JPH0121755B2 - - Google Patents
Info
- Publication number
- JPH0121755B2 JPH0121755B2 JP59230898A JP23089884A JPH0121755B2 JP H0121755 B2 JPH0121755 B2 JP H0121755B2 JP 59230898 A JP59230898 A JP 59230898A JP 23089884 A JP23089884 A JP 23089884A JP H0121755 B2 JPH0121755 B2 JP H0121755B2
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- medium
- yeast
- note
- spores
- flocculating
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/01—Preparation of mutants without inserting foreign genetic material therein; Screening processes therefor
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02E—REDUCTION OF GREENHOUSE GAS [GHG] EMISSIONS, RELATED TO ENERGY GENERATION, TRANSMISSION OR DISTRIBUTION
- Y02E50/00—Technologies for the production of fuel of non-fossil origin
- Y02E50/10—Biofuels, e.g. bio-diesel
Landscapes
- Genetics & Genomics (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Zoology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Plant Pathology (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Description
産業上の利用分野
この発明は、優れた凝集性を有する新規酵母に
関するものである。
近年、石油代替エネルギーとして、石油化学に
よらずに得られる発酵アルコールが注目されてい
る。これはさとうきびやこれから採つた糖蜜、さ
つまいも、じやがいも、とうもろこしなどのセル
ロース質またはでん粉質を原料とし、これらを微
生物の働きによつて発酵させることにより製造さ
れる。
一般にアルコール発酵では、アルコールの生産
性は発酵槽内の菌体濃度に比例する。そこで発酵
槽内の菌体濃度を高める手段として、優れた凝集
性を有する酵母を用いることが考えられる。すな
わち、酵母が優れた凝集性を有していると、酵母
の沈降速度が速くなり、そのため固液分離が迅速
かつ容易になし得る。そして例えば回分発酵にお
いては、発酵液を単に静置するだけで菌体を沈降
堆積させることができ、発酵液と菌体の分離を容
易に行なつて菌体を再使用に供することができ
る。また連続発酵においては、小径の流動部とこ
れの上に連設された菌体沈降用の大径の沈降部と
これに内装された菌体沈降部材とを主体とした塔
型発酵槽を用いることにより、培地の供給量が増
大しても菌体を沈降させてその流出を防止するこ
とができる。このように凝集性を有する酵母を用
いると、凝集性を有しない酵母を用いた場合に比
べて多くの利点があり、そのため新規凝集性酵母
が要望せられている。
従来技術およびその問題点
従来から、上記の要望にこたえるべく、凝集性
酵母を取得する試みがなされて来たが、従来の酵
母は自然界から得られた野生株であつて、たとえ
ば土壌を探査し特定の土壌から分離したものであ
つた。
しかしこのように自然界から所望の菌株を見つ
け出して分離する作業は、はなはだ煩わしいもの
であり、また所望の菌株を採取できる確実性の乏
しいものであつた。
この発明は上記のような実情からなされたもの
であつて、優れた凝集性を有しかつ実験室で得る
ことのできる新規凝集性酵母を提供することを目
的とする。
問題点を解決するための手段
この発明は、
・ DF値4なる凝集性を有し、
・ ソーセージ形の形態を成し、
・ 培養条件によつては偽菌糸を形成する、
酵母サツカロマイセス・ウバルム
(Saccharomyces uvarum)AM―7(微工研菌
寄第7790号)(以下これをAM−7と記す)であ
る。
この明細書において、酵母の凝集性の程度
(Degree of flocculation)は、以下に示すギリ
ランド・テスト(Gilliland test)(European
Journal of Applied Microbiology and
Biotechnology第7巻、第227―234頁、1979年)
により求められたDF値で表示される。すなわち
供試菌株をYPG培地(注1)で30℃で16時間振
盪培養した後、菌体の沈降速度、沈降菌体の容量
および硬さを肉眼観察により対照菌株と比較し、
表1に示すDF値0から5の6段階で凝集の程度
を表示する。
INDUSTRIAL APPLICATION FIELD This invention relates to a novel yeast having excellent flocculating properties. In recent years, fermented alcohol, which can be obtained without petrochemistry, has been attracting attention as an energy alternative to petroleum. It is manufactured from sugar cane, molasses extracted from sugar cane, cellulosic or starchy materials such as sweet potatoes, potatoes, and corn, and by fermenting them using the action of microorganisms. Generally, in alcohol fermentation, alcohol productivity is proportional to the bacterial cell concentration in the fermenter. Therefore, as a means to increase the bacterial cell concentration in the fermenter, it is possible to use yeast that has excellent flocculating properties. That is, when yeast has excellent flocculating properties, the sedimentation rate of yeast becomes faster, and therefore solid-liquid separation can be performed quickly and easily. For example, in batch fermentation, the bacterial cells can be deposited by simply allowing the fermentation liquid to stand still, and the fermentation liquid and the bacterial cells can be easily separated and the cells can be reused. In continuous fermentation, a tower-type fermenter is used, which mainly consists of a small-diameter flow section, a large-diameter sedimentation section for bacterial cell sedimentation connected above the flow section, and a bacterial cell sedimentation member built into this. Thereby, even if the amount of culture medium supplied increases, the bacterial cells can be sedimented and their outflow can be prevented. As described above, the use of yeast that has flocculating properties has many advantages over the use of yeast that does not have flocculating properties, and therefore new flocculating yeasts are in demand. Prior art and its problems In the past, attempts have been made to obtain flocculating yeast in order to meet the above demands, but the conventional yeast is a wild strain obtained from the natural world. It was isolated from a specific soil. However, the task of finding and isolating a desired bacterial strain from the natural world is extremely troublesome, and there is little certainty that the desired bacterial strain can be collected. The present invention was made in view of the above-mentioned circumstances, and an object of the present invention is to provide a novel flocculating yeast that has excellent flocculating properties and can be obtained in a laboratory. Means for Solving the Problems This invention is directed to the cultivation of the yeast Satucharomyces ubarum (which: - has a flocculating property with a DF value of 4, - has a sausage-shaped morphology, and - forms pseudohyphae depending on the culture conditions). Saccharomyces uvarum) AM-7 (Feikoken Bibori No. 7790) (hereinafter referred to as AM-7). In this specification, the degree of flocculation of yeast is determined by the Gilliland test (European test) shown below.
Journal of Applied Microbiology and
Biotechnology Vol. 7, pp. 227-234, 1979)
The DF value calculated by is displayed. That is, after culturing the test bacterial strain in YPG medium (Note 1) at 30°C for 16 hours with shaking, the sedimentation rate of the bacterial cells, the volume and hardness of the sedimented bacterial cells were compared with the control strain by visual observation,
The degree of aggregation is displayed in six stages from DF value 0 to 5 shown in Table 1.
【表】【table】
【表】
AM―7は下記の菌学的性質を有する。すなわ
ちAM―7は、
・ DF値4なる凝集性を有し、液体培養では著
しい沈降性を示す。
・ 廃糖蜜(たとえば15%の全糖分を含む廃糖
蜜)を発酵し、7〜9vol%のエタノールを生成
する。
・ 寒天平板上で多少硬い集落を形成する。
・ 胞子形成能を有する。
AM―7の培地としては、炭素源、窒素源、無
機イオン、さらに必要ならば有機微量栄養素を含
有する通常の培地が使用できる。炭素源としては
グルコース、ガラクトース、フラクトース、シユ
ークロース、スターチ加水分解物、果汁、セルロ
ース分解物の炭水化物がよく用いられる。特に好
適な培地は、酵母エキス1g、ポリペプトン2
g、グルコース2g、蒸留水100mlよりなる培地
であり、この培地のPHは無調整で5.5である。
AM―7の培養は温度25〜40℃好ましくは30〜
37℃で、PH3.0〜7.0好ましくはPH3.5〜6.0で行な
われる。
つぎにAM―7の製造法について説明する。
AM―7は、凝集性を有しない酵母サツカロマ
イセス・ウバルム(Saccharomyces uvarum)
DF―0(微工研菌寄第7791号)(以下、単にDF―
0と記す)を胞子形成処理し、得られた胞子を変
異処理し、変異胞子を培養し、得られた集落から
レプリカ法によつて変異株を検出し、これを分離
することにより製造される。
親株であるDF―0は、凝集性を有する酵母サ
ツカロマイセス・ウバルム(Saccharomyces
uvarum)ATCC―26602(DF値=3)の自然突然
変異株であつて、突然変異の結果凝集性を消失し
たものである。また、AM―7、DF―0などの
サツカロマイセス・ウバルムに属する酵母は、下
記表2に示すごとき諸性質(発酵性および資化性
の有無、生理的性質)を有する。[Table] AM-7 has the following mycological properties. That is, AM-7: - Has a flocculating property with a DF value of 4, and exhibits significant sedimentation property in liquid culture. - Fermenting blackstrap molasses (for example, blackstrap molasses with 15% total sugar content) to produce 7-9 vol% ethanol.・ Forms somewhat hard colonies on the agar plate.・Has spore-forming ability. As a medium for AM-7, a conventional medium containing a carbon source, a nitrogen source, inorganic ions, and, if necessary, organic micronutrients can be used. Carbohydrates such as glucose, galactose, fructose, sucrose, starch hydrolyzate, fruit juice, and cellulose decomposition products are often used as carbon sources. A particularly suitable medium is yeast extract 1g, polypeptone 2g
g, glucose 2 g, and distilled water 100 ml, and the pH of this medium is 5.5 without adjustment. AM-7 is cultured at a temperature of 25-40℃, preferably 30-40℃.
It is carried out at 37° C. and at a pH of 3.0 to 7.0, preferably 3.5 to 6.0. Next, the manufacturing method of AM-7 will be explained. AM-7 is a non-flocculating yeast, Saccharomyces uvarum.
DF-0 (Feikoken Bibori No. 7791) (hereinafter simply DF-
0) is subjected to sporulation treatment, the resulting spores are subjected to mutation treatment, the mutant spores are cultured, the mutant strain is detected from the obtained colony by the replica method, and the mutant strain is isolated. . The parent strain DF-0 is derived from the flocculating yeast Saccharomyces ubarum (Saccharomyces ubarum).
uvarum) ATCC-26602 (DF value = 3), which has lost its aggregation properties as a result of mutation. Furthermore, yeast belonging to Satucharomyces ubarum, such as AM-7 and DF-0, have various properties (presence or absence of fermentability and assimilation, physiological properties) as shown in Table 2 below.
【表】
表2中、ラフイノースの発酵性は、結合部が切
断されて生じる構成単糖フラクトース、グルコー
スおよびガラクトースのうちいくつの糖を発酵で
きるかにより表示される。すなわち、発酵性1/3
とはフラクトースのみを発酵する場合を、発酵性
2/3とはフラクトースおよびグルコースを発酵す
る場合を、および発酵性3/3とはすべての構成単
糖を発酵する場合をそれぞれ意味する。
胞子形成処理は常法に従つてなされる。通常は
凝集性を有しない酵母をYPG寒天培地(注2)
で培養した後、胞子形成寒天培地(注3)に塗抹
する方法がとられる。また単独胞子由来の細胞を
得るには、酵母細胞壁溶解用の溶菌酵素を用いて
子のうを溶解した後、マイクロマニプユレータを
用いて胞子を分離する方法、または同じく溶菌酵
素で子のうを溶解した後、超音波処理により胞子
を分散させ、胞子を栄養寒天培地で培養する方法
がとられる。
また変異処理は、胞子形成処理により得られた
胞子または子のうに公知の突然変異処理、たとえ
ば紫外線、X線、γ線を照射する物理的方法、エ
チルメタンスルホネート、N―メチル―N′―ニ
トロ―N―ニトロソグアニジン、4―ニトロキノ
リン―N―オキサイドなどの変異誘起剤を接触し
た後に選択培地に生育する化学的方法のいずれに
よつても行なわれるが、エチルメタンスルホネー
トを用いる方法が特に好ましい。
変異株の検出はレプリカ法によつて行なう。す
なわち、変異胞子をYPG寒天培地のような完全
培地で培養することによつて得られた集落のプレ
ートをマスタープレートとし、殺菌した布地など
を用いて、同プレート上の集落を所定の栄養要素
を含まない最少培地のプレート上に移し、同培地
でこれを培養する。上記の栄養要素を必要とする
集落は最少培地のプレート上では発育しないの
で、このプレート上の集落とマスタープレート上
の集落とを比較することによつて、容易に栄養要
求性株を検出することができる。
検出した栄養要求性株をついでマスタープレー
トから釣菌して他の菌株から分離する。こうし
て、所望の凝集性を有する酵母を得る。
AM―7の製造過程における培地および培養条
件は、前述したAM―7自体の培地および培養条
件と同じである。
なお、サツカロマイセス(Saccharomyces)
属に属する酵母は下記のような菌学的性質を有す
ることが知られている(J.Lodder著「The
Yeasts,A Taxonomic Study」第2版、
North―Holland Publishing社発行、1970年)。
すなわち、この属に属する酵母は、
・ 多極出芽によつて増殖する。
・ 子のう胞子を形成する。
・ 硝酸塩を資化しない。
・ 真菌糸を欠くかまたはわずかしか形成しな
い。
・ 成熟子のうは容易に開裂しない。
・ 胞子の形状は球形ないし卵形である。
・ グルコースをよく発酵する。
・ 麦芽汁培地に皮膜を形成しない。
発明の効果
この発明は以上のとおり構成されているので、
優れた凝集性を有する新規酵母を実験室において
創製することができる。したがつて従来のように
自然界から所望の菌株を見つけ出して土壌から分
離するといつた煩わしい作業が必要でない上に、
所望の凝集性酵母を確実に製造することができ
る。そしてこうして得られた凝集性酵母を用いて
アルコール発酵を行なうことにより、冒頭で説明
したように回分発酵においても連続発酵において
もアルコール発酵槽内の菌体濃度を高く維持し
て、エタノールの生産性を大幅に向上することが
できる。
実施例
つぎにこの発明の実施例を示し、上記効果を実
証する。
a 製造例
凝集性を有しない酵母サツカロマイセス・ウバ
ルム(Saccharomyces uvarum)DF―0(微工
研菌寄第7791号)をYPG寒天培地(注2)で30
℃で24時間培養し、ついで胞子形成寒天培地(注
3)に塗抹し、30℃で3〜5日間培養を行なつ
た。こうして胞子を形成させた。
ついで胞子数が107個/mlになるように、子の
うを無菌水1mlに懸濁させ、集菌後リン酸緩衝液
(注4)で洗浄した。ついで子のうを溶菌酵素溶
液(注5)2ml中で30℃で1時間振盪して、子の
うを溶解させた。ついで集菌後、遊離した胞子を
無菌水1mlで洗浄してリン酸緩衝液3mlに懸濁さ
せた。
この懸濁液に変異誘起剤としてエチルメタンス
ルホネートを0.1ml添加し、懸濁液を30℃で2時
間振盪した。こうして胞子を変異処理した。つい
で集菌後、変異胞子をリン酸緩衝液0.2mlに懸濁
させ、懸濁液に5%チオ硫酸ナトリウム水溶液3
mlを添加して、懸濁液を30℃で10分間振盪した。
こうして変異誘起剤を中和した。
集菌後、変異胞子をリン酸緩衝液1mlで2回洗
浄して同緩衝液5mlに懸濁させ、懸濁液を氷冷下
に3分間超音波処理することにより変異胞子を懸
濁液中に分散させた。ついで集菌後、懸濁液を無
菌水で濃度1/105〜1/106に希釈し、希釈懸濁液
0.1mlをYPG寒天培地(注2)に塗抹して30℃で
48時間培養し、単独胞子由来の集落を得た。
こうして得られた集落のプレートをマスタープ
レートとしてレプリカ法により変異株の検出を行
なつた。すなわち、殺菌したベルベツト布地を用
いて、前記マスタープレートの集落を最小培地
(注6)にレプリカし、同培地で30℃で4日間培
養し、最小培地で増殖できない菌株をマスタープ
レートにおいて検出し、これを栄養要求性変異株
としてマスタープレートから釣菌した。
その結果マスタープレートの菌株40株のうち凝
集性に優れた株サツカロマイセス・ウバルム
(Saccharomyces uvarum)AM―7(微工研菌
寄第7790号)を得た。
b 凝集性の測定
こうして得られたAM―7について凝集性の程
度すなわちDF値を前述の方法により測定したと
ころ、DF値は4であつた。
c 使用例(アルコール連続発酵)
AM―7を用いてつぎの操作によりアルコール
連続発酵を行ない、そのアルコール発酵能を調べ
た。
発酵装置として、第1図に示すアルコール発酵
装置を用いた。これは実容積700mlのガラス製流
動層型発酵槽1を主体とし、温度制御およびPH制
御できるように構成されている。そして発酵原料
はポンプ2によつて同槽1の底部に供給され、反
応液はポンプ3で同槽の頂部から底部に戻され、
槽頂の菌体沈降部4から流出するようになつてい
る。
500ml坂口フラスコにおいてYPG培地(注1)
100mlを調整し、これを温度121℃で10分間殺菌し
た後、YPG寒天斜面培地(注2)に保存した
AM―7株を1白菌耳植菌し、30℃で1夜培養し
た。こうして活性なAM―7の前培養液を得た。
フイリピン産廃糖蜜培地(注7)700mlが入つ
ている発酵槽1に上記前培養液100mlを入れ、発
酵温度30℃で8時間回分培養を行なつた。ついで
上記廃糖蜜培地を発酵槽1に流量35ml/時(希釈
率=0.05時-1)で連続的に供給し、培地の供給量
を徐々に増加ていつて連続発酵を行なつた。
その結果、培地供給量を175ml/時(希釈率=
0.25時-1)に増加しても、AM―7の優れた凝集
性により、槽内に直径1〜4mmのフロツクが形成
されて、槽内の菌体濃度(注8)は47g/とい
う高い値に維持された。また産生アルコールは61
g/という高い濃度で得られ、アルコール生産
性(注9)は第2図に示すように16g/・時と
いう高い値に達した。
d 比較例
酵母としてAM―7の代わりにDF―0を用い、
その他の事項を上記使用例と同じにして、上記操
作を繰返した。
その結果、培地供給量が70ml/時(希釈率=
0.1時-1)を超えると、アルコール生産性(注9)
は第2図に示すように4g/・時から急激に低
下した。
e 培地および試薬
培地および試薬はそれぞれつぎのとおりであ
る。
(注1) YPG培地
酵母エキス 10g/
ポリペプトン 20g/
グルコース 20g/
(注2) YPG寒天培地
酵母エキス 10g/
ポリペプトン 20g/
グルコース 20g/
寒天 20g/
(注3) 胞子形成培地
酢酸ナトリウム 5g/
寒天 20g/
(注4) リン酸緩衝液
0.1Mリン酸緩衝液
PH=7.5
(注5) 溶菌酵素溶液
0.1Mリン酸緩衝液(PH7.5)にザイモリア
ーゼ20T(生化学工業社製)を0.05%溶か
した溶液2mlと、2―メルカプトエタノー
ル1.4μとの混合液
(注6) 最小培地
Difco―Yeast Nitrogen Base W/O
Amino acid(Difco社製) 6.7g/
グルコース 20g/
寒天 20g/
(注7) フイリピン産廃糖蜜培地
フイリピン産廃糖蜜 280g/
硫酸アンモニウム 2.8g/
ピロ亜硫酸カリウム 0.5g/
消泡剤 0.2g/
とよりなる混合液を硫酸でPH4.5に調整したも
の
(注8) 菌体濃度
発酵槽内の培養液を一定量とり、遠心分離
機で菌体を集め、洗浄後、これを温度800
℃で燃焼し、焼失した重量を菌体量として
算出したもの
(注9) アルコール生産性
培養液1当り1時間に生産されるアルコ
ールの重量(g)[Table] In Table 2, the fermentability of raffinose is expressed by how many sugars it can ferment out of the constituent monosaccharides fructose, glucose, and galactose produced by cleavage of the bond. That is, fermentability 1/3
"fermentability" means the case where only fructose is fermented, "2/3 fermentability" means the case where fructose and glucose are fermented, and "fermentability 3/3" means the case where all the constituent monosaccharides are fermented. Sporulation treatment is carried out according to conventional methods. Normally, yeast that does not have flocculating properties are grown on YPG agar medium (Note 2).
After culturing on a spore-forming agar medium (Note 3), a method is used. To obtain cells derived from single spores, the asci are lysed using a lytic enzyme for lysing the yeast cell wall, and then the spores are separated using a micromanipulator, or the asci are separated using a lytic enzyme. After dissolving the spores, the spores are dispersed by ultrasonication, and the spores are then cultured on a nutrient agar medium. The mutation treatment may also include physical methods of irradiating the spores or asci obtained by sporulation treatment with ultraviolet rays, X-rays, gamma rays, ethyl methanesulfonate, N-methyl-N'-nitro -N-nitrosoguanidine, 4-nitroquinoline-N-oxide, or any other chemical method that involves contact with a mutagenic agent followed by growth on a selective medium, but a method using ethyl methanesulfonate is particularly preferred. . Detection of mutant strains is performed by the replica method. That is, a plate of colonies obtained by culturing mutant spores on a complete medium such as YPG agar medium is used as a master plate, and the colonies on the same plate are treated with predetermined nutritional elements using sterilized cloth. Transfer it to a plate of minimal medium without containing it, and culture it in the same medium. Colonies that require the above nutritional elements do not grow on minimal medium plates, so auxotrophic strains can be easily detected by comparing the colonies on this plate with those on the master plate. Can be done. The detected auxotrophic strain is then picked from the master plate and separated from other strains. In this way, yeast having the desired flocculating properties is obtained. The medium and culture conditions in the manufacturing process of AM-7 are the same as those for AM-7 itself described above. In addition, Saccharomyces
Yeast belonging to the genus are known to have the following mycological properties (J. Lodder, “The
Yeasts, A Taxonomic Study” 2nd edition,
North-Holland Publishing, 1970). That is, yeast belonging to this genus: • Proliferate by multipolar budding. - Forms ascospores.・Do not assimilate nitrates. - Lack of or only a few mycelial threads are formed.・Mature asci do not cleave easily. - Spores are spherical or oval in shape. - Ferment glucose well. - Does not form a film on the wort medium. Effect of the invention Since this invention is configured as described above,
A new yeast with excellent flocculation properties can be created in the laboratory. Therefore, there is no need for the conventional troublesome work of finding the desired bacterial strain from nature and isolating it from the soil.
Desired flocculating yeast can be reliably produced. By carrying out alcohol fermentation using the flocculating yeast obtained in this way, the bacterial cell concentration in the alcohol fermenter can be maintained at a high level in both batch fermentation and continuous fermentation as explained at the beginning, increasing ethanol productivity. can be significantly improved. Examples Next, examples of the present invention will be shown to demonstrate the above effects. a Production example Saccharomyces uvarum DF-0 (Feikoken Bacteria No. 7791), which does not have flocculating properties, was grown on YPG agar medium (Note 2) for 30 minutes.
The cells were cultured at 30°C for 24 hours, then spread on a sporulation agar medium (Note 3), and cultured at 30°C for 3 to 5 days. In this way, spores were formed. Next, the asci were suspended in 1 ml of sterile water so that the number of spores was 10 7 /ml, and after collection, the cells were washed with phosphate buffer (Note 4). The ascus was then shaken in 2 ml of lytic enzyme solution (note 5) at 30°C for 1 hour to dissolve the ascus. After bacterial collection, the released spores were washed with 1 ml of sterile water and suspended in 3 ml of phosphate buffer. To this suspension, 0.1 ml of ethyl methanesulfonate was added as a mutagenic agent, and the suspension was shaken at 30°C for 2 hours. The spores were thus mutated. After collecting the bacteria, the mutant spores were suspended in 0.2 ml of phosphate buffer, and the suspension was added with 3 ml of 5% sodium thiosulfate aqueous solution.
ml was added and the suspension was shaken for 10 minutes at 30°C.
The mutagen was thus neutralized. After harvesting, the mutant spores are washed twice with 1 ml of phosphate buffer, suspended in 5 ml of the same buffer, and the suspension is sonicated for 3 minutes on ice to remove the mutant spores in the suspension. dispersed into. After collecting bacteria, dilute the suspension with sterile water to a concentration of 1/10 5 to 1/10 6 to obtain a diluted suspension.
Spread 0.1ml onto YPG agar medium (Note 2) and incubate at 30℃.
After culturing for 48 hours, colonies derived from single spores were obtained. Using the colony plate thus obtained as a master plate, mutant strains were detected by the replica method. That is, using sterilized velvet cloth, replicate the colony on the master plate onto a minimal medium (Note 6), culture it on the same medium at 30°C for 4 days, and detect strains that cannot grow on the minimal medium on the master plate, This was harvested from the master plate as an auxotrophic mutant strain. As a result, among the 40 strains on the master plate, a strain of Saccharomyces uvarum AM-7 (Feikoken Bacteria No. 7790) with excellent aggregation properties was obtained. b Measurement of cohesiveness The degree of cohesiveness, ie, DF value, of the thus obtained AM-7 was measured by the method described above, and the DF value was 4. c Usage Example (Continuous Alcohol Fermentation) Continuous alcohol fermentation was carried out using AM-7 according to the following procedure, and its alcohol fermentation ability was investigated. As the fermentation apparatus, an alcohol fermentation apparatus shown in FIG. 1 was used. This mainly consists of a glass fluidized bed fermenter 1 with an actual volume of 700 ml, and is configured to be able to control temperature and pH. Then, the fermentation raw material is supplied to the bottom of the tank 1 by pump 2, and the reaction liquid is returned from the top to the bottom of the tank by pump 3.
It is designed to flow out from the bacterial cell sedimentation section 4 at the top of the tank. YPG medium (Note 1) in a 500ml Sakaguchi flask
After adjusting 100 ml and sterilizing it at a temperature of 121°C for 10 minutes, it was stored in a YPG agar slant medium (Note 2).
One strain of AM-7 was inoculated into the ear and cultured at 30°C overnight. In this way, an active AM-7 preculture was obtained. 100 ml of the above preculture solution was placed in fermenter 1 containing 700 ml of Philippine molasses medium (Note 7), and batch culture was carried out at a fermentation temperature of 30° C. for 8 hours. Next, the molasses medium was continuously supplied to the fermenter 1 at a flow rate of 35 ml/hour (dilution rate = 0.05 hour -1 ), and the supply amount of the medium was gradually increased to carry out continuous fermentation. As a result, the medium supply amount was 175 ml/hour (dilution rate =
0.25 hours -1 ), AM-7's excellent flocculation ability forms flocs with a diameter of 1 to 4 mm in the tank, and the bacterial cell concentration (Note 8) in the tank is as high as 47 g/1. The value was maintained. Also, the alcohol produced is 61
The alcohol productivity (Note 9) reached a high value of 16 g/hr, as shown in Figure 2. d Comparative example Using DF-0 instead of AM-7 as yeast,
The above operation was repeated with other matters being the same as in the above usage example. As a result, the medium supply amount was 70ml/hour (dilution rate =
If it exceeds 0.1 h -1 ), alcohol productivity (Note 9)
As shown in FIG. 2, the amount rapidly decreased from 4 g/hour. e Medium and reagents The medium and reagents are as follows. (Note 1) YPG medium yeast extract 10g / Polypeptone 20g / Glucose 20g / (Note 2) YPG agar medium Yeast extract 10g / Polypeptone 20g / Glucose 20g / Agar 20g / (Note 3) Sporulation medium Sodium acetate 5g / Agar 20g / (Note 4) Phosphate buffer 0.1M phosphate buffer PH = 7.5 (Note 5) Lytic enzyme solution 0.05% Zymolyase 20T (manufactured by Seikagaku Corporation) was dissolved in 0.1M phosphate buffer (PH 7.5). Mixture of 2ml of solution and 1.4μ of 2-mercaptoethanol (Note 6) Minimal medium Difco-Yeast Nitrogen Base W/O
Amino acid (manufactured by Difco) 6.7g / Glucose 20g / Agar 20g / (Note 7) Philippine molasses medium Philippine molasses 280g / Ammonium sulfate 2.8g / Potassium pyrosulfite 0.5g / Antifoaming agent 0.2g / A mixed solution consisting of: adjusted to PH4.5 with sulfuric acid (Note 8) Bacterial cell concentration Take a certain amount of the culture solution in the fermenter, collect the bacterial cells with a centrifuge, wash them, and heat them at a temperature of 800 ml.
Calculated as the amount of bacterial cells burned at ℃ (Note 9) Weight of alcohol produced in 1 hour per 1 alcohol-producing culture solution (g)
第1図は連続発酵のフローシート、第2図は希
釈率とアルコール生産性の関係を示すグラフであ
る。
FIG. 1 is a flow sheet for continuous fermentation, and FIG. 2 is a graph showing the relationship between dilution rate and alcohol productivity.
Claims (1)
(Saccharomyces uvarum)AM―7(微工
研菌寄第7790号)。[Claims] 1. The yeast Saccharomyces uvarum AM, which has a flocculating property with a DF value of 4, - has a sausage-shaped morphology, and - forms pseudohyphae depending on culture conditions. 7 (Microtechnology Research Institute No. 7790).
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP59230898A JPS61108378A (en) | 1984-10-31 | 1984-10-31 | Novel agglutinative yeast and alcoholic fermentation process |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP59230898A JPS61108378A (en) | 1984-10-31 | 1984-10-31 | Novel agglutinative yeast and alcoholic fermentation process |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS61108378A JPS61108378A (en) | 1986-05-27 |
| JPH0121755B2 true JPH0121755B2 (en) | 1989-04-24 |
Family
ID=16915025
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP59230898A Granted JPS61108378A (en) | 1984-10-31 | 1984-10-31 | Novel agglutinative yeast and alcoholic fermentation process |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS61108378A (en) |
-
1984
- 1984-10-31 JP JP59230898A patent/JPS61108378A/en active Granted
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS61108378A (en) | 1986-05-27 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Tamaki | Genetic studies of ability to ferment starch in Saccharomyces: gene polymorphism | |
| Laluce et al. | Development of rapidly fermenting strains of Saccharomyces diastaticus for direct conversion of starch and dextrins to ethanol | |
| US11060056B2 (en) | Method of producing high amount of ethanol at high temperature by modified yeast strain Saccharomyces cerevisiae | |
| JPS58165786A (en) | Variant of clostridium acetobutylicum with high productivity of buthanol and acetone and preparation thereof | |
| Bechem et al. | Characterization of palm wine yeasts using osmotic, ethanol tolerance and the isozyme polymorphism of alcohol dehydrogenase | |
| Wickerham | Evidence of the production of extracellular invertase by certain strains of yeasts | |
| Theivendirarajah et al. | Microflora and microbial activity in palmyrah (Borassus flabellifer) palm wine in Sri Lanka | |
| JPH0121757B2 (en) | ||
| JPS6344880A (en) | Novel flocculating yeast, production thereof and alcoholic fermentation method using said yeast | |
| JPH0121755B2 (en) | ||
| CN110577904A (en) | A strain of Bacillus pumilus and its application in the preparation of botrytis cinerea fungicide | |
| Okagbue | A note on the leavening activity of yeasts isolated from Nigerian palm wine | |
| JPH0116478B2 (en) | ||
| JPH0116477B2 (en) | ||
| JPH0121754B2 (en) | ||
| JPH0259717B2 (en) | ||
| JPH0121758B2 (en) | ||
| Akpan et al. | Production of ethanol from cassava whey | |
| JPH0116476B2 (en) | ||
| JPS6365310B2 (en) | ||
| KR900003740B1 (en) | Saccharomyces cerevisiae Doosan No. 1, a Highly Concentrated Alcohol-producing Yeast, and Alcohol Fermentation Method Using the Same | |
| JP4393028B2 (en) | Novel yeast and its use | |
| CN113913310B (en) | Meiqi yeast strain derived from Tibetan saussurea involucrata and application thereof | |
| Olasupo et al. | Studies on an amylolytic strain of Saccharomyces cerevisiae isolated from yam tuber | |
| KR0148042B1 (en) | Heat-resistant yeast and alcohol fermentation method using the same |