JPH0338824B2 - - Google Patents
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Description
〔産業上の利用分野〕
この発明は、組成物100g当り5mg以上のイノ
シトールトリホスフエート(IP3)を含有する食
品組成物の製造方法、及びこのような量のIP3を
含有する食品組成物に関する。
〔従来の技術〕
都市化の多くの悪い影響、例えば重金属や照射
のごとき危険材料の導入により惹起される環境的
危険を防止する必要性が増加している。
さらに、健康食品や栄養剤の開発によつて喫煙
や他の悪習慣の害を防止する必要性が増加してい
る。
1900年にすでに、複数の研究者が有機リン化合
物であるフイチン酸、すなわち1,2,3,4,
5,6−ヘキサキス(ジヒドロゲンホスフエー
ト)ミオ−イノシトール(さらに、時としてイノ
シトール五リン酸とも称される)の植物中での発
見を報告した。異る植物中のフイチン酸の含量は
相当異る。穀物中の含量は、若干の例外はある
が、通常約0.5〜2%である。精白米はわずかに
0.1%のレベルを有するが、玄米は2.2%という多
くのフイチン酸を含有する。豆類は約0.4〜2%、
油植物は約2〜5%、そして花粉は0.3〜2%を
含有する。植物中のフイチン酸の含量は生育期間
中に変化する。この含量はまた、特に気候により
影響される。
文献中には、少数の植物中にイノシトールペン
タホスフエート(IP5)及びイノシトールテトラ
ホスフエート(IP4)が存在することを報告して
いる。さらに、穀物の発芽に際してIP6より低級
なリン酸誘導体が見出されることが知られてい
る。例えば、発芽の際の最終生成物はイノシトー
ルとホスフエートである。IP6の使用は幾つかの
科学刊行物に記載されている。これらの論文の著
者の多くは、IP6又はIP6含有物を消費する際の若
干の負の効果を観察している。例えば、高過ぎる
含量のIP6を伴つて犬を飼育すれば、例えばクル
病が生ずる。ヒトにおいては、亜鉛の欠損及びそ
の結果としての小児の低成長が観察された。主と
して女性に貧血が観察された。ヒト又は動物にお
ける鉱物バランスに対する上記の負の効果のた
め、IP6及びその誘導体の取込を最少にするため
の試みが行われてきた。
カドミウムもまた、ヒトの健康に対して有害で
あることが見出されている。この鉱物は一般に我
我の環境中に低レベルで存在し、我々が暴露され
るカドミウムの量は幾つかの因子に依存する。カ
ドミウムの存在及び土壌中でのその利用性は地域
により異り、相対的に低いPH値を有する域領に生
長する植物中への取込は相対的に高い。工業活
動、主として金属の取扱により、カドミウムは空
気、土壌及び水中に放出され得る。土壌中のカド
ミウムは植物に吸収され、そしてそれ故にヒト及
び動物の食餌中に入り得る。カドミウムへの暴露
の最も重要な経路は喫煙、食品、及びある程度は
飲水を介してである。
食品中のカドミウムの小部分のみが吸収される
に過ぎないが、カドミウムは主として腸におい
て、及び肺を介して吸収される。食品を介しての
平均カドミウム摂取はほとんどの国において約
50μg/日であると計算されるが、異る地理的地
域間及び個体間において差異は大である。喫煙者
からのデータは、吸入されたカドミウムの50%と
いう多くの量が吸収され得る。幾つかの研究が、
非喫煙者に比べて喫煙者におけるカドミウムの血
中レベル及び器官レベルが2倍高いことを示す。
人体からのカドミウムの排出はは遅く、そして10
〜30年の半減期が報告されている。このことは、
カドミウムが体内に蓄積されることを意味する。
蓄積されたカドミウムの主たる部分である80〜90
%が主として肝臓及び腎臓中に存在する蛋白質で
あるメタロチオネインに結合する。メタロチオネ
インの形成は金属、主として亜鉛及びカドミウム
により誘導される。メタロチオネインへのカドミ
ウムの結合は非常に強く、そしてカドミウムの解
毒をもたらす。残りのカドミウムは体内に存在す
る。すなわち、メタロチオネインに結合しないカ
ドミウムは体の多の器官に分布し、腸、肺(特に
喫煙者の肺)、循環系(心臓、動脈壁、脾臓)、並
びに膵臓及び前立腺のごとき腺中に比較的高レベ
ルで分布する。
負の効果の内、カドミウムが体のエラスチン/
エラスターゼ系に影響を与え得ることが知られて
いる。さらに、カドミウムは体内の幾つかの異る
酵素、例えばNa+、K+(Mg2+)−ATP−アーゼ
及びCa2+、Mg2+−ATP−アーゼ(これらはイオ
ン輸送系において重要である)に影響を与え得る
ことが知られる。他の酵素は、ステロイド、脂肪
酸、芳香族化合物及び毒性化合物を加水分解する
チトクローム−P450−酵素である。カドミウム
により阻害される他の重要な酵素は、過酸化の生
起に対して保護をもたらすグルタチオン−パーオ
キシダーゼ及びスーパーオキシドジスムターゼで
ある。亜鉛依存酵素、例えばロイシンアミノペプ
チダーゼもまたカドミウムにより阻害される。
多年にわたつて得られた多数の動物実験の結果
は、カドミウムの非常に低濃度においてさえ負の
効果を示す。このことは、人口の多くの部分が負
の影響を受けており、そしてこれは特に喫煙者に
とつてそうであることを意味するであろう。疫学
的研究は、癌、高血圧及び心臓血管系疫患(例え
ば、動脈硬化、心筋梗塞、急性心臓死)と環境中
のカドミウムの存在との関連を示す。カドミウム
への暴露はまた老齢糖尿病の危険を増加せしめる
因子であると考えられる。
さらに、カドミウムが腎臓、肺(線維症、気
腫、癌)、血管壁(脂肪蓄積、動脈硬化、血管壁
収縮、弾性、内皮に対する損傷)、プロスタサイ
クリン生産、前立腺、心臓(伝導系、収縮力)、
胎盤、睾丸、及び中枢神経系に対して負の影響を
与えることができる。カドミウムはまた、フリー
ラジカルの生成を誘導しそしてそれによつて脂質
の過酸化を惹起することができ、このことはリウ
マチのごとき他の疾患の発生において重要であ
る。アレルギー及び気管支炎もまたカドミウム暴
露と関連し得る。ヒト及び動物に対するカドミウ
ムの負の効果の知識は数十年にわたつて相当に増
加した。
重金属、例えばカドミウムの上記の負の効果及
び種々の方法において、例えば鉄、アルミニウム
及びカドミウムのごとき金属により又は照射によ
り生成するフリーラジカルの負の効果に対抗する
ことを目指て、多年にわたり非常に強力な研究努
力が行われてきた。言うまでもなく、喫煙の害も
長期間研究されてきた。
〔発明の概要〕
この発明に従えば、ヒト及び動物に対して観察
される上記の負の効果を、特定のイノシトールト
リホスフエート(IP3)の消費により回避し、又
は少なくとも軽減することが可能であつた。従つ
てこの発明は食品組成物の製造方法を提供し、そ
してこの組成物は組成物100g当り5mg以上のIP3
を含有する。一般に、IP3を塩の形で使用するの
が好ましい。しかしながら、所望により酸の形で
使用することもできる。
〔具体的な記載〕
この発明に従えば、組成物100g当り5mg以上
のIP3含量を有する食品組成物が達成された。非
常にしばしば、IP3含量は組成物100g当り20mg以
上である。有利には、IP3の含量は、食品組成物
100g当り5〜500mg、好ましくは20〜500mg、一
層好ましくは50〜500mg、100〜500mg、又は150〜
500mgの範囲である。
この組成物は、他の食料製品のIP3含量を増加
せしめるために添加物又は中間体濃厚物として使
用することができる。この場合、該中間体濃厚物
中のIP3の含量は濃厚物100g当り20mg以上である
べきである。しかしながら一般に、この濃厚物中
のIP3含量は一層高く、濃厚物100g当りそれぞ
れ、有利には50mg〜100g、そして好ましくは75
mg〜80g、100mg〜80g、150mg〜60g、200mg〜
60g、250mg〜50g、又は300mg〜50gである。好
ましくは、濃厚物のIP3含量は可能な限り高くあ
るべきである。
中間体濃厚物は多くの異る形態で、例えば粉
末、錠剤、カプセル及び顆粒の形で使用すること
ができる。しかしながら、これを液体の形で、例
えば水溶液の形で使用することもできる。
IP3は好ましくは、D−ミオ−イノシトール−
1.2.6−トリホスフエート、D−ミオ−イノシト
ール−1.2.5−トリホスフエート、ミオ−イノシ
トール−1.2.3−トリホスフエート、L−ミオ−
イノシトール−1.3.4−トリホスフエート、及び
D−ミオ−イノシトール−1.4.5−トリホスフエ
ート、並びにこれらの混合物から成る群から選択
される。これらの異性体中D−ミオ−イノシトー
ル−1.2.6−トリホスフエートが好ましい。
しばしば20〜100重量%、好ましくは40〜100重
量%のIP3がD−ミオ−イノシトール−1.2.6−ト
リホスフエートから成る。
IP3の適当な製造方法によれば、イノシトール
ヘキサホスフエート(IP6)を含有する材料がフ
イターゼ(phytase)酵素により酵素的に分解さ
れる。このIP6は、純粋な物質として、又はIP6含
有源、例えば小麦ふすまの形で提供され得る。フ
イターゼ酵素は、例えば植物、種子、及び微生物
中に見出すことができる。
IP6の酵素処理により加水分解が生じ、異る低
級イノシトールホスフエート類、すなわちイノシ
トールペンタホスフエート(IP5)、イノシトール
テトラホスフエート(IP4)、イノシトールトリホ
スフエート(IP3)、イノシトールジホスフエート
(IP2)及びイノシトールモノホスフエート(IP1)
の混合物が生ずる。
一般に、この加水分解は20℃〜70℃及び4〜8
のPHにおいて行われる。この加水分解は、全エス
テルリンの約30〜60%が遊離した時に適切に停止
される。この段階において、異性体類中高比率の
所望のIP3がIP6含有材料の加水分解により形成さ
れる。
この後、得られたイノシトールホスフエートの
混合物をクロマトグラフイーにより分離してIP3
含有画分を単離することができる。好ましくは、
これはカラム中で行う。IP3画分が1種類より多
くの異性体を含有する場合、これに次く他のクロ
マトグラフ分離段階において分離する。
IP3は塩として又は酸自体として得ることがで
きる。塩は純粋且つ濃縮された形で得ることが酸
よりも容易であるので、塩の形態が好ましい。
塩形のIP3異性体は標準的方法を用いて酸形か
ら容易に得ることができる。すなわち、塩、例え
ばアルカリ金属塩及びアルカリ土類金属塩、例え
ばリチウム、ナトリウム、カリウム、カルシウム
又はマグネシウム塩を得ることができる。しかし
ながらさらに、亜鉛塩がNH4 +塩及び有機アミン
塩と同様に非常に有用である。アミンの例とし
て、トリエタノールアミン、ジエタノールアミ
ン、トリイソプロパノールアミン、N,N−ジエ
チル−2−アミノ−2−メチル−1−プロパノー
ル、N,N−ジメチルエタノールアミン、テトラ
ブチルアミン及びシクロヘキシルアミンが挙げら
れる。さらに、他の塩を使用することもできよ
う。特に好ましい塩は生理的に許容される塩であ
る。
好ましくは、異るイノシトールホスフエートの
含量を示す分布曲線はIP3について極大、そして
好ましくは唯一の極大を有し、このことはIP3含
量がIP2及び/又はIP4含量より大であること意味
する。一般に、IP3の比率はイノシトールホスフ
エートの全含量の10%以上である。
時には、組成物はIP3のほかにIP4及び/又はイ
ノシトールジホスフエート(IP2)を含有する。
この場合、好ましくは組成物中のイノシトールホ
スフエートの全量の40重量%以上がIP3であり、
他方残りのイノシトールホスフエートの30〜85重
量%がIP2及びIP4である。このような組成物にお
いては、IP3はD−ミオ−イノシトール−1.2.6−
トリホスフエートから実質上成ることができる。
しかしながらさらに、他のIP3異性体、特に上記
の異性体をそのような食料製品中に使用すること
もできる。
例えば組成物の形態に依存して、IP3は塩の形
態又は酸の形態で使用することができる。酸の形
は一般に液体、好ましくは水溶液として使用され
る。塩の形においてはIP3は乾燥生成物として、
あるいはこれとは異り液体として、好ましくは水
溶液として使用することができる。
IP3が塩として存在する場合、この塩は一般に
前記の群から選択される。
この発明は食品組成物の製造方法を提供し、こ
の食品は最初IP3を実質上含有しない。この方法
は、IP3源を組成物に、組成物100g当り5mg以上
のIP3濃度をもたらすのに十分な量において添加
することを含んで成る。
IP3源は別途製造されたIP3それ自体であつても
よく、あるいはIP3の酵素的生産のためのフイタ
ーゼの存在下でのIP6、IP5及び/又はIP4であつ
てもよい。
“最初にIP3を実質上含有しない”とは、常法
に従つて製造された食品組成物が実質的な量の
IP3を含有しないことを意味するものと意図され
る。従つて、IP3の含量は組成物100g当り3mg未
満、通常2mg未満、そして最もしばしば1mg未満
であろう。
この発明はまた食品組成物の製造方法を含み、
この方法においては組成物を構成する材料中、フ
エターゼの濃度及びイノシトールテトラホスフエ
ート(IP4)、イノシトールペンタホスフエート
(IP5)及びイノシトールヘキサホスフエート
(IP6)から成る群から選択されるイノシトールホ
スフエートの含量を確立し、そして製造工程の少
なくとも1つの段階において、組成物100g当り
20mg以上のイノシトールトリホスフエート(IP3)
の含量が得られる様にインキユベーシヨンを行う
ことができるように処理の時間及び温度並びにPH
値を制御する。
前記インキユベーシヨン段階において、IP6、
IP5及びIP4から選択されるイノシトールホスフエ
ートの少なくとも部分がフイターゼ酵素により
IP3に酵素的に分解される。IP3に転換されるもと
のイノシトールホスフエート含量の比率は、製造
パラメーター、例えばインキユベーシヨン時間、
温度及びPHを変えることによつて広範囲の限界内
に制御することができる。
植物及び種子がイノシトールヘキサホスフエー
トを含有する場合、フイターゼ酵素はこれらの中
に存在することができる。このため、この発明に
従えば、出発材料として植物又は種子生成物を用
いる場合には、すべての場合に酵素を添加する必
要があるわけではない。前記の天然生成物が低過
ぎる酵素活性を有する場合、あるいはIP6、IP5も
しくはIP4又はこれらの混合物が出発材料として
使用される場合、例えばふすま由来のフイターゼ
酵素を添加することができる。フイターゼ源とし
て酵母を有利に使用することができる。好ましく
はパン酵母を使用する。
この発明に従えば例えば、ゼストボラゲツト
(Ja¨stbolaget)(スエーデン)により製造される
スエーデンパン酵母、及びラジヤメキ、フインラ
ンド・アンド・ヘーフエフアブリケンAG
(Rajama¨ki、Finland and Hefefabriken AG)
(スイス)により製造されるパン酵母が使用され
た。この発明に従つて酵母を使用する場合、非常
に驚くべきことに、唯一の異性体、すなわちD−
ミオ−イノシトール−1.2.6−トリホスフエート
が得られることが確立されている。言うまでもな
く、この異性体のみが所望であれば、酵母の使用
は非常に価値ある方法である。
インキユベーシヨン中、適切な温度、通常20℃
〜70℃、好ましくは30℃〜60℃において、そして
4〜8のPHにおいて加水分解が行われる。意図す
るレベルにおいて加水分解を停止するため、例え
ば加水分解された出発材料の急速な加熱によつて
酵素を破壊又は不活性化することができる。
この発明の方法は種々の態様で、例えば選択さ
れた出発材料に依存して改変することができる。
出発材料は例えば:
1 一定量のIP6、IP5及び/又はIP4を有するこ
とができる。
2 IP6、IP5又はIP4を含有することができない。
上記の第1の例においては、最終食料製品中
IP3の所望の含量を達成するために異る可能性が
存在する。例えば、フイターゼによりイノシトー
ルホスフエート類をIP3に加水分解する上記の方
法を使用することができる。
出発材料中のIP6、IP5及び/又はIP4の含量が
十分に高くない場合、これらを添加することがで
きる。こうして、最終生成物中のIP3含量を増加
することができる。
上記の方法はまた、所望のIP3含量を有する中
間体生成物の製造のためにも使用することがで
き、この生成物を食品組成物のための出発材料に
添加することができる。
中間体生成物はまた、食料製品製造の一層後の
段階で導入することもできる。
IP3及びその異性体自体の製造方法は、この出
願と同日に出願された“イノシトールトリホスフ
エート及びその製造方法”と題する本件特許出願
人と同一出願人による特許出願明細書中に記載さ
れている。
出発材料がIP6、IP5又はIP4を含有しない上記
第2の例においては、これらのイノシトールホス
フエートを、フイターゼを欠く場合にはフイター
ゼと共に、添加することができる。次に、最終生
成物中IP3の所望の濃度を得るために、やはり上
記の加水分解法を用いることができる。
上記の方法に代えて、前記の中間体生成物を、
食品組成物の製造の出発材料に、又は一層後の段
階において添加することができる。
上記いずれの方法においても、濃縮された形の
IP3を組成物製造の後の段階又は最終段階におい
て加えることができる。
この発明の他の態様においては、食品組成物の
製造方法が提供され、この組成物は最初に組成物
100g当り約10mgより少ないIP3を含有し、この方
法においては、IP3又はIP3源を添加することによ
り、あるいはIP6、IP5及びIP4から成る群から選
択される最初に含まれていたイノシトールホスフ
エートを酵素法により転換することによつて、
IP3の含量を組成物100g当り20mg以上に増加せし
める。この発明の組成物のこのような製造方法に
おいては、前記組成物は好ましくは穀類に基礎を
置く材料、例えば朝食用加工食品(breakfast
cereals)、ケーキ、ビスケツト及びパンであるこ
とができる。この組成物はまた、菓子、チヨコレ
ート及びチユーインガムから成る群から選択する
ことができる。しばしば、非常に好ましくは、こ
の組成物はまた野菜、飲物、スープ又はミルク製
品、例えばヨーグルトである。
組成物が最初に組成物100g当り約20mg未満の
IP3を含有するこの発明の他の態様においては、
同様の方法によりIP3の含量を組成物100g当り50
mg以上に増加せしめる。組成物が最初に組成物
100g当り約50mgのIP3を含有するこの発明の他の
態様においては、同様の方法によりIP3の含量を
組成物100g当り100mg以上に増加せしめる。
組成物中のIP3含量は広範囲の限界内で変える
ことができる。組成物100g当り20〜500mg、例え
ば50〜500mg、100〜500mg又は150〜500mgのIP3含
量を有するのが好ましい。パン食品については、
この間隔は、乾燥パン食品100g当り有利には20
〜500mg、好ましくは100〜500mg、そして最も好
ましくは150〜500mg又は200〜500mgのIP3である。
IP3の1日の摂取量は10mg以上、好ましくは50mg
以上である。
この発明の液体組成物の製造においては、IP3
の含量をまた広範囲に変化させることができる。
一般に、IP3の含量は液体組成物100g当り5〜
500mg、例えば10〜500mg、20〜500mg、又は5〜
300mgである。
液体組成物は例えば飲物又はスープであること
ができる。
この発明に従えば、IP3の濃度が乾燥組成物100
g当り20mg以上である食品組成物を提供すること
ができる。IP3を組成物に加え、そして/又はフ
イターゼとIP4、IP5及びIP6から成る群から選ば
れたイノシトールホスフエートとを加えることに
よりIP3を生成せしめる。
この発明の範囲内において、パン製品が特に好
ましい。すなわち、IP3の濃度が乾燥組成物当り
20mg以上でありそして天然に含まれているIP6及
び/又は添加されたIP6の加水分解の程度が20〜
90%、好ましくは40〜70%であるパン食品組成物
が提供される。従つて、リンの合計量に対する無
機リンの比率は20%以上、好ましくは40%以上で
ある。特定のパン食品組成物においては、IP3の
最初の含量は組成物100g当り150mg未満であり、
そしてIP6の最初の含量は組成物100g当り200mg
以上である。そして、最終組成物中のIP3の含量
はIP6の分解によつて増加する。
前記のIP3異性体は次の構造を有する。
D−ミオ−イノシトール−1.2.6−トリホスフ
エート
(式中、Xは水素、少なくとも1つの1価、2価
もしくは多価陽イオン、又はこれらの混合であ
り、nはイオンの数であり、そしてzはそれぞれ
のイオンの電荷である。)
D−ミオ−イノシトール−1.2.5−トリホスフ
エート
(式中、X、n及びzは前記の意味を有する。)
ミオ−イノシトール−1.2.3−トリホスフエー
ト
(式中、X、n及びzは前記の意味を有する。)
L−ミオ−イノシトール−1.3.4−トリホスフ
エート
(式中、X、n及びzは前記の意味を有する。)
D−ミオ−イノシトール−1.4.5−トリホスフ
エート
(式中、X、n及びzは前記の意味を有する。)
上記の式のそれぞれにおいて、nは6〜1(こ
れらの数を含む)の範囲にあり、そしてzは1〜
6(これらの数を含む)の範囲にある。好ましく
は、nは3〜6(これらの数を含む)であり、そ
してzは3、2、又は1である。
この発明の組成物は、生物に対して多くの方法
により良好な影響を与える。しかしながら、この
組成物は、重金属、本質的にはカドミウムにより
惹起され、誘導されもしくは促進される状態、又
はこれらの重金属に関連する疾患を回避し又は軽
減することが主として意図される。
さらに、この組成物は喫煙者に良好な効果を与
えることが意図される。
この発明の組成物が防止し又は軽減することが
意図される状態の例として、高血圧、心臓血管系
疾患、気腫、及び血小板凝集が挙げられる。しか
しながら、この組成物は他の多くの状態にも良好
な影響を与える。
この発明をさらに、具体例と関連させて説明す
る。例1及び例2は比較例に関し、ここでは幾つ
かの市販のパン及び朝食用加工食品中のイノシト
ールホスフエート類の分析が行われている。例3
〜7はこの発明のパンの製造方法を例示する。例
8はイノシトールホスフエート類のカルシウム塩
を添加して小麦粉を焼いて作つるケーキの製造に
関する。例9は、イノシトールホスフエート類の
ナトリウム塩を添加した後の朝食用加工食品の製
造に関する。例10はD−ミオ−イノシトール−
1.2.6−トリホスフエートのナトリウム塩の添加
による食卓塩の製造を例示する。
例11はイノシトールトリホスフエート類のナト
リウム塩の添加による飲物の製造を例示する。例
12はD−ミオ−イノシトール−1.2.6−トリホス
フエートのナトリウム塩の添加による蜜の製造に
関する。例13はイノシトールホスフエート類のナ
トリウム塩の添加によるチヨコレートの製造に関
する。例14は、ラビツトの血液中で、カドミウム
の注射により惹起される血小板の凝集がIP3を含
有する食餌の投与により防止され得ることを示
す。例15は、カドミウムを注射されたマウムの
種々の器官のカドミウム含量に対するIP3の効果
を示す。例16は、IP3が喫煙により惹起される血
小板の凝集の増加を防止することを示す。例17及
び18は、IP3が遊離基の生成を防止し又は減少せ
しめることを示す。例19〜24は種種の食品源にお
けるフイチン酸の加水分解を示す。例25〜31は
IP3の製造及びその異る異性体への分離を示す。
例 1
幾つかの市販のパン中のイノシトールホスフエ
ート類の分析
3種類の市販のパン、すなわち1種類の白パン
及び2種類のパリパリしたパン(crisp bread)
を、HPLCを用いてイノシトールホスフエートの
含量について分析した。パリパリしたパンはそれ
ぞれ全ライ麦粉及び全小麦粉で焼かれたものであ
る。
20g量のパンを破砕し、そして1%の塩酸によ
り振とうしながら2時間にわたり抽出した。懸濁
液を遠心分離し、そして上清を集めた。
上清を、明確に定義されたイノシトールホスフ
エート類を用いて分析し、そして100g(固形物
含量)当りのイノシトールホスフエートのmg量と
して定量化した。
[Industrial Application Field] This invention provides a method for producing a food composition containing 5 mg or more of inositol triphosphate (IP 3 ) per 100 g of the composition, and a food composition containing such an amount of IP 3 . Regarding. BACKGROUND OF THE INVENTION There is an increasing need to prevent many of the negative effects of urbanization, such as the environmental hazards caused by the introduction of hazardous materials such as heavy metals and irradiation. Additionally, the development of health foods and nutritional supplements has increased the need to prevent the harms of smoking and other bad habits. Already in 1900, several researchers discovered the organophosphorus compound phytic acid, namely 1,2,3,4,
reported the discovery in plants of 5,6-hexakis(dihydrogen phosphate) myo-inositol (also sometimes referred to as inositol pentaphosphate). The content of phytic acid in different plants varies considerably. The content in grains is usually about 0.5-2%, with some exceptions. A little bit of polished rice
Brown rice contains as much phytic acid as 2.2%, while it has a level of 0.1%. Beans account for approximately 0.4-2%;
Oil plants contain about 2-5% and pollen 0.3-2%. The content of phytic acid in plants changes during the growing period. This content is also influenced inter alia by the climate. The presence of inositol pentaphosphate (IP 5 ) and inositol tetraphosphate (IP 4 ) in a few plants has been reported in the literature. Furthermore, it is known that phosphoric acid derivatives lower than IP 6 are found during grain germination. For example, the end products during germination are inositol and phosphate. The use of IP 6 has been described in several scientific publications. Many of the authors of these papers have observed some negative effects when consuming IP 6 or IP 6- containing products. For example, if dogs are bred with too high a content of IP 6 , rickets will result, for example. In humans, zinc deficiency and consequent slow growth in children have been observed. Anemia was observed primarily in women. Because of the above negative effects on mineral balance in humans or animals, attempts have been made to minimize the uptake of IP 6 and its derivatives. Cadmium has also been found to be harmful to human health. This mineral is generally present at low levels in our environment, and the amount of cadmium we are exposed to depends on several factors. The presence of cadmium and its availability in soil varies by region, and uptake into plants growing in areas with relatively low pH values is relatively high. Industrial activities, primarily metal handling, can release cadmium into the air, soil, and water. Cadmium in soil can be absorbed by plants and therefore enter the diet of humans and animals. The most important routes of exposure to cadmium are through smoking, food, and to some extent drinking water. Although only a small portion of cadmium in food is absorbed, cadmium is primarily absorbed in the intestines and through the lungs. Average cadmium intake through food is approximately
It is calculated to be 50 μg/day, but there are large variations between different geographical regions and between individuals. Data from smokers show that as much as 50% of inhaled cadmium can be absorbed. Some studies have
It shows that blood and organ levels of cadmium are twice as high in smokers compared to non-smokers.
The excretion of cadmium from the human body is slow and 10
A half-life of ~30 years has been reported. This means that
This means that cadmium accumulates in the body.
80-90, which is the main part of the accumulated cadmium
% binds to metallothionein, a protein found primarily in the liver and kidneys. The formation of metallothionein is induced by metals, primarily zinc and cadmium. The binding of cadmium to metallothionein is very strong and results in cadmium detoxification. The remaining cadmium is present in the body. That is, cadmium that is not bound to metallothionein is distributed in many organs of the body, with relatively low concentrations in the intestines, lungs (particularly the lungs of smokers), the circulatory system (heart, artery walls, spleen), and glands such as the pancreas and prostate. Distributed at high levels. Among the negative effects, cadmium improves the body's elastin/
It is known that it can affect the elastase system. In addition, cadmium affects several different enzymes in the body, such as Na + , K + (Mg 2+ )-ATP-ase and Ca 2+ , Mg 2+ -ATP-ase, which are important in ion transport systems. ) is known to have an impact on Other enzymes are cytochrome-P450-enzymes that hydrolyze steroids, fatty acids, aromatic compounds and toxic compounds. Other important enzymes inhibited by cadmium are glutathione-peroxidase and superoxide dismutase, which provide protection against the occurrence of peroxidation. Zinc dependent enzymes such as leucine aminopeptidase are also inhibited by cadmium. Results from numerous animal studies obtained over many years show negative effects even at very low concentrations of cadmium. This would mean that a large part of the population is negatively affected, and this is especially so for smokers. Epidemiological studies show an association between cancer, hypertension and cardiovascular diseases (eg arteriosclerosis, myocardial infarction, acute cardiac death) and the presence of cadmium in the environment. Exposure to cadmium is also thought to be a factor that increases the risk of geriatric diabetes. In addition, cadmium is harmful to the kidneys, lungs (fibrosis, emphysema, cancer), vascular walls (fat accumulation, arteriosclerosis, vascular wall contraction, elasticity, damage to the endothelium), prostacyclin production, prostate, heart (conduction system, contractile force), ),
It can have negative effects on the placenta, testicles, and central nervous system. Cadmium can also induce the production of free radicals and thereby cause lipid peroxidation, which is important in the development of other diseases such as rheumatism. Allergies and bronchitis may also be associated with cadmium exposure. Knowledge of the negative effects of cadmium on humans and animals has increased considerably over the decades. Aiming at countering the above-mentioned negative effects of heavy metals, such as cadmium, and in various ways the negative effects of free radicals generated by metals such as iron, aluminum and cadmium or by irradiation, very powerful treatments have been used for many years. A great deal of research effort has been made. Needless to say, the harms of smoking have also been studied for a long time. [Summary of the Invention] According to the present invention, the above-mentioned negative effects observed in humans and animals can be avoided or at least reduced by consumption of specific inositol triphosphates (IP 3 ). It was hot. The invention therefore provides a method for producing a food composition, which composition has an IP3 of 5 mg or more per 100 g of the composition.
Contains. It is generally preferred to use IP 3 in salt form. However, it can also be used in the acid form if desired. [Specific Description] According to the present invention, a food composition having an IP 3 content of 5 mg or more per 100 g of the composition has been achieved. Very often the IP 3 content is 20 mg or more per 100 g of the composition. Advantageously, the content of IP 3 in the food composition
5 to 500 mg per 100 g, preferably 20 to 500 mg, more preferably 50 to 500 mg, 100 to 500 mg, or 150 to
In the 500mg range. This composition can be used as an additive or intermediate concentrate to increase the IP 3 content of other food products. In this case, the content of IP 3 in the intermediate concentrate should be at least 20 mg/100 g of concentrate. Generally, however, the IP 3 content in this concentrate is higher, advantageously between 50 mg and 100 g, and preferably 75 g, respectively, per 100 g of concentrate.
mg~80g, 100mg~80g, 150mg~60g, 200mg~
60g, 250mg to 50g, or 300mg to 50g. Preferably, the IP 3 content of the concentrate should be as high as possible. Intermediate concentrates can be used in many different forms, such as powders, tablets, capsules and granules. However, it can also be used in liquid form, for example in the form of an aqueous solution. IP 3 is preferably D-myo-inositol-
1.2.6-triphosphate, D-myo-inositol-1.2.5-triphosphate, myo-inositol-1.2.3-triphosphate, L-myo-
selected from the group consisting of inositol-1.3.4-triphosphate, and D-myo-inositol-1.4.5-triphosphate, and mixtures thereof. Among these isomers, D-myo-inositol-1.2.6-triphosphate is preferred. Often 20 to 100% by weight, preferably 40 to 100% by weight of IP 3 consists of D-myo-inositol-1.2.6-triphosphate. According to a suitable method for producing IP 3 , the material containing inositol hexaphosphate (IP 6 ) is enzymatically degraded by phytase enzymes. This IP 6 can be provided as a pure substance or in the form of an IP 6- containing source, such as wheat bran. Phytase enzymes can be found, for example, in plants, seeds, and microorganisms. Enzymatic treatment of IP 6 results in hydrolysis of different lower inositol phosphates, namely inositol pentaphosphate (IP 5 ), inositol tetraphosphate (IP 4 ), inositol triphosphate (IP 3 ), and inositol diphosphate. ate (IP 2 ) and inositol monophosphate (IP 1 )
A mixture of is formed. Generally, this hydrolysis is carried out at 20°C to 70°C and 4 to 8°C.
It is carried out at the PH of This hydrolysis is suitably stopped when about 30-60% of the total ester phosphorus is liberated. At this stage, a high proportion of the desired IP 3 among isomers is formed by hydrolysis of the IP 6 containing material. After this, the resulting mixture of inositol phosphates was separated by chromatography and IP 3
The containing fraction can be isolated. Preferably,
This is done in a column. If the IP 3 fraction contains more than one isomer, it is subsequently separated in another chromatographic separation step. IP 3 can be obtained as a salt or as the acid itself. Salt forms are preferred because they are easier to obtain in pure and concentrated form than acids. The salt form of the IP 3 isomer can be readily obtained from the acid form using standard methods. Thus, salts such as alkali metal salts and alkaline earth metal salts such as lithium, sodium, potassium, calcium or magnesium salts can be obtained. In addition, however, zinc salts are very useful, as are NH 4 + salts and organic amine salts. Examples of amines include triethanolamine, diethanolamine, triisopropanolamine, N,N-diethyl-2-amino-2-methyl-1-propanol, N,N-dimethylethanolamine, tetrabutylamine and cyclohexylamine. Additionally, other salts could be used. Particularly preferred salts are physiologically acceptable salts. Preferably, the distribution curve showing the content of different inositol phosphates has a maximum for IP 3 , and preferably only one maximum, which means that the IP 3 content is greater than the IP 2 and/or IP 4 content. means. Generally, the proportion of IP 3 is more than 10% of the total content of inositol phosphate. Sometimes the compositions contain, in addition to IP 3 , IP 4 and/or inositol diphosphate (IP 2 ).
In this case, preferably at least 40% by weight of the total amount of inositol phosphate in the composition is IP 3 ;
On the other hand, 30-85% by weight of the remaining inositol phosphates are IP 2 and IP 4 . In such compositions, IP 3 is D-myo-inositol-1.2.6-
It can consist essentially of triphosphate.
However, it is also possible to use other IP 3 isomers, especially those mentioned above, in such food products. For example, depending on the form of the composition, IP 3 can be used in salt form or in acid form. The acid form is generally used as a liquid, preferably an aqueous solution. In the salt form IP 3 as a dry product:
Alternatively, it can be used as a liquid, preferably as an aqueous solution. When IP 3 is present as a salt, this salt is generally selected from the group mentioned above. The invention provides a method for producing a food composition, which food product is initially substantially free of IP3 . The method comprises adding a source of IP 3 to the composition in an amount sufficient to provide a concentration of IP 3 of 5 mg or more per 100 g of the composition. The source of IP 3 may be separately produced IP 3 itself or it may be IP 6 , IP 5 and/or IP 4 in the presence of phytase for enzymatic production of IP 3 . "Initially substantially free of IP 3 " means that a food composition manufactured according to conventional methods contains a substantial amount of IP 3.
Intended to mean does not contain IP 3 . The content of IP 3 will therefore be less than 3 mg, usually less than 2 mg, and most often less than 1 mg per 100 g of the composition. The invention also includes a method of making a food composition,
In this method, in the materials constituting the composition, a concentration of phetase and an inositol selected from the group consisting of inositol tetraphosphate ( IP4 ), inositol pentaphosphate ( IP5 ), and inositol hexaphosphate ( IP6 ) are determined. Establish the content of phosphate and, in at least one stage of the manufacturing process, per 100 g of the composition.
20mg or more of inositol triphosphate ( IP3 )
The processing time, temperature and pH are adjusted so that the incubation can be carried out so that the content of
Control the value. In the incubation step, IP 6 ,
At least a portion of the inositol phosphate selected from IP 5 and IP 4 is purified by a phytase enzyme.
Enzymatically degraded to IP3 . The proportion of the original inositol phosphate content that is converted to IP 3 depends on the manufacturing parameters, e.g. incubation time,
It can be controlled within wide limits by varying the temperature and PH. If the plants and seeds contain inositol hexaphosphate, the phytase enzyme can be present in these. According to the invention, therefore, it is not necessary in all cases to add enzymes when using plant or seed products as starting materials. If the natural products mentioned have too low an enzymatic activity, or if IP 6 , IP 5 or IP 4 or mixtures thereof are used as starting material, a phytase enzyme, for example derived from bran, can be added. Yeast can advantageously be used as a source of phytase. Preferably, baker's yeast is used. According to the invention, for example, Swedish baker's yeast produced by Ja¨stbolaget (Sweden) and Radiyameki, Finland & Hoef Abliken AG
(Rajama¨ki, Finland and Hefefabriken AG)
(Switzerland) was used. When using yeast according to this invention, it is very surprising that only one isomer, namely D-
It has been established that myo-inositol-1.2.6-triphosphate is obtained. Of course, if only this isomer is desired, the use of yeast is a very valuable method. Appropriate temperature during incubation, typically 20°C
Hydrolysis is carried out at ~70°C, preferably from 30°C to 60°C, and at a PH of 4-8. To stop hydrolysis at the desired level, the enzyme can be destroyed or inactivated, for example by rapid heating of the hydrolyzed starting material. The method of the invention can be modified in various ways, depending for example on the starting materials chosen.
The starting material can, for example: 1 have a certain amount of IP6 , IP5 and/or IP4 . 2. Cannot contain IP 6 , IP 5 or IP 4 . In the first example above, in the final food product
Different possibilities exist to achieve the desired content of IP 3 . For example, the method described above of hydrolyzing inositol phosphates to IP3 by phytase can be used. If the content of IP 6 , IP 5 and/or IP 4 in the starting materials is not high enough, they can be added. In this way, the IP 3 content in the final product can be increased. The above method can also be used for the production of intermediate products with the desired IP 3 content, which can be added to the starting materials for food compositions. Intermediate products can also be introduced at later stages of food product manufacture. The method for producing IP 3 and its isomers itself is described in a patent application filed on the same day as this application entitled "Inositol triphosphate and method for producing the same" filed by the same applicant as the present patent applicant. There is. In the second example above, where the starting material does not contain IP 6 , IP 5 or IP 4 , these inositol phosphates can be added together with phytase if it is lacking. The hydrolysis method described above can then also be used to obtain the desired concentration of IP 3 in the final product. Alternatively to the above method, the intermediate product described above may be
It can be added to the starting materials for the production of food compositions or at a later stage. In any of the above methods, a concentrated form of
IP 3 can be added at a later or final stage of composition production. In another aspect of the invention, a method of making a food composition is provided, the composition first comprising:
containing less than about 10 mg of IP 3 per 100 g, and in this method by adding IP 3 or a source of IP 3 or by initially containing IP 6 selected from the group consisting of IP 6 , IP 5 and IP 4 . By converting inositol phosphate by enzymatic method,
The content of IP 3 is increased to 20 mg or more per 100 g of the composition. In such a method of manufacturing a composition of the invention, said composition preferably comprises a cereal-based material, such as a breakfast food.
cereals), cakes, biscuits and bread. The composition may also be selected from the group consisting of confectionery, thiokolate and chewing gum. Often, very preferably, the composition is also a vegetable, a drink, a soup or a milk product, such as a yoghurt. The composition initially contains less than about 20 mg per 100 g of the composition.
In other embodiments of this invention containing IP 3 ,
In a similar manner, the content of IP 3 was determined to be 50% per 100g of the composition.
mg or more. composition first composition
In other embodiments of the invention containing about 50 mg of IP 3 per 100 g, the content of IP 3 is increased to 100 mg or more per 100 g of the composition by a similar method. The IP 3 content in the composition can vary within wide limits. Preferably it has an IP 3 content of 20 to 500 mg, such as 50 to 500 mg, 100 to 500 mg or 150 to 500 mg per 100 g of composition. Regarding bread foods,
This interval is advantageously 20 g per 100 g of dry bread food.
~500mg, preferably 100-500mg and most preferably 150-500mg or 200-500mg IP 3 .
The daily intake of IP 3 is at least 10mg, preferably 50mg
That's all. In the production of the liquid composition of this invention, IP 3
The content of can also be varied within a wide range.
Generally, the content of IP 3 is between 5 and 5 per 100 g of liquid composition.
500mg, such as 10-500mg, 20-500mg, or 5-500mg
It is 300mg. The liquid composition can be, for example, a drink or a soup. According to the invention, the concentration of IP 3 is 100% in the dry composition.
Food compositions can be provided that have 20 mg/g or more. IP 3 is produced by adding IP 3 to the composition and/or adding phytase and an inositol phosphate selected from the group consisting of IP 4 , IP 5 and IP 6 . Particular preference is given to bread products within the scope of this invention. That is, the concentration of IP 3 per dry composition
20 mg or more and the degree of hydrolysis of naturally occurring IP 6 and/or added IP 6 is from 20 to
A bread food composition is provided which is 90%, preferably 40-70%. Therefore, the ratio of inorganic phosphorus to the total amount of phosphorus is 20% or more, preferably 40% or more. In certain bread food compositions, the initial content of IP 3 is less than 150 mg per 100 g of the composition;
And the initial content of IP 6 is 200 mg per 100 g of composition
That's all. And the content of IP 3 in the final composition increases due to the decomposition of IP 6 . The IP 3 isomer described above has the following structure. D-myo-inositol-1.2.6-triphosphate (wherein X is hydrogen, at least one monovalent, divalent, or polyvalent cation, or a mixture thereof, n is the number of ions, and z is the charge of each ion.) D -Myo-inositol-1.2.5-triphosphate (In the formula, X, n and z have the above meanings.) Myo-inositol-1.2.3-triphosphate (wherein X, n and z have the above meanings) L-myo-inositol-1.3.4-triphosphate (wherein X, n and z have the above meanings) D-myo-inositol-1.4.5-triphosphate (wherein X, n and z have the meanings given above) In each of the above formulas, n ranges from 6 to 1 (inclusive) and z ranges from 1 to
6 (inclusive). Preferably, n is 3 to 6 inclusive and z is 3, 2, or 1. The compositions of this invention positively impact living organisms in a number of ways. However, this composition is primarily intended to avoid or alleviate conditions caused, induced or promoted by heavy metals, essentially cadmium, or diseases associated with these heavy metals. Furthermore, this composition is intended to provide good effects to smokers. Examples of conditions that the compositions of this invention are intended to prevent or alleviate include hypertension, cardiovascular disease, emphysema, and platelet aggregation. However, this composition also has a positive effect on many other conditions. The invention will be further described in connection with specific examples. Examples 1 and 2 are comparative examples in which the analysis of inositol phosphates in several commercially available bread and breakfast foods is carried out. Example 3
-7 illustrate the bread manufacturing method of this invention. Example 8 relates to the production of a vine cake made by baking flour with the addition of calcium salts of inositol phosphates. Example 9 relates to the production of a processed breakfast food after addition of sodium salts of inositol phosphates. Example 10 is D-myo-inositol-
1.2.6 - To illustrate the production of table salt by addition of the sodium salt of triphosphate. Example 11 illustrates the production of a drink by the addition of sodium salts of inositol triphosphates. example
No. 12 relates to the production of honey by addition of the sodium salt of D-myo-inositol-1.2.6-triphosphate. Example 13 relates to the production of thiocholate by addition of sodium salts of inositol phosphates. Example 14 shows that the aggregation of platelets caused by injection of cadmium in the blood of rabbits can be prevented by administration of a diet containing IP3 . Example 15 shows the effect of IP 3 on the cadmium content of various organs of cadmium-injected mice. Example 16 shows that IP 3 prevents the increase in platelet aggregation caused by smoking. Examples 17 and 18 show that IP 3 prevents or reduces the generation of free radicals. Examples 19-24 demonstrate the hydrolysis of phytic acid in various food sources. Examples 25-31 are
Figure 2 shows the preparation of IP 3 and its separation into different isomers. Example 1 Analysis of inositol phosphates in several commercially available breads Three commercially available breads: one white bread and two crisp breads
was analyzed for inositol phosphate content using HPLC. The crispy breads are baked with whole rye flour and whole wheat flour, respectively. A 20g amount of bread was crushed and extracted with 1% hydrochloric acid for 2 hours with shaking. The suspension was centrifuged and the supernatant was collected. The supernatant was analyzed using well-defined inositol phosphates and quantified as mg of inositol phosphate per 100 g (solids content).
【表】
この結果は、市販のパン中のイノシトールトリ
ホスフエートの量は少いことを示す。
例 2
朝食用食品中のイノシトールホスフエート類の
分析
市販のコーン・フレークス(Corn Flakes)
(商標、ケロツグ社製)を、HPLCによりイノシ
トールホスフエート類の含量について分析した。
抽出方法及び分析は例1に記載した方法と同様と
した。
固形物100g当り19mgのIP2及び2mgのIP3が認
められた。IP4、IP5又はIP6は検出することがで
きなかつた。原料中に含まれるIP6はほとんど完
全に破壊されており、そしてIP3の量は非常に少
なかつた。
例 3
ライ麦で焼かれたパリパリしたパンのための発
酵時間の変化
ライ麦粉(IP6含量1%)を用いて生物的に酸
性化されたパリパリしたパンを焼いた。生地の配
合は、粉54.6g、水41.8g、塩(NaCl)1.3g、
及び先行する生地配合物からの生地2.4gであつ
た。
先行する生地合配物からの上記の生地2.4g並
びに上記粉の40%及び上記水の85%から成る酸味
生地を、第1段階において6時間発酵せしめ、次
に他の成分(粉、水及び塩)を混合した。混合し
た後、生地を第2段階において発酵せしめ、次に
成形及び焼き上げを行つた。オーブン温度を250
℃とした。異る第2発酵時間を用いた3種類のパ
ンを製造した。このパンを、例1に記載したよう
にして破砕し、抽出し、そして分析した。発酵時
間に対するIP3の含量は次のように決定された。[Table] The results show that the amount of inositol triphosphate in commercial bread is small. Example 2 Analysis of inositol phosphates in breakfast foods Commercially available Corn Flakes
(trademark, manufactured by Kellotsugu Co., Ltd.) was analyzed for the content of inositol phosphates by HPLC.
The extraction method and analysis were similar to those described in Example 1. 19 mg IP 2 and 2 mg IP 3 were found per 100 g solids. IP 4 , IP 5 or IP 6 could not be detected. The IP 6 contained in the raw material was almost completely destroyed, and the amount of IP 3 was very small. Example 3 Variation of fermentation time for crisp bread baked with rye Biologically acidified crisp bread was baked using rye flour (1% IP 6 content). The dough composition is 54.6g of flour, 41.8g of water, 1.3g of salt (NaCl),
and 2.4 g of dough from the previous dough formulation. A sour dough consisting of 2.4 g of the above dough from the previous dough blend and 40% of the above flour and 85% of the above water was fermented in a first stage for 6 hours and then the other ingredients (flour, water and salt) were mixed. After mixing, the dough was allowed to rise in a second stage, followed by shaping and baking. Oven temperature 250
℃. Three types of bread were made using different second proofing times. The bread was crushed, extracted and analyzed as described in Example 1. The content of IP3 versus fermentation time was determined as follows.
【表】
この結果は、延長された第2発酵時間がIP3含
量の減少をもたらすことを示している。
例 4
小麦及びオート麦粉で焼かれたパン中のIP3含
量
小麦及びオート麦粉(IP6含量0.9%)を組合わ
せて、化学的に酸性化されたパンを焼いた。
生地の配合は、小麦粉37.7%、オート麦粉17.7
%、水39.5%、塩(NaCl50%及び酢酸カルシウ
ム50%)、シユークロース1%、及びパン酵母2.8
%とした。
これらの成分を混合した後、生地を発酵せし
め、次に成形しそして焼き上げた。発酵時間は90
分間とし、そして温度は37℃とした。得られたパ
ンを例1に記載したのと同様にして破砕し、抽出
し、そして分析した。IP3の含量は、乾燥パン100
g当り120mgであると決定された。
例 5
全小麦粉で焼かれたパン中のIP3含量
全小麦粉(IP6含量0.9%)で白パンを焼いた。
生地の配合は、粉55.9%、水38.4%、酵母3.5%、
塩(NaCl)0.6%、及びシユークロース1.7%とし
た。
成分を混合した後、生地を発酵せしめ、次にパ
ンを成形した。追加の発酵時間の後パンを焼い
た。合計発酵時間は60分とし、焼き上げ時間は
175℃とした。
例1に記載したようにしてパンを破砕し、抽出
し、そして分析した。IP3の含量は乾燥パン100g
当り70mgであつた。
例 6
フイチン酸ナトリウムを添加してライ麦粉で焼
いたパン中のIP3含量
例3に記載したようにして、但し生地100g当
り0.8gのフイチン酸ナトリウムを加えて、ライ
麦粉(IP6含量1%)を用いて生物的に酸性化さ
れたパリパリしたパンを焼いた。発酵時間は225
分間とした。
例1に記載したようにして、パンを破砕し、抽
出し、そして分析した。パン中のIP3の量は乾燥
パン100g当り180mgであつた。
例 7
フイチン酸カルシウムマグネシウムを添加して
ライ麦粉で焼いたパン中のIP3含量
例3に記載したようにして、しかし生地100g
当り1.5gのフイチン酸カルシウムマグネシウム
を添加して、ライ麦粉(IP6含量1%)を用いて、
生物的に酸性化されたパリパリしたパンを焼い
た。発酵時間は225分間とした。例1に記載した
のと同様にしてパンを破砕し、抽出し、そして分
析した。パン中のIP3の量は乾燥パン100g当り
250mgであつた。
例 8
イノシトールホスフエート類のカルシウム塩を
添加して小麦粉で焼いたケーキ中のIP3含量
小麦粉(IP6含量0.2%)でケーキを焼いた。生
地の配合は小麦粉60.1%、水35.7%、塩(NaCl)
0.6%及び酵母3.6%とした。
成分を混合した後、生地を発酵せしめた。30重
量%のIP3を含有するイノシトールホスフエート
類のカルシウム塩0.2gを生地100g当り100mlの
水に加え、次にケーキを成形した。追加の発酵時
間の後、オーブン中でケーキを焼いた。合計発酵
時間は75分間とし、焼き温度は225℃とした。
例1に記載したのと同様にしてケーキを破砕
し、抽出しそして分析した。IP3の量は乾燥ケー
キ100g当り60mgであつた。
例 9
イノシトールホスフエート類のナトリウム塩の
添加後の朝食用加工食品中のIP3含量
1000gの市販コーンフレークス(商標、ケロツ
グ製)に、50%のシユークロース及び10%のイノ
シトールホスフエート類のナトリウム塩(IP3を
30%含量)を含む温(80℃)水溶液を噴霧した。
乾燥した後、例1に記載したのと同様にして朝食
用加工食品を破砕し、抽出し、そして分析した。
IP3の含量は乾物100g当り30mgであつた。
例 10
ナトリウム−イノシトールホスフエートを添加
した食卓塩
D−ミオ−イノシトール−1.2.6−トリホスフ
エートのナトリウム塩を食卓塩と混合してIP3の
最終濃度を200ppmとした。
例 11
イノシトールホスフエート類のナトリウム塩を
添加した飲物
イノシトールホスフエート類のナトリウム塩
(40%のIP3を含有する)の15%水溶液20mlを、5
の市販のコカコーラ(商標)、セブン−アツプ
(商標)、及びオレンジジユースのそれぞれに加え
た。HPLCにより、飲物中のIP4の最終濃度が190
mg/であることが見出された。
例 12
イノシトールホスフエート類のナトリウム塩を
添加した蜜
D−ミオ−イノシトール−1.2.6−トリホスフ
エートのナトリウム塩の20%水溶液5mlを50Kgの
市販蜂蜜に加えた。HPLCにより、イノシトール
トリホスフエートの最終濃度か20mg/Kgであるこ
とが決定された。
例 13
IP3を添加したチヨコレート
1500gの溶融したチヨコレートに、イノシトー
ルホスフエート類のナトリウム塩(30%のIP3を
含有する)の10%水溶液6mlを加え、温度を下
げ、そして最終チヨコレート製品を形成した。
HPLCで測定した場合、チヨコレート中のIP3含
量はチヨコレートKg当り110mgであつた。
例 14
2〜2.5Kgのラビツト(ニユージーランドホワ
イト、雄性)を用いた。これらにイノシトールホ
スフエート類不含餌を10日間供与した後実験に用
いた。
実験開始の2時間前に、ミオ−イノシトール−
1.2.6−トリホスフエートのナトリウム塩50mgを
18動物から成る1群のための餌5gに混合した。
12動物から成る他の群にはイノシトールトリホス
フエートを与えなかつた。[Table] The results show that extended second fermentation time results in a decrease in IP 3 content. Example 4 IP 3 content in bread baked with wheat and oat flour Wheat and oat flour (IP 6 content 0.9%) were combined to bake chemically acidified bread. The dough composition is 37.7% wheat flour and 17.7% oat flour.
%, water 39.5%, salt (NaCl 50% and calcium acetate 50%), sucrose 1%, and baker's yeast 2.8%
%. After mixing these ingredients, the dough was allowed to rise, then shaped and baked. Fermentation time is 90
minutes and the temperature was 37°C. The resulting bread was crushed, extracted and analyzed as described in Example 1. IP 3 content dry bread 100
It was determined to be 120 mg/g. Example 5 IP 3 content in bread baked with whole wheat flour White bread was baked with whole wheat flour (IP 6 content 0.9%).
The dough composition is 55.9% flour, 38.4% water, 3.5% yeast,
Salt (NaCl) was 0.6%, and sucrose was 1.7%. After mixing the ingredients, the dough was allowed to rise and then the bread was formed. After additional fermentation time the bread was baked. Total fermentation time is 60 minutes, baking time is
The temperature was 175℃. The bread was crushed, extracted and analyzed as described in Example 1. IP 3 content is 100g dry bread
It was 70mg per serving. Example 6 IP 3 content in bread baked with rye flour with addition of sodium phytate. %) was used to bake biologically acidified crispy bread. Fermentation time is 225
It was set as 1 minute. The bread was crushed, extracted and analyzed as described in Example 1. The amount of IP 3 in the bread was 180 mg/100 g of dry bread. Example 7 IP 3 content in bread baked on rye flour with addition of calcium magnesium phytate As described in Example 3 but with 100 g of dough
Using rye flour (IP 6 content 1%) with the addition of 1.5 g of calcium magnesium phytate per
Biologically acidified crisp bread baked. Fermentation time was 225 minutes. The bread was crushed, extracted and analyzed as described in Example 1. The amount of IP 3 in bread is per 100g of dry bread.
It was 250 mg. Example 8 IP 3 content in a cake baked in wheat flour with addition of calcium salts of inositol phosphates A cake was baked in wheat flour (IP 6 content 0.2%). The dough composition is 60.1% wheat flour, 35.7% water, and salt (NaCl).
0.6% and yeast 3.6%. After mixing the ingredients, the dough was allowed to rise. 0.2 g of a calcium salt of inositol phosphates containing 30% by weight IP 3 was added to 100 ml of water per 100 g of dough and then the cake was formed. After additional rising time, the cake was baked in the oven. The total fermentation time was 75 minutes and the baking temperature was 225°C. The cake was crushed, extracted and analyzed as described in Example 1. The amount of IP 3 was 60 mg/100 g of dry cake. Example 9 IP 3 content in a processed breakfast food after addition of sodium salts of inositol phosphates 1000 g of commercially available corn flakes (trademark, manufactured by Kellogg) are mixed with 50% sucrose and 10% of sodium salts of inositol phosphates. (IP 3
A hot (80°C) aqueous solution containing 30% content) was sprayed.
After drying, the breakfast food was crushed, extracted and analyzed as described in Example 1.
The content of IP 3 was 30 mg/100 g of dry matter. Example 10 Table Salt Added with Sodium-Inositol Phosphate The sodium salt of D-myo-inositol-1.2.6-triphosphate was mixed with table salt to give a final concentration of IP 3 of 200 ppm. Example 11 Drink with added sodium salt of inositol phosphates 20 ml of a 15% aqueous solution of the sodium salt of inositol phosphates (containing 40% IP 3 )
of commercially available Coca-Cola (trademark), Seven-Up (trademark), and Orange Juice, respectively. Final concentration of IP4 in drinks determined by HPLC: 190
mg/. Example 12 Honey with added sodium salts of inositol phosphates 5 ml of a 20% aqueous solution of the sodium salt of D-myo-inositol-1.2.6-triphosphate was added to 50 kg of commercial honey. The final concentration of inositol triphosphate was determined to be 20 mg/Kg by HPLC. Example 13 Thyokolate with IP 3 To 1500 g of molten thiocholate, add 6 ml of a 10% aqueous solution of the sodium salt of inositol phosphates (containing 30% IP 3 ), reduce the temperature and form the final thiocholate product. did.
The IP 3 content in thiyocholate was 110 mg/kg thiyocholate as determined by HPLC. Example 14 Rabbits (New Zealand White, male) weighing 2-2.5 kg were used. These animals were fed inositol phosphate-free food for 10 days and then used in experiments. Two hours before the start of the experiment, myo-inositol-
1.2.6 - 50 mg of sodium triphosphate
Mixed into 5 g of feed for a group of 18 animals.
Another group of 12 animals did not receive inositol triphosphate.
【表】
サンプルの処理
各動物からの2個の血液サンプルを1200rpmで
10分間遠心し、そして血小板を伴う血漿を得た。
2個のサンプルからの血小板を伴う血漿を、
Born〔ジヤーナル・オブ・フイジオロジー(J.
Physiol.)〕に従つて、アグレゴメーター〔クロ
ノパール・コープ(Chronopar Corp)モデル
440〕中でADP(アデノシンジホスフエート)の
添加に対する応答について分析した。装置の2個
のチヤンネル中で、同一のADP濃度(1〜20マ
イクロモル)において、2個のサンプルを同時に
分析した。
この試験の原理は、血小板を伴う血漿は濁り、
そして低い光透過性を有することである。ADP
を添加した場合、血小板が凝集し、そして凝集塊
を形成する。これが透過の増加をもたらし、この
透過が装置によつて定量される。ADPに対する
応答を、最大凝集を80スケールユニツトとするス
ケールユニツトで測定した。血小板反応性の変化
を検出するこの方法の最大感度を得るため、
ADPの量は5〜30スケールユニツトの応答を惹
起すべきである。これは一般に5μMのADPによ
り達成されるが、幾つかの動物においては一層少
いか又は一層多くの量(1〜20μM)が必要であ
つた。
この試験の結果は、サンプル2の最大凝集(ス
ケールユニツト)マイナスサンプル1の最大凝集
として表わす。
下記の結果が得られた。[Table] Sample processing Two blood samples from each animal were run at 1200 rpm.
Centrifuge for 10 minutes and obtain plasma with platelets. Plasma with platelets from two samples was
Born [Journal of Physiology (J.
Physiol.), an aggregometer [Chronopar Corp model]
440], the response to the addition of ADP (adenosine diphosphate) was analyzed. Two samples were analyzed simultaneously at the same ADP concentration (1-20 micromolar) in two channels of the instrument. The principle of this test is that plasma with platelets becomes cloudy;
And it has low light transmittance. ADP
When added, the platelets aggregate and form clumps. This results in an increase in permeation, which is quantified by the device. Responses to ADP were measured in scale units with maximum aggregation of 80 scale units. To obtain the maximum sensitivity of this method to detect changes in platelet reactivity,
The amount of ADP should elicit a response of 5 to 30 scale units. This is generally achieved with 5 μM ADP, although lower or higher amounts (1-20 μM) were required in some animals. The results of this test are expressed as the maximum aggregation (scale units) of sample 2 minus the maximum aggregation of sample 1. The following results were obtained.
【表】
この実験において用いられた投与量において、
IP3は血小板凝集に対するCdの効果を防止した。
血小板の凝集の増加は、心臓血管系疾患、例え
ば動脈硬化を生じさせる最も重要な因子の1つで
あると考えられ、そしてカドミウムにより誘導さ
れる凝集を防止するIP3の能力は、IP3がこのよう
な疾患の予防又は軽減において非常に有用である
ことを示している。
例 15
実験の開始時に18〜20gの体重を有するマウス
を使用した。実験中及び実験の少なくとも7日前
の間、マウスをイノシトールホスフエート類を含
有しない半合成餌によつて飼育した。マウスを2
群に分けた。
これらに、9日間にわたり毎日、腹腔内注注に
よりそれぞれ生理食塩水及びイノシトールトリホ
スフエート(IP3)を与えた。IP3の投与量は5.0
mg/日であつた。注射体積は0.2mlであつた。
実験の2日目において、第2の腹腔内注射の5
〜10分間後に、すべてのマウスに、50μの塩溶
液中塩化カドミウムとして2.5マイクロキユリー
の 109Cdを静脈内注射した。最後の腹腔内注射の
後マウスを殺し、そして幾つかの器官を摘出しそ
して秤量した。
種々の器官中の放射能を、ガンマーカウンター
で計数することにより測定した。IP3で処理され
た動物の器官中の放射能を、同じ時間にわたり塩
水で処理された対照動物のそれと比較した。結果
において、IP3で処理された動物の器官中の放射
能を、対照中に見出される放射能に対する%とし
て表わした。結果は次の通りであつた。
カドミウム及びIP3で処理されたマウスの器官
レベルを対照レベル%として表わす(対照=100
%)。各群は15マウスから成る。前記対照群は、
上記のように塩溶液及びCdにより処理した。[Table] At the doses used in this experiment,
IP 3 prevented the effect of Cd on platelet aggregation. Increased aggregation of platelets is considered to be one of the most important factors giving rise to cardiovascular diseases, such as arteriosclerosis, and the ability of IP 3 to prevent cadmium-induced aggregation suggests that IP 3 This has been shown to be very useful in preventing or alleviating such diseases. Example 15 Mice with a weight of 18-20 g at the beginning of the experiment were used. During the experiment and for at least 7 days prior to the experiment, mice were fed a semi-synthetic diet containing no inositol phosphates. mouse 2
divided into groups. They received saline and inositol triphosphate (IP 3 ), respectively, by intraperitoneal injection daily for 9 days. IP 3 dosage is 5.0
mg/day. The injection volume was 0.2ml. On the second day of the experiment, a second i.p.
~10 min later, all mice were injected intravenously with 2.5 microcuries of 109 Cd as cadmium chloride in 50 μl saline. After the last intraperitoneal injection, the mice were sacrificed and several organs were removed and weighed. Radioactivity in various organs was measured by counting with a gamma counter. Radioactivity in the organs of animals treated with IP 3 was compared to that of control animals treated with saline for the same time. In the results, the radioactivity in the organs of animals treated with IP 3 was expressed as a % of the radioactivity found in the control. The results were as follows. Organ levels of mice treated with cadmium and IP 3 are expressed as % control level (control = 100
%). Each group consists of 15 mice. The control group was
Treated with salt solution and Cd as above.
【表】
この結果は、IP3が、肝臓及び腎臓を除くすべ
ての試験された器官においてカドミウムレベルの
低下を惹起することを示している。後者の部位に
おいてはCdは比較的安全であると信じられる。
例 16
ヒトにおける喫煙後の血小板凝集に対するIP3
の効果を検討した。
若い健康な男性の非喫煙者に50mgのIP3を含有
するカプセル又は50mgの偽薬を2回与えた。使用
されたIP3はD−ミオ−イノシトール−1.2.6−ト
リホスフエートのカルシウム塩であつた。対象者
及び研究者のいずれもが、対象者にIP3が与えら
れたか又は偽薬が与えられたかを知らないように
した。
カプセル摂取の2時間後に血液サンプルを得
た。次に、対象者は速く続けて2本の巻タバコを
喫つた。この喫煙の後第2の血液サンプルを採取
した。これら2個のサンプルにおけるADP及び
コラーゲンに対する血小板の凝集反応を、例14に
記載したのと実質上同じ方法を用いて決定した。
結果は、喫煙前サンプルから喫煙後サンプルのの
凝集の変化として表わす。+記号は喫煙後に凝集
が一層強くなつたことを示す。Table: The results show that IP 3 causes a decrease in cadmium levels in all organs tested except liver and kidney. Cd is believed to be relatively safe at the latter site. Example 16 IP 3 for platelet aggregation after smoking in humans
We investigated the effects of Young healthy male non-smokers were given two doses of capsules containing 50 mg of IP 3 or 50 mg of a placebo. The IP3 used was the calcium salt of D-myo-inositol-1.2.6-triphosphate. Both subjects and researchers were blinded to whether subjects were given IP 3 or a placebo. Blood samples were obtained 2 hours after capsule ingestion. Next, the subject smoked two cigarettes in quick succession. A second blood sample was taken after this smoking. Platelet aggregation responses to ADP and collagen in these two samples were determined using substantially the same method as described in Example 14.
Results are expressed as the change in aggregation from pre-smoking samples to post-smoking samples. The + sign indicates that the aggregation became stronger after smoking.
【表】
偽薬群においては、喫煙が凝集を増加せしめ、
これは凝集剤の低濃度において最も顕著であつ
た。すべてのケースにおいて、この効果はIP3に
より妨げられた。すなわち、IP3は喫煙により惹
起される血小板凝集の増加を予防した。
例 17
48mmol KH2PO4、2mmolアスコルビン酸ナ
トリウム、0.1mmol H2O2、0.5mlFe、及び1.7m
molデオキシリボースから成る反応混合物を、37
℃にて1時間インキユベートした。1mmol
EDTA又は1mmolイノシトールトリホスフエー
ト(IP3)を含有する同様の反応混合物を同様に
してインキユベートした。IP3としてD−ミオ−
イノシトール−1.2.6−トリホスフエートを使用
した。
インキユベーシヨンの後、50mmol NaOH中
チオバルビツール酸1.65ml及び2.8%トリクロロ
酢酸1.65mlを、2mlの反応混合物に加えた。この
混合物を100℃に20分間加熱し、そしてブランク
として水を用いて532nmにおける吸収を測定し
た。
実験は、Fe2+〔Fe(NH4)SO4〕及びFe3+
(FeCl3)の形態の鉄を用いて行つた。結果は次
の通りであつた。
IP3又はEDTAの存在下でFe2+及びFe3+により
触媒されるフリーラジカルの生成を532nmにお
ける吸収として表わす。
群 Fe2+ Fe3+
対 照 0.76 0.79
EDTA 2.2 1.86
IP3 0.46 0.43
これらの結果は、反応混合物中でのフリーラジ
カルの生成が、IP3の添加後40%減少したことを
示す。EDTAの添加は逆の効果を有した。この
ものはフリーラジカルの生成を強力に増加せしめ
た。こうして、IP3がフリーラジカルのイオン−
依存性生成を減少せしめることが示された。
例 18
脂質ミセル中での脂質の過酸化を検討した。次
の反応混合物を37℃にて2時間インキユベートし
た。
0.4ml クラーク−ルブス(Clark Lubs)緩衝液
(PH5.5)
0.2ml リン脂質リポゾーム
0.1ml 0.5〜5mM IP3又は0.1ml H2O
0.1ml 1mM Fe2+又は0.1mlH2O
0.1ml 4mM Al3+又は0.1mlH2O
0.1ml H2O
IP3はD−ミオ−イノシトール−1.2.6−トリホ
スフエートであつた。インキユベーシヨンの後、
0.5mlのチオバルビツール酸+0.5mlの25%HClを
加え、そしてこの混合物を100℃にて15分間加熱
した。1mlのルブロール(Lubrol)PX1%(シ
グマ)を加え、そして532nmにおける吸収を測
定することにより脂質の過酸化を測定した。結果
は下記の通りであつた。[Table] In the placebo group, smoking increased aggregation;
This was most noticeable at low concentrations of flocculant. In all cases this effect was prevented by IP3 . That is, IP 3 prevented the increase in platelet aggregation induced by smoking. Example 17 48 mmol KH 2 PO 4 , 2 mmol sodium ascorbate, 0.1 mmol H 2 O 2 , 0.5 mlFe, and 1.7 mmol
The reaction mixture consisting of 37 mol deoxyribose
Incubate at ℃ for 1 hour. 1 mmol
Similar reaction mixtures containing EDTA or 1 mmol inositol triphosphate (IP 3 ) were similarly incubated. D-Mio- as IP 3
Inositol-1.2.6-triphosphate was used. After incubation, 1.65 ml of thiobarbituric acid and 1.65 ml of 2.8% trichloroacetic acid in 50 mmol NaOH were added to 2 ml of the reaction mixture. The mixture was heated to 100° C. for 20 minutes and the absorption at 532 nm was measured using water as a blank. The experiment was carried out using Fe 2+ [Fe(NH 4 ) SO 4 ] and Fe 3+
This was done using iron in the form of (FeCl 3 ). The results were as follows. Free radical formation catalyzed by Fe 2+ and Fe 3+ in the presence of IP 3 or EDTA is expressed as absorption at 532 nm. Group Fe 2+ Fe 3+ Control 0.76 0.79 EDTA 2.2 1.86 IP 3 0.46 0.43 These results show that the production of free radicals in the reaction mixture was reduced by 40% after the addition of IP 3 . Addition of EDTA had the opposite effect. This strongly increased the production of free radicals. In this way, IP 3 is a free radical ion −
It has been shown to reduce dependence generation. Example 18 Lipid peroxidation in lipid micelles was investigated. The next reaction mixture was incubated at 37°C for 2 hours. 0.4ml Clark Lubs buffer (PH5.5) 0.2ml Phospholipid liposomes 0.1ml 0.5-5mM IP 3 or 0.1ml H2O 0.1ml 1mM Fe2 + or 0.1mlH2O 0.1ml 4mM Al3 + or 0.1 ml H2O 0.1 ml H2O IP 3 was D-myo-inositol-1.2.6-triphosphate. After incubation,
0.5ml thiobarbituric acid + 0.5ml 25% HCl was added and the mixture was heated at 100°C for 15 minutes. Lipid peroxidation was determined by adding 1 ml of Lubrol PX 1% (Sigma) and measuring absorbance at 532 nm. The results were as follows.
【表】【table】
【表】
Fe2+は脂質の過酸化を惹起した(群1:10)。
Al3+自体は過酸化を惹起しなかつた(群2:10)
が、Fe2++Al3+の組合わせは、Fe2+のみに比べ
て非常に強い過酸化を惹起した(1:3)。IP3の
添加がFe2+とAl3+との間の相互作用を完全に防
止した(3:4)。Fe2+のみの系において、IP3は
ラジカル生成の顕著な減少を惹起した(1:5〜
9)。
例 19
小麦中のフイチン酸の加水分解、抽出及びIP3
の分析
1%のミオ−イノシトールヘキサホスフエート
(IP6)を含有する破砕した小麦種子100gを1000
mlの酢酸ナトリウム緩衝液PH5.2中で35℃にてイ
ンキユベートした。30分間のインキユベーシヨン
の後、加水分解を停止するためスラリーを−10℃
にて凍結した。
10gのこの凍結物を100mlの0.4M HClにより
抽出した。この懸濁液を1時間振とうし、そして
遠心分離した。上清を集め、そしてNaOH水溶
液によりPH7に中和した。上清のサンプルを
HPLCで中和した。明確に定義されたイノシトー
ルホスフエート類を用いて分析方法を定量化し
た。抽出物のIP3含量は、イノシトールトリホス
フエート10mgであつた。
例 20
ホワイトビーン(white bean)中のフイチン
酸の加水分解、抽出及びIP3の分析
例19に記載したのと同じ方法を用いた。但し、
1%のミオ−イノシトールヘキサホスフエートを
含有する白豆100gを55℃にて10時間インキユベ
ートした。
10gの凍結物を100mlの0.4M HClにより抽出
した。懸濁液を1時間振とうし、そして次に遠心
した。上清を集め、そしてNaOH水溶液により
PH7に中和した。上清のサンプルをHPLCにより
分析した。抽出物のIP3含量は5mgであつた。
例 21
微生物由来のフイターセ源の添加後の大豆中の
フイチン酸の加水分解、抽出及びIP3の分析
300gの大豆を一夜浸漬し(IP6含量1.4%)、剥
皮し、そして次に30分間煮沸した。1gのリゾプ
ス・オリゴスポルス(Rhizopus oligosporus)
(NRRL 2710)含有する水3mlを添加し、そし
てこの混合物を40℃にて20時間インキユベートし
た。10gの混合物を抽出し、そして例19に記載し
たようにしてHPLCにより分析した。抽出物の
IP3含量は160mgであつた。
例 22
ホワイトビーン中のフイチン酸の粗小麦フイタ
ーゼによる加水分解、抽出及びIP3の分析
1%のミオ−イノシトールヘキサホスフエート
を含有する原料豆を1000mlの酢酸ナトリウム緩衝
液PH5.2に懸濁した。500mgの粗製小麦フイターゼ
(シグマケミカル社製)を加えた。この混合物を、
振とうしながら55℃にてインキユベートした。12
時間のインキユベーシヨンの後、スラリーを−10
℃に凍結して加水分解を停止せしめた。
10gの凍結物を100mlの0.4M HClで抽出した。
懸濁液を1時間振とうし、そして次に遠心した。
上清を集め、そしてNaOH水溶液によりPH7に
中和した。上清のサンプルをHPLCにより分析し
た。抽出物のIP3含量は40mgであつた。
例 23
フイチン酸ナトリウムの添加及び加水分解後の
ホワイトビーン中のIP3含量
0.3gのフイチン酸ナトリウムを破砕したホワ
イトビーン(IP61%)100gに加えた。この混合
物を1000mlの酢酸ナトリウム緩衝液PH5.2中で55
℃にてインキユベートした。4時間インキユベー
シヨンした後、スラリーを−10℃に凍結して加水
分解を停止した。10gの凍結物を抽出し、そして
例19に記載したようにして分析した。抽出物の
IP3含量は15mgであつた。
例 24
1%のイノシトールヘキサホスフエート(IP6)
を含有する米ぬか1.0Kgを、10の酢酸ナトリウ
ム緩衝液(PH5)中に25℃にて懸濁した。4時間
後50%の無機リンが遊離した後、スラリーを1
の2M HClにより抽出した。懸濁液を1時間振と
うし、そして次に遠心分離した。上清をCa
(OH)2の水溶液によりPH7に中和した。5の
エタノールを加えて沈澱を得た。種々のイノシト
ールホスフエート類の組成のカルシウム塩を遠心
分離し、乾燥し、そして再結晶化した。20mgの再
結晶化カルシウム塩を、希塩酸の添加によつて酸
形にし、そしてHPLCにより分析した。この組成
物は20%のイノシトールトリホスフエートを含ん
でいた。残りは他のイノシトールホスフエート類
であつた。
例 25
小麦フイターゼによるフイチン酸ナトリウムの
加水分解及びイノシトールホスフエート類の混
合物の分画
1.6gのフイチン酸ナトリウム(トウモロコシ
由来、シグマケミカル製)を650mlの酢酸ナトリ
ウム緩衝液(PH5.2)に溶解した。2.7gの小麦フ
イターゼ(EC3.1.3.26、0.015U/mg、シグマケミ
カル製)を加え、そして混合物を38℃にてインキ
ユベートした。
遊離される無機リンを測定することによつて脱
リン酸を追跡した。3時間後50%の無機リンが遊
離した時、30mlのアンモニアを加えてPHを12にす
ることによつて加水分解を停止せしめた。イノシ
トールホスフエート類を含有する液体混合物を得
た。
350mlの混合物をイオン交換カラム(ダウエツ
クス1、クロライド形、25mm×250mm)に通し、
そして塩酸(0〜0.7N)の直線グラジエントに
より溶出した。リン及びイノシトールの含量を決
定するため、溶出画分のアリコートを完全加水分
解した。複数のピークが種々のイノシトールホス
フエートに対応した。すなわち、リンとイノシト
ールの比が3:1のピークはイノシトールトリホ
スフエートから成る……等々。リンとイノシトー
ルの比率が3:1である2つの画分が得られた。
例 26
イノシトールトリホスフエートの分画
例25において得られた、リン/イノシトール比
が3:1である第一画分100mlを中和し、そして
10%過剰量の0.1M酢酸バリウム溶液を添加した
後バリウム塩として沈澱せしめた。600mgの沈澱
した塩を50mlの希塩酸に溶解した。この溶液をイ
オン交換カラム(ダウエツクス1、クロライド
形、25mm×2500mm)上で溶離剤として希塩酸を用
いて分離した。溶出した画分のアリコートをリン
について分析した。イノシトールトリホスフエー
トの異性体から成る3個のピークを観察すること
ができた。
例 27
NMRによるイノシトールトリホスフエートの
異性体の構造決定
例26において得られた3個のピークを、H−
NMRにより分析した。このデータは、これらの
ピークがそれぞれミオ−イノシトール−1.2.6−
トリホスフエート、ミオ−イノシトール−1.2.3
−トリホスフエート、及びミオ−イノシトール−
1.3.4−トリホスフエートから成ることを示して
いる。
リン/イノシトールの比が3:1である例25に
おいて得られた第2画分をH−NMRにより分析
した。このデータは、この画分がミオ−イノシト
ール−1.2.5−トリホスフエートから成ることを
示している。
例 28
イノシトールトリホスフエートの光学異性体の
決定
例27のH−NMRによつてミオ−イノシトール
−1.2.6−トリホスフエート及びミオ−イノシト
ール−1.3.4−トリホスフエートであると決定さ
れた化合物20mgをさらに、アセチル化セルロース
を基礎とするキラルカラム(20mm×300mm、メル
ク製)上で、溶離剤としてエタノールと水の混合
物を用いてクロマトグラフ処理した。画分を旋光
計により分析した。各化合物はそれぞれ1つの光
学異性体であるD−ミオ−イノシトール−1.2.6
−トリホスフエート、及びL−ミオ−イノシトー
ル−1.3.4−トリホスフエートから成る。
例 29
パン酵母によるフイチン酸ナトリウムの加水分
解及びイノシトールホスフエート類の混合物の
分画
0.7gのフイチン酸ナトリウム(トウモロコシ
由来、シグマケミカル製)を600mlの酢酸ナトリ
ウム緩衝液(PH4.6)に溶解した。ゼストボラゲ
ト(Ja¨stblaget)、スエーデンからのパン酵母
(乾物28%、窒素含量2%、リン含量0.4%)50g
を撹拌しながら加え、そして45℃にてインキユベ
ーシヨンを行つた。遊離する無機リンを測定する
ことにより脱リン酸を追跡した。7時間後50%の
無機リンが遊離した時、30mlのアンモニアを加え
てPH12にすることにより加水分解を停止した。懸
濁液を遠心し、そして上清を集めた。
400mlの上清をイオン交換カラム(ダウエツク
ス1、クロライド形、25mm×250mm)に通し、そ
して塩酸の直線グラジエント(0〜0.7N HCl)
により溶出した。
リン及びイノシトールの含量を決定するため、
溶出画分のアリコートを完全加水分解した。各ピ
ークが異るイノシトールホスフエート類に対応し
た。すなわち、リンとイノシトールの比率3:1
であるピークはイノシトールトリホスフエートか
ら成る……等。
例 30
イノシトールトリホスフエートの異性体の構造
決定
リン/イノシトール比が3:1である例29にお
いて得られた画分を中和し、そして蒸発せしめ、
この後でH−NMR分析を行つた。データは、こ
のピークがミオ−イノシトール−1.2.6−トリオ
スフエートから成ることを示している。
例 31
ミオ−イノシトールトリホスフエートの光学異
性体の決定
例28に記載したのと同じ方法を使用した。但
し、例30のNMRにより決定された化合物10mgを
分析した。明らかなように、この化合物は1つの
光学異性体D−ミオ−イノシトール−1.2.6−ト
リホスフエートから成る。
この発明を一層よく理解するため、この発明の
幾つかのIP3異性体の式を記載する。IP6、IP5、
IP4及びIP2の式も記載する。
ミオイノシトールの低級リン酸エステルは、リ
ン酸基がイノシトール環上に位置する場所によつ
て命名し、この場合可能な限り小さい位置番号を
与えるようにする。アクシアルリン酸基を有する
炭素原子は常に位置番号2を有する。下記の構造
式は酸形に単純化されている。[Table] Fe 2+ induced lipid peroxidation (Group 1: 10).
Al 3+ itself did not cause peroxidation (group 2: 10)
However, the combination of Fe 2+ + Al 3+ caused much stronger peroxidation than Fe 2+ alone (1:3). Addition of IP 3 completely prevented the interaction between Fe 2+ and Al 3+ (3:4). In Fe 2+ -only systems, IP 3 induced a significant reduction in radical generation (1:5 ~
9). Example 19 Hydrolysis, extraction and IP of phytic acid in wheat 3
Analysis of 100 g of crushed wheat seeds containing 1% myo-inositol hexaphosphate (IP 6 )
ml of sodium acetate buffer PH5.2 at 35°C. After 30 minutes of incubation, the slurry was heated to -10°C to stop hydrolysis.
It was frozen at. 10 g of this frozen material was extracted with 100 ml of 0.4M HCl. The suspension was shaken for 1 hour and centrifuged. The supernatant was collected and neutralized to pH 7 with aqueous NaOH. A sample of the supernatant
Neutralized by HPLC. The analytical method was quantified using well-defined inositol phosphates. The IP 3 content of the extract was 10 mg of inositol triphosphate. Example 20 Hydrolysis, extraction and IP 3 analysis of phytic acid in white beans The same method as described in Example 19 was used. however,
100 g of white beans containing 1% myo-inositol hexaphosphate were incubated at 55° C. for 10 hours. 10 g of frozen material was extracted with 100 ml of 0.4M HCl. The suspension was shaken for 1 hour and then centrifuged. Collect the supernatant and dilute with NaOH aqueous solution.
Neutralized to PH7. A sample of the supernatant was analyzed by HPLC. The IP 3 content of the extract was 5 mg. Example 21 Analysis of hydrolysis, extraction and IP 3 of phytic acid in soybeans after addition of a microbially derived phytase source 300 g of soybeans were soaked overnight (IP 6 content 1.4%), peeled and then boiled for 30 minutes. did. 1g of Rhizopus oligosporus
3 ml of water containing (NRRL 2710) were added and the mixture was incubated at 40° C. for 20 hours. 10 g of the mixture was extracted and analyzed by HPLC as described in Example 19. extract of
IP 3 content was 160 mg. Example 22 Hydrolysis of phytic acid in white beans by crude wheat phytase, extraction and IP 3 analysis Raw beans containing 1% myo-inositol hexaphosphate were suspended in 1000 ml of sodium acetate buffer pH 5.2. . 500 mg of crude wheat phytase (manufactured by Sigma Chemical Co.) was added. This mixture
Incubation was performed at 55°C with shaking. 12
After incubation for -10 hours, the slurry
The hydrolysis was stopped by freezing at ℃. 10 g of frozen material was extracted with 100 ml of 0.4M HCl.
The suspension was shaken for 1 hour and then centrifuged.
The supernatant was collected and neutralized to pH 7 with aqueous NaOH. A sample of the supernatant was analyzed by HPLC. The IP 3 content of the extract was 40 mg. Example 23 IP 3 content in white beans after addition of sodium phytate and hydrolysis 0.3 g of sodium phytate was added to 100 g of crushed white beans (IP 6 1%). This mixture was dissolved in 1000ml of sodium acetate buffer PH5.2 at 55%
Incubated at ℃. After 4 hours of incubation, the slurry was frozen to -10°C to stop hydrolysis. 10 g of frozen material was extracted and analyzed as described in Example 19. extract of
IP 3 content was 15 mg. Example 24 1% inositol hexaphosphate (IP 6 )
1.0 kg of rice bran containing 1.0 kg of rice bran was suspended in 10% sodium acetate buffer (PH5) at 25°C. After 4 hours and 50% of inorganic phosphorus has been liberated, the slurry is
of 2M HCl. The suspension was shaken for 1 hour and then centrifuged. Supernatant Ca
Neutralized to pH 7 with an aqueous solution of (OH) 2 . 5 was added to obtain a precipitate. Calcium salts of various inositol phosphate compositions were centrifuged, dried, and recrystallized. 20 mg of recrystallized calcium salt was brought into acid form by addition of dilute hydrochloric acid and analyzed by HPLC. This composition contained 20% inositol triphosphate. The remainder were other inositol phosphates. Example 25 Hydrolysis of sodium phytate by wheat phytase and fractionation of a mixture of inositol phosphates 1.6 g of sodium phytate (derived from corn, manufactured by Sigma Chemical) was dissolved in 650 ml of sodium acetate buffer (PH 5.2). . 2.7g of wheat phytase (EC3.1.3.26, 0.015U/mg, manufactured by Sigma Chemical) was added and the mixture was incubated at 38°C. Dephosphorylation was followed by measuring the inorganic phosphorus released. After 3 hours, when 50% of the inorganic phosphorus was liberated, the hydrolysis was stopped by adding 30 ml of ammonia to bring the pH to 12. A liquid mixture containing inositol phosphates was obtained. Pass 350 ml of the mixture through an ion exchange column (Dowex 1, chloride type, 25 mm x 250 mm).
It was then eluted with a linear gradient of hydrochloric acid (0-0.7N). An aliquot of the elution fraction was completely hydrolyzed to determine the phosphorus and inositol content. Multiple peaks corresponded to different inositol phosphates. That is, a peak with a phosphorus to inositol ratio of 3:1 is composed of inositol triphosphate, etc. Two fractions were obtained with a 3:1 ratio of phosphorus to inositol. Example 26 Fractionation of inositol triphosphate 100 ml of the first fraction obtained in Example 25 with a phosphorus/inositol ratio of 3:1 was neutralized and
After adding a 10% excess of 0.1 M barium acetate solution, the barium salt was precipitated. 600 mg of precipitated salt was dissolved in 50 ml of dilute hydrochloric acid. This solution was separated on an ion exchange column (Dowex 1, chloride form, 25 mm x 2500 mm) using dilute hydrochloric acid as the eluent. An aliquot of the eluted fraction was analyzed for phosphorus. Three peaks consisting of isomers of inositol triphosphate could be observed. Example 27 Structural determination of isomers of inositol triphosphate by NMR The three peaks obtained in Example 26 were combined with H-
Analyzed by NMR. This data indicates that these peaks are respectively myo-inositol-1.2.6-
Triphosphate, myo-inositol-1.2.3
-Triphosphate and myo-inositol-
1.3.4- indicates that it consists of triphosphate. The second fraction obtained in Example 25 with a phosphorus/inositol ratio of 3:1 was analyzed by H-NMR. This data indicates that this fraction consists of myo-inositol-1.2.5-triphosphate. Example 28 Determination of optical isomers of inositol triphosphate 20 mg of the compounds determined by H-NMR of Example 27 to be myo-inositol-1.2.6-triphosphate and myo-inositol-1.3.4-triphosphate were further added. , chromatographed on an acetylated cellulose-based chiral column (20 mm x 300 mm, Merck) using a mixture of ethanol and water as eluent. Fractions were analyzed by polarimetry. Each compound has one optical isomer, D-myo-inositol-1.2.6
-triphosphate, and L-myo-inositol-1.3.4-triphosphate. Example 29 Hydrolysis of sodium phytate by baker's yeast and fractionation of a mixture of inositol phosphates 0.7 g of sodium phytate (derived from corn, manufactured by Sigma Chemical) was dissolved in 600 ml of sodium acetate buffer (PH 4.6). . Ja¨stblaget, baker's yeast from Sweden (28% dry matter, 2% nitrogen content, 0.4% phosphorus content) 50 g
was added with stirring, and incubation was carried out at 45°C. Dephosphorylation was followed by measuring liberated inorganic phosphorus. After 7 hours, when 50% of the inorganic phosphorus was liberated, the hydrolysis was stopped by adding 30 ml of ammonia to bring the pH to 12. The suspension was centrifuged and the supernatant was collected. 400 ml of supernatant was passed through an ion exchange column (Dowex 1, chloride form, 25 mm x 250 mm) and a linear gradient of hydrochloric acid (0 to 0.7 N HCl).
It was eluted by To determine the content of phosphorus and inositol,
An aliquot of the elution fraction was completely hydrolyzed. Each peak corresponded to a different inositol phosphate. That is, the ratio of phosphorus to inositol is 3:1.
The peak that is composed of inositol triphosphate...etc. Example 30 Structural Determination of Isomers of Inositol Triphosphate The fractions obtained in Example 29 with a phosphorus/inositol ratio of 3:1 were neutralized and evaporated,
After this, H-NMR analysis was performed. The data show that this peak consists of myo-inositol-1.2.6-triosphate. Example 31 Determination of optical isomers of myo-inositol triphosphate The same method as described in Example 28 was used. However, 10 mg of the compound determined by NMR in Example 30 was analyzed. As can be seen, this compound consists of one optical isomer, D-myo-inositol-1.2.6-triphosphate. In order to better understand this invention, the formulas of several IP 3 isomers of this invention are provided. IP6 , IP5 ,
Formulas for IP 4 and IP 2 are also listed. Lower phosphate esters of myo-inositol are named according to where the phosphate group is located on the inositol ring, trying to give the lowest possible position number. The carbon atom bearing the axial phosphate group always has position number 2. The structural formulas below are simplified to the acid form.
【表】【table】
【表】
上記の構造式において=−O−PO3H2であ
る。[Table] In the above structural formula, =-O-PO 3 H 2 .
Claims (1)
シトールトリホスフエート(IP3)を実質上含有
しない食品組成物に、組成物100g当り5mg以上
のIP3の最終濃度をもたらすのに十分な量のIP3源
を添加することを含んで成る方法。 2 前記IP3源がIP3である特許請求の範囲第1項
記載の方法。 3 前記IP3源がフイターゼの存在でのイノシト
ールヘキサホスフエート(IP6)、イノシトールペ
ンタホスフエート(IP5)及び/又はイノシトー
ルテトラホスフエート(IP4)である特許請求の
範囲第1項記載の方法。 4 前記IP3源が次のIP3異性体、すなわちD−ミ
オ−イノシトール−1,2,6−トリホスフエー
ト、D−ミオ−イノシトール−1,2,5−トリ
ホスフエート、ミオ−イノシトール−1,2,3
−トリホスフエート、L−ミオ−イノシトール−
1,3,4−トリホスフエート、又はD−ミオ−
イノシトール−1,4,5−トリホスフエートの
少なくとも1種である特許請求の範囲第1項記載
の方法。 5 組成物を構成する材料中フイターゼの含量並
びにIP4、IP5、及びIP6から成る群から選択され
たイノシトールホスフエートの含量を確立し、そ
して製造工程の少なくとも1つの段階において、
組成物100g当り20mg以上のIP3含量が得られるよ
うにインキユベーシヨンを行うことができるよう
に処理の時間及び温度並びにPH値を制御する特許
請求の範囲第1項記載の方法。 6 前記組成物が固体であり、そしてIP3の含量
が乾燥組成物100g当り20mg以上である特許請求
の範囲第1項記載の方法。 7 前記組成物が穀類を基礎とする材料である特
許請求の範囲第1項記載の方法。 8 前記組成物が朝食用加工食品、ケーキ及びビ
スケツトから成る群から選択される特許請求の範
囲第7項に記載の方法。 9 前記組成物が菓子、チヨコレート及びチユー
インガムから成る群から選択される特許請求の範
囲第1項に記載の方法。 10 前記組成物が野菜である特許請求の範囲第
1項記載の方法。 11 前記組成物がパンであり、そしてIP3の含
量が乾燥パン100g当り50mg以上である特許請求
の範囲第6項記載の方法。 12 前記組成物が飲料及びスープから成る群か
ら選択される特許請求の範囲第1項記載の方法。 13 インキユベーシヨンを別途実施し、そして
得られたIP3含有生成物を組成物に添加して所望
のIP3含量を制御する特許請求の範囲第5項記載
の方法。 14 フイターゼを酵母の形で添加する特許請求
の範囲第3項記載の方法。 15 インキユベーシヨン段階での温度範囲が20
℃〜70℃でありそしてPH値が4〜8の範囲である
特許請求の範囲第5項記載の方法。 16 IP3濃度が乾燥組成物100g当り20mg〜500
mgである特許請求の範囲第1項に記載の方法。 17 IP3濃度が乾燥組成物100g当り50mg〜500
mgである特許請求の範囲第1項記載の方法。 18 前記組成物が液体の形であり、そしてIP3
濃度が該液体組成物100g当り5mg〜300mgである
特許請求の範囲第1項記載の方法。 19 最初に組成物100g当り約10mg未満のIP3を
含有する組成物から食品組成物を製造する方法で
あつて、前記IP3の含量をIP3又はIP3源の添加に
よつて、あるいはIP6、IP5及びIP4から成る群か
ら選択される最初に含まれていたイノシトールホ
スフエートの酵素的処理による転換によつて、組
成物100g当り20mg以上に増加せしめることを特
徴とする製造方法。 20 前記組成物が穀類を基礎とする材料、菓
子、チヨコレート、チユーインガム、野菜、果
物、飲料及びスープから成る群から選択される特
許請求の範囲第19項記載の方法。 21 IP3の含量を組成物100gに対して30mg以
上、そして好ましくは50〜500mgまで増加せしめ
る特許請求の範囲第19項記載の方法。 22 食品組成物の製造方法であつて、該組成物
を構成する材料中、フイターゼの量並びにIP4、
IP5及びIP6から成る群から選ばれるイノシトール
ホスフエートの量を確立し、そして十分量のIP3
を得るためにIP4、IP5及びIP6の加水分解の程度
が40〜70%であるようにインキユベートすること
を可能にするために処理時間及び温度並びにPH値
を制御することを特徴とする方法。 23 IP3の濃度が乾燥組成物100g当り5mg以上
であり、そしてIP3が組成物に添加されたもので
ありそして/又はフイターゼとIP4、IP5及びIP6
から成る群から選択されたイノシトールホスフエ
ートとの添加により生成したものであることを特
徴とするIP3を含有する食品組成物。 24 前記食品組成物が非穀類製食品であり、組
成物100g当り5mg以上のIP3含量を有する特許請
求の範囲第23項に記載の組成物。 25 IP3の含量が組成物100g当り10mgそして好
ましくは20〜500mgの範囲である特許請求の範囲
第24項記載の組成物。 26 前記組成物が菓子、チヨコレート、チユー
インガム、野菜、果物、飲物及びスープから成る
群から選択される特許請求の範囲24項記載の組
成物。 27 前記IP3が、次の異性体、すなわちD−ミ
オ−イノシトール−1,2,6−トリホスフエー
ト、D−ミオ−イノシトール−1,2,5−トリ
ホスフエート、ミオ−イノシトール−1,2,3
−トリホスフエート、L−ミオ−イノシトール−
1,3,4−トリホスフエート、又はD−ミオ−
イノシトール−1,4,5−トリホスフエートの
少なくとも1種である特許請求の範囲第24項記
載の組成物。 28 前記食品組成物がパン食品であり、IP3の
濃度が乾燥組成物100g当り20mg以上であり、天
然に含有されるIP6及び/又は添加されたIP6の加
水分解の程度が40〜70%である特許請求の範囲第
23項に記載の組成物。 29 IP3の濃度が乾燥組成物100g当り30mg以
上、そして好ましくは50〜500mgである特許請求
の範囲第28項記載の組成物。 30 前記パン食品がパン、朝食用加工食品、ビ
スケツト及びケーキから成る群から選択される特
許請求の範囲第28項記載の組成物。 31 前記IP3が実質上D−ミオ−イノシトール
−1,2,6−トリホスフエートである特許請求
の範囲第28項記載の組成物。 32 前記IP3が、IP4、IP5及びIP6から選択され
たイノシトールホスフエート由来の加水分解生成
物であり、ここで異るイノシトールホスフエート
の含量を示す分布曲線がIP3について最大を有す
る特許請求の範囲第24項〜第28項のいずれか
1項に記載の組成物。 33 IP3の含量がイノシトールホスフエートの
合計量の40重量%より多くそして残りのイノシト
ールホスフエートの30〜85重量%がIP2及びIP4か
ら成る特許請求の範囲第32項に記載の組成物。 34 食品として許容される増量剤中IP3を含ん
で成る濃厚形である特許請求の範囲第24項記載
の組成物。[Claims] 1. A method for producing a food composition, which comprises first adding to a food composition substantially free of inositol triphosphate (IP 3 ) a final concentration of 5 mg or more of IP 3 per 100 g of the composition. a method comprising adding a source of IP3 in an amount sufficient to provide a. 2. The method of claim 1, wherein the IP3 source is IP3 . 3. The method according to claim 1, wherein the source of IP3 is inositol hexaphosphate ( IP6 ), inositol pentaphosphate ( IP5 ) and/or inositol tetraphosphate ( IP4 ) in the presence of phytase. Method. 4. The IP 3 source is the following IP 3 isomers: D-myo-inositol-1,2,6-triphosphate, D-myo-inositol-1,2,5-triphosphate, myo-inositol-1,2, 3
-Triphosphate, L-myo-inositol-
1,3,4-triphosphate, or D-myo-
The method according to claim 1, wherein at least one inositol-1,4,5-triphosphate is used. 5. Establishing the content of phytase and the content of inositol phosphate selected from the group consisting of IP 4 , IP 5 and IP 6 in the materials making up the composition, and in at least one step of the manufacturing process,
2. The method according to claim 1, wherein the time and temperature of the treatment and the pH value are controlled so that the incubation can be carried out so as to obtain an IP 3 content of 20 mg or more per 100 g of the composition. 6. The method of claim 1, wherein the composition is a solid and the content of IP 3 is greater than or equal to 20 mg per 100 g of dry composition. 7. The method of claim 1, wherein said composition is a cereal-based material. 8. The method of claim 7, wherein said composition is selected from the group consisting of breakfast foods, cakes and biscuits. 9. The method of claim 1, wherein said composition is selected from the group consisting of confectionery, tyokolate, and chewing gum. 10. The method of claim 1, wherein said composition is a vegetable. 11. The method of claim 6, wherein the composition is bread and the content of IP3 is 50 mg or more per 100 g of dry bread. 12. The method of claim 1, wherein said composition is selected from the group consisting of beverages and soups. 13. The method of claim 5, wherein the incubation is carried out separately and the resulting IP 3 -containing product is added to the composition to control the desired IP 3 content. 14. The method according to claim 3, wherein the phytase is added in the form of yeast. 15 Temperature range at incubation stage is 20
6. The method according to claim 5, wherein the temperature is 0.degree. C. to 70.degree. C. and the pH value is in the range 4 to 8. 16 IP 3 concentration is 20 mg to 500 per 100 g of dry composition
The method according to claim 1, wherein the method is mg. 17 IP 3 concentration is 50 mg to 500 per 100 g of dry composition
The method according to claim 1, wherein the method is mg. 18 The composition is in liquid form and has an IP 3
A method according to claim 1, wherein the concentration is from 5 mg to 300 mg per 100 g of said liquid composition. 19. A method of preparing a food composition from a composition initially containing less than about 10 mg of IP 3 per 100 g of the composition, the content of said IP 3 being reduced by the addition of IP 3 or a source of IP 3 ; 6 , IP 5 and IP 4 by conversion by enzymatic treatment to increase the amount of inositol phosphate to 20 mg or more per 100 g of the composition. 20. The method of claim 19, wherein said composition is selected from the group consisting of cereal-based ingredients, confectionery, tyokolate, chewing gum, vegetables, fruits, beverages, and soups. 21. The method according to claim 19, wherein the content of IP 3 is increased to 30 mg or more and preferably 50 to 500 mg per 100 g of the composition. 22 A method for producing a food composition, which comprises determining the amount of phytase and IP 4 in the materials constituting the composition;
Establish an amount of inositol phosphate selected from the group consisting of IP 5 and IP 6 , and a sufficient amount of IP 3
characterized by controlling the processing time and temperature as well as the PH value to allow incubation so that the degree of hydrolysis of IP 4 , IP 5 and IP 6 is 40-70% to obtain Method. 23 The concentration of IP 3 is 5 mg or more per 100 g of dry composition and IP 3 is added to the composition and/or phytase and IP 4 , IP 5 and IP 6
A food composition containing IP 3 , characterized in that it is produced by the addition of an inositol phosphate selected from the group consisting of: 24. The composition of claim 23, wherein the food composition is a non-grain food and has an IP 3 content of 5 mg or more per 100 g of the composition. 25. A composition according to claim 24, wherein the content of IP3 is 10 mg per 100 g of the composition and preferably ranges from 20 to 500 mg. 26. The composition of claim 24, wherein said composition is selected from the group consisting of confectionery, tyokolate, chewing gum, vegetables, fruits, drinks and soups. 27 The above IP 3 is the following isomers, namely D-myo-inositol-1,2,6-triphosphate, D-myo-inositol-1,2,5-triphosphate, myo-inositol-1,2,3
-Triphosphate, L-myo-inositol-
1,3,4-triphosphate, or D-myo-
25. The composition according to claim 24, which is at least one inositol-1,4,5-triphosphate. 28 The food composition is a bread food, the concentration of IP 3 is 20 mg or more per 100 g of the dry composition, and the degree of hydrolysis of naturally contained IP 6 and/or added IP 6 is 40 to 70 % of the composition of claim 23. 29. A composition according to claim 28, wherein the concentration of IP3 is greater than or equal to 30 mg and preferably from 50 to 500 mg per 100 g of dry composition. 30. The composition of claim 28, wherein the bread food is selected from the group consisting of bread, breakfast food, biscuits, and cakes. 31. The composition of claim 28, wherein said IP3 is substantially D-myo-inositol-1,2,6-triphosphate. 32 said IP 3 is a hydrolysis product derived from an inositol phosphate selected from IP 4 , IP 5 and IP 6 , wherein the distribution curve indicating the content of different inositol phosphates has a maximum for IP 3 ; The composition according to any one of claims 24 to 28. 33. The composition according to claim 32, wherein the content of IP 3 is greater than 40% by weight of the total amount of inositol phosphates and 30-85% by weight of the remaining inositol phosphates consists of IP 2 and IP 4 . . 34. The composition of claim 24 in a concentrated form comprising IP 3 in a food-acceptable filler.
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