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JPH0352959B2 - - Google Patents
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JPH0352959B2 - - Google Patents

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JPH0352959B2
JPH0352959B2 JP17004684A JP17004684A JPH0352959B2 JP H0352959 B2 JPH0352959 B2 JP H0352959B2 JP 17004684 A JP17004684 A JP 17004684A JP 17004684 A JP17004684 A JP 17004684A JP H0352959 B2 JPH0352959 B2 JP H0352959B2
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JP
Japan
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tryptophan
medium
strain
anthranilic acid
bacillus
Prior art date
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Application number
JP17004684A
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Japanese (ja)
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JPS6152276A (en
Inventor
Juichi Shinsho
Akyoshi Yamashita
Akira Nakayama
Yoshihiko Murata
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Resonac Holdings Corp
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Showa Denko KK
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Publication date
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  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

【発明の詳細な説明】 産業上の利用分野 本発明は5−フルオロトリプトフアン耐性を有
しかつアンスラニル酸要求性を有するバチルス属
に属する菌株を復帰変異せしめてアンスラニル酸
非要求性としたL−トリプトフアン生産能を有す
る微生物を用いたL−トリプトフアンの製造法に
関する。
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION Field of Industrial Application The present invention is directed to the production of L. - A method for producing L-tryptophan using a microorganism capable of producing tryptophan.

L−トリプトフアンは必須アミノ酸として重要
な化合物であり、医薬品或いは食品、飼料の添加
剤として利用されている。
L-tryptophan is an important compound as an essential amino acid, and is used as an additive for medicines, foods, and feeds.

従来の技術及び発明が解決しようとする問題点 前述の如く、L−トリプトフアンは必須アミノ
酸として重要な化合物であり、特に栄養学的に不
足しやすい物質であるためその経済的な工業的製
造法の開発が強く望まれている。かかる観点から
従来種々の化学的又は微生物学的合成方法が提唱
されている。そのようなL−トリプトフアンの合
成方法の一例として微生物を用いてアンスラニル
酸やインドールなどの前駆物質からL−トリプト
フアンを製造する方法が知られている。
Problems to be Solved by the Prior Art and the Invention As mentioned above, L-tryptophan is an important compound as an essential amino acid, and is a substance that is particularly susceptible to nutritional deficiency, so an economical industrial production method for it has not been developed. Development is strongly desired. From this point of view, various chemical or microbiological synthesis methods have been proposed. As an example of such a method for synthesizing L-tryptophan, a method is known in which L-tryptophan is produced from precursors such as anthranilic acid and indole using microorganisms.

しかしながら、この場合に比較的多量のアンス
ラニル酸を培養系に添加すると、L−トリプトフ
アンの生合成が阻害されるため高濃度のL−トリ
プトフアン含有培養液を得ることが困難であり、
実用化の障害となつていた。このような状況下に
トリプトフアンアナログ体、例えば5−フルオロ
トリプトフアンや5−メチルトリプトフアンに耐
性を有する変異菌株を用いて、L−トリプトフア
ンによりトリプトフアン生合成系酵素の生産抑制
を解除して直接醗酵法によりL−トリプトフアン
を製造する方法が提案されている。しかしなが
ら、従来、トリプトフアン生合成系酵素の一つで
あるアンスラニル酸合成酵素へのL−トリプトフ
アンによる活性阻害を解除した例はなかつた。
However, in this case, if a relatively large amount of anthranilic acid is added to the culture system, the biosynthesis of L-tryptophan is inhibited, so it is difficult to obtain a culture solution containing a high concentration of L-tryptophan.
This was an obstacle to practical application. Under these circumstances, we use a mutant strain that is resistant to tryptophan analogues, such as 5-fluorotryptophan and 5-methyltryptophan, to release the inhibition of tryptophan biosynthetic enzyme production by L-tryptophan. A method for producing L-tryptophan by direct fermentation has been proposed. However, until now, there has been no example in which the inhibition of the activity of anthranilate synthase, which is one of the tryptophan biosynthetic enzymes, by L-tryptophan has been removed.

問題点を解決するための手段 本発明者らは、前記した従来のL−トリプトフ
アンの微生物学的製造法においてアンスラニル酸
合成酵素へのL−トリプトフアンによる活性阻害
を解除した例が無い現状に鑑み、しかもL−トリ
プトフアンの生産性を更に向上させるためにはこ
の阻害を解除することが必須と考えて、鋭意研究
を進めた結果、L−トリプトフアンによるアンス
ラニル酸合成酵素への活性阻害を解除したL−ト
リプトフアン生産性微生物菌株を取得することに
成功し、本発明をするに至つた。
Means for Solving the Problems In view of the current situation in which there is no example of removing the inhibition of the activity of anthranilate synthase by L-tryptophan in the conventional microbiological production method of L-tryptophan described above, the present inventors solved the problem. Moreover, in order to further improve the productivity of L-tryptophan, we believed that it was essential to release this inhibition, and as a result of our intensive research, we discovered that the inhibition of the activity of anthranilate synthase by L-tryptophan was removed. We have succeeded in obtaining a tryptophan-producing microbial strain, leading to the present invention.

即ち、本発明に従えば、5−フルオロトリプト
フアン耐性を有しかつアンスラニル酸要求性を有
するバチルス属に属する菌株を復帰変異せしめて
アンスラニル酸非要求性とした、L−トリプトフ
アン生産能を有するバチルス・アミロリクイフア
シエンスSD−43を培地に培養して培養中にL−
トリプトフアンを生成せしめ、これを採取するこ
とから成るL−トリプトフアンの製造法が提供さ
れる。
That is, according to the present invention, a strain belonging to the genus Bacillus that is resistant to 5-fluorotryptophan and has an anthranilic acid auxotrophy is reversely mutated to become anthranilic acid non-auxotrophic, and has the ability to produce L-tryptophan. Bacillus amyloliquifaciens SD-43 was cultured in a medium and L-
A method for producing L-tryptophan is provided, which comprises producing tryptophan and collecting it.

本発明に従つた5−フルオロトリプトフアン耐
性及びアンスラニル酸要求性を有するバチルス属
に属する菌株を復帰変異せしめてアンスラニル酸
非要求性とした、L−トリプトフアン生産能を有
するバチルス属に属する微生物バチルス・アミロ
リクイフアシエンスSD−43は以下のようにして
取得した。
A microorganism Bacillus belonging to the genus Bacillus having an ability to produce L-tryptophan, which is obtained by reverting a strain belonging to the genus Bacillus having resistance to 5-fluorotryptophan and requiring anthranilic acid according to the present invention to make it non-auxotrophic for anthranilic acid.・Amiroliquifaciens SD-43 was obtained as follows.

すなわち、本発明者らは原株バチルス・アミロ
リクイフアシエンス(Bacillus
amyloliquefaciens)IAM1521を常法に従つてN
−メチル−N′−ニトロ−N−ニトロソグアニジ
ン(NTG)を用いて人工突然変異誘発処理し、
この変異処理株をトリプトフアンアナログとして
最低阻止濃度(MIC)以上の5−フルオロトリ
プトフアン(5−FT)を添加した寒天平板培地
(スピザイゼン培地)で生育させて生育した数百
のコロニーについてそれぞれL−トリプトフアン
の生産性を調べ、最もL−トリプトフアン生産能
の高い5−FT耐性(即ち、トリプトフアン濃度
の蓄積による微生物固有のフイードバツク抑制機
構を解除した)菌株を得る。この菌株は5−フル
オロトリプトフアンに対し5000ppm以上の耐性を
有する。
That is, the present inventors used the original strain Bacillus amyloliquifaciens.
amyloliquefaciens) IAM1521 according to the conventional method
-Artificial mutagenesis treatment using methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine (NTG),
This mutant strain was grown on an agar plate medium (spizaizen medium) supplemented with 5-fluorotryptophan (5-FT) above the minimum inhibitory concentration (MIC) as a tryptophan analog, and several hundred colonies were grown. The L-tryptophan productivity of each strain was examined to obtain a 5-FT-resistant strain with the highest L-tryptophan production ability (that is, the microorganism's inherent feedback suppression mechanism due to accumulation of tryptophan concentration was released). This strain has a resistance of 5000 ppm or more to 5-fluorotryptophan.

次に、この5−FT耐性及びL−トリプトフア
ン生産能を有する変異菌株を再び上と同様にして
NTGを用いて人工突然変異誘発処理し、処理後、
遠心分離(10000G×5分)し、菌体M/100トリ
ス緩衝液(PH7.0)に懸濁し遠心分離することを
3回繰返し、NTGを除去する。菌体部をアンス
ラニル酸20〜50ppmを含むスピザイゼン培地のよ
うな枯草菌用最小培地にて30〜40℃で1〜3時間
培養する。
Next, this mutant strain having 5-FT resistance and L-tryptophan production ability was treated again in the same manner as above.
Artificial mutagenesis treatment using NTG, after treatment,
Centrifuge (10000G x 5 minutes), suspend the bacterial cells in M/100 Tris buffer (PH7.0), and centrifuge three times to remove NTG. The bacterial cells are cultured for 1 to 3 hours at 30 to 40°C in a minimal medium for Bacillus subtilis, such as Spizaizen medium containing 20 to 50 ppm of anthranilic acid.

培養後、遠心分離によつて集菌し、菌体部を上
記トリス緩衝液で洗浄し、更にトリス緩衝液中に
再懸濁して30〜40℃で1〜3時間振とうする。振
とう終了後、遠心分離によつて集菌し、トリス緩
衝液で洗浄した後、アンスラニル酸要求性菌株を
濃縮すべく、ペニシリン500〜2000ppmを含有す
る枯草菌用最小培地中に懸濁し、30〜40℃で30〜
90分、好ましくは40〜60分間振とうする。振とう
終了後、上と同様に集菌洗浄し、前記ペニシリン
含有枯草菌用最小培地にて同様の操作を3〜10回
繰り返してアンスラニル酸20〜50ppm含有枯草菌
用最小平板培地では生育するが、アンスラニル酸
無添加平板培地では生育しないアンスラニル酸要
求性菌株をスクリーニングする。最適条件では90
%以上に濃縮することが可能である。
After culturing, the bacteria are collected by centrifugation, the bacterial cells are washed with the above Tris buffer, and then resuspended in Tris buffer and shaken at 30 to 40°C for 1 to 3 hours. After shaking, the bacteria were collected by centrifugation, washed with Tris buffer, and suspended in minimal medium for Bacillus subtilis containing 500 to 2000 ppm of penicillin to concentrate the anthranilic acid auxotrophic bacterial strain. ~30~ at ~40℃
Shake for 90 minutes, preferably 40-60 minutes. After shaking, the bacteria were collected and washed in the same manner as above, and the same operation was repeated 3 to 10 times on the minimal medium for Bacillus subtilis containing penicillin. , to screen for anthranilic acid auxotrophic bacterial strains that do not grow on anthranilic acid-free plate medium. 90 under optimal conditions
% or more.

次に、上で得たアンスラニル酸要求性菌株を前
記したようにしてNTGを用いて再度人工突然変
異誘発処理した後、前記したようにして遠心分離
により変異処理株を集菌しトリス緩衝液で洗浄
し、栄養培地で30〜40℃にて3時間培養する。培
養終了後、前記したようにして遠心分離により集
菌し、トリス緩衝液中に濃度1×108個/mlにな
るように懸濁し、これを寒天16gを加えたスピザ
イゼン培地から成り、アンスラニル酸を含まない
枯草菌用最小平板培地に塗布し、30〜40℃で3日
間静置培養し、生育するコロニーの中からL−ト
リプトフアン生産能の高い菌株バチルス・アミロ
リクイフアシエンスSD−43を選択した。
Next, the anthranilic acid auxotrophic strain obtained above was subjected to artificial mutagenesis treatment again using NTG as described above, and the mutated strain was collected by centrifugation as described above and added to Tris buffer. Wash and incubate in nutrient medium for 3 hours at 30-40°C. After culturing, the bacteria were collected by centrifugation as described above, suspended in Tris buffer at a concentration of 1 x 10 8 cells/ml, and mixed with anthranilic acid in a spizizen medium to which 16 g of agar was added. Bacillus amyloliquifaciens SD-43, a strain with high L-tryptophan production, was selected from among the growing colonies by applying it to a minimal plate medium for Bacillus subtilis that does not contain Bacillus subtilis and culturing it for 3 days at 30 to 40°C. Selected.

この菌株は昭和59年8月14日に工業技術院微生
物工業技術研究所にバチルス・アミロリクイフア
シエンス(Bacillus amyloliquefaciens)SD−
43(微工研菌寄第7772号)として寄託した。この
菌株の菌学的性質は、原株バチルス・アミロリク
イフアシエンスIAM1521の菌学的性質と、5−
FT耐性を有しかつL−トリプトフアンによるア
ンスラニル酸合成酵素へのフイードバツク阻害が
解除されて、L−トリプトフアン生産性の非常に
高いことを除けば同じであつた。
This strain was identified as Bacillus amyloliquefaciens SD-
43 (Fiber Science and Technology Research Institute No. 7772). The mycological properties of this strain are similar to those of the original strain Bacillus amyloliquifaciens IAM1521 and 5-
They were the same except that they had FT resistance and the feedback inhibition of anthranilate synthase by L-tryptophan was released, resulting in very high L-tryptophan productivity.

本発明に従つてL−トリプトフアンを製造する
には、バチルス・アミロリクイフアシエンスSD
−43を培地中に培養することにより実施する。
To produce L-tryptophan according to the invention, Bacillus amyloliquefaciens SD
-43 in culture medium.

本発明方法において使用することのできる培地
としては、前記微生物が培養により増殖し得るも
のであれば任意のものでよく、例えば炭素源とし
てはブドウ糖、糖蜜、蔗糖、デン粉、デン粉糖化
液、セルロース分解物などの糖類、酢酸、エタノ
ール等が用いられる。窒素源としてはアンモニ
ア、硫安、塩安、硝安、燐安などのアンモニウム
塩や尿素、硝酸塩等が適宜用いられる。無機塩と
しては燐酸、カリウム、マグネシウム、マンガン
等の塩類、例えば燐酸アンモニウム、燐酸カリ、
燐酸ソーダ、硫酸マグネシウム、硫酸第一鉄、硫
酸マンガン、苛性カリ等の通常の工業用薬品で良
く、他に微量元素としてカルシウム、亜鉛、硼
素、銅、コバルト、モリブデン等の塩類を加えて
も良い。また微量有機栄養素としてビタミン、ア
ミノ酸、核酸関連物質等は菌の生育上は特別に必
要とするものではないが、これらを添加したり、
コーンスチープリカー、肉エキス、酵母エキス、
ペプトン等の有機物を加えても良い。また、本発
明の微生物はその生育にアンスラニル酸を必要と
しないため、通常はアンスラニル酸無添加培地に
て培養されるが、L−トリプトフアンの生産性の
向上のため、培地中にアンスラニル酸を添加して
もその生育上は何等差支えはなく、その場合に
は、アンスラニル酸はソーダ塩、カリウム塩、ア
ンモニウム塩の水溶液や遊離酸のエチルアルコー
ルまたメチルアルコール溶液として添加すれば良
い。
The medium that can be used in the method of the present invention may be any medium as long as the microorganisms can be grown by culturing.For example, carbon sources include glucose, molasses, sucrose, starch, starch saccharification solution, Saccharides such as cellulose decomposition products, acetic acid, ethanol, etc. are used. As the nitrogen source, ammonium salts such as ammonia, ammonium sulfate, ammonium chloride, ammonium nitrate, ammonium phosphorus, urea, nitrates, etc. are used as appropriate. Examples of inorganic salts include salts of phosphoric acid, potassium, magnesium, manganese, etc., such as ammonium phosphate, potassium phosphate,
Usual industrial chemicals such as sodium phosphate, magnesium sulfate, ferrous sulfate, manganese sulfate, and caustic potassium may be used, and trace elements such as salts such as calcium, zinc, boron, copper, cobalt, and molybdenum may also be added. In addition, trace organic nutrients such as vitamins, amino acids, and nucleic acid-related substances are not particularly required for the growth of bacteria, but they can be added to
Corn steep liquor, meat extract, yeast extract,
Organic substances such as peptone may be added. In addition, since the microorganism of the present invention does not require anthranilic acid for its growth, it is usually cultured in an anthranilic acid-free medium, but anthranilic acid is added to the medium to improve L-tryptophan productivity. However, there is no problem in its growth, and in that case, anthranilic acid may be added as an aqueous solution of a soda salt, potassium salt, or ammonium salt, or a solution of the free acid in ethyl alcohol or methyl alcohol.

本発明方法における培養は好気的条件下に、例
えば通気撹拌や往復振盪方法によつて培養するこ
とができる。培養条件は、特に限定はないが、一
般的に言えば、温度30〜40℃、PH6.0〜8.0及び18
〜72時間程度の条件で実施する。
Culture in the method of the present invention can be carried out under aerobic conditions, for example, by aerated stirring or reciprocating shaking. Culture conditions are not particularly limited, but generally speaking, temperature is 30-40℃, pH 6.0-8.0 and 18
This will be carried out for approximately 72 hours.

培養液又は培養物からの目的のL−トリプトフ
アンの採取方法は慣用方法に従つて行うことがで
きる。例えば、遠心分離により菌体部を除いた培
養液上清からイオン交換樹脂処理法、活性炭処理
法等の操作を適宜組み合せてL−トリプトフアン
を単離晶析することができる。
The desired L-tryptophan can be collected from the culture solution or culture according to a conventional method. For example, L-tryptophan can be isolated and crystallized from a culture supernatant from which bacterial cells have been removed by centrifugation, using an appropriate combination of ion exchange resin treatment, activated carbon treatment, and other operations.

実施例 以下に本発明の実施例を説明するが、本発明の
範囲をこれらの実施例に限定するものでないこと
はいうまでもない。
Examples Examples of the present invention will be described below, but it goes without saying that the scope of the present invention is not limited to these examples.

例 1(実施例) 下記組成の液体培地2を5のジヤーフアー
メンターに入れ、115℃で15分間加熱滅菌した。
Example 1 (Example) Liquid medium 2 having the following composition was placed in a jar fermenter (No. 5) and sterilized by heating at 115° C. for 15 minutes.

液体培地組成 グルコース10%、硫安0.3%、Na2HPO4
12H2O0.5%、KH2PO40.2%、MgSO4・7H2O0.1
%、FeSO4・7H2O5ppm、及びMnSO4・4〜
6H2O1ppm 次いで、この培養槽に、予じめ肉汁寒天培地に
て30℃で16時間培養したバチルス・アミロリクイ
フアシエンスSD−43を滅菌水10mlに懸濁して接
種し、溶存酸素量を0.5ppm以上に、グルコース
濃度を2%に、そしてPHを7.0に保ちながら、30
時間通気撹拌培養を行なつた。
Liquid medium composition Glucose 10%, Ammonium sulfate 0.3%, Na 2 HPO 4 .
12H2O0.5 %, KH2PO40.2 % , MgSO47H2O0.1
%, FeSO4.7H2O5ppm , and MnSO4.4 ~
6H 2 O1ppm Next, Bacillus amyloliquifaciens SD-43, which had been previously cultured on a broth agar medium at 30℃ for 16 hours, was inoculated into this culture tank by suspending it in 10ml of sterile water, and the amount of dissolved oxygen was increased. 30 while keeping the glucose concentration at 2% and the pH at 7.0 above 0.5ppm.
Time-aerated agitation culture was performed.

このようにして得られた培養液中にはL−トリ
プトフアン13g/が蓄積していた。
In the culture solution thus obtained, 13 g/L-tryptophan was accumulated.

例 2(比較例) 例1においてバチルス・アミロリクイフアシエ
ンスSD−43に代えて、バチルス・アミロクイフ
アシエンスSD−43の親株である5−FT耐性菌株
を用いた以外は例1と同様にして30時間通気撹拌
培養した。このようにして得られた培養液中には
L−トリプトフアン9g/が蓄積していた。
Example 2 (Comparative Example) Same as Example 1 except that in place of Bacillus amyloquifaciens SD-43 in Example 1, a 5-FT resistant strain, which is the parent strain of Bacillus amyloquifaciens SD-43, was used. The culture was carried out in the same manner with aeration for 30 hours. In the culture solution thus obtained, 9 g/L-tryptophan was accumulated.

発明の効果 本発明に従えば、L−トリプトフアン合成酵素
系の生産抑制と活性阻害解除によつて培地中に高
濃度のL−トリプトフアンの蓄積が達成される。
Effects of the Invention According to the present invention, a high concentration of L-tryptophan can be accumulated in the medium by suppressing the production of the L-tryptophan synthase system and releasing inhibition of its activity.

Claims (1)

【特許請求の範囲】[Claims] 1 5−フルオロトリプトフアン耐性を有しかつ
アンスラニル酸要求性を有するバチルス属に属す
る菌株を復帰変異せしめてアンスラニル酸非要求
性としたL−トリプトフアン生産能を有するバチ
ルス・アミロリクイフアシエンスSD−43を培地
に培養して培養物中にL−トリプトフアンを生成
せしめ、これを採取することを特徴とするL−ト
リプトフアンの製造法。
1. Bacillus amyloliquifaciens SD, which has the ability to produce L-tryptophan and is made non-anthranilic acid by backmutating a strain belonging to the genus Bacillus that is resistant to 5-fluorotryptophan and requires anthranilic acid. A method for producing L-tryptophan, which comprises culturing L-43 in a medium to produce L-tryptophan in the culture, and collecting the L-tryptophan.
JP17004684A 1984-08-16 1984-08-16 L-tryptophan-producing microorganism and preparation of l-tryptophan using said microorganism Granted JPS6152276A (en)

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