JPH0362392B2 - - Google Patents
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- JPH0362392B2 JPH0362392B2 JP30042586A JP30042586A JPH0362392B2 JP H0362392 B2 JPH0362392 B2 JP H0362392B2 JP 30042586 A JP30042586 A JP 30042586A JP 30042586 A JP30042586 A JP 30042586A JP H0362392 B2 JPH0362392 B2 JP H0362392B2
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- Japan
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- genus
- hexadienal
- microorganisms
- cells
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- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Description
〔産業上の利用分野〕
本発明はソルビン酸の製造方法に関し、詳しく
は特定の微生物を2,4−ヘキサジエナールに作
用させてソルビン酸を製造する方法に関する。
〔従来の技術と発明が解決しようとする問題点〕
ソルビン酸を製造するにあたり、原料の2,4
−ヘキサジエナールを有機化学的手法により酸化
すると、副生物の生成が避けられなかつた。その
ため、純度の高いソルビン酸を得るためには、精
製操作が必要であるが、その操作が煩雑であり、
所望純度のソルビン酸を得ることが困難だつた。
そこで、本発明者らは微生物を利用して2,4
−ヘキサジエナールからソルビン酸を製造する方
法を開発すべく検討したところ、特定の微生物を
選択して用いることにより、2,4−ヘキサジエ
ナールから高純度のソルビン酸を製造できること
を見出し、かかる知見に基いて本発明を完成した
のである。
〔問題点を解決するための手段〕
すなわち本発明は、アースロバクター
(Arthrobacter)属、バチルス(Bacillus)属、
バクテリジウム(Bacteridium)属、ブレビバク
テリウム(Brevibacterium)属、シトロバクタ
ー(Citrobacter)属、コリネバクテリウム
(Corynebacterium)属、エンテロバクター
(Enterobacter)属、エシエリヒア
(Escherichia)属、フラボバクテリウム
(Flavobacterium)属、クレブシエラ
(Klebsiella)属、ミクロコツカス
(Micrococcus)属、ミクロバクテリウム
(Microbacterium)属、ノカルデイア
(Nocardia)属、パラコツカス(Paracoccus)
属、プロテウス(Proteus)属、シユウドモナス
(Pseudomonas)属、セラチア(Serratia)属、
ロドトルラ(Rhodotorula)属、およびサツカロ
マイコプシス(Saccharomycopsis)属のうちの
いずれかに属し、2,4−ヘキサジエナールを酸
化する能力を有する微生物の1種もしくは2種以
上を2,4−ヘキサジエナールに接触させること
を特徴とするソルビン酸の製造方法に関するもの
である。
本発明に使用できる微生物は、上記した各種の
属に属する微生物であつて、2,4−ヘキサジエ
ナールを酸化する能力を有するものである。具体
的にはアースロバクター・オキシダンス
(Arthrobactor oxydans)IFO 12138,アースロ
バクター・アウレセンス(Arthrobactor
aurescens)IAM 12340,バチルス・セレウス
(Bacillus cereus)IFO 3131、バクテリジウム
エスピーR341(Bacteridium sp.R 341)CBS
496.74,ブレビバクテリウム・ラクトフアメンタ
ム(Brevibacterium Iactofermentum)ATCC
21420,ブレビバクテリウム・フラバム
(Brevibacterium flavum)ATCC 13826,ブレ
ビバクテリウム・ロゼウム(Brevibacterium
roseum)ATCC 13825,ブレビバクテリウム・
アンモニアゲネス(Brevibacterium
ammoiagenes)ATCC 13746,コリネバクテリ
ウム・グルタミカム(Corynebacterim
glutamicum)ATCC 13032,コリネバクテリウ
ム・ハーキユリス(Corynebacterium herculis)
ATCC 13868、コリネバクテリウム エスピー
(Corynebacerium sp.)ATCC21341,エンテロ
バクター・クロアカエ(Enterobactor cloacae)
IFO3320,エシエリヒア・コリ(Escherichia
coli)ATCC 11303,同ATCC 9723E,同
ATCC9723D,フラボバクテリウム・スアベオレ
ンス(Flavobacterium suaveolens)IFO 3752,
クレブシエラ・ニユウモニア(Klebsiella
pneumoniae)IFO 3318,ミクロコツカス エス
ピーA111(Micrococcus sp.A111)CBS497.74,
ミクロバクテリウム・アンモニアフイラム
(Microbacterium anmoniaphilum)ATCC
15354,ノカルデイア・エリスロポリス
(Nocardia erythropolis)IFO 12321,ノカルデ
イア エスピー(Nocardia sp.)ATCC 21145,
パラコツカス・デニトリフイカンス
(Paracoccus denitrificans)IFO 13301,プロテ
ウス・ミラビリス(Proteus mirabilis)IFO
3849,シユウドモナス・シユウドアルカリゲネス
(Pseudomonas pseudoalcaligenes)
ATCC12815,シユウドモナス・エアルギノサ
(Pseudomonas aeruginosa)ATCC 15524,シ
ユウドモナス・アシドボランス(Pseudomonas
acidovorans)ATCC 15668,セラチア・マルセ
センス(Serratia marcescens)IAM 1205,ロ
ドトルラ・ミヌタ(Rhodotorulaminuta)IFO
387,サツカロマイコプシス・リポリテイカ
(Saccharomycopsis lipolytica)IFO 746,など
を挙げることができ、これらを単独で、もしくは
2種以上を組合せて用いることができる。
微生物は様々な形態で使用することができ、た
とえば増殖期の菌体、休止期の菌体、固定化され
た菌体などのいずれであつてもよく、さらには微
生物菌体からの抽出処理物であつてもよい。ここ
で微生物菌体の固定化は、担体結合法、架橋法、
包括法などの常法の固定化技術を適用して行なう
ことができる。また、抽出方法としては、微生物
菌体の懸濁液を超音波、フレンチプレス、高圧ホ
モジナイザーなどにより破砕したのち、遠心分離
等によつて可溶性抽出物を得る方法などを採用す
ることができる。
一方、2,4−ヘキサジエナールはソルビンア
ルデヒドとも称され、上記微生物による酸化反応
でソルビン酸に変換される。
上記微生物を培養するための培地としては、炭
素源、窒素源等を含有し、これら微生物が生育し
うるものが用いられる。炭素源としては、微生物
のもつソルビン酸生産活性を阻害しない化合物で
あれば任意に使用でき、たとえばグルコース、シ
ユークロース、エタノール、エチレングリコー
ル、プロピレングリコール、1,4−ブタンジオ
ール、グリセリン、アセトアルデヒド、酢酸、プ
ロピオン酸などが挙げられる。また、窒素源とし
ては肉エキス、ペプトン、コーンステイープリカ
ー、尿素、硫酸アンモニウム、塩化アンモニウ
ム、硝酸ナトリウムなどを用いることができる。
さらに、必要に応じてリン酸塩、マグネシウム
塩、カルシウム塩、鉄塩、銅塩、亜鉛塩などの無
機塩類や微生物の生育に必要な栄養物質を培地に
適宜加えることができる。
2,4−ヘキサジエナールと微生物との接触は
様々な態様で行なうことができ、微生物の存在す
るところに一度に添加してもよく、少量ずつ数回
に分けて添加してもよい。また、添加時期につい
ても任意であり、使用する微生物を考慮して培地
に微生物を植菌する前に添加してもよく、微生物
の培養中または培養液に添加してもよい。あるい
は培養終了後、菌体を集め懸濁液とした後、添加
してもよい。
上記微生物と2,4−ヘキサジエナールとの反
応は好気的条件下で行い、使用する微生物の性質
を考慮して適宜決定すればよい。また、反応の温
度、時間、PH等についても格別の制限はなく、目
的とするソルビン酸が高純度かつ効率的に生産さ
れるように配慮して行えばよい。たとえば、温度
については5〜80℃、好ましくは10〜50℃が適当
であり、PHについては3〜10、好ましくは5〜8
が適当である。
さらに、反応は増殖期の微生物を用いる培養法
と休止菌体による反応を組合せたり、他の固定化
菌体、菌体抽出処理物を用いる反応を単独もしく
は上記方法と組合せて行なう等種々の態様が可能
である。
反応終了後、目的とするソルビン酸の分離、精
製は固液分離後常法により行なえばよい。
〔実施例〕
次に、本発明を実施例により詳しく説明する。
実施例 1
ノカルデイア・エリスロポリス(Nocardia
erythropolis)IFO 12320の菌体1白金耳を、表
1に示す組成の培地100mlを分注した坂口フラス
コに植菌し、30℃で48時間振盪培養を行なつた。
培養終了後、培養液を5℃、11000×gで10分間
遠心分離して得た生菌体を1/15Mリン酸緩衝液
(PH7)で洗浄後、1/15Mリン酸緩衝液10mlに
菌体がOD10となるように懸濁した。これに2,
4−ヘキサジエナールを10mM添加した。
30℃で反応を行ない、30分後、反応液の一部を
取り、遠心分離により除菌した。除菌液を、6N
塩酸にてPH2とし、ガスクロマトグラフイーによ
り定量分析を行なつたところ、ソルビン酸の生成
量は56mg/であつた。なお、ガスクロマトグラ
フイーの条件は、カラム充填剤:Thermon
3000celite 545,カラム温度:160℃、窒素流
量:50ml/min(この時、ソルビン酸のリテンシ
ヨンタイムは4分であつた。)である。
表1
肉エキス 5.0g
ペプトン 15.0g
塩化アンモニウム 5.0g
KH2PO4 5.0g
1,4−ブタンジオール 5.0g
* 蒸留水で1にする。(PH7.0)
実施例 2
実施例1の微生物の代りに表2に示した菌株を
用いたこと以外は、実施例1と同様に反応を行な
つた。結果を表2に示す。
[Industrial Application Field] The present invention relates to a method for producing sorbic acid, and more particularly to a method for producing sorbic acid by allowing a specific microorganism to act on 2,4-hexadienal. [Problems to be solved by the conventional technology and the invention] In producing sorbic acid, two to four raw materials are
- When hexadienal is oxidized by organic chemical methods, the formation of by-products is unavoidable. Therefore, in order to obtain highly pure sorbic acid, purification operations are necessary, but these operations are complicated;
It was difficult to obtain sorbic acid of desired purity. Therefore, the present inventors used microorganisms to
- When we investigated to develop a method for producing sorbic acid from hexadienal, we discovered that by selecting and using specific microorganisms, it was possible to produce highly pure sorbic acid from 2,4-hexadienal. The present invention was completed based on this knowledge. [Means for Solving the Problems] That is, the present invention is directed to the use of Arthrobacter genus, Bacillus genus,
Bacteridium, Brevibacterium, Citrobacter, Corynebacterium, Enterobacter, Escherichia, Flavobacterium , Klebsiella spp., Micrococcus spp., Microbacterium spp., Nocardia spp., Paracoccus spp.
Genus, Proteus, Pseudomonas, Serratia,
One or more microorganisms belonging to the genus Rhodotorula and the genus Saccharomycopsis that have the ability to oxidize 2,4-hexadienal were added to 2,4-hexadienal. The present invention relates to a method for producing sorbic acid, which comprises bringing it into contact with dienal. The microorganisms that can be used in the present invention belong to the various genera mentioned above and have the ability to oxidize 2,4-hexadienal. Specifically, Arthrobactor oxydans IFO 12138, Arthrobactor aurescens
aurescens) IAM 12340, Bacillus cereus (Bacillus cereus) IFO 3131, Bacteridium sp. R 341 (Bacteridium sp. R 341) CBS
496.74, Brevibacterium Iactofermentum ATCC
21420, Brevibacterium flavum ATCC 13826, Brevibacterium roseum
roseum) ATCC 13825, Brevibacterium
Ammoniagenes (Brevibacterium)
ammoiagenes) ATCC 13746, Corynebacterium glutamicum (Corynebacterium
glutamicum) ATCC 13032, Corynebacterium herculis
ATCC 13868, Corynebacerium sp. ATCC21341, Enterobacter cloacae
IFO3320, Escherichia coli
coli) ATCC 11303, ATCC 9723E, ATCC
ATCC9723D, Flavobacterium suaveolens IFO 3752,
Klebsiella pneumonia
pneumoniae) IFO 3318, Micrococcus sp. A111 (Micrococcus sp. A111) CBS497.74,
Microbacterium ammoniaphilum ATCC
15354, Nocardia erythropolis IFO 12321, Nocardia sp. ATCC 21145,
Paracoccus denitrificans IFO 13301, Proteus mirabilis IFO
3849, Pseudomonas pseudoalcaligenes
ATCC12815, Pseudomonas aeruginosa ATCC 15524, Pseudomonas aeruginosa
acidovorans) ATCC 15668, Serratia marcescens (Serratia marcescens) IAM 1205, Rhodotorula minuta (Rhodotorulaminuta) IFO
387, Saccharomycopsis lipolytica IFO 746, etc., and these can be used alone or in combination of two or more. Microorganisms can be used in various forms, such as cells in the growth phase, cells in the resting phase, immobilized cells, etc., and even extracts from the cells. It may be. Here, the immobilization of microbial cells is carried out by carrier binding method, crosslinking method,
This can be done by applying conventional immobilization techniques such as the blanket method. Further, as an extraction method, a method can be employed in which a suspension of microbial cells is crushed using ultrasound, a French press, a high-pressure homogenizer, etc., and then a soluble extract is obtained by centrifugation or the like. On the other hand, 2,4-hexadienal is also called sorbic aldehyde, and is converted into sorbic acid by an oxidation reaction by the above-mentioned microorganisms. As a medium for culturing the above-mentioned microorganisms, one containing a carbon source, a nitrogen source, etc., and in which these microorganisms can grow is used. As a carbon source, any compound can be used as long as it does not inhibit the sorbic acid production activity of microorganisms, such as glucose, sucrose, ethanol, ethylene glycol, propylene glycol, 1,4-butanediol, glycerin, acetaldehyde, acetic acid, Examples include propionic acid. Further, as the nitrogen source, meat extract, peptone, cornstarch liquor, urea, ammonium sulfate, ammonium chloride, sodium nitrate, etc. can be used.
Furthermore, inorganic salts such as phosphates, magnesium salts, calcium salts, iron salts, copper salts, zinc salts, and other nutritional substances necessary for the growth of microorganisms can be added to the medium as necessary. The contact between 2,4-hexadienal and microorganisms can be carried out in various ways, and it may be added all at once to the area where the microorganisms are present, or may be added in small portions in several portions. Further, the timing of addition is also arbitrary, and it may be added before inoculating the culture medium with the microorganisms, taking into account the microorganisms to be used, or may be added during culturing of the microorganisms or to the culture solution. Alternatively, after completion of the culture, the bacterial cells may be collected and made into a suspension, and then added. The reaction between the microorganism and 2,4-hexadienal is carried out under aerobic conditions and may be appropriately determined in consideration of the properties of the microorganism used. Furthermore, there are no particular restrictions on the reaction temperature, time, pH, etc., and they may be carried out with consideration given to producing the desired sorbic acid with high purity and efficiency. For example, the appropriate temperature is 5 to 80°C, preferably 10 to 50°C, and the pH is 3 to 10, preferably 5 to 8.
is appropriate. Furthermore, the reaction can be carried out in various ways, such as by combining a culture method using microorganisms in the growth phase with a reaction using resting microbial cells, or by performing a reaction using other immobilized microorganisms or a processed microbial cell extract alone or in combination with the above methods. is possible. After completion of the reaction, separation and purification of the target sorbic acid may be carried out by a conventional method after solid-liquid separation. [Example] Next, the present invention will be explained in detail with reference to Examples. Example 1 Nocardia erythropolis
A loopful of IFO 12320 bacterial cells was inoculated into a Sakaguchi flask containing 100 ml of a medium having the composition shown in Table 1, and cultured with shaking at 30°C for 48 hours.
After culturing, the culture solution was centrifuged at 11,000×g for 10 minutes at 5°C. The viable cells obtained were washed with 1/15M phosphate buffer (PH7), and then added to 10ml of 1/15M phosphate buffer. The bodies were suspended at an OD of 10. 2,
10mM of 4-hexadienal was added. The reaction was carried out at 30°C, and after 30 minutes, a portion of the reaction solution was taken and sterilized by centrifugation. Disinfecting solution, 6N
When the pH was adjusted to 2 with hydrochloric acid and quantitative analysis was performed by gas chromatography, the amount of sorbic acid produced was 56 mg/kg. The conditions for gas chromatography are as follows: Column packing material: Thermon
3000celite 545, column temperature: 160°C, nitrogen flow rate: 50 ml/min (at this time, the retention time of sorbic acid was 4 minutes). Table 1 Meat extract 5.0g Peptone 15.0g Ammonium chloride 5.0g KH 2 PO 4 5.0g 1,4-butanediol 5.0g * Make up to 1 with distilled water. (PH7.0) Example 2 The reaction was carried out in the same manner as in Example 1, except that the microorganisms shown in Table 2 were used instead of the microorganisms in Example 1. The results are shown in Table 2.
【表】【table】
本発明によれば、特定の微生物を用いて2,4
−ヘキサジエナールからソルビン酸を効率よく製
造することができる。特に、従来の有機化学的手
法の場合と異なり副生物が生成しないため、純度
の高いソルビン酸を温和な条件で得ることができ
る。また、得られたソルビン酸は防腐剤などとし
て食品工業の分野において利用されるほか、合成
樹脂原料等としても有用である。
According to the present invention, 2,4
- Sorbic acid can be efficiently produced from hexadienal. In particular, since no by-products are produced unlike in conventional organic chemical methods, highly pure sorbic acid can be obtained under mild conditions. In addition, the obtained sorbic acid is used as a preservative in the food industry, and is also useful as a raw material for synthetic resins.
Claims (1)
チルス(Bacillus)属、バクテリジウム
(Bacteridium)属、ブレビバクテリウム
(Brevibacterium)属、シトロバクター
(Citrobacter)属、コリネバクテリウム
(Corynebacterium)属、エンテロバクター
(Enterobacter)属、エシエリヒア
(Escherichia)属、フラボバクテリウム
(Flavobacterium)属、クレブシエラ
(Klebsiella)属、ミクロコツカス
(Micrococcus)属、ミクロバクテリウム
(Microbacterium)属、ノカルデイア
(Nocardia)属、パラコツカス(Paracoccus)
属、プロテウス(Proteus)属、シユウドモナス
(Pseudomonas)属、セラチア(Serratia)属、
ロドトルラ(Rhodotorula)属およびサツカロマ
イコプシス(Saccharomycopsis)属のうちのい
ずれかに属し、2,4−ヘキサジエナールを酸化
する能力を有する微生物の1種もしくは2種以上
を2,4−ヘキサジエナールに接触させることを
特徴とするソルビン酸の製造方法。 2 微生物が増殖期の菌体、休止期の菌体、固定
化菌体および菌体抽出処理物のうちのいずれかで
ある特許請求の範囲第1項記載の方法。[Scope of Claims] 1. Genus Arthrobacter, Genus Bacillus, Genus Bacteridium, Genus Brevibacterium, Genus Citrobacter, Genus Corynebacterium. , Enterobacter, Escherichia, Flavobacterium, Klebsiella, Micrococcus, Microbacterium, Nocardia, Paracoccus ( Paracoccus)
Genus, Proteus, Pseudomonas, Serratia,
One or more microorganisms belonging to the genus Rhodotorula and the genus Saccharomycopsis that have the ability to oxidize 2,4-hexadienal are used to produce 2,4-hexadienal. A method for producing sorbic acid, which comprises bringing it into contact with naal. 2. The method according to claim 1, wherein the microorganism is any one of cells in a growth phase, cells in a resting phase, immobilized cells, and a processed cell extract.
Priority Applications (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP30042586A JPS63152990A (en) | 1986-12-17 | 1986-12-17 | Production of sorbic acid |
| US07/321,968 US4916067A (en) | 1986-12-17 | 1989-03-09 | Method for the preparation of sorbic acid by oxidizing 2,4-hexadienal with a microorganism |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP30042586A JPS63152990A (en) | 1986-12-17 | 1986-12-17 | Production of sorbic acid |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS63152990A JPS63152990A (en) | 1988-06-25 |
| JPH0362392B2 true JPH0362392B2 (en) | 1991-09-25 |
Family
ID=17884644
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP30042586A Granted JPS63152990A (en) | 1986-12-17 | 1986-12-17 | Production of sorbic acid |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS63152990A (en) |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2707114B2 (en) * | 1988-09-14 | 1998-01-28 | 日本合成化学工業株式会社 | Method for producing sorbic acid |
-
1986
- 1986-12-17 JP JP30042586A patent/JPS63152990A/en active Granted
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS63152990A (en) | 1988-06-25 |
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