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JPH0322149B2 - - Google Patents
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JPH0322149B2 - - Google Patents

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JPH0322149B2
JPH0322149B2 JP23559083A JP23559083A JPH0322149B2 JP H0322149 B2 JPH0322149 B2 JP H0322149B2 JP 23559083 A JP23559083 A JP 23559083A JP 23559083 A JP23559083 A JP 23559083A JP H0322149 B2 JPH0322149 B2 JP H0322149B2
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JP
Japan
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medium
diatomaceous earth
acid
filamentous fungi
production
Prior art date
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Hachiro Ozaki
Koji Kubota
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Ajinomoto Co Inc
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Ajinomoto Co Inc
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Description

【発明の詳細な説明】[Detailed description of the invention]

本発明は糸状菌の培養法に関する。 従来より、珪藻土類に属する粉体を有用物質を
生産する目的で液体培地に添加して糸状菌を培養
した例はペニシリウム・クリソゲナムに属する糸
状菌を用いたペニシリンG醗酵に於て、菌体の固
定化の目的でセライトを10%という高濃度で添加
した例(D.I.C.Wang等、昭和57年度日本発酵工
学会講演要旨集p112)が知られているのみであ
り、低濃度の珪藻土類を液体培地に添加して糸状
菌を培養した例は未だ報告されていない。 一般に糸状菌を液体培地中で好気的に培養する
と菌糸はペレツト状(球状)又はパルプ状の塊に
なつて生育し、時にはこの塊が大きく成長するた
めに目的としている有用物質の生産が著しく低下
することが糸状菌を用いた有用物質生産に於ける
欠点の一つであつた。 本発明者等は制ガ剤、有機酸、抗生物質、プロ
テアーゼ、グルコアミラーゼ、グルコースオキシ
ダーゼなどの酵素類、L−アミノ酸、色素及び酵
素阻害剤等の有用物質の生産を目的として、糸状
菌に属するそれぞれの生産菌を珪藻土を含有する
培養液中で培養した結果、菌糸の塊が微細化され
ると同時に目的とする有用物質の生産が著しく促
進されることを見出し、本発明を完成するに至つ
た。 すなわち、本発明は珪藻土類に属する粉体8%
を越えない範囲で含有する液体培地中で糸状菌を
好気的に培養することを特徴とする糸状菌の培養
法に関する。 本発明に使用される珪藻土としては、古くから
過助剤として使用されているもので、製造会社
及び粒度によつて種々の商品名がある。例えば
Johns−Manville社製品では各種セライト
「Celite501〜577」、「ハイフロスーパーセル」及
び「フイルターセル」があり、昭和化学工業(株)製
品では、各種「ラジオライト」、「ラピツドフロ
ー」及び各種「トーライト」があり、白山工業(株)
製品では各種「ゼムライト」及び「ゼムライトス
ーパー」があり、Grefco社製品では各種「デイ
カライト」(「Dicalite」)があり、そしてEagle−
Picher社製品では各種「セラトム」(「Celatom」)
がある。使用する珪藻土は一般に入手出来るその
ままの形でよく(粉体)、培地に添加する前に培
地と別にして180〜200℃で乾熱滅菌するか、又は
通常の条件で蒸気滅菌するか、又は培地と共に蒸
気滅菌してもよい。 培地中への珪藻土の添加により胞子及び菌糸
が、珪藻土の粒子に付着し、これを核にして発芽
し、菌糸が成長している様子が観察され、更に珪
藻土に付着せず、しかも塊にもならずに成長して
いる様子も観察される。かくして珪藻土添加によ
り菌糸は大きな塊にならずに生育し、培地の撹拌
効率も改善され、増殖速度及び目的とする有用物
質の生産が促進されるという結果が得られる。 本発明において生産する有用物質とは糸状菌が
生産する有用物質であり、例えばミコフエノール
酸、サイクロスポリン等の制ガン剤、グルコン
酸、クエン酸、リンゴ酸、ピルビン酸、イタコン
酸、アラボアスコルビン酸、コウジ酸、アロイソ
クエン酸等の有機酸、ペニシリン、セフアロスポ
リンC等の抗生物質、プロテアーゼ、グルコアミ
ラーゼ、グルコースオキシダーゼ等の酵素類、L
−アミノ酸、色素類及びコンパクチン、酵素阻害
剤をあげることができる。 本発明において用いる糸状菌は糸状菌であれば
特に限定することはなく、例えばミコフエノール
酸及びコンパクチンを生産するペニシリウム・ブ
レビコンパクタム、ペニシリンC生産菌であるペ
ニシリウム、クリソゲナム、グルコースオキシダ
ーゼ生産菌であるペニシリウム・パープロゲナ
ム、セフアロスポリンC生産菌であるセフアロス
ポリウム・ポリアレウラム、アミラーゼ生産菌で
あるアスペルギルス・オリゼ、リゾープス・デレ
マ、プロテアーゼ生産菌であるアスペルギルス・
サイトイ、アスペルギルスフエニシス、クエン
酸、グルコン酸生産菌であるアスペルギルス・ニ
ガー、イタコン酸生産菌であるアルペルギルス・
テレウス等をあげることができる。具体的にはミ
コフエノール酸生産菌であるペニシリウム・ブレ
ビ・コンパクタム(Penicillium brevi−
compactum)、AJ117096、(FERM P−5693、
FERM BP−55)、ペニシリン生産菌であるペニ
シリウムクリソゲナム(P.chrysogenum)
ATCC10002、AJ7343、グルコースオキシダーゼ
生産菌であるペニシリウム・パープロゲナムNo.
778(P.purprogenum)AJ17045 FERM−P1846、
セフアロスポリンC生産菌としてセフアロスポリ
ウム・ポリアレラム(Cephalosporium
polyaleurum)ATCC20359 AJ6993、プロテア
ーゼ生産菌としてはアスペルギルス・フエニシス
(Aspergillusphenicis)ATCC14332 AJ17063、
グルコアミラーゼ及びクエン酸生産菌としてアス
ペルギルス・ニガー(A.niger)ATCC9642
AJ7172等が使用される。 本発明において使用する液体培地は珪藻土を添
加する以外は糸状菌が生育する液体培地であれば
どのような培地でも使用できる。例えばミコフエ
ノール酸生産用培地としては公知の培地、W.L.
Muth et al、Antimicrob、Agents
Chemtherap.、、321−327(1975)記載の培地
等が使用される。ペニシリン醗酵用培地としては
Lohnson等の合成培地(住木諭介“抗生物質”
上、p.177、1961)が使用される。セフアロスポ
リンC発酵用培地としては、例えばA.L.
DEMAIN、J.F.NEWKIRK、and D.
HENDLIN、.Bacteriol.85、339(1963)記載
の培地の改変培地(第4表)が使用される。グル
コースオキシダーゼ生産用培地としては、例えば
特公昭52−109公報記載の培地が使用される(第
6表)。プロテアーゼ、グルコアミラーゼ及びク
エン酸生産用培地としては第5表、第6表に記載
の培地が使用される。 珪藻土の添加量は8%を越えない範囲であり、
好ましくは0.2〜2%である。培養温度は有用物
質を生産する糸状菌が生育できる温度であればど
のような温度でも良いが、有用物質を生産する至
適培養温度を使用することが好ましい。それぞれ
の有用物質の生産に好適の条件で回転又は通気撹
拌培養する。回転速度は200〜250rpmである。珪
藻土の添加方法としては、単独又は二種以上の組
合せがある。 本発明の方法によつて生産される各種有用物質
は各々の公知の方法で定量及び採取することがで
きる。培養液中のミコフエノール酸及びクエン酸
は高速液体クロマトグラムにより分析定量を行
い、アスパラギン酸はバイオアツセイ法でペニシ
リンGの定量はStaphyloccus aureusを用いる国
家検定法、セフアロスポリンCはComamonas
ferrigenaの生育阻止円法を用いて行つた。グル
コアミラーゼ活性の測定は糖化測定法(“実験化
学講座”24巻、p272 1961)、プロテアーゼ活性
の測定はCasein−Folin呈色A法(萩原“酵素研
究法第2巻.p.237 1956年)、グルコースオキシ
ターゼの活性の測定はワールブルグマノメーター
を用いる検圧法で行なつた。 以上説明したように本発明は珪藻土を培地中に
添加して糸状菌の生産する有用物質を蓄積採取す
る方法に関したものであり、本発明の方法は珪藻
土の添加により有用物質の生産量を著しく高める
ものであり、かつ生産物採取後の培養液からの珪
藻土の回収が焼却等の方法により容易に回収でき
る点で工業的実用価値はきわめて大きい。 実施例 1 ペニシリウムブレビコンパクタムAJ117096
(FERM P−5693、FERM BP−55)を第1表
に示す天然斜面培地に接種し、27℃にて10日間培
養後、胞子を採取し、0.1Mリン酸緩衝液(PH
6.8)に懸濁し、その一定容量を第2表に示す培
地(300ml用三角フラスコに50ml培地張込み)に
接種し(約106個胞子/ml)、27℃にて12日間
226rpmで回転培養を行つた。第3表に示した珪
藻土を添加する場合は予め180℃で加熱滅菌した
後に1%になるように培地に添加した。培養後、
培養液を水酸化ナトリウム溶液によりPH10〜10.5
に調整し20分間150rpmで回転した後、東洋紙
No.2を用いて過して透明な液を得る。この
液中のミコフエノール酸を高速液体クロマトグラ
ムにより定量し、L−アスパラギン酸はバイオア
ツセイ法により定量した。菌の生育は培地全体
(50ml)の菌体を、約10mlの蒸留水で洗浄し、菌
体を紙と共に105℃で18時間乾燥し、全乾燥重
量より紙及び添加珪藻土重量を差引いた値で示
した。第3表にその結果を示した。
The present invention relates to a method for culturing filamentous fungi. Conventionally, an example of culturing filamentous fungi by adding powder belonging to diatomaceous earth to a liquid medium for the purpose of producing useful substances is in penicillin G fermentation using filamentous fungi belonging to Penicillium chrysogenum. The only known example is that celite was added at a high concentration of 10% for the purpose of immobilization (DICWang et al., 1986 Japanese Society of Fermentation Engineering Abstracts, p. 112), and a low concentration of diatomaceous earth was added to a liquid medium. There have been no reports of cases in which filamentous fungi have been cultured with the addition of these substances. Generally, when filamentous fungi are cultured aerobically in a liquid medium, the hyphae grow into pellet-like (spherical) or pulp-like lumps, and sometimes these lumps grow so large that the production of the desired useful substance is significantly reduced. One of the drawbacks in the production of useful substances using filamentous fungi is the decrease in the production of useful substances. The present inventors aim to produce useful substances such as anti-inflammatory agents, organic acids, antibiotics, enzymes such as protease, glucoamylase, and glucose oxidase, L-amino acids, pigments, and enzyme inhibitors, which belong to filamentous fungi. As a result of culturing each of the producing bacteria in a culture solution containing diatomaceous earth, the inventors discovered that the mycelial masses were made finer and at the same time, the production of the target useful substance was significantly promoted, leading to the completion of the present invention. Ivy. That is, the present invention uses 8% of powder belonging to diatomaceous earth.
The present invention relates to a method for culturing filamentous fungi, which is characterized by culturing filamentous fungi aerobically in a liquid medium containing no more than . The diatomaceous earth used in the present invention has long been used as a supernatant, and there are various trade names depending on the manufacturer and particle size. for example
Johns-Manville products include various Celites "Celite 501-577,""Hyflo Super Cell," and "Filter Cell," while Showa Kagaku Kogyo Co., Ltd. products include various "Radiolite,""RapidFlow," and various "Torite." There is Hakusan Kogyo Co., Ltd.
There are various products such as ``Zemlite'' and ``Zemlite Super,'' Grefco products include various ``Dicalite,'' and Eagle-
Picher's products include various ``Celatom'' products.
There is. The diatomaceous earth used may be in its commonly available form (powder) and may be dry heat sterilized at 180-200°C separately from the medium before being added to the medium, or steam sterilized under normal conditions, or Steam sterilization may be performed together with the culture medium. By adding diatomaceous earth to the medium, spores and hyphae adhere to the diatomaceous earth particles, germinate using these as nuclei, and the hyphae are observed to grow.Furthermore, they do not adhere to the diatomaceous earth and do not form clumps. It can also be observed that they are growing without any problems. Thus, by adding diatomaceous earth, the mycelia grow without forming large clumps, the stirring efficiency of the medium is improved, and the growth rate and production of the desired useful substance are promoted. The useful substances produced in the present invention are useful substances produced by filamentous fungi, such as mycophenolic acid, anticancer agents such as cyclosporin, gluconic acid, citric acid, malic acid, pyruvic acid, itaconic acid, and araboascorbic acid. , organic acids such as kojic acid and aloisocitric acid, antibiotics such as penicillin and cephalosporin C, enzymes such as protease, glucoamylase, and glucose oxidase, L
-Amino acids, pigments and compactin, enzyme inhibitors. The filamentous fungus used in the present invention is not particularly limited as long as it is a filamentous fungus, and includes, for example, Penicillium brevicompactum that produces mycophenolic acid and compactin, Penicillium and chrysogenum that produce penicillin C, and glucose oxidase-producing bacteria. Penicillium perprogenum, Cephalosporium polyalerum which is a cephalosporin C producing bacterium, Aspergillus oryzae which is an amylase producing bacterium, Rhizopus derema, and Aspergillus derma which is a protease producing bacterium.
Cytoi, Aspergillus phenisis, Aspergillus niger, which produces citric acid and gluconic acid, and Alpergillus, which produces itaconic acid.
We can mention Tereus et al. Specifically, Penicillium brevi compactum, a mycophenolic acid-producing bacterium,
compactum), AJ117096, (FERM P-5693,
FERM BP-55), Penicillium chrysogenum (P. chrysogenum), a penicillin-producing bacterium
ATCC10002, AJ7343, Penicillium perprogenum No. which is a glucose oxidase producing bacterium.
778 (P. purprogenum) AJ17045 FERM−P1846,
Cephalosporium polyallerum (Cephalosporium polyallerum) is a cephalosporin C-producing bacterium.
polyaleurum) ATCC20359 AJ6993, protease producing bacteria include Aspergillus phenicis (Aspergillus phenicis) ATCC14332 AJ17063,
Aspergillus niger (A. niger) ATCC9642 as a glucoamylase and citric acid producing bacterium
AJ7172 etc. are used. The liquid medium used in the present invention may be any liquid medium in which filamentous fungi can grow, except for the addition of diatomaceous earth. For example, a well-known medium for producing mycophenolic acid, WL
Muth et al, Antimicrob, Agents
The culture medium described in Chemtherap., 8 , 321-327 (1975) is used. As a medium for penicillin fermentation
Synthetic medium of Lohnson et al. (Yusuke Sumiki “Antibiotics”)
above, p. 177, 1961) is used. As a medium for cephalosporin C fermentation, for example, AL
DEMAIN, JFNEWKIRK, and D.
HENDLIN, J. A modified medium (Table 4) of the medium described in Bacteriol. 85 , 339 (1963) is used. As the culture medium for producing glucose oxidase, for example, the culture medium described in Japanese Patent Publication No. 109/1982 is used (Table 6). As the culture medium for protease, glucoamylase and citric acid production, the media listed in Tables 5 and 6 are used. The amount of diatomaceous earth added does not exceed 8%,
Preferably it is 0.2 to 2%. The culture temperature may be any temperature as long as the filamentous fungus that produces the useful substance can grow, but it is preferable to use the optimal culture temperature that produces the useful substance. Culture is carried out with rotation or aeration under conditions suitable for the production of each useful substance. The rotation speed is 200-250 rpm. Diatomaceous earth can be added either singly or in combination. Various useful substances produced by the method of the present invention can be quantified and collected by each known method. Mycophenolic acid and citric acid in the culture solution were analyzed and quantified using high-performance liquid chromatography, aspartic acid was determined using the bioassay method, penicillin G was determined using the national assay method using Staphyloccus aureus, and cephalosporin C was determined using Comamonas.
ferrigena growth inhibition circle method was used. Glucoamylase activity was measured using the saccharification measurement method (Jikken Kagaku Koza, Vol. 24, p. 272, 1961), and protease activity was measured using the Casein-Folin color A method (Hagiwara, Enzyme Research Methods, Vol. 2, p. 237, 1956). The activity of glucose oxidase was measured by a pressure detection method using a Warburg manometer.As explained above, the present invention relates to a method for accumulating and collecting useful substances produced by filamentous fungi by adding diatomaceous earth to a culture medium. The method of the present invention significantly increases the production amount of useful substances by adding diatomaceous earth, and is industrially suitable in that diatomaceous earth can be easily recovered from the culture solution by incineration or other methods after harvesting the product. Its practical value is extremely large.Example 1 Penicillium brevicompactum AJ117096
(FERM P-5693, FERM BP-55) were inoculated onto the natural slant medium shown in Table 1, and after culturing at 27°C for 10 days, the spores were collected and added to 0.1M phosphate buffer (PH
6.8) and inoculated a certain volume of it into the medium shown in Table 2 (50 ml of medium in a 300 ml Erlenmeyer flask) (approximately 10 6 spores/ml), and incubated at 27°C for 12 days.
Rotary culture was performed at 226 rpm. When diatomaceous earth shown in Table 3 was added, it was sterilized by heating at 180° C. and then added to the medium at a concentration of 1%. After culturing,
Adjust the culture solution to PH10-10.5 with sodium hydroxide solution.
After adjusting and rotating at 150 rpm for 20 minutes, the Toyo paper
Pass through No. 2 to obtain a clear liquid. Mycophenolic acid in this liquid was determined by high performance liquid chromatography, and L-aspartic acid was determined by bioassay method. Bacterial growth was determined by washing the entire culture medium (50 ml) of bacterial cells with approximately 10 ml of distilled water, drying the bacterial cells together with paper at 105℃ for 18 hours, and subtracting the weight of paper and diatomaceous earth from the total dry weight. Indicated. Table 3 shows the results.

【表】【table】

【表】【table】

【表】 セライト535、セライト545及びフイルターセル
を添加した場合、いずれもミコフエノール酸及び
L−アスパラギン酸の蓄積は著しく増加した。一
方菌体の生育の程度は無添加の場合とは有意差は
なかつたが、ペレツトの大きさはこれらの添加に
よつて微細化された。 実施例 2 実施例1で示した方法に従つてペニシリウムブ
レビコンパクタムAJ117096(FERM P−5693、
FERM BP−55)を種々の濃度のセライト545を
含む第2表に示す培地で27℃12日間226rpmで回
転培養を行つた結果を第4表に示した。セライト
545を0.4〜8%添加によつてミコフエノール酸蓄
積は著しく促進された。
[Table] When Celite 535, Celite 545, and Filter Cell were added, the accumulation of mycophenolic acid and L-aspartic acid significantly increased in all cases. On the other hand, although there was no significant difference in the degree of bacterial growth compared to the case without the addition, the size of the pellets became finer due to these additions. Example 2 Penicillium brevi compactum AJ117096 (FERM P-5693,
Table 4 shows the results of rotary culture of FERM BP-55) at 27°C for 12 days at 226 rpm in the medium shown in Table 2 containing various concentrations of Celite 545. Celite
Mycophenolic acid accumulation was significantly promoted by addition of 0.4 to 8% of 545.

【表】 実施例 3 実施例1で示した方法に従つて、第1表の培地
に生育したペニシリンGの生産菌のペニシリウ
ム・クリンゲナムATCC10002、AJ7343、セフア
ロスポリンC生産菌であるセフアロスポリウム・
ポリアレウラムATCC20359、AJ6993、プロテア
ーゼ生産菌であるアスペルギルス・フエニシス
ATCC14332、AJ17063、グルコアミラーゼ及び
クエン酸生産菌であるアスペルギルス・ニガー
ATCC9642、AJ7172、及びグルコースオキシダ
ーゼ生産菌であるペニシリウム・パープロゲナム
FERM−P1846、AJ17045菌糸及び胞子の懸濁液
を、第5、6、7表に示したそれぞれの生産培地
(300ml三角フラスコに50ml培地張込み)に接種
し、27℃で回転培養(226rpm)を行つた。培養
時間はペニシリンG、セフアロスポリンC、グル
コアミラーゼ生産の場合は5日間、プロテアーゼ
生産の場合は4日間、グルコースオキシダーゼ生
産の場合は6日間、クエン酸生産の場合は10日間
培養した。培養液中の各生産物の蓄積量は上記
した方法によつて測定した。これらの生産菌を珪
藻土存在下及び非存在下でのそれぞれの蓄積量を
測定した結果を第8表に示した。
[Table] Example 3 According to the method shown in Example 1, penicillin G producing bacteria Penicillium clingenum ATCC10002 and AJ7343 were grown in the medium shown in Table 1, and cephalosporin C producing bacteria Cephalosporium
Polyaleurum ATCC20359, AJ6993, Aspergillus feinisis, a protease producing bacterium
ATCC14332, AJ17063, glucoamylase and citric acid producing bacterium Aspergillus niger
ATCC9642, AJ7172, and Penicillium perprogenum, a glucose oxidase-producing bacterium
Suspensions of FERM-P1846 and AJ17045 mycelia and spores were inoculated into the respective production media shown in Tables 5, 6, and 7 (50 ml medium filled in a 300 ml Erlenmeyer flask), and cultured by rotation at 27°C (226 rpm). I went there. The culture time was 5 days for penicillin G, cephalosporin C, and glucoamylase production, 4 days for protease production, 6 days for glucose oxidase production, and 10 days for citric acid production. The amount of each product accumulated in the culture solution was measured by the method described above. Table 8 shows the results of measuring the amounts of these producing bacteria in the presence and absence of diatomaceous earth.

【表】【table】

【表】【table】

【表】【table】

【表】【table】

【表】 使用した珪藻土のいずれの場合も セライト545で、1%になる様にそれぞれの生
産培地に添加した。いずれの場合もセライト添加
によつて蓄積増加がみられた。一方菌糸のペレツ
トは全般的にセライト添加によつて微細化され
た。
[Table] In all cases of diatomaceous earth used, Celite 545 was added to each production medium at a concentration of 1%. In both cases, an increase in accumulation was observed with the addition of celite. On the other hand, the mycelial pellets were generally refined by the addition of Celite.

Claims (1)

【特許請求の範囲】[Claims] 1 珪藻土類に属する粉体を8%を越えない範囲
で含有する液体培地中で糸状菌を好気的に培養す
ることを特徴とする糸状菌の培養法。
1. A method for culturing filamentous fungi, which comprises culturing filamentous fungi aerobically in a liquid medium containing not more than 8% of powder belonging to diatomaceous earth.
JP23559083A 1983-12-14 1983-12-14 Culture of mold Granted JPS60126076A (en)

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