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JPH0260267B2 - - Google Patents
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JPH0260267B2 - - Google Patents

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JPH0260267B2
JPH0260267B2 JP25497884A JP25497884A JPH0260267B2 JP H0260267 B2 JPH0260267 B2 JP H0260267B2 JP 25497884 A JP25497884 A JP 25497884A JP 25497884 A JP25497884 A JP 25497884A JP H0260267 B2 JPH0260267 B2 JP H0260267B2
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JP
Japan
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human protein
protein
human
calcium ions
activity
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JP25497884A
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JPS61133861A (en
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Kenji Wakabayashi
Yoshihiko Washimi
Yataro Ichikawa
Atsushi Mimuro
Nobuo Aoki
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Teijin Ltd
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Teijin Ltd
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Publication date
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    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/86Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving blood coagulating time or factors, or their receptors

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  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
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Description

【発明の詳細な説明】[Detailed description of the invention]

a 産業上の利用分野 本発明はヒト・プロテインCの活性の測定方法
に関するものである。更に詳しくは、ヒト・プロ
テインCに対するモノクローナル抗体を用いて、
ヒト・プロテインCを含む検体中のヒト・プロテ
インCの活性を測定する方法に関するものであ
る。 b 従来技術 プロテインCはビタミンK依存性血漿蛋白質す
なわちγ−カルボキシグルタミン酸含有蛋白の一
つであり、血管内皮細胞表層のトロンボモジユリ
ン存在下トロンビンにより活性されて[Esmon,
C.T & Owen,W.G:Proc.Natl.Acad.Sci.
USA.78:2249−2251(1981)参照]活性化プロ
テインC(APC)となる。活性化プロテインCは
セリンプロテアーゼの一種であり、血液凝固系の
補酵素である第因子(F.Fa)と第因
子(F.Fa)を分解し、強い抗凝固作用
[Suzuki.K.et.al.:J.Biol.Chem.258:1914−1920
(1983),Vehar,G.A.& Davie,E.W.:
Biochemistry.19:401−409(1980)参照]を示す
と共に血管壁からプラスミノーゲン・アクチベー
タを放出させ、線溶系を促進させる[Comp,P.
C.& Esmon,C.T:J.Clin.Invest.68:1221−
1228(1981)参照]ことが知られている。 さらにプロテインC欠損症は重度の血栓症を呈
することも報告されており、[Griffin,J.H.et
al:J.Clin.Invest.,68,1370−1373(1980),
Bertina,R.M.et al:Thromb.Haemostas.,48
1〜5(1982)]プロテインCは血液凝固線溶系の
重要な制御因子であることが明らかにされてい
る。 したがつてプロテインCの作用機構を明らかに
すること、また、プロテインCの血中における抗
原量、活性量を測定し、その動向を把握すること
ができれば、それは基礎医学、臨床医学の領域に
おいて非常に重要な意味を持つと考えられる。 一方モノクローナル抗体は単一の抗原決定基に
たいして特異的であり、かつ同一の特異性を有す
る抗体を安定的に産生できるという利点から抗原
蛋白質の機能および構造の解析、あるいは免疫測
定(EIA,RIA)に近時一般的に広く利用される
ようになつて来た。特に抗原蛋白質の機能解析、
分子解析には抗原蛋白の機能に関与する部位、ま
たは特殊な構造部位を認識する抗体を見出すこと
が有力な手段となり得る。 ヒト・プロテインCの構造は、分子量約41000
のH鎖と分子量約21000のL鎖がS−S架橋で結
合されており、H鎖にセリンプロテアーゼ活性部
位を有し、また、L鎖アミノ末端には、9個のカ
ルシウムイオン結合性アミノ酸、すなわち、γ−
カルボキシグルタミン酸(Gla)残基を含むGla
ドメインが存在することが知られている。 Glaドメインを有する血液凝固因子は、プロテ
インCを含め、第因子(プロトロンビン)、第
因子、第因子、第因子いずれもカルシウム
イオン(Ca++)存在下でGlaに依存した立体的構
造変化を生じることが知られており、この機構
は、血液凝固系発現の上で重要な役割を果してい
ることが知られている。 従来、ヒト・プロテインCのモノクロナール抗
体は鈴木らにより作成されたことが報告されてお
り[鈴木宏治 他:“血液と脈管”,15:171−174
(1984)参照]、この抗体はヒト・プロテインCの
抗原量の測定、活性の測定に利用されているが、
カルシウムイオン(Ca++)存在下で構造変化を
受けたヒト・プロテインCを認識するモノクロナ
ール抗体についての報告はまだなされていない。 そこで本発明者らは、プロテインCがカルシウ
ムイオン(Ca++)存在下で立体的構造変化を受
けることに着目し、カルシウムイオン(Ca++
の存在下で構造変化を受けたプロテインCを特異
的に認識するモノクローナル抗体について研究を
を行つたところ、カルシウムイオン(Ca++)の
非存在下ではヒト・プロテインCに対して認識せ
ず且つカルシウムイオン(Ca++)の存在下では
ヒト・プロテインCに対して特異的に認識するヒ
ト・プロテインCに対するモノクローナル抗体を
見出した。 本発明者らは、更に研究を進めたところ、この
新規なヒト・プロテインCに対するモノクローナ
ル抗体を用いると、ヒト・プロテインCを含む検
体中のヒト・プロテインCの活性が簡単にしかも
正確に測定し得ることを見出し本発明に到達し
た。 c 発明の構成 すなわち、本発明は、 (i) カルシウムイオン(Ca++)の非存在下では
ヒト・プロテインCに対して認識せず且つカル
シウムイオン(Ca++)の存在下ではヒト・プ
ロテインCに対して特異的に認識するヒト・プ
ロテインCに対するモノクローナル抗体を不溶
性担体表面上に結合させた吸着体に、測定すべ
きヒト・プロテインCを含む検体を、カルシウ
ムイオン(Ca++)の存在下に接触させ、 (ii) 次いで、トロンビン−トロンボモジユリン複
合体を加え、 (iii) しかる後、トロンビンを不活性化し、 (iv) 該吸着体上のヒト・プロテインC活性を合成
基質を用いて測定する、 ことを特徴とするヒト・プロテインC活性の測定
方法である。 本発明のモノクローナル抗体はヒト・プロテイ
ンCを認識した場合その活性を阻害しないもので
ある。 かかる本発明方法によれば、ヒト・プロテイン
Cを含む検体(例えばヒト血漿)中のプロテイン
C活性を簡単にしかも正確に測定することができ
るので、プロテインC欠損症の患者の発見、治療
等に役立つことが期待できる。 本発明方法に用いられる前記ヒト・プロテイン
Cに対するモノクローナル抗体は新規であり、本
発明者らによつて見出されたものであつて、その
モノクローナル抗体自体及びそれを産出するハイ
ブリドーマに関しては、既に出願した[特願昭59
−254186号(昭和59年12月3日出願),特開昭61
−134399号(昭和61年6月21日公開),発明の名
称“モノクローナル抗体,ハイブリドーマ,モノ
クローナル抗体の製造方法及びヒト・プロテイン
Cの分離方法”]。従つて本発明方法に用いられる
モノクローナル抗体は、その明細書に記載された
方法によつて得られるが、以下その詳細並びに本
発明方法について説明する。 本発明方法に用いられるのモノクローナル抗体
を産生するハイブリドーマ細胞はケーラーとミル
シユタインの方法[Kohler & Milstein,
Nature:256495−497(1975)]として知られた方
法によつて得られる。すなわち、ヒト・プロテイ
ンCでマウスを免疫した後、このマウスの脾臓細
胞をマウス・ミエローマ細胞と融合させ、得られ
たハイブリドーマ細胞はマイクロタイタープレー
トに固定されたヒト・プロテインCと反応する抗
体に対し、系統的に検査し、選択される。この際
に、カルシウムイオン(Ca++)存在下における
検査と、カルシウムイオン非存在下における検査
を同時に行い前者においてのみ陽性を示すハイブ
リドーマを選別することにより、目的とする抗体
を合成し分泌するハイブリドーマを単離すること
ができる。 本発明に使用されるモノクローナル抗体はかか
る新規なハイブリトーマ細胞が産生する産生物か
ら得られ、カルシウムイオン(Ca++)の存在下
におけるヒト・プロテインC分子上の特定の抗原
決定基に対して単一特異的に作用する。 本発明のモノクローナル抗体はその特性からヒ
ト・プロテインCの精製に利用する場合非常に有
利である。すなわち、不溶性担体に前記モノクロ
ーナル抗体を固定化し、カルシウムイオン
(Ca++)が存在する溶液中で血漿(カルシウムイ
オン存在下で凝固しないように調製したもの)ま
たは、他のヒト・プロテインCを含む原料、ある
いはそれらの粗抽出物、粗精製物および溶液から
ヒト・プロテインCを吸着・分離しカルシウムイ
オン(Ca++)存在下で洗浄後、溶液をカルシウ
ムイオンを含まないもの(例えばEDTAが存在
する溶液)に置き換えて、ヒト・プロテインCを
溶出することができる。この方法によれば、従来
の不溶化抗体による抗原蛋白質の精製のように、
過激な条件下(例えば、0.2Mグリシン塩酸ある
いは8M尿素のような)に蛋白質をさらすことな
く、穏和な条件下で精製を行うことができる。 また、ヒト・プロテインCその他のγ−カルボ
キシグルタミン酸含有蛋白質にはGlaを含まず、
Glaに依存する構造変化を受けない異常分子が存
在することが知られているが、前記モノクローナ
ル抗体を用いることにより、この異常分子の測定
が可能になると考えられる。すなわち、カルシウ
ムイオン(Ca++)の存在の有無に拘らず、ヒ
ト・プロテインCを認識する抗体を用いて免疫学
的手段(例えばEIA,RIA)により血漿その他の
試料中のヒト・プロテインC抗原量を測定し、更
に前記モノクローナル抗体を用いて、血漿、その
他の試料中のヒト・プロテインCをカルシウムイ
オン存在下で免疫学的手法(EIA,RIA)により
測定すれば、その測定値の差から、異常ヒト・プ
ロテインCの量を把握することができる。 次に本発明方法に用いるモノクローナル抗体を
作成する具体的方法について詳細に説明する。 A 抗原の単離・精製; 抗原に用いるヒト・プロテインCは鈴木らの方
法[Suzuki.K.et al,J.Biol.Chem.258:1914−
1920(1983)]によりヒト・血漿から単離・精製さ
れる。 B ヒト・プロテインCによるマウスの免疫; 雌Balb/Cマウスを用いることができるが他
の系(Strain)のマウスを使用してもよい。その
際、免疫計画、及びヒト・プロテインCの濃度は
十分な量の抗原刺戟を受けた、リンパ球が形成さ
れるよう選ばれるべきである。例えばマウスに
50μgのヒト・プロテインCを2週間間隔で腹腔
に3回投与の後、さらに30μgを静脈に投与す
る。最終免疫の数日後に融合の為に脾臓細胞をと
り出す。 C 細胞融合; 上記の如く免疫したマウスの脾臓を無菌的に取
り出し、そこから単細胞懸濁液を調製する。それ
らの脾臓細胞を適当なラインからのマウス骨髄腫
細胞と適当な融合促進剤の使用により、細胞融合
させる。脾臓細胞対、骨髄腫細胞の好ましい比率
は約20:1〜約2:1の範囲である。約108個の
脾臓細胞について0.5〜1.5mlの融合媒体の使用が
適当である。 細胞融合に用いるマウス骨髄腫細胞は、良く知
られているが、本発明では、P3−X63−Ag8−
U1細胞(P3−U1)[Yelton,D.E et al,
Current.Topics in Microbiology and
Immunology,81 1(1978)参照]を用いた。 好ましい融合促進剤としては、例えば、平均分
子量1000〜4000のポリエチレングリコールを有利
に使用できるが、この分野で知られている他の融
合促進剤を使用することもできる。本発明におい
ては、平均分子量1540のポリエチレングリコール
を用いた。 D 融合した細胞の選択; 別の容器内(例えばマイクロタイタープレー
ト)で未融合の脾臓細胞、未融合のマウス骨髄腫
細胞および融合したハイブリドーマ細胞の混合物
を未融合のマウス骨髄腫細胞を支持しない選択培
地で希釈し、未融合の細胞を死滅させるのに十分
な時間(約1週間)培養する。培地は、未融合の
マウス骨髄腫細胞を支持しないもの、(例えば
HAT培地)が使用される。この選択培地中で
は、未融合の骨髄腫細胞は死滅する。この未融合
の脾臓細胞は非腫瘍性細胞なので、ある一定期間
後(1週間後)死滅する。これらに対して融合し
た細胞は、骨髄腫の親細胞の腫瘍性と、親脾細胞
の性質を合わせ持つため、選択培地中で生存でき
る。 E 各容器中のヒト・プロテインC抗体の確認; かくして、ハイブリドーマ細胞が検出された
後、その培養上清を採取し、ヒト・プロテインC
に対する抗体について酵素免疫定量法(Enzyme
Linked Immunosobent Assay)によりスクリー
ニングする。この際、培養上清、酵素標識抗体溶
液および洗浄液に一定濃度のCaCl2を加えた条件
下の測定と、CaCl2を加えない条件下の測定の両
方を行い、前者に対してのみ陽性を示すハイブリ
ドーマを選択することにより、カルシウムイオン
非存在下では、ヒト・プロテインCを認識せず、
カルシウムイオン存在下で、ヒト・プロテインC
を認識する抗体を産生、分泌するハイブリドーマ
を選別することができる。 F 目的の抗体を産生するハイブリドーマ細胞の
クローン化と抗体の産生; 目的の抗体を産生するハイブリドーマ細胞を適
当な方法(例えば限界希釈法)でクローン化する
と、抗体は2つの異なつた方法で産生される。そ
の第1の方法によれば、ハイブリドーマ細胞を一
定時間、適当な培地で培養することにより、その
培養上清からそのハイブリドーマ細胞の産生する
モノクローナル抗体を得ることができる。第2の
方法によれば、ハイブリドーマ細胞は同質遺伝
子、又は半同質遺伝子を持つマウスの腹腔に注射
することができる。一定時間後の宿主動物の血液
中および腹水中より、そのハイブリドーマ細胞の
産生するモノクローナル抗体を得ることができ
る。 G ヒト・プロテインC含有混合物からのヒト・
プロテインCの分離; 本発明におけるモノクローナル抗体は、前記し
た如く、カルシウムイオン(Ca++)の非存在下
ではヒト・プロテインCに対して認識せず、且つ
カルシウムイオン(Ca++)の存在下ではヒト・
プロテインCに対して特異的に認識するという性
質を有しているので、この性質を利用して、ヒ
ト・プロテインCを含有している混合物(例えば
ヒト血漿など)からヒト・プロテインCを簡単に
分離することができる。 そのため、先ず前記ヒト・プロテインCに対す
るモノクローナル抗体を不溶性担体に固定化又は
結合させて吸着体を得る。その際使用される不溶
性担体としては、モノクローナル抗体を用いた測
定試薬又は測定用キツトの基材として一般的使用
されるものであればよい。例えば材質としてアガ
ロース,ポリアクリルアミド,セルロース,デキ
ストラン,またはマレイン酸ポリマー或いはこれ
らの混合物が好ましく用いられる。これら不活性
担体の形態としては、粉末状,粒状,ペレツト
状,ビーズ状,フイルム状,繊維状など種々の形
態であることができる。また一般に血漿、または
その分画成分の測定や分離に用いられる多数の凹
状のくぼみを有するプレート(例えば、通称マイ
クロタイタープレート)を用いることが有利であ
る。 前記吸着体を用い、これにヒト・プロテインC
含有混合物を、カルシウムイオン(Ca++)の存
在下に接触せしめると、該吸着体に固定化したモ
ノクローナル抗体とヒト・プロテインCとが結合
して、結果的にヒト・プロテインCが該吸着体に
結合する。かくすることによりヒト・プロテイン
Cを分離、除去することが可能である。 また前記の如くしてヒト・プロテインCを吸着
体に結合させ、出来れば残余の混合物を洗滌して
除去し、次いで吸着体に結合したヒト・プロテイ
ンCをカルシウムイオン(Ca++)を実質的に含
まない液体と接触又は洗滌すると、ヒト・プロテ
インCは該吸着体から離脱し、これを取得するこ
とによつて、ヒト・プロテインCを単離すること
ができる。 かくして前記本発明のモノクローナル抗体を用
いれば、ヒト・プロテインCを含有する混合物か
らのヒト・プロテインCの除去、該混合物からの
ヒト・プロテインCの分離及び精製、該混合物中
のヒト・プロテインCの含有量の測定などが極め
て簡単な操作で達成される。 H ヒト・プロテインC活性の測定; 前記の如くしてモノクローナル抗体を不溶性担
体表面上に結合させた吸着体に、ヒト・プロテイ
ンCを含有する検体を接触させるが、その際カル
シウムイオン(Ca++)を存在させることによつ
て、ヒト・プロテインCは該吸着体に結合する。 次いでこの吸着体にトロンビン−トロンボモジ
ユリン複合体をカルシウムイオン(Ca++)の存
在下に加えて吸着体に結合したヒト・プロテイン
Cを活性化する。その際トロンビンとしては牛ト
ロンビンを精製して、またトロンボモジユリンと
してはウサギ肺から分離されたものを使用するこ
とができる。 しかる後トロンビンを不活性化するが、その方
法としては、例えば、アンチトロンビン,ヘパ
リン,アプロチニン混合液を用いる。次に、吸着
体上のヒト・プロテインC活性を合成基質を用い
て測定する。その際用いられる合成基質として
は、ヒト・プロテインC活性により分解を受け、
ヒト・プロテインCの活性の例えば発色により判
定可能なものであればよく、その例としては、 [ここでValはD形の光学活性のバリン,Leu
はL形の光学活性のロイシン,ArgはL形の光学
活性のアルギニンを示す。Kabi Vitrum AB(ス
ウエーデン)社製のS−2266を用いた。] [ここで、PyorGluはピログルタミン,Proは
プロリン,Argはアルギニンを示しこれらは全て
L形の光学活性である。Kabi Vitrum AB(スウ
エーデン)社製のS−2366を用いた]などが挙げ
られる。 以下実施例を掲げ本発明を詳細に説明する。以
下実施例ではプロテインCをPCと略称すること
がある。 実験例 1 精製したヒト・PCを雌のBalb/Cマウス(4
週齢)2匹に対して14日間隔で4回免疫した。 初回の免疫はPBSに溶解した。50μgのヒト・
PCを等量のフロイントの完全アジユバント
(Complete Freund,s adjuvant)と混合し、
そのエマルジヨンを、腹腔内に投与した(0.5
mg/head)、2回目,3回目は、同じく50μgの
ヒト・PCをフロイントの不完全アジユバント
(Freund,s incomplete adjuvant)と混合し、
同じく腹腔内に投与した。最終免疫は30μgのヒ
ト・PCをPBS溶液のまま、マウス尾静脈から投
与した。最終免疫の3日後に免疫したマウスの脾
臓細胞を細胞融合に用いた。 免疫したマウスの脾臓細胞と、同系マウスの骨
髄腫細胞(P3U1)を約2:1〜約15:1の割合
で混合し、50%ポリエチレングリコール1540(和
光)を融合促進剤としてKohletとMilsteinの方法
に従い細胞融合を行つた。融合後の細胞は、1×
106cell/mlの細胞濃度となるように10%FCS←
RPMI−1640培地に懸濁し、96wellsマイクロプ
レート(Coster)に1ウエル当り100μずつ分
注した。 融合細胞は、CO2インキユベーター(5%
CO2,37℃)中で培養し、ヒポキサンチン;アミ
ノプテリン;チミジンを含む培地(HAT培地)
で培地交換を行い、HAT培地中で増殖させて、
脾臓細胞と、骨髄腫細胞から成るハイブリドーマ
のスクリーニングを行つた。 ハイブリドーマの培養上清中の抗体は抗原ヒ
ト・PCをコーテイングしたマイクロタイタープ
レートを用いELISA法により検出した。第2抗
体には、アルカリホスフアターゼ標識ウサギ抗マ
ウスIgG抗体を用い、カルシウムイオン存在下非
存在下におけるヒト・PCとの結合の違いを見る
ため、一方の培養上清には5mMCaCl2を添加した
TBS(0.02M Tris/HCl,0.14M NaCl,PH7.4)
またもう一方にはTBSを加えた。更に第2抗体
の希釈液、および洗浄液には、5mM CaCl2添加
TBS,0.05% Tween 20,0.02% NaN3また
はTBS,0.05% Tween 20,0.02% NaN3
使用した。 融合細胞をまいた合計541のウエルのうち523の
ウエルにコロニーの形成が認められ、このうち抗
体産生陽性ウエルは下記表−1に示すようにカル
シウムイオン存在下で44,カルウシムイオン非存
在下で32であつた。 これらの抗体産生陽性ウエルのうち12のウエル
につてい限界希釈法によるクローニングを2回繰
り返して行ない、13個のクローンを得た。得られ
たクローンは90%FCS−10%DMSO中に懸濁さ
せ液体窒素中に保存した。 各クローンの産生するモノクローナル抗体はク
ローンをBalb/Cマウス腹腔内で増殖させ、そ
の腹水からプロテインA−Sepharose 4Bカラム
を用いて精製した。
a. Industrial Application Field The present invention relates to a method for measuring the activity of human protein C. More specifically, using a monoclonal antibody against human protein C,
The present invention relates to a method for measuring the activity of human protein C in a sample containing human protein C. b. Prior Art Protein C is a vitamin K-dependent plasma protein, that is, a protein containing γ-carboxyglutamic acid, and is activated by thrombin in the presence of thrombomodulin on the surface layer of vascular endothelial cells [Esmon,
CT & Owen, WG: Proc. Natl. Acad. Sci.
USA. 78 :2249-2251 (1981)] becomes activated protein C (APC). Activated protein C is a type of serine protease that degrades factor factor (F.Fa) and coenzyme of the blood coagulation system, and has a strong anticoagulant effect [Suzuki.K.et. al.: J. Biol. Chem. 258 : 1914-1920
(1983), Vehar, GA & Davie, EW:
Biochemistry. 19 :401-409 (1980)] and releases plasminogen activator from the blood vessel wall, promoting the fibrinolytic system [Comp, P.
C. & Esmon, CT: J.Clin.Invest. 68 :1221−
1228 (1981)]. Furthermore, it has been reported that protein C deficiency causes severe thrombosis [Griffin, JHet
al: J.Clin.Invest., 68 , 1370-1373 (1980),
Bertina, RMet al: Thromb.Haemostas., 48
1-5 (1982)] Protein C has been shown to be an important regulator of the blood coagulation and fibrinolytic system. Therefore, if we can clarify the mechanism of action of protein C, measure the amount of antigen and activity of protein C in the blood, and understand their trends, this will be extremely important in the fields of basic and clinical medicine. is considered to have important meaning. On the other hand, monoclonal antibodies are specific for a single antigenic determinant, and have the advantage of being able to stably produce antibodies with the same specificity. It has recently become widely used. In particular, functional analysis of antigen proteins,
For molecular analysis, finding antibodies that recognize sites involved in the function of antigenic proteins or special structural sites can be a powerful means. The structure of human protein C has a molecular weight of approximately 41,000
The H chain and the L chain with a molecular weight of approximately 21,000 are connected by an S-S bridge, and the H chain has a serine protease active site, and the amino terminal of the L chain contains nine calcium ion-binding amino acids, That is, γ−
Gla containing carboxyglutamic acid (Gla) residues
It is known that the domain exists. Blood coagulation factors that have a Gla domain, including protein C, factor (prothrombin), factor 1, and factor all undergo Gla-dependent steric structural changes in the presence of calcium ions (Ca ++ ). It is known that this mechanism plays an important role in the expression of the blood coagulation system. Previously, it has been reported that a monoclonal antibody against human protein C was created by Suzuki et al.
(1984)], this antibody is used to measure the antigen amount and activity of human protein C.
There has been no report yet on a monoclonal antibody that recognizes human protein C that undergoes a structural change in the presence of calcium ions (Ca ++ ). Therefore , the present inventors focused on the fact that protein C undergoes a steric structural change in the presence of calcium ions (Ca ++ ).
We conducted research on a monoclonal antibody that specifically recognizes protein C, which undergoes a structural change in the presence of calcium ions (Ca ++ ). We have discovered a monoclonal antibody against human protein C that specifically recognizes human protein C in the presence of calcium ions (Ca ++ ). The present inventors conducted further research and found that using this novel monoclonal antibody against human protein C, the activity of human protein C in samples containing human protein C could be easily and accurately measured. The present invention was achieved by discovering that the present invention can be obtained. c. Structure of the Invention In other words, the present invention provides a method that (i) does not recognize human protein C in the absence of calcium ions (Ca ++ ) and does not recognize human protein C in the presence of calcium ions (Ca ++ ); A sample containing human protein C to be measured is placed on an adsorbent in which a monoclonal antibody against human protein C, which specifically recognizes protein C, is bonded to the surface of an insoluble carrier in the presence of calcium ions (Ca ++ ). (ii) then adding the thrombin-thrombomodulin complex, (iii) subsequently inactivating the thrombin, and (iv) quantifying human protein C activity on the adsorbent using a synthetic substrate. A method for measuring human protein C activity, characterized in that: The monoclonal antibody of the present invention does not inhibit the activity of human protein C when it recognizes it. According to the method of the present invention, protein C activity in a sample containing human protein C (for example, human plasma) can be easily and accurately measured, so it is useful for discovering and treating patients with protein C deficiency. I hope it will be helpful. The monoclonal antibody against human protein C used in the method of the present invention is new and was discovered by the present inventors, and an application has already been filed regarding the monoclonal antibody itself and the hybridoma that produces it. [Special request 1982]
−254186 (filed on December 3, 1982), JP-A-61
No. 134399 (published on June 21, 1985), title of the invention "Monoclonal antibody, hybridoma, method for producing monoclonal antibody, and method for separating human protein C"]. Therefore, the monoclonal antibodies used in the method of the present invention can be obtained by the method described in the specification, and the details thereof and the method of the present invention will be explained below. The hybridoma cells producing the monoclonal antibodies used in the method of the present invention are prepared according to the method of Kohler and Milstein [Kohler & Milstein,
Nature: 256 495-497 (1975)]. That is, after immunizing a mouse with human protein C, the spleen cells of this mouse are fused with mouse myeloma cells, and the resulting hybridoma cells are immunized with antibodies that react with human protein C immobilized on a microtiter plate. , systematically examined and selected. At this time, a test in the presence of calcium ions (Ca ++ ) and a test in the absence of calcium ions are conducted at the same time, and hybridomas that are positive only in the former are selected to identify hybridomas that synthesize and secrete the target antibody. can be isolated. The monoclonal antibodies used in the present invention are obtained from products produced by such novel hybridoma cells and are directed against specific antigenic determinants on human protein C molecules in the presence of calcium ions (Ca ++ ). Acts monospecifically. The monoclonal antibody of the present invention is very advantageous when used for the purification of human protein C due to its characteristics. That is, the monoclonal antibody is immobilized on an insoluble carrier, and the monoclonal antibody is immobilized in a solution containing calcium ions (Ca ++ ) containing plasma (prepared so as not to coagulate in the presence of calcium ions) or other human protein C. Human protein C is adsorbed and separated from raw materials, their crude extracts, crude purified products, and solutions, and after washing in the presence of calcium ions (Ca ++ ), the solution is purified with a solution that does not contain calcium ions (for example, in the presence of EDTA). human protein C can be eluted by replacing the solution with According to this method, unlike the conventional purification of antigen proteins using insolubilized antibodies,
Purification can be carried out under mild conditions without exposing the protein to extreme conditions (eg, 0.2M glycine-HCl or 8M urea). In addition, human protein C and other γ-carboxyglutamic acid-containing proteins do not contain Gla.
It is known that there are abnormal molecules that do not undergo Gla-dependent structural changes, and it is thought that the use of the monoclonal antibody will make it possible to measure these abnormal molecules. That is, human protein C antigen in plasma and other samples can be detected by immunological means (e.g. EIA, RIA) using antibodies that recognize human protein C, regardless of the presence or absence of calcium ions (Ca ++ ). If human protein C in plasma or other samples is measured by immunological methods (EIA, RIA) using the monoclonal antibody in the presence of calcium ions, the difference in the measured values can be determined. , the amount of abnormal human protein C can be determined. Next, a specific method for producing monoclonal antibodies used in the method of the present invention will be described in detail. A. Isolation and purification of antigen; Human protein C used as antigen was prepared by the method of Suzuki et al. [Suzuki.K.et al, J.Biol.Chem. 258 :1914-
1920 (1983)] and was isolated and purified from human plasma. B. Immunization of mice with human protein C; female Balb/C mice can be used, but mice of other strains may also be used. The immunization regimen and the concentration of human protein C should then be chosen so that a sufficient amount of antigen-stimulated lymphocytes are formed. For example, a mouse
50 μg of human protein C is administered intraperitoneally three times at two-week intervals, followed by an additional 30 μg intravenously. A few days after the final immunization, spleen cells are removed for fusion. C Cell fusion: The spleen of the mouse immunized as above is removed aseptically and a single cell suspension is prepared therefrom. The spleen cells are fused with mouse myeloma cells from an appropriate line using an appropriate fusion promoter. A preferred ratio of spleen cells to myeloma cells ranges from about 20:1 to about 2:1. It is appropriate to use 0.5-1.5 ml of fusion medium for about 10 8 splenocytes. Mouse myeloma cells used for cell fusion are well known, but in the present invention, P3-X63-Ag8-
U1 cells (P3−U1) [Yelton, DE et al,
Current.Topics in Microbiology and
Immunology, 81 1 (1978)] was used. As a preferred fusion promoter, for example, polyethylene glycol having an average molecular weight of 1000 to 4000 can be advantageously used, but other fusion promoters known in the art can also be used. In the present invention, polyethylene glycol having an average molecular weight of 1540 was used. D. Selection of fused cells; selection that does not favor unfused mouse myeloma cells by adding a mixture of unfused spleen cells, unfused mouse myeloma cells, and fused hybridoma cells in a separate container (e.g., a microtiter plate) Dilute with culture medium and culture for a sufficient time (about 1 week) to kill unfused cells. The medium should be one that does not support unfused mouse myeloma cells (e.g.
HAT medium) is used. In this selective medium, unfused myeloma cells die. Since these unfused spleen cells are non-tumor cells, they die after a certain period of time (one week). Cells fused to these cells have both the tumor properties of the parent cells of myeloma and the properties of the parent splenocytes, so they can survive in the selective medium. E. Confirmation of human protein C antibodies in each container; thus, after hybridoma cells are detected, the culture supernatant is collected and human protein C antibody is detected.
Enzyme immunoassay (Enzyme immunoassay) for antibodies against
Screening using Linked Immunosobent Assay). At this time, measurements are performed both under conditions where a certain concentration of CaCl 2 is added to the culture supernatant, enzyme-labeled antibody solution, and washing solution, and under conditions where CaCl 2 is not added, and only the former is positive. By selecting a hybridoma, it does not recognize human protein C in the absence of calcium ions,
Human protein C in the presence of calcium ions
Hybridomas that produce and secrete antibodies that recognize can be selected. F. Cloning of hybridoma cells that produce the antibody of interest and production of the antibody; When hybridoma cells that produce the antibody of interest are cloned using an appropriate method (e.g., limiting dilution method), antibodies can be produced in two different ways. Ru. According to the first method, monoclonal antibodies produced by hybridoma cells can be obtained from the culture supernatant by culturing hybridoma cells in an appropriate medium for a certain period of time. According to a second method, hybridoma cells can be injected into the peritoneal cavity of isogenic or semi-isogenic mice. Monoclonal antibodies produced by the hybridoma cells can be obtained from the blood and ascites of the host animal after a certain period of time. G Human protein C from human protein C-containing mixture
Separation of protein C: As mentioned above, the monoclonal antibody of the present invention does not recognize human protein C in the absence of calcium ions (Ca ++ ), and does not recognize human protein C in the presence of calcium ions (Ca ++ ). So human
Since it has the property of specifically recognizing protein C, this property can be used to easily extract human protein C from a mixture containing human protein C (such as human plasma). Can be separated. Therefore, first, a monoclonal antibody against human protein C is immobilized or bound to an insoluble carrier to obtain an adsorbent. The insoluble carrier used in this case may be one that is commonly used as a base material for measurement reagents or measurement kits using monoclonal antibodies. For example, agarose, polyacrylamide, cellulose, dextran, maleic acid polymer, or a mixture thereof is preferably used as the material. These inert carriers can be in various forms such as powder, granules, pellets, beads, films, and fibers. Furthermore, it is advantageous to use a plate having a large number of concave depressions (for example, commonly known as a microtiter plate), which is generally used for measuring or separating plasma or its fractionated components. Using the adsorbent, human protein C was added to it.
When the containing mixture is brought into contact with the presence of calcium ions (Ca ++ ), the monoclonal antibody immobilized on the adsorbent and human protein C bond, and as a result, human protein C is attached to the adsorbent. join to. In this manner, human protein C can be separated and removed. Alternatively, the human protein C bound to the adsorbent may be bound to the adsorbent, the residual mixture preferably washed away, and the human protein C bound to the adsorbent then substantially freed of calcium ions (Ca ++ ). When it comes into contact with or is washed with a liquid that does not contain the adsorbent, human protein C is separated from the adsorbent, and by obtaining this, human protein C can be isolated. Thus, by using the monoclonal antibody of the present invention, human protein C can be removed from a mixture containing human protein C, human protein C can be separated and purified from the mixture, and human protein C in the mixture can be removed. Measuring the content can be accomplished with extremely simple operations. H Measurement of human protein C activity; A sample containing human protein C is brought into contact with the adsorbent on which the monoclonal antibody is bound on the surface of an insoluble carrier as described above, and at this time calcium ions (Ca ++ ), human protein C binds to the adsorbent. Next, a thrombin-thrombomodulin complex is added to this adsorbent in the presence of calcium ions (Ca ++ ) to activate human protein C bound to the adsorbent. In this case, purified bovine thrombin can be used as thrombin, and thrombomodulin isolated from rabbit lung can be used. Thereafter, thrombin is inactivated using, for example, a mixed solution of antithrombin, heparin, and aprotinin. Next, human protein C activity on the adsorbent is measured using a synthetic substrate. The synthetic substrate used in this case is degraded by human protein C activity,
It is sufficient that the activity of human protein C can be determined, for example, by color development; examples thereof include: [Here, Val is D-type optically active valine, Leu
represents optically active leucine in the L form, and Arg represents optically active arginine in the L form. S-2266 manufactured by Kabi Vitrum AB (Sweden) was used. ] [Here, PyorGlu represents pyroglutamine, Pro represents proline, and Arg represents arginine, all of which have L-type optical activity. S-2366 manufactured by Kabi Vitrum AB (Sweden) was used]. The present invention will be described in detail below with reference to Examples. In the following examples, protein C may be abbreviated as PC. Experimental example 1 Purified human PC was introduced into female Balb/C mice (4
Two mice (age) were immunized four times at 14-day intervals. The first immunization was dissolved in PBS. 50μg human
Mix PC with an equal amount of Complete Freund's adjuvant;
The emulsion was administered intraperitoneally (0.5
mg/head), and for the second and third times, 50 μg of human PC was mixed with Freund's incomplete adjuvant.
It was also administered intraperitoneally. For the final immunization, 30 μg of human PC was administered as a PBS solution through the mouse tail vein. Spleen cells from mice immunized 3 days after the final immunization were used for cell fusion. Spleen cells from immunized mice and myeloma cells (P3U1) from syngeneic mice were mixed at a ratio of about 2:1 to about 15:1, and Kohlet and Milstein's spleen cells were mixed with 50% polyethylene glycol 1540 (Wako) as a fusion promoter. Cell fusion was performed according to the method. Cells after fusion are 1x
10% FCS to achieve a cell concentration of 10 6 cells/ml←
It was suspended in RPMI-1640 medium and dispensed into a 96-well microplate (Coster) in an amount of 100μ per well. The fused cells were incubated in a CO2 incubator (5%
Cultured in CO 2 , 37°C), and cultured in a medium containing hypoxanthine, aminopterin, and thymidine (HAT medium).
Change the medium and grow in HAT medium.
A hybridoma consisting of spleen cells and myeloma cells was screened. Antibodies in the hybridoma culture supernatant were detected by ELISA using a microtiter plate coated with the antigen human PC. An alkaline phosphatase-labeled rabbit anti-mouse IgG antibody was used as the second antibody, and 5mMCaCl 2 was added to one culture supernatant to see the difference in binding to human and PC in the presence and absence of calcium ions. did
TBS (0.02M Tris/HCl, 0.14M NaCl, PH7.4)
I also added TBS to the other side. Furthermore, 5mM CaCl2 was added to the dilution solution of the second antibody and the washing solution.
TBS, 0.05% Tween 20, 0.02% NaN3 or TBS, 0.05% Tween 20, 0.02% NaN3 were used. Out of a total of 541 wells seeded with fused cells, colony formation was observed in 523 wells, and among these, antibody-producing positive wells were found in 44 wells in the presence of calcium ions and 32 in the absence of calcium ions. It was hot. Cloning by limiting dilution method was repeated twice for 12 of these antibody-producing positive wells, and 13 clones were obtained. The obtained clones were suspended in 90% FCS-10% DMSO and stored in liquid nitrogen. The monoclonal antibodies produced by each clone were grown intraperitoneally in Balb/C mice and purified from the ascites using a Protein A-Sepharose 4B column.

【表】 実験例2 (精製したIgGの性質) マウス腹水から精製した各クローンのIgGにつ
いてサブクラス,ヒト・PC活性への影響L鎖あ
るいはH鎖への結合性を調べた。 サブクラスは、各クラス特異性の抗マウス抗血
清を用いて、オクタロニー法により決定した。ヒ
ト・PC活性への影響は、ヒト・PCにIgGをモル
比1:5で加えて4℃で一夜インキユベーシヨン
し、トロンビン−トロンボモジユリンコンプレツ
クスによりヒトPCを活性化し、その活性は次合
成基質の分解活性を測定することにより測定し
た。この合成基質としては [ここでVelはD形の光学活性のバリン,Leu
はL形の光学活性のロイシン,ArgはL形の光学
活性のアルギンを示す。Kabi Vitrum AB(スウ
エーデン)社製のS−2266を用いた]を使用し
た。L鎖、H鎖への結合性は、ヒト・PCを還元
条件で電気泳動し、ニトロセルロース膜及び
HRP標識Goat anti−mDuse IgGを用いたイム
ノブロツテイングを行つて判定した。 各性質について得られた結果を下記表−2に示
した。カルシウムイオン依存性抗体はいずれもL
鎖結合性であり、ヒト・PCの活性には影響を及
ぼさなかつた。
[Table] Experimental Example 2 (Properties of purified IgG) The IgG of each clone purified from mouse ascites was examined for subclass, influence on human PC activity, and binding to L chain or H chain. Subclasses were determined by the Ouchterlony method using anti-mouse antisera specific for each class. The effect on human PC activity was determined by adding IgG to human PC at a molar ratio of 1:5 and incubating it at 4°C overnight to activate human PC by thrombin-thrombomodulin complex. This was determined by measuring the decomposition activity of the next synthesized substrate. This synthetic substrate is [Here, Vel is D-type optically active valine, Leu
represents L-form optically active leucine, and Arg represents L-form optically active argine. S-2266 manufactured by Kabi Vitrum AB (Sweden)] was used. The binding to L chain and H chain was determined by electrophoresing human PC under reducing conditions and using nitrocellulose membrane and
Determination was performed by immunoblotting using HRP-labeled Goat anti-mDuse IgG. The results obtained for each property are shown in Table 2 below. All calcium ion-dependent antibodies are L
It was chain-binding and had no effect on human PC activity.

【表】 実験例3 (カルシウムイオンの影響) ヒト・PCと精製したIgGとの反応に及ぼすカ
ルシウムイオンの影響について検討した。 ヒト・PCをコーテイングしたELISA法におい
てカルシウムイオン依存性の抗体7B12及び10E12
を5mMCaCl2添加TBS−Tween(0.02M Tris/
HCl,0.14M NaCl,PH7.4 0.05%Tween20,
0.02%NaN3)またはTBS−Tweenで希釈してヒ
ト・PCと反応させアルカリホスフアターゼ標識
ウサギ抗マウスIgGを用いた発色から結合量を測
定すると、5mM CaCl2を添加したバツフアーで
希釈した場合には抗体濃度に依存したヒト・PC
との結合を示したが、CaCl2を添加しないバツフ
アーで希釈した場合には、抗体濃度を高くしても
結合は認められなかつた。その結集を下記表−3
に示した。 なお、カルシウムイオン非依存性の抗体6B10
−1及び10H11を用いて同様にカルシウムイオン
の影響について調べた結果も同表−3に併記して
示した。
[Table] Experimental Example 3 (Influence of Calcium Ions) The influence of calcium ions on the reaction between human PC and purified IgG was investigated. Calcium ion-dependent antibodies 7B12 and 10E12 in human PC coated ELISA method
TBS - Tween (0.02M Tris/
HCl, 0.14M NaCl, PH7.4 0.05% Tween20,
When diluted with 0.02% NaN 3 ) or TBS-Tween and reacted with human PC , the amount of binding was measured by color development using alkaline phosphatase-labeled rabbit anti-mouse IgG. Human and PC depend on antibody concentration.
However, when diluted with buffer without CaCl 2 , no binding was observed even at high antibody concentrations. The results are summarized in Table 3 below.
It was shown to. In addition, calcium ion-independent antibody 6B10
The results of a similar study on the influence of calcium ions using -1 and 10H11 are also shown in Table-3.

【表】【table】

【表】 実験例4 (カルシウムイオン濃度の影響) 前記実施例3におけるカルシウムイオン依存性
の抗体7B12及び10E12を用い、それらの濃度を一
定(1μg/ml)とし、抗体溶液中のカルシウム
イオン濃度を変化させたところ、ヒト・PCとの
結合はCaCl2濃度が高まるにつれて増加し、約
1mMの濃度で飽和となつた。その結果を下記表
−4に示した。またカルシウムイオン非依存性の
抗体6E2を用い同様にCaCl2濃度の変化の影響を
調べた結果を、下記表−5に示した。表−5の結
果からカルシウムイオン非存在性の抗体では、カ
ルシウムイオン濃度に影響なく、ヒト・PCとの
結合はほぼ一定の値を示していることがわかる。 なお、測定は、所定濃度のCaCl2を含むTBS−
Tweenで1μg/mlIgG溶液を調製し、100μを、
ヒト・PCをコーテイングしたwellに加えて行つ
た。インキユベーシヨン後のwellの洗浄にも各濃
度のCaCl2を含むTBS−Tweenを用いた。
[Table] Experimental Example 4 (Influence of calcium ion concentration) Using the calcium ion-dependent antibodies 7B12 and 10E12 from Example 3, their concentrations were kept constant (1 μg/ml), and the calcium ion concentration in the antibody solution was When the CaCl 2 concentration was varied, the binding to human PC increased as the CaCl 2 concentration increased, and approximately
Saturation was achieved at a concentration of 1mM. The results are shown in Table 4 below. Furthermore, the effects of changes in CaCl 2 concentration were similarly investigated using the calcium ion-independent antibody 6E2, and the results are shown in Table 5 below. From the results in Table 5, it can be seen that with antibodies in the absence of calcium ions, the binding to human PC remains almost constant without affecting the calcium ion concentration. Note that the measurement was performed using TBS containing a predetermined concentration of CaCl2 .
Prepare a 1μg/ml IgG solution with Tween, add 100μ
This was done in addition to wells coated with human PC. TBS-Tween containing various concentrations of CaCl 2 was also used to wash the wells after incubation.

【表】【table】

【表】【table】

【表】 実施例1 (ヒト・プロテインC活性の測定) 緩衝液(15mM Na2CO3,35mM NaHCO3
5mM CaCl2 PH=9.6)に溶解した濃度20μg/
mlのヒト・プロテインCを特異的に認識する前記
モノクローナル抗体の7B12と10E12のそれぞれを
マイクロタイタープレート上に4℃で一晩放置
し、固定化した。これに2%牛血清アルブミンを
含む上記緩衝液を加え37℃で2時間放置した後洗
浄液(50mMトリス緩衝液,0.15NaCl,5mM
CaCl2,0.05%Tween20)で5回洗浄した。 次にこのウエルに種々の濃度となるように上記
緩衝液で希釈した健常人血漿又は患者血漿を加
え、37℃で4時間放置した。その後前記洗浄液で
5回洗浄し、さらに緩衝液(0.1%牛血清アルブ
ミン、50mMトリス緩衝液,0.15M NaCl,5mM
CaCl2 PH7.4)に溶解した牛のトロンビン(2ユ
ニツト/ml)とウサギ肺のトロンボモジユリンか
ら形成された複合体100μを加え37℃で1時間
放置した。さらにこれに緩衝液(50mMトリス緩
衝液,0.1M NaCl,5mM CaCl2 PH8.0)に溶解
したアンチトロンビン,(5ユニツト/ml),ヘ
パリン(1ユニツト/ml),アプロチニン(10ユ
ニツト/ml)混合液50μを加え37℃で10分間放
置した。その後4mM濃度の合成基質溶液(S−
2266又はS−2366)50μを加えELISA
ANALYZER[東洋測器(株)製ETY−96]で405nm
の波長における1分間当りの吸光度変化を測定し
た。その結果を、合成基質としてS−2266を用い
た場合の検量線を第1図に、また合成基質として
S−2366を場合の検量線を第2図にそれぞれ示し
た。 またプロテインC抗原量について既知の正常人
血漿、プロテインC欠損ヘテロ接合体患者血漿及
びプロテインC欠損ホモ接合患者血漿を検体とし
て用いてプロテインC活性量を前記本発明方法に
従つて測定したところ、第3図に示す通りの結果
を得た。 これらの図面からヒト・プロテインC活性量と
吸光度変化との関係は、ほぼ直線関係になること
が理解される。従つてヒト・プロテインCの活性
を阻害せず、かつカルシウムイオン(Ca++)存
在下でのみヒト・プロテインCを認識するモノク
ローナル抗体を使用することによつて検体中のプ
ロテインC活性量を容易に測定することができ
る。 実験例 6 (1) 抗体の不溶性担体への固定化; ブロムシアン活性化セフアロース4B(フアルマ
シア・フアイン・ケミカルズ社製)の乾燥ゲル
0.5gを、G3グラスフイルター上で100mlの1mM
HClを用いて膨潤,洗浄し、更にカツプリングバ
ツフアー(0.5M NaClを含む0.1M NaHCO3
PH8.3)で洗浄した。カツプリングバツフアーを
吸引除去した後、直ちにゲルを抗体(6H2)のカ
ツプリングバツフアー溶液(3mg/ml)2ml中に
加えて懸濁させ、4℃で一夜ゆるやかに振とうし
た。次にゲルを1Mエタノールアミン−HCl(PH
8.0,2ml)中に移し、室温で2時間振とうして
残存する活性基をブロツクした。ブロツキング
後、抗体結合セフアロースゲルをグラスフイルタ
ー上で、0.5M NaClを含む0.1M酢酸バツフアPH
4.0,と0.5M NaClを含む0.1Mホウ酸バツフアー
PH8.0を交互に用いて洗浄した。液の280nmに
おける吸光度が0.01以下になつたところで、
5mM CaCl2,および1mMベンザミンを含む
0.05M Tris/HCl PH7.4で平衡化し、カラムに
充てんした。このようにして調製した抗ヒトPC
モノクローナル抗体(6H2)結合セフアロース
4Bカラムを用いてアフイニテイクロマトを行つ
た。 (2) プロテインCの抗体結合セフアロース4Bへ
の吸着,溶出; 血漿100mlに1M BaCl2溶液8mlを加え4℃で
1時間撹拌した。沈澱を遠心分離して集め5mM
BaCl2,5mMベンザミジンを含む0.1M NaClで
洗浄した後、15mlの5mMベンザミジンを含む
0.2M EDTA PH7.4で沈澱物を溶解し、バリウ
ム吸着分画を得た。このバリウム吸着分画を
1mMベンザミジンを含む0.05M Tris/HCl PH
7.4に透析し、終濃度5mMとなるようにCaCl2
液を加え、5mM CaCl2および1mMベンザミジン
を含む0.05M Tris/HClで平衡化した抗体
(6H2)結合カラムにかけた。5mM CaCl2
1mMベンザミジンおよび1M NaClを含む0.05M
Tris/HClで洗浄し、50mM EDTAおよび1mM
ベンザミジンを含む0.05M Tris/HClで溶出し
たところ、PCを含むシングルピークが得られた。
抗体セフアロース4B溶出分画中のPCはバリウム
吸着分画に比べ約52倍に精製されており、回収率
は約48.2%であつた。
[Table] Example 1 (Measurement of human protein C activity) Buffer solution (15mM Na 2 CO 3 , 35mM NaHCO 3 ,
Concentration 20μg/dissolved in 5mM CaCl 2 PH=9.6)
ml of each of the monoclonal antibodies 7B12 and 10E12, which specifically recognize human protein C, were left on a microtiter plate overnight at 4°C to be immobilized. The above buffer containing 2% bovine serum albumin was added to this, and the solution was left at 37°C for 2 hours, followed by a washing solution (50mM Tris buffer, 0.15NaCl, 5mM
It was washed five times with CaCl 2 , 0.05% Tween 20). Next, healthy human plasma or patient plasma diluted with the above buffer solution to various concentrations was added to the wells, and the wells were left at 37°C for 4 hours. After that, it was washed 5 times with the washing solution, and further washed with a buffer solution (0.1% bovine serum albumin, 50mM Tris buffer, 0.15M NaCl, 5mM
100 µ of a complex formed from bovine thrombin (2 units/ml) and rabbit lung thrombomodulin dissolved in CaCl 2 PH 7.4) was added and allowed to stand at 37°C for 1 hour. Furthermore, antithrombin (5 units/ml), heparin (1 unit/ml), and aprotinin (10 units/ml) dissolved in a buffer solution (50mM Tris buffer, 0.1M NaCl, 5mM CaCl 2 PH8.0) were added to this. 50μ of the mixture was added and left at 37°C for 10 minutes. After that, a synthetic substrate solution (S-
2266 or S-2366) Add 50μ ELISA
405nm with ANALYZER [ETY-96 manufactured by Toyo Sokki Co., Ltd.]
The change in absorbance per minute at the wavelength of was measured. The results are shown in FIG. 1 for a calibration curve using S-2266 as a synthetic substrate, and in FIG. 2 for a calibration curve using S-2366 as a synthetic substrate. In addition, when the amount of protein C activity was measured according to the method of the present invention using normal human plasma, protein C-deficient heterozygous patient plasma, and protein C-deficient homozygous patient plasma as specimens, the amount of protein C antigen was known. The results shown in Figure 3 were obtained. From these figures, it is understood that the relationship between the amount of human protein C activity and the change in absorbance is approximately linear. Therefore, by using a monoclonal antibody that does not inhibit human protein C activity and recognizes human protein C only in the presence of calcium ions (Ca ++ ), it is possible to easily determine the amount of protein C activity in a sample. can be measured. Experimental Example 6 (1) Immobilization of antibody on an insoluble carrier; Dry gel of bromcyan-activated Sepharose 4B (manufactured by Pharmacia Huain Chemicals)
0.5g to 1mM in 100ml on G3 glass filter
Swell with HCl, wash, and add a coupling buffer (0.1M NaHCO3 containing 0.5M NaCl).
PH8.3). Immediately after the coupling buffer was removed by suction, the gel was suspended in 2 ml of an antibody (6H2) coupling buffer solution (3 mg/ml) and gently shaken at 4°C overnight. The gel was then washed with 1M ethanolamine-HCl (PH
8.0, 2 ml) and shaken at room temperature for 2 hours to block remaining active groups. After blocking, the antibody-conjugated sepharose gel was placed on a glass filter in 0.1M acetate buffer containing 0.5M NaCl PH.
0.1M boric acid buffer containing 4.0, and 0.5M NaCl
Washing was performed alternately with pH 8.0. When the absorbance of the liquid at 280 nm becomes 0.01 or less,
Contains 5mM CaCl 2 and 1mM Benzamine
Equilibrate with 0.05M Tris/HCl PH7.4 and fill the column. Anti-human PC prepared in this way
Sepharose conjugated to monoclonal antibody (6H2)
Affinity chromatography was performed using a 4B column. (2) Adsorption and elution of protein C to antibody-bound Sepharose 4B; 8 ml of 1M BaCl 2 solution was added to 100 ml of plasma and stirred at 4°C for 1 hour. Centrifuge and collect the precipitate to 5mM
Wash with BaCl 2 , 0.1M NaCl containing 5mM benzamidine, then 15ml containing 5mM benzamidine.
The precipitate was dissolved with 0.2M EDTA PH7.4 to obtain a barium adsorption fraction. This barium adsorption fraction
0.05M Tris/HCl PH with 1mM benzamidine
7.4, added CaCl2 solution to a final concentration of 5mM, and applied to an antibody (6H2) binding column equilibrated with 0.05M Tris / HCl containing 5mM CaCl2 and 1mM benzamidine. 5mM CaCl2 ,
0.05M with 1mM benzamidine and 1M NaCl
Wash with Tris/HCl, 50mM EDTA and 1mM
When eluted with 0.05M Tris/HCl containing benzamidine, a single peak containing PC was obtained.
PC in the antibody Sepharose 4B elution fraction was about 52 times more purified than the barium adsorption fraction, and the recovery rate was about 48.2%.

【図面の簡単な説明】[Brief explanation of drawings]

第1図及び第2図はそれぞれ本発明の実施例に
おいて、検体中の血漿の含有率と吸光度変化(ヒ
ト・プロテイン活性)との関係を示したものであ
る。また第3図ヒト・プロテインC抗原量とプロ
テインC活性との関係を示したものであり、同第
3図中A群(3例)の結果は正常人血漿、B群
(6例)の結果はヘテロ接合体患者血漿及びC群
(1例)の結果はホモ接合体患者血漿の結果を示
したものである。
FIG. 1 and FIG. 2 respectively show the relationship between the plasma content in the sample and the change in absorbance (human protein activity) in Examples of the present invention. In addition, Figure 3 shows the relationship between the amount of human protein C antigen and protein C activity. In Figure 3, the results for group A (3 cases) are normal human plasma, and the results for group B (6 cases). The results for group C (one case) show the results for heterozygote patient plasma and the results for homozygote patient plasma.

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1 (i) カルシウムイオン(Ca++)の非存在下
ではヒト・プロテインCに対して認識せず且つ
カルシウムイオン(Ca++)の存在下ではヒ
ト・プロテインCに対して特異的に認識するヒ
ト・プロテインCに対するモノクローナル抗体
を不溶性担体表面上に結合させた吸着体に、測
定すべきヒト・プロテインCを含む検体を、カ
ルシウムイオン(Ca++)の存在下に接触させ、 (ii) 次いでトロンビン−トロンボモジユリン複合
体を加え、 (iii) しかる後トロンビンを不活性化し、 (iv) 該吸着体上のヒト・プロテインC活性を合成
基質を用いて測定する、 ことを特徴とするヒト・プロテインC活性の測定
方法。
[Claims] 1 (i) Does not recognize human protein C in the absence of calcium ions (Ca ++ ) and does not recognize human protein C in the presence of calcium ions (Ca ++ ) A sample containing human protein C to be measured is contacted in the presence of calcium ions (Ca ++ ) to an adsorbent in which a monoclonal antibody against human protein C that specifically recognizes human protein C is bound on the surface of an insoluble carrier. (ii) then adding a thrombin-thrombomodulin complex, (iii) subsequently inactivating thrombin, and (iv) measuring human protein C activity on the adsorbent using a synthetic substrate. A method for measuring human protein C activity, characterized by:
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