JPH0473984B2 - - Google Patents
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- JPH0473984B2 JPH0473984B2 JP58024768A JP2476883A JPH0473984B2 JP H0473984 B2 JPH0473984 B2 JP H0473984B2 JP 58024768 A JP58024768 A JP 58024768A JP 2476883 A JP2476883 A JP 2476883A JP H0473984 B2 JPH0473984 B2 JP H0473984B2
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- JP
- Japan
- Prior art keywords
- streptococcus
- culture
- cholesterol
- bacterial
- production example
- Prior art date
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- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Coloring Foods And Improving Nutritive Qualities (AREA)
- Seeds, Soups, And Other Foods (AREA)
Description
本発明は、コレステロール低下剤の製造方法及
び同剤を含有する飲食物に関する。
今日、所謂典型的成人病の1種である動脈硬化
性疾患乃至高脂血症等の治療・予防薬としてはク
ロフイブレート関連製剤を始めとして幾つかが提
案されているが、薬理効果及び副作用等の点で、
これらは、必らずしも充分満足し得るものとは云
い難く、より効果的な薬剤への希求が一段と高ま
つている。一方、これらの疾患を招く直接的要因
となり得る血中コレステロールの薬35%が食物か
ら吸収されたものであるといわれ、また食物中の
各種栄養素が血中脂質の増減に深い関係を有する
ことから、治療食を長期間摂取し食習慣を変える
ことにより病状を改善するいわゆる食餌療法が広
く行なわれている。これは副作用等の心配がなく
家庭において可能であるので最も好ましい療法と
言うことができる。こうした食物摂取を通しての
治療あるいは予防をより効果的にするものとして
ある種の微生物を培養することによつて得られる
多糖類(例えば特開昭57−29292)やコーンフア
イバーから得られる食物繊維(特開昭57−36947)
を食品材料として飲食物に添加することが試みら
れている。しかしながら、培地あるいは原料より
その有効部分を分離、採集することは極めて煩雑
で困難である為これらを市場に廉価に提供するこ
とは不可能である。
したがつて本発明は面倒な分離、採集、洗浄等
の工程を必要とせず、微生物菌体培養物を単独で
あるいは種々の飲食物に添加するのみで容易に摂
取することの可能なコレステロール低下剤を提供
することを目的とする。
すなわち本発明者らは、ストレプトコツカス属
に属する各種微生物が、乳質原料、糖質原料、豆
質原料あるいは穀類を主原料とする種々の可食性
培地に於いて良く増殖し、その生菌体及び死菌体
が血中コレステロール値及びトリグリセリド値を
効果的に低下せしめ得るものであり且つこれら菌
体の起源が所謂腸内細菌であつて、経口では実質
的無毒性であることを知見し本発明を完成させる
に至つたものである。
以下、本発明によるコレステロール低下剤の製
造に係る微生物、培地、同剤の各製造工程、同剤
の使用形態、薬理効果及び急性毒性につき詳細に
分説する。
微生物
本発明に於いては、ストレプトコツカス属に属
する各種微生物が使用され得、就中、ストレプト
コツカス・フエシウム、ストレプトコツカス・フ
エカーリス、ストレプトコツカス・ボービス、ス
トレプトコツカス・エビウム、ストレプトコツカ
ス・デユランス、ストレプトコツカス・サリヴア
リウス、ストレプトコツカス・ミテイス、ストレ
プトコツカス・イクイヌス等を好適なものとして
例示し得る。
更に、本発明に於いて特に有用な具体的菌株例
を微工研受託番号と共に表示すれば下記の通りで
ある。
The present invention relates to a method for producing a cholesterol-lowering agent and a food or drink containing the same. Today, several drugs, including clofibrate-related preparations, have been proposed as therapeutic and preventive drugs for arteriosclerosis, hyperlipidemia, etc., which are a type of typical adult disease. etc.,
These drugs are not always fully satisfactory, and the desire for more effective drugs is increasing. On the other hand, it is said that 35% of blood cholesterol drugs, which can be a direct cause of these diseases, are absorbed from food, and various nutrients in food have a close relationship with the increase and decrease of blood lipids. So-called dietary therapy, which improves medical conditions by consuming therapeutic foods for a long period of time and changing eating habits, is widely practiced. This can be said to be the most preferable therapy because it can be done at home without worrying about side effects. Polysaccharides obtained by culturing certain microorganisms (e.g., JP-A-57-29292) and dietary fibers obtained from corn fiber (e.g., 1971-36947)
Attempts have been made to add it to foods and drinks as food ingredients. However, it is extremely complicated and difficult to separate and collect the effective parts from the culture medium or raw materials, so it is impossible to provide these to the market at a low price. Therefore, the present invention provides a cholesterol-lowering agent that does not require troublesome steps such as separation, collection, and washing, and can be easily ingested by using a microbial cell culture alone or by adding it to various foods and drinks. The purpose is to provide In other words, the present inventors have discovered that various microorganisms belonging to the genus Streptococcus proliferate well in various edible media containing milk raw materials, carbohydrate raw materials, legume raw materials, or grains as main raw materials, and that the viable microorganisms We discovered that dead bacteria can effectively lower blood cholesterol and triglyceride levels, and that these bacteria originate from so-called intestinal bacteria and are virtually non-toxic when administered orally. This led to the completion of the invention. Hereinafter, the microorganisms, culture medium, manufacturing steps of the cholesterol-lowering agent of the present invention, usage forms, pharmacological effects, and acute toxicity of the agent will be explained in detail. Microorganisms In the present invention, various microorganisms belonging to the genus Streptococcus may be used, and among them, Streptococcus faecium, Streptococcus fuecalis, Streptococcus bovis, Streptococcus evium, and Streptococcus. Suitable examples include Cus duulans, Streptococcus salivarius, Streptococcus miteis, and Streptococcus equinus. Furthermore, specific examples of particularly useful bacterial strains in the present invention are listed below along with their accession numbers.
【表】
菌学的性質
菌学的性質の点では、本発明で使用の微生物は
同一分類菌につき公知各文献の示すものと同一の
諸性質を有する。
すなわち、本発明微生物の菌学的性質及び培養
条件等に関しては下記諸文献が参照される。
1 Bergey′s Manual of Determinative
Bacteriology,8th ed.,490−509(1974)
2 Int.J.Syst.Bact.16 114(1966)
3 Microbiol.Immunol.25(3),257−269(1981)
4 J.Clin.Pathol.33 53−57(1980)
5 J.General Microbiol.,128 713−720
(1982)
6 Applied Microbiol.,23(6) 1131−1139
(1972)
ここで、前出各種菌株につきその主な菌学的性
状を要約して表示すれば次の通りである。[Table] Mycological Properties In terms of mycological properties, the microorganisms used in the present invention have the same properties as those shown in the known literature for the same classification of bacteria. That is, the following documents are referred to regarding the mycological properties and culture conditions of the microorganism of the present invention. 1 Bergey's Manual of Determinative
Bacteriology, 8th ed., 490-509 (1974) 2 Int. J. Syst. Bact. 16 114 (1966) 3 Microbiol. Immunol. 25 (3), 257-269 (1981) 4 J. Clin. Pathol. 33 53-57 (1980) 5 J.General Microbiol., 128 713-720
(1982) 6 Applied Microbiol., 23 (6) 1131−1139
(1972) Here, the main mycological properties of the various bacterial strains mentioned above are summarized as follows.
【表】【table】
【表】
培 地
本発明によるコレステロール低下剤の製造に使
用し得る可食性培地の主原料としては、全乳、脱
脂乳、脱脂粉乳、ホエー、あるいはこれらに含ま
れる蛋白質の酵素処理物などの乳質原料、蜂蜜、
糖蜜等の糖質原料、豆乳、豆乳ホエー等の豆質原
料、小麦粉、米粉等の穀類が例示され得る。また
培地濃度は0.01〜5%、より好ましくは0.1〜1.0
%程度である。
菌体の培養
発酵乳製造に於ける乳酸菌培養の常法に従えば
良い。すなわち、先ず前記の如く調整した培地を
110℃で10〜30分間加熱滅菌する。約40℃迄冷却
したら、ストレプトコツカス属微生物菌体をおよ
そ105個/mlとなるように接種し、37〜40℃で好
気的に静置培養する。ただし前記の如く、各種可
食性培地を用いることが可能なため培養時間が通
常とは異なる場合もある。
例えば脱脂粉乳と水で調整した培地に於いては
後記実験例にも示す通り菌体濃度がおよそ108
個/mlに達する迄に11時間以上を要するのに対
し、水道水にトリプチケース、酵母エキス、トリ
プトースを配合した液体培地に於いては6時間以
内に同程度の菌体濃度を得る。
薬理効果
後記各実験例に示す通り本発明のコレステロー
ル低下剤は、血中コレステロール値及びトリグリ
セリド値を極めて効果的に低下せしめるものであ
り、またその有効成分である菌体を可食性培地で
培養する故、通常の培地に配合されている重金属
等の非可食性成分の完全洗浄除去を要することな
く、培養物に凍結乾燥、噴霧乾燥等の処理を行な
うのみで後記実施例にも示す如く種々の食品に自
由に添加することが可能となる。したがつて、動
脈硬化症を始めとし、高脂血症、高リポ蛋白血
症、黄色腫症、胆石症、高血圧症、糖尿病等の疾
患の治療乃至予防を家庭に於いてきわめて容易に
長期的に可能ならしめるものである。
尚、本発明剤の用量は通常、死菌体個数106〜
1013個/Kg体重/日、より好ましくは108〜1011
個/Kg体重/日程度である。
急性毒性
後記実験例に示す通り本発明剤のLD50値は、
生菌体より成るものの場合8.9×108〜1.3×1010
個/マウス(腹腔内投与)、死菌体より成るもの
の場合はいずれの菌にあつても6×1013個/マウ
ス(腹腔内投与)以上である。
又、経口投与の場合は生菌体、死菌体とも実質
的に無毒性である。
菌体の破壊処理
前記微生物菌体中の有効成分をより効果的に作
用させる為に菌体をオートクレーブまたは超音波
により破壊処理することが望ましい。次にその1
例を示す。
例 1
5%脱脂粉乳より成る培地5に前記各微生物
を接種し37℃で10時間好気的に静 置培養して生
菌数5×107/mlの培養液をつくり、得られた培
養液を115℃で 10分間オートクレーブ処理する
と破壊菌体の懸濁液が得られる。例 2
例1と同様の方法で得られた培養液を15KCで
60分間超音波破壊処理し、破壊菌 体の懸濁液を
得る。
菌体の濃縮
本発明に係る可食性培地の固形分含量は前記の
如く0.01〜5%の範囲内であるが、例えば乳質原
料から成る培地で得られる菌体培養物の所定の菌
数相当量を飲食物に添加することにより、その飲
食物自体の風味が著しく損なわれる場合がある。
そこで、添加する飲食物の種類によつては、培養
物中の菌体を濃縮する必要が生ずる。
ここにおいて遠心分離による菌体の濃縮方法は
その操作が簡便であり且つ経済的であることから
最も好ましい方法とされ得る。未破砕の細胞は
700〜1000×g、5〜10分で沈渣として得られる
のでこの範囲の遠心条件で1/10〜1/100迄濃縮す
る。菌体培養物を乾燥して最終的に水分含量1〜
3%程度にする場合においても、その前処理とし
て遠心分離処理をすることが望ましい場合もあ
る。
培養物の乾燥
前記の如き方法で得られた菌体培養物を適宜手
段により乾燥する。乾燥方法は凍結乾燥、噴霧乾
燥、Foam−mat dryingあるいは遠心薄膜乾燥
法、泡沫乾燥法など、使用形態に合わせて選択す
る。その1例を下記に示す。
乾燥例 1
製造例10の方法に従い微生物を8時間培養し、
その培養液から遠心分離により菌体を集め、これ
を10%脱脂乳に懸濁させた後、アンプルに分注す
る(菌数濃度109/ml)。アンプルを−30℃に冷却
して凍結し凍結したままで真空乾燥を行ない、熔
封する。5℃程度で生菌の長期保存が可能であ
る。水分含量は2%。
乾燥例 2
製造例2の方法に従い微生物を10時間培養した
培養液を炭酸水素ナトリウムで中和し、110℃で
10分間加熱滅菌しこれを薄膜流下式の真空濃縮機
で85℃、短時間濃縮を行ない、固形分含量50%に
する。これを57℃で100Kg/cm2一段式ホモゲナイ
ザで乳化し、細多孔ガラス吹込機でN2ガスを均
質に吹き込みスポンジ状にし、次に13℃まで冷却
して乾燥することにより、多泡質の乾燥濃縮物を
得る。これを粉砕すると復水性に極めて優れ、し
たがつて茶、コーヒー等に添加し容易に溶かすこ
との可能な飲料用添加剤と成る。
使用形態
本発明によるコレステロール低下剤は、可食性
培地より得られる菌体より成るものであり、前記
の如く各種処理工程を比較的簡便に行なうことが
可能な為、使用時に於いても種々の形態を取るこ
とができる。すなわち菌体培養物を、そのまま、
あるいは調味料等の添加物を加えるのみでも飲食
物として摂取することが可能であるし、また、こ
れをそのままの状態で、あるいは前記の濃縮、乾
燥等の処理を行なつた状態で種々の飲食物に添加
することも可能である。
例えば、乳酸飲料、発酵乳あるいは酸味を特徴
とする清涼飲料その他の食品を得る場合には培養
物をそのまま添加することもできるが、茶、調味
料、その他それ自体の風味を損なつてはならない
食品に対しては、培地の成分を極力除去し、且つ
所定の用量を摂取可能にする為、菌体を濃縮し、
また、茶等に於いては保存の便宜上乾燥処理を行
なう必要を有するなど、本発明剤の使用形態はそ
の添加される各々の食品自体の性質あるいは特徴
と同剤の摂取されるべき用量とにより選ばれるも
のである。
次に本発明によるコレステロール低下剤の製造
例、薬理効果、急性毒性及び食品配合列を実施例
によつて示す。
実施例1 (製造例)
本発明によるコレステロール低下剤の製造例を
下記に示す。
製造例 1
重量濃度10%となるように調製した脱脂粉乳を
110℃で10分間加熱滅菌し、ストレプトコツカ
ス・フエカーリスADV9001、ストレプトコツカ
ス・フエシウムADV1009、ストレプトコツカ
ス・デユランスADV3001、ストレプトコツカ
ス・エビウムAD2003を各々単独に、生菌数濃度
がおよそ105個/mlとなるように接種し、37℃で
静置培養した。生菌数濃度変化及びPH変化の様子
を第1図及び2図に示す、4株とも、最高生菌数
濃度はおよそ108個/mlとなり、脱脂粉乳中で、
良く増殖し得ることを示した。
また、ストレプトコツカス・フエカーリス
ADV9001を接種したものは、PH4.2まで、ストレ
プトコツカス・フエシウムADV1009を接種した
ものはPH4.4までPHが低下し、凝乳したが、スト
レプトコツカス・デユランスADV3001又は、ス
トレプトコツカス・エビウムAD2003を接種した
ものはPHはあまり低下せず、培養1週間後でも凝
乳しなかつた。
次に上記の方法で10時間培養した菌体培養液を
15分間3000rpmで遠心分離処理することにより菌
体を1/10迄濃縮し、これを噴霧乾燥すると粒状の
白色粉末が得られた。
製造例 2
市販の牛乳を110℃で10分間加熱滅菌し、上記
4株を製造例1と同様に接種、培養した。24時間
後の生菌数濃度及びPHを第3表に示す。本4株は
市販牛乳中でよく増殖した。凝乳については、製
造例1と同様な結果であつた。
次に上記の方法で10時間培養した菌体の培養液
を製造例1と同様に処理し、白色粉末を得た。
製造例 3
市販の大豆を一夜水に浸漬した後、粉砕し、浸
漬前の大豆重量の8倍量の水を加え、80℃で10分
間加熱後布で濾して豆乳を得た。これを120℃で
10分間加熱滅菌し、前例の4株を前例と同様に接
種、培養した。24時間後の生菌数濃度及びPHを第
3表に示す。4株とも、きわめてよく増殖し、24
時間以内に豆乳は凝固した。
製造例 4
市販の糖蜜(大日本製糖株式会社製)1容と水
9容とを混合し、1規定NaOHでPH7に調製後、
110℃で10分間加熱滅菌した。前例4株を前例と
同様に接種、培養した。24時間後の生菌数濃度と
PHを第3表に示す。4株とも増殖したが、特に、
ストレプトコツカス・フエカーリスADV9001、
ストレプトコツカス・フエシウムADV1009がよ
く増殖した。
製造例 5
下記のように調製した液体培地に前例の4株を
前例と同様に接種し、37℃で好気的に静置培養し
たところ、いずれの菌株も良く増殖し、接種後約
6時間で生菌数濃度5×107個/ml以上を得た。
次に上記の方法で8時間培養して得られた培養
液を遠心分離処理(4000rpm、10分間)すること
により菌体を1/100迄濃縮し、これを凍結乾燥し
固形物を得た。
液体培地の組成
蒸留水1中に
トリプチケース 25g
酵母エキス 15g
トリプトース 10g
製造例 6
重量濃度0.8%となるように調整した脱脂粉乳
を110℃で10分間加熱滅菌し、前例の4株を生菌
数濃度がおよそ105個/mlとなるように接種し、
37℃で静置培養した。第3表に24時間後の生菌数
濃度及びPHを示す。
製造例 7
市販の牛乳を10倍に希釈し、110℃で10分間加
熱滅菌し、前例4株を上記と同様に接種、培養し
た。24時間後の生菌数濃度及びPHを第3表に示
す。
次に上記の方法で10時間培養して得られた培養
液を遠心分離処理(4000rpm、10分間)して菌体
を1/100迄濃縮し、次いでこれの凍結乾燥物を得
た。
製造例 8
固形分含量が0.6%の豆乳を120℃で10分間加熱
滅菌し、前例の4株を前例と同様に接種、培養し
た。24時間後の生菌数濃度及びPHを第3表に示
す。
上記の方法により、10時間後に得られた培養液
を前例と同様に遠心分離処理し、これを噴霧乾燥
して粒状粉末を得た。
製造例 9
市販の糖蜜(大日本製糖株式会社製)1容と水
11容とを混合し、1規定NaOHでPH7に調製後、
110℃で10分間加熱滅菌した。前例の4株を前例
と同様に、接種、培養した。24時間後の生菌数濃
度及びPHを第3表に示す。
次に上記の方法で10時間培養して得られた培養
液を超音波破壊処理(15KC、60分)し、破壊菌
体懸濁液を得た。
製造例 10
下記のように調整した液体培地に前例の4株を
前例と同様に接種し、37℃で好気的に静置培養し
たところ、いずれの菌株も良く増殖し、接種後約
6時間で生菌数濃度2×107個/ml以上を得た。
上記の方法で8時間培養して得られた培養液を
オートクレーブにより115℃で10分間加熱処理し、
次いでこの破壊菌体懸濁液を遠心分離処理
(4000rpm、15分間)にかけ、濃縮された破壊菌
体含有部分の凍結乾燥物を得た。
液体培地の組成
蒸留水1中に
トリプチケース 6g
酵母エキス 3g
トリプトース 2g[Table] Medium Main raw materials for the edible medium that can be used in the production of the cholesterol-lowering agent of the present invention include whole milk, skim milk, skim milk powder, whey, or milk products such as enzyme-treated proteins contained in these. raw materials, honey,
Examples include carbohydrate raw materials such as molasses, soybean raw materials such as soy milk and soy milk whey, and grains such as wheat flour and rice flour. Also, the medium concentration is 0.01 to 5%, more preferably 0.1 to 1.0
It is about %. Cultivation of bacterial cells The conventional method for culturing lactic acid bacteria in fermented milk production may be followed. That is, first, the medium prepared as described above was
Heat sterilize at 110°C for 10-30 minutes. After cooling to approximately 40°C, Streptococcus microorganisms are inoculated at approximately 10 5 cells/ml and cultured aerobically at 37 to 40°C. However, as mentioned above, since various edible media can be used, the culture time may be different from usual. For example, in a medium prepared with skim milk powder and water, the bacterial cell concentration is approximately 10 8 as shown in the experimental example below.
It takes more than 11 hours to reach the bacterial cell concentration per ml, whereas a liquid medium containing trypticase, yeast extract, and tryptose in tap water achieves the same bacterial cell concentration within 6 hours. Pharmacological Effects As shown in the experimental examples below, the cholesterol-lowering agent of the present invention extremely effectively lowers blood cholesterol and triglyceride levels, and its active ingredient, the bacterial cells, is cultured in an edible medium. Therefore, it is not necessary to completely wash and remove inedible components such as heavy metals that are contained in ordinary culture media, and by simply subjecting the culture to freeze-drying, spray-drying, etc., various It becomes possible to freely add it to foods. Therefore, it is extremely easy to treat or prevent diseases such as arteriosclerosis, hyperlipidemia, hyperlipoproteinemia, xanthomatosis, cholelithiasis, hypertension, and diabetes at home in a long-term manner. This makes it possible. The dose of the present agent is usually 10 6 to 10 6 dead bacteria.
10 13 pieces/Kg body weight/day, more preferably 10 8 to 10 11
body weight/day. Acute toxicity As shown in the experimental examples below, the LD 50 value of the present agent is:
8.9×10 8 to 1.3×10 10 for those consisting of viable bacterial cells
cells/mouse (intraperitoneal administration), and in the case of dead bacteria, the number is 6×10 13 cells/mouse (intraperitoneal administration) or more for any type of bacteria. Furthermore, in the case of oral administration, both live and dead bacteria are substantially non-toxic. Destruction treatment of microbial cells In order to make the active ingredients in the microbial cells act more effectively, it is desirable to destroy the microbial cells using an autoclave or ultrasonic waves. Next, part 1
Give an example. Example 1 Each of the above-mentioned microorganisms was inoculated into medium 5 consisting of 5% skim milk powder, and aerobically statically cultured at 37°C for 10 hours to prepare a culture solution with a viable bacterial count of 5 x 10 7 /ml. Autoclave the solution at 115°C for 10 minutes to obtain a suspension of destroyed bacterial cells. Example 2 Culture solution obtained in the same manner as Example 1 was heated to 15KC.
Perform ultrasonic disruption treatment for 60 minutes to obtain a suspension of disrupted bacterial cells. Concentration of Bacterial Cells The solid content of the edible medium according to the present invention is within the range of 0.01 to 5% as described above. When added to food or drink, the flavor of the food or drink itself may be significantly impaired.
Therefore, depending on the type of food or drink to be added, it may be necessary to concentrate the bacterial cells in the culture. Here, the method of concentrating bacterial cells by centrifugation can be considered the most preferable method because the operation is simple and economical. Unbroken cells are
Since it can be obtained as a precipitate in 5 to 10 minutes at 700 to 1000 x g, it can be concentrated to 1/10 to 1/100 using centrifugation conditions within this range. The bacterial culture is dried to a final moisture content of 1~
Even when reducing the amount to about 3%, it may be desirable to perform centrifugation as a pretreatment. Drying of Culture The bacterial cell culture obtained by the method described above is dried by an appropriate means. The drying method is selected depending on the usage type, such as freeze drying, spray drying, foam-mat drying, centrifugal thin film drying, or foam drying. An example is shown below. Drying Example 1 Cultivate microorganisms for 8 hours according to the method of Production Example 10,
Bacterial cells are collected from the culture solution by centrifugation, suspended in 10% skim milk, and then dispensed into ampoules (bacteria number concentration: 10 9 /ml). The ampoule is cooled to -30°C, frozen, dried under vacuum, and sealed. Live bacteria can be stored for a long time at about 5°C. Moisture content is 2%. Drying Example 2 A culture solution in which microorganisms were cultured for 10 hours according to the method of Production Example 2 was neutralized with sodium bicarbonate and dried at 110℃.
Sterilize by heating for 10 minutes, then concentrate for a short time at 85°C in a thin-film falling type vacuum concentrator to reach a solid content of 50%. This is emulsified at 57℃ using a 100Kg/cm 2 single-stage homogenizer, uniformly blown with N 2 gas using a microporous glass blower, and then cooled to 13℃ and dried to form a porous foam. Obtain a dry concentrate. When pulverized, it has excellent condensation properties, and therefore becomes a beverage additive that can be added to tea, coffee, etc. and easily dissolved. Usage form The cholesterol-lowering agent of the present invention is composed of bacterial cells obtained from an edible medium, and as mentioned above, various processing steps can be performed relatively easily, so it can be used in various forms when used. can be taken. In other words, the bacterial cell culture as it is,
Alternatively, it can be consumed as food or drink simply by adding additives such as seasonings, or it can be consumed as is or after the above-mentioned concentration, drying, etc. It can also be added to foods. For example, when obtaining lactic acid drinks, fermented milk, soft drinks and other foods characterized by sourness, the culture can be added as is, but the flavor of the tea, seasoning, or other product itself must not be impaired. For foods, we remove as much of the culture medium as possible and concentrate the bacterial cells to make it possible to ingest the prescribed dose.
In addition, the form of use of the agent of the present invention will depend on the nature or characteristics of each food to which it is added and the dose of the agent to be ingested, such as tea, etc., which requires drying for convenience of preservation. It is chosen. Next, examples of production, pharmacological effects, acute toxicity, and food composition of the cholesterol-lowering agent according to the present invention will be shown. Example 1 (Production Example) A production example of the cholesterol-lowering agent according to the present invention is shown below. Production example 1 Skim milk powder prepared to have a weight concentration of 10%
Heat sterilize at 110°C for 10 minutes to obtain Streptococcus fuecalis ADV9001, Streptococcus faecium ADV1009, Streptococcus duulans ADV3001, and Streptococcus evium AD2003 individually to a viable bacterial count concentration of approximately 10 5 cells. /ml and statically cultured at 37°C. Figures 1 and 2 show changes in viable bacteria concentration and pH changes.The maximum viable bacteria concentration for all four strains was approximately 10 8 cells/ml, and in skim milk powder,
It was shown that it could grow well. Also, Streptococcus fuecalis
In those inoculated with ADV9001, the PH decreased to PH4.2, and in those inoculated with Streptococcus faecium ADV1009, the pH decreased to PH4.4 and the milk curdled. In those inoculated with AD2003, the pH did not decrease much and the milk did not curd even after one week of culture. Next, use the bacterial cell culture solution cultured for 10 hours using the above method.
The bacterial cells were concentrated to 1/10 by centrifugation at 3000 rpm for 15 minutes, and when this was spray dried, a granular white powder was obtained. Production Example 2 Commercially available milk was heat sterilized at 110°C for 10 minutes, and the above four strains were inoculated and cultured in the same manner as in Production Example 1. The viable cell count concentration and pH after 24 hours are shown in Table 3. These four strains proliferated well in commercially available milk. Regarding the curdled milk, the results were similar to those in Production Example 1. Next, the culture solution of the bacterial cells cultured in the above method for 10 hours was treated in the same manner as in Production Example 1 to obtain a white powder. Production Example 3 Commercially available soybeans were soaked in water overnight, then ground, water was added in an amount 8 times the weight of the soybeans before soaking, heated at 80°C for 10 minutes, and filtered through a cloth to obtain soymilk. This at 120℃
It was heat sterilized for 10 minutes, and the four strains from the previous example were inoculated and cultured in the same manner as in the previous example. The viable cell count concentration and pH after 24 hours are shown in Table 3. All four strains grew extremely well, with 24
Within hours the soy milk curdled. Production Example 4 Mix 1 volume of commercially available molasses (manufactured by Dainippon Sugar Co., Ltd.) and 9 volumes of water, adjust the pH to 7 with 1N NaOH,
It was heat sterilized at 110°C for 10 minutes. The previous four strains were inoculated and cultured in the same manner as in the previous example. Viable cell count concentration after 24 hours and
The pH is shown in Table 3. All four strains proliferated, but especially
Streptococcus fuecalis ADV9001,
Streptococcus faecium ADV1009 grew well. Production Example 5 When the four strains from the previous example were inoculated into a liquid medium prepared as below in the same manner as in the previous example and cultured statically at 37°C under aerobic conditions, all the strains grew well and about 6 hours after inoculation. A viable cell count concentration of 5×10 7 cells/ml or more was obtained. Next, the culture solution obtained by culturing for 8 hours according to the above method was centrifuged (4000 rpm, 10 minutes) to concentrate the bacterial cells to 1/100, and this was freeze-dried to obtain a solid material. Composition of liquid medium Distilled water 1 part Trypticase 25g Yeast extract 15g Tryptose 10g Production example 6 Skim milk powder adjusted to a weight concentration of 0.8% was heat sterilized at 110℃ for 10 minutes, and the four strains from the previous example were transformed into live bacteria. Inoculate so that the number concentration is approximately 10 5 cells / ml,
It was statically cultured at 37°C. Table 3 shows the viable cell count concentration and pH after 24 hours. Production Example 7 Commercially available milk was diluted 10 times, heat sterilized at 110°C for 10 minutes, and the previous 4 strains were inoculated and cultured in the same manner as above. The viable cell count concentration and pH after 24 hours are shown in Table 3. Next, the culture solution obtained by culturing for 10 hours according to the above method was centrifuged (4000 rpm, 10 minutes) to concentrate the bacterial cells to 1/100, and then a freeze-dried product was obtained. Production Example 8 Soybean milk with a solid content of 0.6% was heat sterilized at 120°C for 10 minutes, and the four strains from the previous example were inoculated and cultured in the same manner as in the previous example. The viable cell count concentration and pH after 24 hours are shown in Table 3. The culture solution obtained after 10 hours by the above method was centrifuged in the same manner as in the previous example, and this was spray dried to obtain a granular powder. Production example 9 1 volume of commercially available molasses (manufactured by Dainippon Sugar Co., Ltd.) and water
After mixing 11 volumes and adjusting the pH to 7 with 1N NaOH,
It was heat sterilized at 110°C for 10 minutes. The four strains in the previous example were inoculated and cultured in the same manner as in the previous example. The viable cell count concentration and pH after 24 hours are shown in Table 3. Next, the culture solution obtained by culturing for 10 hours by the above method was subjected to ultrasonic disruption treatment (15KC, 60 minutes) to obtain a disrupted bacterial cell suspension. Production Example 10 When the four strains from the previous example were inoculated into a liquid medium prepared as below in the same manner as in the previous example and cultured statically in an aerobic manner at 37°C, all strains proliferated well and about 6 hours after inoculation. A viable cell count concentration of 2×10 7 cells/ml or more was obtained. The culture solution obtained by culturing for 8 hours using the above method was heated at 115°C for 10 minutes in an autoclave.
Next, this disrupted bacterial cell suspension was centrifuged (4000 rpm, 15 minutes) to obtain a lyophilized fraction containing concentrated disrupted bacterial cells. Composition of liquid medium Distilled water 1 part Trypticase 6g Yeast extract 3g Tryptose 2g
【表】
実施例2 (薬理作用)
以下、本発明によるコレステロール低下剤の薬
理効果及び急性毒性に関する実験例を示す。
実験例 1
前記製造例10の培養物に菌体破壊処理を行なわ
ずに凍結乾燥し、これを通常及び無菌マウス(雄
16週令、平均体重19g;各群10匹)、通常ラツト
(雄16週令、平均体重232g;各群10匹)に生菌体
個数1010個相当ダイエツトに添加し、自由摂取さ
せた後、ダイエツトのみで4週間飼育した。次い
でこれらマウス及びラツトの下大動脈より動脈血
を採集、遠心分離して血清標品を得、コレスキツ
ト(商品名;関東化学社製、Zurkowski法)及び
トリグリセライドTG Wako(商品 名;和光純
薬社製、アセチルアセトン抽出法)により血清標
品中コレステロール値及びトリグリセリド値を測
定した。
尚、ダイエツトの組成(重量%)は下記の通り
である。
ダイエツトの組成
カゼイン 20
大豆油 10
小麦でんぷん 61
ミネラル 4
ビタミン混合物 2
ろ紙粉末 3
得られた結果を第4表に示す、表中、“コレス
テロール負荷”又は“果糖負荷”は前記飼料に更
に1%コレステロールを添加したもの或いは小麦
でんぷんを果糖にて全量置換した飼料を使用した
場合を示すものであり、数値は無投与群を対照と
した低下率である。
実験例 2
前記製造例10により得られた凍結乾燥物を通常
ラツト(雄16週令、平均体重235g;各群10匹)、
通常及び無菌マウス(雄16週令、平均体重18g;
各群10匹)に4週間、死菌体個数1010個相当量を
経口的に連日摂取させた。次いでこれらラツトの
下大動脈より動脈血を採集、実験例1と同様の方
法でコレステロール値及びトリグリセリド値を測
定した。ダイエツトに関しても実験例1と同様の
方法で与えた。
結果を第5表に示す。
実験例 3
前記製造例10の培養物を12000rpmの連続遠心
分離に付し、菌体を集め、生理食塩水で洗浄した
後、生理食塩水に懸濁して菌液50ml(1011/ml)
を得、これを通常ラツト(雄18週令、平均体重
238g;各群15匹)、通常及び無菌マウス(雄18週
令、平均体重31g;各群10匹 )に12週間、1011
個/日、経口的に連日投与し、前記と同様にして
血清中コレステロール及びトリグリセリドの各低
下率を測定した。結果を第6表に示す。
尚、表中、“コレステロール負荷”又は“果糖
負荷”は、前記飼料に更に1%コレステロールを
添加したもの或いは小麦でんぷんを果糖にて全量
置換した飼料を使用した場合を示すものであり、
数値は無投与群を対照とした低下率である。
実験例 4
前記実験例3の生菌体生食水懸濁液をさらに生
理食塩水で2回洗浄した後生理食塩水(0.85%
NaCl水溶液)に懸濁して得られる菌液50ml
(1011/ml)を115℃で10分間加熱し、菌体懸濁液
を得る。これを通常ラツト(雄18週令、平均体重
246g;各群15匹)及び無菌マウス(雄18週令、
平均体重30g;各群10匹)に1011個経口的に投与
後12及び8週間飼育し、前記と同法にて血中コレ
ステロール及びトリグリセリド低下率を測定し
た。
結果を第表7に示す。[Table] Example 2 (Pharmacological effect) Hereinafter, an experimental example regarding the pharmacological effect and acute toxicity of the cholesterol-lowering agent according to the present invention will be shown. Experimental Example 1 The culture of Production Example 10 above was freeze-dried without cell destruction treatment, and this was used in normal and germ-free mice (male).
16 weeks old, average weight 19 g; 10 rats in each group) and normal rats (16 weeks old, male, average weight 232 g; 10 rats in each group) were added to the diet equivalent to 10 viable bacteria and allowed to ingest ad libitum. The animals were kept on diet alone for 4 weeks. Next, arterial blood was collected from the inferior aorta of these mice and rats and centrifuged to obtain a serum sample, which was then treated with Cholescuit (trade name; manufactured by Kanto Kagaku Co., Ltd., Zurkowski method) and triglyceride TG Wako (trade name; manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.). Cholesterol and triglyceride levels in serum samples were measured using the acetylacetone extraction method. The composition (weight %) of the diet is as follows. Composition of the diet Casein 20 Soybean oil 10 Wheat starch 61 Minerals 4 Vitamin mixture 2 Filter paper powder 3 The results obtained are shown in Table 4. In the table, "cholesterol load" or "fructose load" refers to the addition of 1% cholesterol to the feed. This shows the case of using feed supplemented with wheat starch or wheat starch completely replaced with fructose, and the numerical values are the reduction rates compared to the non-administered group. Experimental Example 2 The freeze-dried product obtained in Production Example 10 was used in regular rats (16-week-old male, average weight 235 g; 10 rats in each group).
Normal and germ-free mice (male 16 weeks old, average weight 18 g;
(10 animals in each group) were orally ingested an amount equivalent to 10.10 dead bacteria every day for 4 weeks. Arterial blood was then collected from the inferior aorta of these rats, and cholesterol and triglyceride levels were measured in the same manner as in Experimental Example 1. Diet was given in the same manner as in Experimental Example 1. The results are shown in Table 5. Experimental Example 3 The culture of Production Example 10 was subjected to continuous centrifugation at 12,000 rpm, the bacterial cells were collected, washed with physiological saline, and suspended in physiological saline to obtain 50 ml of bacterial solution (10 11 /ml).
obtained from normal rats (male 18 weeks old, average weight
238g; 15 mice in each group), normal and germ-free mice (18 weeks old male, average weight 31g; 10 mice in each group) for 12 weeks, 10 11
The drug was orally administered daily, and the reduction rates of serum cholesterol and triglyceride were measured in the same manner as above. The results are shown in Table 6. In addition, in the table, "cholesterol load" or "fructose load" indicates the case where 1% cholesterol was further added to the above feed or the feed where wheat starch was completely replaced with fructose.
The numerical value is the reduction rate compared to the non-administration group. Experimental Example 4 The viable bacterial cell saline suspension of Experimental Example 3 was further washed twice with physiological saline, and then washed with physiological saline (0.85%
50ml of bacterial suspension obtained by suspending in NaCl aqueous solution)
(10 11 /ml) at 115°C for 10 minutes to obtain a bacterial cell suspension. This was carried out using normal rats (male 18 weeks old, average weight).
246g; 15 mice per group) and germ-free mice (male, 18 weeks old,
After orally administering 10 to 11 mice (average body weight: 30 g; 10 animals in each group), they were kept for 12 and 8 weeks, and the rate of reduction in blood cholesterol and triglyceride was measured using the same method as described above. The results are shown in Table 7.
【表】【table】
【表】【table】
【表】【table】
【表】
実験例 5
前記製造例10の方法によりS.フエシウム
ADV1009を培養し、その培養物を同例の方法を
経て凍結乾燥処理し、これを高脂血ラツト(雄18
週令、平均体重233g、コレステロール負荷ダイ
エツトで飼育したもの、各群10匹)に2週間死菌
体個数1011個相当量を第2表のダイエツトに添加
して経口的に連日摂取させた。次いでこれらラツ
トの動脈血中のコレステロール値を実験例1乃至
4と同様の方法で測定した。結果を第3図に示
す。培養時間により、ラツトの血中コレステロー
ル及びトリグリセリド低下率に変化が認められ
た。
実験例 6
ICR系マウス(雄6週令、平均体重30.0±0.5
g)を使用し、前記実験例3に用いた生理食塩水
0.5ml懸濁液をマウス当り9×109、9×108、9
×107個の3段階の菌数(各群10匹)に相当量で
腹腔内投与し、14日間マウスの生死を観察した。
Behrens−Ka¨rber法に従つて算出したLD50値
(菌体個数/マウス)を第8表に示す。
尚、死菌体の場合はいずれの菌にあつても
LD50値は6×1013個/マウス以上(腹腔内投与)
であり且つ経口投与ではいずれの場合でも当然の
ことながら、全然無毒性であつた。
第8表
S.フエシウムADV1009 6.3×109
S.フエカーリスADV9001 3.8×109
S.エビウムAD2003 4.2×109
S.デユランスADV3001 8.9×109
実施例3 (食品配合例)
本発明によるコレステロール低下剤は、単独
で、あるいは調味料、香料等の添加物を加えるだ
けでそのまま摂取することができるが、種々の食
品に添加して予防医学的食品として使用すること
もまた可能であり、その利用範囲は極めて広い。
以下に同剤を用いた食品配合例を示す。
食品配合例1 (粉末スープ)
原料 配合(g)
調理豆粉末 3600
小麦粉 135
乾燥酵母粉末 90
乾燥タマネギ 90
食塩 11
白コシヨウ 91oz
MSG 12
粉末月桂樹葉 3
製造例2の粉末 300
食品配合例2 (お茶漬のり)
原料 配合(g)
あられ 2.5
のり 0.75
調味料顆粒 3.3
製造例10の凍結乾燥物 0.3
食品配合例3 (カレールー)
原料 配合(g)
牛脂 40
シユガーエステル 0.5
小麦粉(薄力) 31.7
食塩 10
砂糖 2
MSG 1
脱脂粉乳 1.5
カレー粉 6.2
オニオンパウダー 1.6
カラメル 0.5
アジポールビーフ(粉末) 5
製造例6の泡沫乾燥物 0.8
食品配合例4 (ハンバーグ)
原料 配合(g)
ミンチ肉 20
植物蛋白質 10
玉ネギ 40
卵 10
パン 10
焼小麦粉 3
食塩 1
コシヨウ 0.4
マーガリン 5
MSG 0.8
製造例9の泡沫乾燥物 0.5
食品配合例5 (フルーツ乳飲料)
原料 配合(g)
脱脂乳 70
果汁 5
クエン酸 0.3
砂糖 10
色素 0.1
香料 0.2
安定剤 0.4
製造例1の培養物 14
尚、本発明によるコレステロール低下剤の家庭
に於ける最も容易な使用形態であり且つ本発明の
目的に最もかなつたものの一つとなり得る例とし
て、飲料用添加剤を挙げることができる。この製
法は、菌体培養物の乾燥工程に於ける一例にも示
したように、培養物を濃縮して泡沫乾燥するか、
あるいは、Form−mat drying法にて乾燥するこ
とにより特徴づけられる。この方法で得られた粉
末を1人分菌体個数5×107〜5×109個相当量
(乾燥例2により加工した添加剤に於いては50〜
500mg程度)、茶、コーヒー、ヨーグルト、ジユー
ス等に添加すると速やかに混合あるいは溶解し、
飲料の風味や外観を損わない。したがつて同剤の
こうした形態での使用は日常の食習慣を著しく変
えることなく、動脈硬化症等の長期にわたる治
療、予防を楽に行なうことを可能にするものであ
る。また、下記に一例を示すように、治療食に毎
回その適量を添加することによつて食飼療法をよ
り効果的に行なうことができる。
高リポタンパク血症治療食の一例
朝食 コーヒーまたは紅茶(同剤泡沫乾燥物を菌
数3×109個相当量添加)
パン(ライ麦と小麦) 30g
マーガリン 10g
コツテージチーズ 60g
間食 脱脂乳製ヨーグルト(製造例6の噴霧乾燥
物を80mg添加) 150g
クネツケ 8g
マーガリン 5g
昼食 トンカツ
豚肉 100g
油 5g
ニンジン料理
ニンジン 150g
マーガリン(製造例8の噴霧乾燥物を24
mg添加) 5g
ジヤガイモ 60g
ナシ 100g
夕食 紅茶(同剤泡沫乾燥物を菌数2×109個相
当量添加)
全粒パン 50g
マーガリン 10g
ハム 40g
トマトサラダ
トマト 100g
タマネギ 10g
油 3g[Table] Experimental Example 5 S. faecium was produced by the method of Production Example 10 above.
ADV1009 was cultured, the culture was freeze-dried using the same method, and this was applied to hyperlipidemic rats (male 18
Amount equivalent to 10 to 11 dead bacteria was added to the diet shown in Table 2 for 2 weeks and orally ingested to mice (10 to 10 in each group, 1 week old, average weight 233 g, reared on a cholesterol-loaded diet, every day) for 2 weeks. Next, the cholesterol levels in the arterial blood of these rats were measured in the same manner as in Experimental Examples 1 to 4. The results are shown in Figure 3. Changes in the reduction rate of blood cholesterol and triglyceride in rats were observed depending on the culture time. Experimental example 6 ICR mouse (male 6 weeks old, average weight 30.0±0.5
g) and the physiological saline used in Experimental Example 3 above.
0.5ml suspension per mouse 9×10 9 , 9×10 8 , 9
An equivalent amount was administered intraperitoneally to three stages of bacterial counts (10 mice in each group) of ×10 7 bacteria, and the mice were observed for 14 days to see if they were alive or dead. Table 8 shows the LD 50 values (number of bacterial cells/mouse) calculated according to the Behrens-Karber method. In addition, in the case of dead bacteria, no matter which type of bacteria it is,
LD 50 value is 6×10 13 cells/mouse or more (intraperitoneal administration)
Naturally, it was completely non-toxic when administered orally. Table 8 S. faecium ADV1009 6.3×10 9 S. fuecalis ADV9001 3.8×10 9 S. evium AD2003 4.2×10 9 S. dudulans ADV3001 8.9×10 9 Example 3 (Food formulation example) The cholesterol-lowering agent according to the present invention is It can be taken alone or as is by adding additives such as seasonings and fragrances, but it is also possible to add it to various foods and use it as a preventive medical food. Extremely spacious. Examples of food formulations using this agent are shown below. Food composition example 1 (Powdered soup) Ingredients Mixture (g) Cooked bean powder 3600 Wheat flour 135 Dried yeast powder 90 Dried onion 90 Salt 11 White koshiyo 91oz MSG 12 Powdered bay leaf 3 Powder of production example 2 300 Food composition example 2 (Ochazuke) Paste) Raw materials Mixture (g) Grain 2.5 Paste 0.75 Seasoning granules 3.3 Freeze-dried product of production example 10 0.3 Food composition example 3 (Curry roux) Raw materials Mixture (g) Beef tallow 40 Sugar ester 0.5 Flour (weak) 31.7 Salt 10 Sugar 2 MSG 1 Skim milk powder 1.5 Curry powder 6.2 Onion powder 1.6 Caramel 0.5 Adipol beef (powder) 5 Dried foam from Production Example 6 0.8 Food composition example 4 (Hamburger steak) Raw materials Mixture (g) Minced meat 20 Plant protein 10 Onion 40 Eggs 10 Bread 10 Baked flour 3 Salt 1 Koshiyo 0.4 Margarine 5 MSG 0.8 Dry foam from Production Example 9 0.5 Food composition example 5 (Fruit milk drink) Ingredients Mixture (g) Skimmed milk 70 Fruit juice 5 Citric acid 0.3 Sugar 10 Pigment 0.1 Flavoring 0.2 Stabilizer 0.4 Culture of Production Example 1 14 As an example of the cholesterol-lowering agent of the present invention, which is the easiest way to use it at home and can be one of the forms that best meets the purpose of the present invention, there is Additives may be mentioned. This manufacturing method involves concentrating the culture and drying it as a foam, as shown in the example of the drying process for the bacterial culture.
Alternatively, it is characterized by drying using a form-mat drying method. The powder obtained by this method is used in an amount equivalent to 5 x 107 to 5 x 109 microbial cells per person (50 to 50 for the additive processed in Drying Example 2).
When added to tea, coffee, yogurt, juice, etc., it quickly mixes or dissolves.
Does not impair the flavor or appearance of beverages. Therefore, the use of the drug in this form makes it possible to easily carry out long-term treatment and prevention of arteriosclerosis, etc., without significantly changing daily eating habits. Furthermore, as shown in an example below, by adding an appropriate amount of the drug to therapeutic food each time, dietary therapy can be more effectively carried out. An example of a food for the treatment of hyperlipoproteinemia Breakfast: Coffee or tea (added the equivalent of 3 x 10 9 bacteria) Bread (rye and wheat) 30g Margarine 10g Cottage cheese 60g Snacks Skimmed milk yogurt ( Add 80mg of the spray-dried product from Production Example 6) 150g Kunetske 8g Margarine 5g Lunch Tonkatsu Pork 100g Oil 5g Carrot dish Carrot 150g Margarine (Add 24g of the spray-dried product from Production Example 8)
(mg added) 5g Potatoes 60g Pears 100g Dinner Black tea (added the equivalent of 2 x 10 9 bacteria) Whole grain bread 50g Margarine 10g Ham 40g Tomato salad Tomato 100g Onion 10g Oil 3g
第1図は培地中の生菌数の、第2図は培養物の
PHの経時的変化を示す図である。図中Aは、S.デ
ユランスADV3001、Bは、S.エビウムAD2003、
Cは、S.フエシウムADV1009、Dは、S.フエカ
ーリスADV9001を各々表す。第3図は、菌体の
培養時間による高脂血ラツトの血中コレステロー
ル及びトリグリセリド低下率の変動を示す図であ
る。実線Aは、コレステロール低下率を、破線B
は、トリグリセリド低下率を示す。
Figure 1 shows the number of viable bacteria in the medium, and Figure 2 shows the number of viable bacteria in the culture medium.
FIG. 3 is a diagram showing changes in PH over time. In the figure, A is S. duurans ADV3001, B is S. evium AD2003,
C represents S. faecium ADV1009, and D represents S. faecalis ADV9001. FIG. 3 is a diagram showing changes in blood cholesterol and triglyceride reduction rates in hyperlipidemic rats depending on culture time of bacterial cells. The solid line A represents the cholesterol reduction rate, and the dashed line B represents the cholesterol reduction rate.
indicates triglyceride reduction rate.
Claims (1)
トコツカス・フエカーリス、ストレプトコツカ
ス・エビウム、ストレプトコツカス・サリヴアリ
ウス、ストレプトコツカス・デユランス、ストレ
プトコツカス・ミテイス、及びストレプトコツカ
ス・イクイヌスより成る群から選択される1種又
は2種以上の微生物を、乳質原料、糖質原料、豆
質原料、及び穀類から成る群より選択される1種
又は2種以上を主原料とする可食性培地で培養し
て得られる培養物をコレステロール低下活性成分
として含有することを特徴とする飲食物。1 selected from the group consisting of Streptococcus faecium, Streptococcus fuecalis, Streptococcus evium, Streptococcus salivarius, Streptococcus duulans, Streptococcus miteis, and Streptococcus equinus. Obtained by culturing one or more types of microorganisms in an edible medium whose main raw material is one or more types selected from the group consisting of milk raw materials, carbohydrate raw materials, legume raw materials, and cereals. A food or drink characterized by containing a culture as a cholesterol-lowering active ingredient.
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