add acid to this solution while stirring to make the pH
Adjust to 2.5-6.0. This step is where particles are generated. In order to form uniform particles, it is best to continue heating to 35-50°C and drop the acid while stirring moderately. The optimum PH in the range of PH2.5 to 6.0 varies depending on the composition of the raw material solution and the target particle size, so it is best to determine it in advance by conducting experiments. For example, when the obtained particles are used as an antigen-sensitizing carrier, the particle size is preferably about 2 to 10 μm, and in this case, the optimum pH is in the range of 4.0 to 5.5. The acid used for this pH adjustment is not particularly limited and may be an inorganic acid or an organic acid, but it is preferable to use one that is as mild as possible, and for example, acetic acid is preferable. The particles produced in this step do not disappear even if the temperature of the system is lowered below the gelatin temperature, so there is no equilibrium relationship with the mother liquor. After adding the acid, it is preferable to quickly cool the particle dispersion to prevent the formed particles from agglomerating. Then, when the liquid temperature falls below the gelling temperature, an aldehyde-based crosslinking agent is added to insolubilize the particles. The amount of this crosslinking agent added is 0.1 to 200% of the dry weight of gelatin.
%, and after addition, it is left to stand for about one night to allow the crosslinking reaction to occur sufficiently. Examples of the crosslinking agent include glutaraldehyde, formaldehyde, glyoxal, crotonaldehyde, acrolein, and acetaldehyde, with glutaraldehyde being particularly preferred. After treatment with the aldehyde crosslinking agent, the particles are collected by centrifugation or the like, and washed if necessary. The washing may be carried out two or three times using water containing the same surfactant at the same concentration as the surfactant used for particle dispersion. The carrier thus obtained may be used for various purposes, but if crosslinking is insufficient, it may swell in a salt solution. Therefore, when used for such purposes, it is recommended to treat with an aldehyde crosslinking agent to prevent swelling. For example, when sensitizing an antigen, it is carried out in a phosphate buffer, so formalin treatment is performed under conditions that fix red blood cells. This treatment prevents swelling and, due to the sterilizing effect of formalin, provides a carrier that can be stored for a long period of time. The carrier of the present invention has performance equivalent to that of animal red blood cells, which has been considered to be the best carrier for indirect passive agglutination reactions, and is chemically and physically homogeneous and stable, free of antigenic activity, and free from antigenic activity. It has many advantages over animal red blood cells, such as the ability to easily and inexpensively mass-produce particles with a particle size of Examples of manufacturing and usage of the carrier are shown below. In this specification, % represents weight % unless otherwise specified. Production Example 1 4 g of gelatin having an isoelectric point of PH9 was dissolved in 40°C warm water to a total volume of 100 ml, and the pH was adjusted to 9 using a 10% sodium hydroxide solution. 4 g of gum arabic was dissolved in water to make 100 ml, and after removing insoluble materials, the mixture was heated to 40°C. 50 ml of the gelatin solution thus obtained and 50 ml of the gum arabic solution were mixed, and this mixed solution was poured into 300 ml of a 30% by volume methyl alcohol solution previously heated to 40° C., and the mixture was thoroughly stirred. to this
1.6ml of 10% sodium hexametaphosphate solution, 1
% alkyl sulfomaleic acid (trade name Demol
E p , 2 ml of Kao Soap Co., Ltd. product solution, and 1%
6 ml of Direct Blue solution was added and stirred thoroughly. Next, while maintaining the temperature at 40°C, a 10% by volume acetic acid solution was added dropwise to adjust the pH to 4.8 to generate particles. After cooling the particle dispersion obtained by this pH adjustment to 5°C, 1.3 g of glutaraldehyde was added.
was added, stirred well, and left at this temperature overnight. The particle dispersion was then centrifuged at 2000 rpm for 10 minutes to collect the particles as pellets. A washing operation in which the particles were suspended in a 0.005% Demol Ep solution and centrifuged was repeated three times, then dispersed in a 4% by volume formalin solution and left at 5°C for one week. The carrier particles obtained in this example weighed 7.7g;
75% were in the range of 3-6μ. The electrophoretic mobility of this carrier particle was measured. The device is Laser Zee System 3000 manufactured by Pen Ken Inc. in the United States.
The measurements were carried out at 25°C using a microcomputer (system 3000).
As for the measurement method, this particle is 0.15M with a pH of 7.2.
Suspend in PBS and add 1 ml of it to a diameter of 1 mm and a length of
Place in a 20 mm cylindrical electrophoresis cell, per 1 m
The migration speed was measured by applying a voltage gradient of 1048V.
As a result, the electrophoretic mobility of this particle is −0.969±
It was 0.009μm/sec/V/cm. On the other hand, when we measured the electrophoretic mobility of uncolored particles produced under the same conditions, we found that -0.972±0.012μm/sec/V/
It was cm. Production Example 2 Carrier particles were prepared in the same manner as Production Example 1 except for the following points. That is, first, 1 g of carboxymethyl cellulose was used in place of 4 g of gum arabic, and a 30 volume % ethyl alcohol solution was used in place of the 30 volume % methyl alcohol solution. Also, the amounts of 10% gelatin sodium hexametaphosphate solution, 1% Demol Ep solution, 1% Direct Blue solution, and glutaraldehyde were all reduced to one-quarter. Also, the pH was increased from 4.8 to 4.6. The carrier particles thus obtained weighed 3.8 g, 90% of which were in the 1-2 micron range. Production Example 3 Carrier particles were prepared in the same manner as Production Example 1 except for the following points. That is, increase the gelatin solution from 50ml to 40ml,
The gum arabic solution was changed from 50ml to 60ml. Then, 10% sodium hexametaphosphate solution
1.6ml to 1.2ml, 1% Direct Blue solution from 6ml to 4.8ml, and glutaraldehyde.
The amount was changed from 1.3g to 1.0g. In addition, the pH at the end of acetic acid addition was set at 4.6. The carrier particles obtained in this example weighed 6.4g;
90% were in the range of 1-2μ. The electrophoretic mobility of this carrier particle was measured in the same manner as in Production Example 1: -0.939±0.059μm/sec/V/cm
It was hot. Production Example 4 Carrier particles were prepared in the same manner as Production Example 1 except for the following points. That is, the gelatin solution was changed from 50 ml to 60 ml, and the gum arabic solution was changed from 50 ml to 40 ml. Then add 1.6% 10% sodium hexametaphosphate solution
ml to 2ml, add 6ml of 1% Direct Blue solution
to 7.2 ml, and 1.3 g of glutaraldehyde.
I changed it from 1.8g to 1.8g. Furthermore, the pH at the end of acetic acid addition was set at 4.8. The yield of carrier particles obtained in this example was 8.6 g, and 75% of the particles obtained were in the range of 3 to 6 μm. The electrophoretic mobility of this carrier particle was measured in the same manner as in Production Example 1: -0.996±0.040μm/sec/V/cm
It was hot. Production Example 5 4 g of gelatin having an isoelectric point of PH9 was dissolved in 40°C warm water to a total volume of 100 ml, and the pH was adjusted to 9 using a 10% sodium hydroxide solution. 4 g of gum arabic was dissolved in water to a total volume of 400 ml, and after separating insoluble matter, the mixture was heated to 40°C. Mix 50 ml of the above gelatin solution and 50 ml of gum arabic solution, add 300 ml of 30% by volume ethyl alcohol solution, 1.6 ml of 10% sodium hexametaphosphate solution, and 6 ml of 1% reactive bread solution, stir well, and mix thoroughly. was heated to 40°C. Next, a 10% by volume acetic acid solution was added dropwise to the mixture while stirring to adjust the pH to 5.0. The particle dispersion produced by pH adjustment was immediately cooled to 5°C in an ice bath, and glutaraldehyde 1.3
g was added. After stirring well, the mixture was allowed to stand overnight at 5°C. Then this particle dispersion was heated at 2000 rpm.
The particles were collected as a pellet by centrifugation for 10 minutes. The particles were suspended in a 0.005% Demol Ep solution and centrifuged. The washing procedure was repeated three times, and then
It was dispersed in a volume% formalin solution and allowed to stand at 5°C for one week. The yield of carrier particles thus obtained was 6.4 g, and 75% of the particles obtained were in the range of 3-6μ. Production Example 6 4 g of gelatin with an isoelectric point of PH9 was dissolved in 40°C warm water to a total volume of 100 ml, and the pH was adjusted to 9 with a 10% sodium hydroxide solution. 4g gum arabic
was dissolved in water to a total volume of 100 ml, and after removing insoluble materials, the mixture was heated to 40°C. 50 ml of gelatin solution and 50 ml of gum arabic solution were mixed, and to this were added 300 ml of distilled water at 40°C, 1.6 ml of 10% sodium hexametaphosphate solution, and 6 ml of 1% Direct Blue solution. This solution was then kept at 40°C and stirred.
A 10% by volume acetic acid solution was added dropwise to adjust the pH to 4.8 to generate particles. The particle dispersion was ice-cooled to 5° C., 1.3 g of glutaraldehyde was added thereto, and after thorough stirring, it was allowed to stand at this temperature overnight. Then this particle dispersion
The particles were collected as a pellet by centrifugation at 2000 rpm for 10 minutes. The particles were dispersed in a 4% by volume formalin solution so that the particle concentration was 5%, and the mixture was heated at 5°C.
It was left undisturbed for one week. The particles obtained in this example weighed 7.5 g, and 75%
was in the range of 2 to 3.2μ. Usage Example 1 The carrier particles obtained in Production Example 1 were added to a phosphate buffered saline solution (hereinafter abbreviated as PBS) with a pH of 7.2 containing tannic acid at the concentration shown in the table below to a particle concentration of 2.5. % and heated at 37°C for 15 minutes. The particles were centrifuged and thoroughly washed with saline. The syphilis pathogen Treponema pallidum (hereinafter referred to as
Abbreviated as TP. ) The bacterial cells were suspended in PBS at pH 6.4 and destroyed using ultrasound to obtain a TP antigen solution. The tannic acid-treated particles were dispersed in PBS at a concentration of 5%, and this dispersion was mixed in equal volumes with the TP antigen solution diluted at the multiples shown in the table below. 37% of the mixture
The particles were sensitized to the TP antigen by warming at ℃ for 40 minutes. The TP antigen-sensitized particles were centrifuged, thoroughly washed with PBS of pH 6.4, and dispersed in a dispersion medium to a concentration of 5%. When the thus obtained TP antigen-sensitized particle dispersion was reacted with syphilis-positive serum using a microplate method, the results shown in the table below were obtained. As a control, the results obtained when sheep red blood cells were used as a carrier are also shown in the table below.
【表】
使用例 2
製造例1で得られた担体粒子をタンニン酸
10ppmを含むPH7.2のPBS中に粒子濃度が2.5%に
なるように分散し、37℃で15分間加温した。粒子
を遠心分離して生理食塩水で充分洗浄し、1%に
なるようにPH7.2のPBS中に分散した。一方、高
純度に精製したストレプトキナーゼをPH7.2の
PBSに128U/mlになるように溶解した。
タンニン酸処理粒子分散液4mlとストレプトキ
ナーゼ溶液4mlとを混合し、37℃で30分間加温し
た。その後、粒子を遠心分離してPH7.2のPBSで
洗浄し、粒子濃度1%になるようにPH7.5のゼラ
チン緩衝液に分散した。なお、ゼラチン緩衝液は
ゼラチン5g、塩化ナトリウム10g、およびリン
酸カリウム13.6gを1mlに溶解したものである。
この粒子分散液のストレプトキナーゼ活性は約
60Uであつたので、溶液中の酵素の約12%が粒子
に固定されたことになる。
酵素活性の測定方法は次のように行なつた。す
なわち、酵素溶液または粒子分散液0.25mlにヒト
プラズマ0.1mlおよびトロンビン溶液0.05mlを加
えて37℃で30分間加温した。トロンビン溶液は
500単位のトロンビンをホウ酸緩衝液で80倍に希
釈したものである。酵素活性は、線凝固を阻止す
るストレプトキナーゼの最大希釈倍数で示した。[Table] Usage Example 2 The carrier particles obtained in Production Example 1 were mixed with tannic acid.
The particles were dispersed in PBS containing 10 ppm at pH 7.2 to a particle concentration of 2.5%, and heated at 37°C for 15 minutes. The particles were centrifuged, thoroughly washed with physiological saline, and dispersed in PBS at pH 7.2 to a concentration of 1%. On the other hand, highly purified streptokinase was used at pH 7.2.
It was dissolved in PBS to a concentration of 128 U/ml. 4 ml of the tannic acid-treated particle dispersion and 4 ml of the streptokinase solution were mixed and heated at 37° C. for 30 minutes. Thereafter, the particles were centrifuged, washed with PBS at pH 7.2, and dispersed in gelatin buffer at pH 7.5 to a particle concentration of 1%. The gelatin buffer solution was prepared by dissolving 5 g of gelatin, 10 g of sodium chloride, and 13.6 g of potassium phosphate in 1 ml. The streptokinase activity of this particle dispersion is approximately
Since it was 60 U, approximately 12% of the enzyme in the solution was immobilized on the particles. The enzyme activity was measured as follows. That is, 0.1 ml of human plasma and 0.05 ml of thrombin solution were added to 0.25 ml of the enzyme solution or particle dispersion, and the mixture was heated at 37° C. for 30 minutes. Thrombin solution is
This is 500 units of thrombin diluted 80 times with borate buffer. Enzyme activity was expressed as the highest dilution of streptokinase that inhibited linear coagulation.
Claims (1)
オンを含み、ゼラチンのアミノ基間がアルデヒド
によつて架橋され、25℃で測定したPH7.2の
0.15Mリン酸塩緩衝生理食塩水中の電気泳動度が
−1.3〜−0.5μm/sec/V/cmにあり、粒径が1〜
100μの球形であつて親水性かつ不溶性の粒子で
あることによつて特徴づけられた活性蛋白固定化
用担体。1 Contains gelatin, water-soluble polysaccharides and metaphosphate ions, and the amino groups of gelatin are cross-linked with aldehyde, with a pH of 7.2 measured at 25℃.
The electrophoretic mobility in 0.15M phosphate buffered saline is -1.3 to -0.5μm/sec/V/cm, and the particle size is 1 to
A carrier for immobilizing active proteins characterized by being spherical, hydrophilic and insoluble particles of 100μ.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP14462782A JPS5935143A (en) | 1982-08-23 | 1982-08-23 | Carrier for immobilizing actic protein |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP14462782A JPS5935143A (en) | 1982-08-23 | 1982-08-23 | Carrier for immobilizing actic protein |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS5935143A JPS5935143A (en) | 1984-02-25 |
| JPS6348021B2 true JPS6348021B2 (en) | 1988-09-27 |
Family
ID=15366433
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP14462782A Granted JPS5935143A (en) | 1982-08-23 | 1982-08-23 | Carrier for immobilizing actic protein |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS5935143A (en) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH0577617U (en) * | 1992-03-25 | 1993-10-22 | 豊田工機株式会社 | Thrust bearing |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH0786508B2 (en) * | 1987-07-21 | 1995-09-20 | オリンパス光学工業株式会社 | Method of manufacturing carrier |
-
1982
- 1982-08-23 JP JP14462782A patent/JPS5935143A/en active Granted
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH0577617U (en) * | 1992-03-25 | 1993-10-22 | 豊田工機株式会社 | Thrust bearing |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS5935143A (en) | 1984-02-25 |
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