【発明の詳細な説明】
本発明は血液検査用容器に関し、詳しくは、被
検者の全血試料から遠心分離により、血清を分離
するために用いる有底の管状容器、所謂スピツツ
に関する。
近年、検査技術の目ざましい進歩と相俟つて、
血清生化学検査、血清免疫学検査、血球検査等の
血液検査が広く普及し、病気予防や早期診断に大
きく貢献するに至つている。血清検査は、血液検
査の主体をなしており、検査に要する血清は通
常、血液検査用容器に採取した血液を凝固させた
後、遠心分離によつて、比重の異なる血餅（フイ
ブリンと血球が混合したゲル様塊状物）から分離
している。
従来の血液検査用容器としては、ガラス製のも
の、及び、ポリスチレン、ポリメチルメタクリレ
ート、ポリエチレン等の合成樹脂製のものが使用
されているが、これらは概して以下の欠点を持つ
ている。
一つは血液検査用容器に血液を注入した後、凝
固に至るまでにかなりの時間を必要とし、迅速に
検査を実施することができない点であり、特に緊
急に検査を実施する必要のある場合に問題となつ
ている。最も血液凝固時間が短かいとされるガラ
ス製血液検査用容器でさえ、血液を注入した後凝
固に至るまでに40分ないし60分を必要とし、合成
樹脂製血液検査用容器に至つては、血液凝固する
までに、４時間以上の放置を必要とする。
従来の血液検査用容器の有するいまひとつの欠
点は、凝固した全血を遠心分離等の手段によつて
比重の異なる血清と血餅に相分離させて、検査に
使用する純粋な血清を採取するに際し、血清の分
離性が概して不良であることである。
即ちゲル状のフイブリンあるいは血餅が管壁に
強固に付着し易く、そのため、血清の採取量を極
端に減少させる問題があり、又、血清中にフイブ
リンが残存し易く、そのため、血清生化学検査に
障害をひき起こすなどの問題が存していた。そし
て血清分離性が比較的良好とされるガラス製血液
検査用容器でさえ、17℃以下の低温状態、特に冬
期使用において、上記の問題を頻発させている。
本発明者らは、上記の欠点を解消するため、血
液凝固を促進する作用を有する物質構造を検討し
特に、血液凝固因子や血小板を最も有効に活性化
するために、血液検査用容器の内壁面に存在させ
るべき物質構造を鋭意検討した。
その結果、吸着剤として使用されていた無機物
であつて、一定の特性を有するものが内壁面に存
在されている場合に、著しく血液凝固因子を活性
化し迅速な凝固を生じさせることを見出し本発明
を完成するに至つた。
本発明の要旨とするところは、内壁面に、アマ
ニ油吸油量が20乃至40ml／100ｇ、BET比表面積
値が5000乃至30000cm2／ｇ、比抵抗値が１×
1010Ω・cm以下の性質を有する平均粒径10μ以下
のシリカ微粉末を、１×10-7乃至１×10-3ｇ／cm2
の存在量で存在させていることを特徴とする、血
液検査用容器に存する。
次に本発明血液検査用容器について更に詳細に
説明する。
本発明において、血液検査用容器、即ちスピツ
ツの素材としては、熱可塑性樹脂、熱硬化性樹
脂、変性天然樹脂、ガラスのいずれもが用いられ
る。熱可塑性樹脂としては、例えばポリエチレ
ン、ポリプロピレン、ポリ−４メチルペンテン−
１、ポリスチレン、ポリメチルメタクリレート、
ポリ塩化ビニル、ポリエチレンテレフタレート、
ポリブチレンテレフタレート、スチレン−アクリ
ロニトリル共重合体、スチレン−無水マレイン酸
共重合体、スチレン−アクリル酸共重合体、スチ
レン−メチルメタクリレート共重合体、エチレン
−プロピレン共重合体、エチレン−アクリル酸共
重合体、エチレン−アクリル酸エステル共重合
体、ポリビニルアルコールアセタール化物、ポリ
ビニルアルコールブチラール化物等が、また熱硬
化性樹脂としては 例えば不飽和ポリエステル樹
脂、エポキシ樹脂、エポキシ−アクリレート樹脂
等が用いられる。
変性天然樹脂としては、例えば酢酸セルロー
ス、プロピオン酸セルロース、酢酸酪酸セルロー
ス、エチルセルロース、エチルキチン等が用いら
れる。またガラスとしては、例えばソーダ石灰ガ
ラス、リンケイ酸ガラス、ホウケイ酸ガラス等の
ケイ酸塩ガラス及び石英ガラスが使用される。
本発明において血液検査用容器の内壁面に吸着
性無機質微粉末としてシリカ微粉末を存在させて
いる。
又、吸着性無機質微粉末は粒径が50μ以下であ
つて、平均粒径が10μ以下のものを使用するのが
好適である。そして特に血液凝固時間を短縮させ
るに有効な吸着性無機物はシリカであり、とり分
け無定形成分を20重量％以上含有する多孔性のシ
リカがすぐれた効果を発揮する。
かゝるシリカ微粉末は、血液と接触した場合に
血液凝固因子の活性化を促進し、又血小板の凝集
を促がす作用を有する。しかしながらシリカ微粉
末が血液凝固促進作用を効果的に発揮するために
は、アマニ油吸油量、BET比表面積値、比抵抗
値が一定の範囲内に存在しなければならないこと
が本発明者等によつて知見された。
アマニ油吸油量及びBET比表面積値は、シリ
カ微粉末の表面積の程度を表わし、又表面積はシ
リカ微粉末の有する表面孔隙の程度と関連するの
で、吸油量及び比表面積によつて表面孔隙の程度
を知ることができる。そして本発明におけるシリ
カは、アマニ油吸油量が20乃至40ml／100ｇ、
BET比表面積値が5000乃至30000cm2／ｇの性質を
有するものが使用される。アマニ油吸油量は日本
工業規格Ｋ−5101に準拠して測定される値を示
し、シリカ微粉末試料１乃至５ｇをガラス板（約
250×250×５mm）にとり、アマニ油をビユレツト
から少量ずつ前記試料の中央に滴下し、その都度
全体をヘラで充分に練り合わせ、前記試料がアマ
ニ油の一滴で急激にやわらかくなりガラス板に粘
りつく直前を終点としそれ迄に使用したアマニ油
の量を求め、試料100ｇに対するアマニ油のml数
を以つてアマニ油吸油量とする。
BET比表面積値は、Brunauer−Emmett、
Tellerによつて提案され多分子層吸着理論から求
められる値であり、その理論は、Journal of
American Chemical Society60・309（1938）；
59、2682（1937）等において詳説されている。
BET比表面積値は、シリカ微粉末の表面に吸着
される気体の吸着量、その時の平衡圧、吸着ガス
の飽和蒸気圧から単分子層として表面をおゝい切
る気体量を求め、これに吸着気体分子の平均断面
積を乗じて算出された値を指すものであり、吸着
気体としては窒素ガス、酸素ガス、アルゴンガ
ス、メタンガス等が使用される。そしてこの方法
によれば、アマニ油吸油量の測定によつては測定
できない細孔を含めた表面積値が測定される。
血液凝固に際しては、第XII因子、すなわち接触
因子が活性化されるが、このためには異物表面上
に第XII因子、プレカリクレイン、高分子キニノー
ゲンの３種の物質が錯体を形成して吸着されるこ
とが必要であり、これらの一つ又は二つが欠けた
状態での吸着は活性化に至らないとされている。
ところで、血液凝固促進作用を期待してシリカ微
粉末を使用した場合に、表面積が非常に大きなも
のであると、シリカ微粉末の表面上には錯体を形
成しない状態での第XII因子、プレカリクレイン、
高分子キニノーゲンの吸着の割合が高まることに
なり、言い換えると、第XII因子の活性化に必要な
三者の錯体形成割合は減少することになり、かえ
つて血液凝固促進作用は滅殺されることになる。
また逆にシリカ微粉末の表面積が小さすぎると、
凝固因子の吸着の確率が小さくなり、血液凝固促
進作用を期待することができなくなる。このため
に本発明におけるシリカ微粉末はアマニ油吸油量
20乃至40ml／100ｇ、BET比表面積値が5000乃至
30000cm2／ｇの範囲の表面積を有しなければなら
ないものである。
又、本発明におけるシリカ微粉末の比抵抗値は
１×1010Ω・cm以下、より好ましくは５×104Ω・
cm以下であるものが使用される。比抵抗値は電気
伝導度の逆数であり、常温における値である。
血液が異物に接触すると、血液凝固現象に先立
つてアルブミン、グロブリンや種々の血液凝固因
子等の蛋白質が直ちに異物表面へ吸着し、その際
の蛋白質分子のコンフオーメーシヨンの変化が、
引続いて生ずる生化学反応に様々な影響を及ぼ
す。特に酵素反応である血液凝固因子の活性化機
構は大きな影響を受け場合によつては凝固機能を
損なう。
又、大きなコンフオーメーシヨンの変化を生じ
た吸着グロブリン、アルブミンの上に付着した血
小板は異常な溶融変形をきたし、重合析出したフ
イブリン鎖がシリカ微粉末に強く固着するという
現象を引き起こす。後者の現象が血清採取を目的
とする容器内で生ずると、遠心分離を行なつて
も、血餅と血清とに分離せず、その目的を達成す
ることができなくなる。
蛋白質のコンフオーメーシヨンの変化はシリカ
微粉末と蛋白質間の疎水性相互作用、水素結合性
相互作用、静電的相互作用等の様々な相互作用の
結果生ずるが、このうち静電的相互作用について
は比較的導電性の高いシリカ微粉末を用いると緩
和される。すなわち、蛋白質の持つ極性基群によ
りシリカ微粉末中には、それらに応じた分布を持
つ双極子モーメント群が誘起されるわけである
が、シリカ微粉末が非導電性であれば導電性の場
合に比して応答性が悪くなり、表面に吸着してい
る蛋白質の有する電位分布とシリカ微粉末の有す
る電位分布とは相互に整合性を欠き、これが蛋白
質に局所的で不均一な歪みを生じさせコンフオー
メーシヨンの変化へとつながる。従つてシリカ微
粉末が導電性を有することは、蛋白質とシリカ微
粉末との間の電位分布の整合性を保持し、蛋白質
のコンフオーメーシヨンの変化を防止するために
必要である。このために本発明におけるシリカ微
粉末は、比抵抗値が１×1010Ω・cm以下のものと
されるのである。
血液検査用容器の内壁面に、シリカ微粉末を存
在させるには、シリカ微粉末を適当な結合剤や分
散媒中に分散させたものをスプレー塗布してもよ
いし、又塗工や浸漬を行なうことにより存在させ
てもよい。
シリカ微粉末の容器内壁面への存在量は、１×
10-7ｇ／cm2乃至１×10-3ｇ／cm2とされるのが好適
である。これは容器内壁面へのシリカ微粉末の存
在量が１×10-7ｇ／cm2よりも少量になると血液凝
固因子とシリカ微粉末との接触が充分なものとな
らなくなり、又１×10-3ｇ／cm2よりも多量になる
とシリカ微粉末が剥離したりして血清中に入り込
み血液検査の妨害をすることがあることによる。
本発明血液検査用容器によれば、血液凝固因子
が迅速に活性化され、血液凝固に要する時間が著
しく短縮されると共に血清と血餅との分離が容易
に行なわれ、分離採取された血清中に残存フイブ
リンや血餅成分が混入する問題も解消され、更に
は血餅成分の収縮が十分に進行する結果、血清の
収量が著しく大きくなる効果が得られる。
従つて、本発明血液検査用容器は、血液検査用
採血管、血清分離目的を有する採血用シリンジ、
血清分離容器等の用途に好適に使用することがで
きる。
実施例 １〜４
外径17mm、内径15mm、高さ110mmの寸法のガラ
ス製容器（実施例１）、これと同一寸法のポリエ
チレン製容器（実施例２）、ポリプロピレン製容
器（実施例３）、アクリル樹脂製容器（実施例４）
を夫々準備した。
夫々の容器の内壁面の底面から100mmまでの部
分に、1.0重量％のシリカ微粉末を含有するエタ
ノール分散液をスプレー塗布し、エタノールを蒸
発乾燥させた。このシリカとしては、アマニ油吸
油量が30ml／100ｇ、BET比表面積値が12000
cm2／ｇ、比抵抗値が2.6×104Ω・cmであつて、平
均粒径が5.5μであり、しかも多孔性のものを使用
した。又このシリカは、結晶成分を75重量％、無
定形成分を25重量％を含有しているものであつ
た。
又シリカ微粉末の存在量は１×10-4ｇ／cm2であ
つた。
かくして得られた夫々の血液検査用容器に、正
常健康人より採血した血液を採血後直ちに８ml量
注入し20℃で放置した。
全血が完全に流動しなくなる迄に要した時間を
血液凝固時間として測定し、血液凝固性を評価し
た。血液凝固後、直ちに3000回転／分の回転速度
で５分間遠心分離を行ない、血清分離の状態を観
察すると共に上澄み血清をピペツトにて採取し、
その量を血清収量とした。表１の実施例１乃至４
の結果より明らかなように、いずれの血液検査用
容器も血液凝固が速やかであり、血清分離状態も
極めて良好であつた。
比較例 １〜４
実施例１〜４におけると同寸法のガラス製容器
（比較例１）、ポリエチレン製容器（比較例２）、
プリプロピレン製容器（比較例３）、アクリル樹
脂製容器（比較例４）を夫々準備した。次いで実
施例１〜４におけると同様にしてアマニ油吸油量
が210ml／100ｇ、BET比表面積値が3000000cm2／
ｇ、比抵抗値が2.9×104Ω・cmであつて、平均粒
径が6.0μである多孔性シリカ微粉末を前記の各容
器に実施例１〜４におけると同量存在させた。
次いで更に実施例１〜４におけると同様にして
血液凝固時間、血清収量を測定し、血清分離状態
を観察した。表１の比較例１〜４の結果より明ら
かなようにいずれの血液検査用容器も血液凝固に
長時間を要し、内壁面への血餅付着が著しく血清
分離状態が不良であり、血清収量も僅かであつ
た。
比較例 ５〜８
実施例１〜４におけると同寸法のガラス製容器
（比較例５）、ポリエチレン製容器（比較例６）、
ポリプロピレン製容器（比較例７）、アクリル樹
脂製容器（比較例８）を夫々準備した。次いで実
施例１〜４におけると同様にしてアマニ油吸油量
が29ml／100ｇ、BET比表面積値が10000cm2／ｇ
比抵抗値が1.1×1012Ω・cmであつて、平均粒径が
5.8μである多孔性シリカ微粉末を前記の各容器に
実施例１〜４におけると同量存在させた。
次いで更に実施例１〜４におけると同様にして
血液凝固時間、血清収量を測定し、血清分離状態
を観察した。
表１の比較例５〜８の結果より明らかなように
いずれの血液検査用容器も血液凝固に長時間を要
し、内壁面への血餅付着が著しく血清分離状態も
不良であり、血清収量も僅かであつた。
比較例 ９〜12
実施例１におけると同寸法のガラス製容器、
（比較例９）、ポリエチレン製容器（比較例10）ポ
リプロピレン製容器（比較例11）、アクリル樹脂
製容器（比較例12）を夫々準備した。次いで実施
例１〜４におけると同様にして、アマニ油吸油量
が280ml／100ｇ、BET比表面積値が2000000cm2／
ｇ、比抵抗値が1.0×1013Ω・cmであつて、平均粒
径が5.7μである多孔性シリカ微粉末を前記の各容
器に実施例１〜４におけると同量存在させた。
次いで更に実施例１〜４におけると同様にして
血液凝固時間、血清収量を測定し、血清分離状態
を観察した。
表１の比較例９〜12の結果より明らかなように
いずれの血液検査用容器も血液凝固に長時間を要
し、内壁面への血餅付着が著しく血清分離状態も
不良であり、血清収量も僅かであつた。
【表】
【表】
【表】 DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION The present invention relates to a blood test container, and more particularly to a so-called spitz, a bottomed tubular container used for separating serum from a whole blood sample of a subject by centrifugation. In recent years, coupled with the remarkable progress in inspection technology,
Blood tests such as serum biochemical tests, serum immunological tests, and hematology tests have become widely used, and have come to greatly contribute to disease prevention and early diagnosis. Serum tests are the main body of blood tests, and the serum required for tests is usually obtained by coagulating blood collected in a blood test container and then centrifuging it to form blood clots with different specific gravities (fibrin and blood cells). separated from the mixed gel-like mass). Conventional blood test containers are made of glass and synthetic resins such as polystyrene, polymethyl methacrylate, and polyethylene, but these generally have the following drawbacks. One is that it takes a considerable amount of time for blood to coagulate after it is injected into a blood test container, making it impossible to carry out tests quickly, especially when tests need to be carried out urgently. has become a problem. Even glass blood test containers, which are said to have the shortest blood clotting time, require 40 to 60 minutes for blood to coagulate after being injected, and synthetic resin blood test containers... It takes 4 hours or more for the blood to coagulate. Another drawback of conventional blood test containers is that they require a method such as centrifugation to phase-separate coagulated whole blood into serum and blood clots with different specific gravities to collect pure serum for use in tests. , serum separability is generally poor. In other words, gel-like fibrin or blood clots tend to adhere firmly to the tube wall, which causes the problem of drastically reducing the amount of serum collected.Furthermore, fibrin tends to remain in the serum, which makes it difficult to perform serum biochemical tests. There were problems such as causing problems. Even glass blood test containers, which are said to have relatively good serum separation, frequently suffer from the above-mentioned problems when used at low temperatures of 17° C. or lower, especially during winter. In order to eliminate the above-mentioned drawbacks, the present inventors investigated the structure of substances that have the effect of promoting blood coagulation, and in particular, in order to most effectively activate blood coagulation factors and platelets, the present inventors investigated We carefully considered the material structure that should exist on the wall surface. As a result, it was discovered that when an inorganic substance used as an adsorbent and having certain properties is present on the inner wall surface, it significantly activates blood coagulation factors and causes rapid coagulation.The present invention is based on the present invention. I was able to complete it. The gist of the present invention is that the inner wall surface has a linseed oil absorption of 20 to 40 ml/100 g, a BET specific surface area value of 5000 to 30000 cm 2 /g, and a specific resistance value of 1×.
10 10 Fine silica powder with an average particle size of 10 μ or less and a property of 10 Ω・cm or less is added at a concentration of 1×10 -7 to 1×10 -3 g/cm 2
The blood test container is characterized in that it is present in an amount of . Next, the blood test container of the present invention will be explained in more detail. In the present invention, any of thermoplastic resins, thermosetting resins, modified natural resins, and glass can be used as the material for the blood test container, that is, the container. Examples of thermoplastic resins include polyethylene, polypropylene, and poly-4 methylpentene.
1. Polystyrene, polymethyl methacrylate,
polyvinyl chloride, polyethylene terephthalate,
Polybutylene terephthalate, styrene-acrylonitrile copolymer, styrene-maleic anhydride copolymer, styrene-acrylic acid copolymer, styrene-methyl methacrylate copolymer, ethylene-propylene copolymer, ethylene-acrylic acid copolymer , ethylene-acrylic acid ester copolymer, polyvinyl alcohol acetal, polyvinyl alcohol butyral, etc., and as the thermosetting resin, for example, unsaturated polyester resin, epoxy resin, epoxy-acrylate resin, etc. are used. Examples of modified natural resins used include cellulose acetate, cellulose propionate, cellulose acetate butyrate, ethyl cellulose, and ethyl chitin. As the glass, for example, silicate glasses such as soda lime glass, phosphosilicate glass, borosilicate glass, and quartz glass are used. In the present invention, fine silica powder is present as an adsorbent inorganic fine powder on the inner wall surface of a blood test container. Further, the adsorbent inorganic fine powder has a particle size of 50 μm or less, and preferably has an average particle size of 10 μm or less. An adsorbent inorganic material that is particularly effective in shortening blood coagulation time is silica, and porous silica containing 20% by weight or more of amorphous components is particularly effective. Such fine silica powder has the effect of promoting activation of blood coagulation factors and aggregation of platelets when it comes into contact with blood. However, the inventors have found that in order for fine silica powder to effectively exert its blood coagulation promoting effect, the linseed oil absorption amount, BET specific surface area value, and specific resistance value must be within certain ranges. It was later discovered. The linseed oil absorption amount and BET specific surface area value represent the degree of surface area of fine silica powder, and since the surface area is related to the degree of surface pores that fine silica powder has, the degree of surface pores is determined by the oil absorption amount and specific surface area. can be known. The silica in the present invention has a linseed oil absorption of 20 to 40 ml/100 g,
A material having a BET specific surface area value of 5,000 to 30,000 cm 2 /g is used. Linseed oil absorption is a value measured in accordance with Japanese Industrial Standard K-5101, and 1 to 5 g of silica fine powder sample is placed on a glass plate (approx.
250 x 250 x 5 mm), drop a small amount of linseed oil into the center of the sample from a biuret, and mix the whole thing thoroughly with a spatula each time, so that the sample suddenly becomes soft with one drop of linseed oil and sticks to the glass plate. The last point is the end point, and the amount of linseed oil used up to that point is determined, and the number of ml of linseed oil per 100 g of sample is taken as the oil absorption amount of linseed oil. BET specific surface area values are Brunauer−Emmett,
This value is obtained from the multilayer adsorption theory proposed by John Teller, and the theory is published in the Journal of
American Chemical Society 60・309 (1938);
59, 2682 (1937), etc.
The BET specific surface area value is calculated from the amount of gas adsorbed on the surface of fine silica powder, the equilibrium pressure at that time, and the saturated vapor pressure of the adsorbed gas. It refers to a value calculated by multiplying the average cross-sectional area of gas molecules, and nitrogen gas, oxygen gas, argon gas, methane gas, etc. are used as the adsorbed gas. According to this method, the surface area value including pores, which cannot be measured by measuring linseed oil absorption, can be measured. During blood coagulation, factor XII, or contact factor, is activated, and for this purpose, three substances, factor XII, prekallikrein, and polymeric kininogen, form a complex and are adsorbed on the surface of the foreign object. It is said that adsorption without one or two of these will not lead to activation.
By the way, when fine silica powder is used in hopes of promoting blood coagulation, if the surface area is extremely large, factor ,
The adsorption rate of high-molecular-weight kininogen will increase, in other words, the rate of formation of the three-part complex required for activation of factor XII will decrease, and the blood coagulation promoting effect will be abolished. Become.
Conversely, if the surface area of fine silica powder is too small,
The probability of adsorption of coagulation factors decreases, and a blood coagulation promotion effect cannot be expected. For this reason, the silica fine powder in the present invention has a linseed oil absorption capacity.
20~40ml/100g, BET specific surface area value is 5000~
It must have a surface area in the range of 30000 cm 2 /g. Further, the specific resistance value of the silica fine powder in the present invention is 1×10 10 Ω・cm or less, more preferably 5×10 4 Ω・cm.
cm or less is used. The specific resistance value is the reciprocal of electrical conductivity, and is the value at room temperature. When blood comes into contact with a foreign object, proteins such as albumin, globulin, and various blood coagulation factors immediately adsorb to the surface of the foreign object prior to the blood coagulation phenomenon, and the conformation change of the protein molecules at that time causes a change in the conformation of the protein molecules.
They have various effects on the subsequent biochemical reactions. In particular, the activation mechanism of blood coagulation factors, which is an enzymatic reaction, is greatly affected, and in some cases, the coagulation function is impaired. In addition, platelets adhering to adsorbed globulin and albumin that have undergone a large conformation change undergo abnormal melting and deformation, causing a phenomenon in which polymerized and precipitated fibrin chains strongly adhere to fine silica powder. If the latter phenomenon occurs in a container intended for serum collection, even if centrifugation is performed, blood clots and serum will not be separated, making it impossible to achieve the purpose. Changes in protein conformation occur as a result of various interactions between the silica fine powder and the protein, such as hydrophobic interactions, hydrogen bonding interactions, and electrostatic interactions. This can be alleviated by using fine silica powder, which has relatively high conductivity. In other words, dipole moment groups with a distribution corresponding to the polar groups of proteins are induced in the silica fine powder, but if the silica fine powder is nonconductive, it is conductive. The response becomes worse than that of the silica powder, and the potential distribution of the protein adsorbed on the surface and the potential distribution of the fine silica powder are inconsistent with each other, which causes local and non-uniform distortion of the protein. This leads to changes in conformation. Therefore, it is necessary for the silica fine powder to have conductivity in order to maintain consistency in the potential distribution between the protein and the silica fine powder and to prevent changes in protein conformation. For this reason, the silica fine powder used in the present invention has a specific resistance value of 1×10 10 Ω·cm or less. In order to have fine silica powder present on the inner wall surface of a blood test container, fine silica powder may be dispersed in a suitable binder or dispersion medium and then spray applied, or by coating or dipping. It may be made to exist by doing so. The amount of silica fine powder present on the inner wall surface of the container is 1×
A preferable range is 10 -7 g/cm 2 to 1×10 -3 g/cm 2 . This is because if the amount of fine silica powder present on the inner wall of the container is less than 1×10 -7 g/cm 2 , the contact between blood coagulation factors and fine silica powder will not be sufficient; This is because if the amount exceeds -3 g/ cm2 , the fine silica powder may peel off and enter the serum, interfering with blood tests. According to the blood test container of the present invention, blood coagulation factors are rapidly activated, the time required for blood coagulation is significantly shortened, and serum and blood clots can be easily separated, so that blood coagulation factors can be rapidly activated, and serum and blood clots can be easily separated. The problem of contamination with residual fibrin and blood clot components is also resolved, and furthermore, as the contraction of the blood clot components progresses sufficiently, the yield of serum can be significantly increased. Therefore, the blood test container of the present invention can be used as a blood collection tube for blood tests, a blood collection syringe for the purpose of serum separation,
It can be suitably used for applications such as serum separation containers. Examples 1 to 4 A glass container with dimensions of 17 mm in outer diameter, 15 mm in inner diameter, and 110 mm in height (Example 1), a polyethylene container with the same dimensions (Example 2), a polypropylene container (Example 3), Acrylic resin container (Example 4)
were prepared respectively. An ethanol dispersion containing 1.0% by weight of silica fine powder was spray applied to the inner wall of each container up to 100 mm from the bottom, and the ethanol was evaporated to dryness. This silica has a linseed oil absorption of 30ml/100g and a BET specific surface area of 12000.
cm 2 /g, specific resistance value of 2.6×10 4 Ω·cm, average particle size of 5.5 μm, and porous. Moreover, this silica contained 75% by weight of crystalline components and 25% by weight of amorphous components. Further, the amount of fine silica powder present was 1×10 −4 g/cm 2 . Immediately after the blood collection, 8 ml of blood collected from a normal healthy person was poured into each blood test container thus obtained, and the containers were left at 20°C. The time required until whole blood stopped flowing completely was measured as blood coagulation time, and blood coagulability was evaluated. Immediately after blood coagulation, centrifugation was performed at a rotation speed of 3000 rpm for 5 minutes, the state of serum separation was observed, and the supernatant serum was collected with a pipette.
The amount was defined as the serum yield. Examples 1 to 4 in Table 1
As is clear from the results, blood coagulation was rapid in all blood test containers, and the serum separation state was also very good. Comparative Examples 1 to 4 Glass containers with the same dimensions as in Examples 1 to 4 (Comparative Example 1), polyethylene containers (Comparative Example 2),
A container made of propylene (Comparative Example 3) and a container made of acrylic resin (Comparative Example 4) were prepared. Next, in the same manner as in Examples 1 to 4, the linseed oil absorption amount was 210 ml/100 g, and the BET specific surface area value was 3000000 cm 2 /
The same amount of porous silica fine powder having a specific resistance value of 2.9×10 4 Ω·cm and an average particle size of 6.0 μm as in Examples 1 to 4 was present in each of the above containers. Next, blood coagulation time and serum yield were further measured in the same manner as in Examples 1 to 4, and the state of serum separation was observed. As is clear from the results of Comparative Examples 1 to 4 in Table 1, all blood test containers require a long time for blood coagulation, and the blood clots adhere to the inner wall surface, resulting in poor serum separation. It was also slightly warm. Comparative Examples 5 to 8 Glass containers with the same dimensions as in Examples 1 to 4 (Comparative Example 5), polyethylene containers (Comparative Example 6),
A polypropylene container (Comparative Example 7) and an acrylic resin container (Comparative Example 8) were prepared. Next, in the same manner as in Examples 1 to 4, the linseed oil absorption amount was 29 ml/100 g, and the BET specific surface area value was 10000 cm 2 /g.
The specific resistance value is 1.1×10 12 Ω・cm, and the average particle size is
A fine porous silica powder having a diameter of 5.8 microns was present in each of the containers in the same amount as in Examples 1-4. Next, blood coagulation time and serum yield were further measured in the same manner as in Examples 1 to 4, and the state of serum separation was observed. As is clear from the results of Comparative Examples 5 to 8 in Table 1, all of the blood test containers required a long time for blood coagulation, and the blood clots adhered to the inner wall surface, and the serum separation state was poor. It was also slightly warm. Comparative Examples 9 to 12 Glass containers with the same dimensions as in Example 1,
(Comparative Example 9), a polyethylene container (Comparative Example 10), a polypropylene container (Comparative Example 11), and an acrylic resin container (Comparative Example 12) were prepared, respectively. Next, in the same manner as in Examples 1 to 4, the linseed oil absorption amount was 280 ml/100 g, and the BET specific surface area value was 2000000 cm 2 /
The same amount of porous silica fine powder having a specific resistance value of 1.0×10 13 Ω·cm and an average particle size of 5.7 μm as in Examples 1 to 4 was present in each of the above containers. Next, blood coagulation time and serum yield were further measured in the same manner as in Examples 1 to 4, and the state of serum separation was observed. As is clear from the results of Comparative Examples 9 to 12 in Table 1, all blood test containers require a long time for blood coagulation, and the blood clots adhere to the inner wall surface and the serum separation state is also poor. It was also slightly warm. [Table] [Table] [Table]