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JPH0513638B2 - - Google Patents
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JPH0513638B2 - - Google Patents

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JPH0513638B2
JPH0513638B2 JP16072783A JP16072783A JPH0513638B2 JP H0513638 B2 JPH0513638 B2 JP H0513638B2 JP 16072783 A JP16072783 A JP 16072783A JP 16072783 A JP16072783 A JP 16072783A JP H0513638 B2 JPH0513638 B2 JP H0513638B2
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JP
Japan
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molasses
sugar
chromatography
cation exchange
invertase
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Keisuke Nagai
Chiaki Sano
Toshio Ito
Tetsuya Kawakita
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Ajinomoto Co Inc
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Ajinomoto Co Inc
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  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

【発明の詳細な説明】[Detailed description of the invention]

本発明はモラセスから発酵原料を製造する方法
に関する。 モラセスは甘蔗糖あるいは甜菜糖等の製糖工業
に於て生ずる副生物であり、主としてシユークロ
ースを含んだ糖液であるが、糖の他に多量の夾雑
物質を含んでいるため糖を経済的に分離すること
ができず、現在ではグルタミン酸発酵あるいはア
ルコール発酵原料として使用されている。しかし
ながら、発酵原料として使用する場合であつても
やはり多量に含まれる夾雑物、特に着色物が発酵
液にそのまま移行するための発酵生産物を分離・
精製する上で又廃液の処理の面からも大きなコス
ト負担となつている。更に、単に不純物の除去だ
けでなく発酵原料として用いた場合、特にケーン
モラセスを用いた場合、発酵収率が低く、この点
に於ても満足できるとはいえない。 そこで本発明者等はモラセスから品質、即ち発
酵収率が向上するような品質の発酵原料を経済的
に効率良く製造する方法を開発することを目的と
して種々研究を重ねた結果、モラセスにインベル
ターゼ又は酸を作用してシユークロースをグルコ
ース及びフラクトースに転化せしめた後、カチオ
ン交換樹脂を用いてクロマトグラフイーを行えば
転化糖と夾雑物が効率良く分離できること、及び
このようにして得られた糖液(転化糖液)を使用
すればアミノ酸発酵の収率が飛躍的に向上でき、
かつ発酵生産物の分離・精製が極めて容易に出来
ることを発見した。(特願昭57−116580) 更に鋭意研究の結果、モラセスのシユークロー
スを転化した後に、陽イオン型カチオン交換樹脂
を用いてモラセスに含まれる数種類の陽イオンを
1種類の陽イオンに置換した後に、(以後この操
作を軟化、この工程を軟化工程と称する)1種類
に置換したのと同じ陽イオン型のカチオン交換樹
脂を用いてクロマトグラフイーを行えば、転化糖
と夾雑物の分離が著しく容易となることあるいは
軟化工程後にモラセスのシユークロースを転化処
理を行えば転化糖と夾雑物の分離が著しく容易と
なることを発見し、本発明を完成するに至つた。 また本法を用いることによつて、既法(特願昭
57−116580(特開昭59−6894号))では、繰り返し
クロマトグラフイーを行なうと転化糖と夾雑物の
分離が次第に低下するという欠点を除くことが出
来る。 即ち、本発明はモラストにインベルターゼ又は
酸を作用させてシユークロースをグルコースとフ
ラクトースに転化せしめ又、陽イオン交換樹脂を
用いてモラセスに含まれる数種類の陽イオンを1
種類に置換せしめた後に、置換するのに用いたの
と同じ陽イオン型のカチオン交換樹脂を用いてク
ロマトグラフイーを行い、転化糖を分離すること
を特徴とする発酵原料の製造方法に係るものであ
る。 本発明で使用するモラセスは、ケーンモラセ
ス、ビートモラセス等であり、モラセス中に含ま
れるシユークロースをインベルターゼ又は酸でグ
ルコース及びフラクトースに転化する。 インベルターゼとしては市販の酵素をはじめと
してインベルターゼ活性を有する酵母菌体の処理
物を使用することができる。 モラセス中のシユークロースをインベルターゼ
で転化するには、モラセスを適当な濃度、例えば
10〜55g/dlに希釈し、これに上記インベルター
ゼ源を添加し、20〜60℃で5〜20時間保持して酵
素反応を行えば良い。 シユークロースの酸による転化はモラセスに塩
酸又は硫酸を加えてモラセスのPHを1.0〜4.0に調
節し、温度80〜110℃に加熱する公知の方法に従
つて行われる。酸水解後は水酸化ナトリウム等の
アルカリを加えて中和する。酸分解−中和工程で
沈澱物が生成される場合には、沈澱物を除去する
ことが望ましく精製効果を一層高めることができ
る。 本発明の軟化工程で使用するカチオン交換樹脂
としてはアンバーライトIR−120、ダウエツクス
−50、ダイヤイオンSK−1B等の強酸性カチオン
交換樹脂、アンバーライトIRC−50、アンバーラ
イトXE−80、ダイヤイオンWK−11等の弱酸性
カチオン交換樹脂が使用され、使用に際しては
Na型、K型などのカチオン型に変えて使用する。 これらのイオン交換樹脂を用いてモラセスの軟
化を行うには、上記カチオン型のイオン交換体を
適当な大きさのカラムに充填し、この充填塔にモ
ラセスを供給し、流出する軟化されたモラセスを
回収すれば良い。操作温度は室温〜90℃、好まし
くは50〜80℃であり、供給速度は0.5〜5SV(溶出
容量/樹脂容量×時)である。イオン交換体のイ
オン交換容量を越え、流出するモラセスに、他の
陽イオンの混入がイオン当量比で1〜7%程認め
られた時点で、モラセスの供給を中止する。イオ
ン交換体は再生すれば何度でも使用でき、その再
生方法は通常の方法で、再生剤には何を用いても
良い。 また軟化処理に先だち超高速遠心分離機、例え
ばウエストフアリア製SAOH型等によつてモラ
セス中に含有される固形物、いわゆるスラツジを
除去したり、リン酸あるいはリン酸塩類を加え濁
りを除くと共にカルシウム塩類を除いておくと、
軟化処理におけるイオン交換体の負荷を軽減する
ことができる。 クロマトグラフイーに用いるカチオン交換樹脂
としては、アンバーライトIR−120、ダウエツク
ス−50、ダイヤイオンSK−1B、SK−104S等の
強酸性カチオン交換樹脂、アンバーライトIRC−
50、アンバーライトXE−80、ダイヤイオンWK
−11等の弱酸性カチオン交換樹脂が使用され、使
用に際しては軟化工程で用いたのと同一のカチオ
ン型に変えて使用する。 これらのイオン交換樹脂を用いてクロマトグラ
フイーを行うには、上記カチオン型のイオン交換
体を適当な大きさのカラムに充填し、この充填塔
に、インベルターゼ処理したモラセスを供給し、
次いで水を溶出する。溶出される順序はまず着色
物質と無機塩類が溶出され、次いでグルコース、
フラクトースの順で溶出される。クロマトグラフ
イー終了後、転化糖、即ち、グルコース及びフラ
クトースを含む区分を採取することによつて糖と
夾雑物を効率良く分離することができる。 このクロマトグラフイーによる分離は何度繰り
返しても安定した分離を行なうことが可能であ
る。 これに対し、軟化処理を施さない場合には、転
化糖と夾雑物を分離できるものの、転化糖の損失
を伴なわないと、純度の高い転化糖を得ることが
出来ない。この分離性の低下はクロマトグラフイ
ーを繰り返し行なうと更に強くなり、転化糖と夾
雑物との分離は著しく低下する。 このようにして分離された糖は発酵原料として
望ましいものであり、グルタミン酸発酵をはじめ
とするアミノ酸発酵の原料として使用される。 以下、実施例にて説明する。 実施例 1 ケインモラセスに水を加え糖濃度を約50g/dl
に調整しこれにインベルターゼ源として市販の
「バイオコン」(バイオコン社製の酵母細胞壁乾燥
標品)を糖1.0gに対して1.2mgの割合で添加し、
55℃に10時間保持して酵素反応を行なつた。K型
カチオン交換樹脂(ダイヤイオンSK−1B)240
mlを充填したカラム(30φ×300mm)のジヤケツ
ト温度を50℃に保持し、インベルターゼ処理した
モラセスを50℃に調整しSV2(480ml/Hr)にて
供給し、充填カラムより流出したモラセスを500
ml回収した。軟化処理したモラセスを原子吸光及
び高速液体クロマトグラフイーでNa、K、Mg、
Ca、NH3を分析した結果、イオン当量の98%が
Kで置換されていた。K型カチオン交換樹脂(ダ
イヤイオンSK104S)240mlを充填したジヤケツ
ト付カラム(協和精密社製パイレツクスカラム
30φ×300mm)を60℃に保持し、やはり60℃に保
持したインベルターゼ処理・軟化したモラセス30
mlを供給し、ついで60℃に保つた脱塩水で溶出し
た。溶出液を12mlずつ分取し、各フラクシヨンに
ついて高速液体クロマトグラフイーで分析した。
その結果を第1図に示す。対照として軟化処理を
施さないインベルターゼ処理したモラセスについ
て同様のクロマトグラフイーを行なつた。その溶
出パターンを第2図に示す。各々のクロマトグラ
フイーにおいて、供給したモラセスの糖濃度はと
もに水によつて40g/dlに調整した。第1図と第
2図において、縦軸はグルコースとフラクトース
の濃度(g/dl)及び不純物の指標として色度
(PH6.0400nmにおける吸光度:Ai)及び夾雑物の
濃度(g/dl)を示す。横軸はフラクシヨン番号
を示す。又グルコース、フラクトース、不純物の
色度及び不純物濃度(g/dl)を夫々−〇−、−
△−、−●−、−▲−で表示した。 クロマトグラフイー終了後、糖区分を集め93%
の糖を回収した。この糖液の不純物除去率(糖以
外の夾雑物の除去率)は71%であつた。これに対
し、対照の軟化処理しない場合の不純物除去率は
54%であり、軟化処理により分離性が飛躍的に向
上できることがわかる。 更に繰り返しクロマトグラフイーを行なつて、
軟化処理した場合と軟化処理しない場合の各々に
ついて糖区分を回収し、この糖液の不純物除去率
を求めた。その結果を第1表に示す。
The present invention relates to a method for producing fermentation raw materials from molasses. Molasses is a byproduct produced in the sugar manufacturing industry, such as cane sugar or beet sugar.It is a sugar solution that mainly contains sucrose, but since it contains a large amount of impurities in addition to sugar, it is difficult to separate the sugar economically. Currently, it is used as a raw material for glutamic acid fermentation or alcohol fermentation. However, even when used as a fermentation raw material, large amounts of impurities, especially colored substances, are transferred directly to the fermentation liquid, so it is necessary to separate the fermentation products.
This poses a large cost burden in terms of purification and treatment of waste liquid. Furthermore, when used not only to remove impurities but also as a raw material for fermentation, especially when cane molasses is used, the fermentation yield is low and it cannot be said to be satisfactory in this respect as well. Therefore, the present inventors have conducted various studies with the aim of developing a method for economically and efficiently producing fermentation raw materials of quality that improves the quality, that is, the fermentation yield, from molasses. After sucrose is converted into glucose and fructose by the action of acid, invert sugar and impurities can be efficiently separated by chromatography using a cation exchange resin, and the sugar solution obtained in this way ( By using invert sugar solution), the yield of amino acid fermentation can be dramatically improved.
We also discovered that the fermentation products can be separated and purified extremely easily. (Patent application 116580/1982) As a result of further intensive research, after converting sucrose from molasses and replacing several types of cations contained in molasses with one type of cation using a cation-type cation exchange resin, (Hereinafter, this operation will be referred to as the softening process.) If chromatography is performed using the same cation-type cation exchange resin that was substituted with one type, it will be extremely easy to separate invert sugar and impurities. The present inventors have discovered that if the sucrose of molasses is converted after the softening process, the separation of invert sugar and impurities becomes extremely easy, and the present invention has been completed. In addition, by using this method, existing laws (patent application
57-116580 (Japanese Unexamined Patent Publication No. 59-6894)), it is possible to eliminate the drawback that the separation of invert sugar and impurities gradually decreases when repeated chromatography is performed. That is, the present invention converts sucrose into glucose and fructose by allowing invertase or acid to act on molasses, and also converts several types of cations contained in molasses into one by using a cation exchange resin.
A method for producing a fermented raw material characterized by performing chromatography using the same cation-type cation exchange resin as that used for the substitution to separate invert sugar. It is. The molasses used in the present invention is cane molasses, beet molasses, etc., and the sucrose contained in the molasses is converted into glucose and fructose using invertase or an acid. As invertase, commercially available enzymes as well as processed yeast cells having invertase activity can be used. To convert sucrose in molasses with invertase, molasses is heated to an appropriate concentration, e.g.
The solution may be diluted to 10 to 55 g/dl, the above invertase source added thereto, and kept at 20 to 60°C for 5 to 20 hours to carry out the enzymatic reaction. The conversion of sucrose with an acid is carried out according to a known method in which hydrochloric acid or sulfuric acid is added to molasses to adjust the pH of the molasses to 1.0 to 4.0, and the mixture is heated to a temperature of 80 to 110°C. After acid hydrolysis, add an alkali such as sodium hydroxide to neutralize. If a precipitate is generated in the acid decomposition-neutralization step, it is desirable to remove the precipitate, and the purification effect can be further enhanced. The cation exchange resins used in the softening process of the present invention include strongly acidic cation exchange resins such as Amberlite IR-120, Dowex-50, Diaion SK-1B, Amberlite IRC-50, Amberlite XE-80, and Diaion. A weakly acidic cation exchange resin such as WK-11 is used.
Use by changing to cationic type such as Na type or K type. In order to soften molasses using these ion exchange resins, the cation-type ion exchanger described above is packed into a column of an appropriate size, the molasses is supplied to this packed column, and the softened molasses that flows out is collected. Just collect it. The operating temperature is room temperature to 90°C, preferably 50 to 80°C, and the feed rate is 0.5 to 5SV (elution volume/resin volume x hours). When the ion exchange capacity of the ion exchanger is exceeded and the outflowing molasses is found to be contaminated with other cations by an ion equivalent ratio of 1 to 7%, the supply of molasses is stopped. The ion exchanger can be used any number of times if it is regenerated, and the regeneration method can be any conventional method, and any regenerating agent may be used. In addition, prior to the softening process, the solids contained in the molasses, so-called sludge, are removed using an ultra-high-speed centrifuge, such as Westphalia's SAOH model, and phosphoric acid or phosphates are added to remove turbidity. If you remove calcium salts,
The load on the ion exchanger during the softening process can be reduced. Cation exchange resins used for chromatography include strongly acidic cation exchange resins such as Amberlite IR-120, Dowex-50, Diaion SK-1B and SK-104S, Amberlite IRC-
50, Amberlight XE-80, Diamond Ion WK
A weakly acidic cation exchange resin such as -11 is used, and when used, it is changed to the same cation type as used in the softening step. In order to perform chromatography using these ion exchange resins, the above-mentioned cation-type ion exchanger is packed into a column of an appropriate size, and the invertase-treated molasses is supplied to this packed column.
The water is then eluted. The elution order is that colored substances and inorganic salts are eluted first, followed by glucose,
It is eluted in the order of fructose. After the chromatography is completed, sugar and impurities can be efficiently separated by collecting invert sugar, that is, a fraction containing glucose and fructose. This chromatographic separation can be performed stably no matter how many times it is repeated. On the other hand, if the softening treatment is not performed, invert sugar and impurities can be separated, but highly pure invert sugar cannot be obtained without loss of invert sugar. This decrease in separation becomes even stronger when chromatography is repeated, and the separation of invert sugar and impurities is significantly reduced. The sugars separated in this way are desirable as raw materials for fermentation and are used as raw materials for amino acid fermentation, including glutamic acid fermentation. Examples will be described below. Example 1 Add water to cane molasses to make sugar concentration about 50g/dl
To this, commercially available "Biocon" (dry yeast cell wall preparation manufactured by Biocon) was added as an invertase source at a ratio of 1.2mg to 1.0g of sugar.
The enzyme reaction was carried out by holding at 55°C for 10 hours. K-type cation exchange resin (Diaion SK-1B) 240
The jacket temperature of the column (30 φ x 300 mm) packed with 100ml of molasses was maintained at 50°C, and the invertase-treated molasses was adjusted to 50°C and supplied at SV2 (480ml/Hr), and the molasses that flowed out from the packed column was
ml was collected. Na, K, Mg,
Analysis of Ca and NH 3 revealed that 98% of the ion equivalents were replaced by K. Jacketed column packed with 240ml of K-type cation exchange resin (Diaion SK104S) (Pyrex column manufactured by Kyowa Seimitsu Co., Ltd.)
30 φ
ml and then eluted with demineralized water kept at 60°C. The eluate was collected in 12 ml portions, and each fraction was analyzed by high performance liquid chromatography.
The results are shown in FIG. As a control, similar chromatography was performed on invertase-treated molasses without softening treatment. The elution pattern is shown in FIG. In each chromatography, the sugar concentration of the supplied molasses was adjusted to 40 g/dl with water. In Figures 1 and 2, the vertical axes indicate the concentration of glucose and fructose (g/dl), the chromaticity (absorbance at PH6.0400nm: Ai) as an index of impurities, and the concentration of impurities (g/dl). . The horizontal axis shows the fraction number. In addition, the chromaticity and impurity concentration (g/dl) of glucose, fructose, and impurities are -〇-, -, respectively.
Indicated by △-, -●-, -▲-. After completing the chromatography, collect the sugar fraction and collect 93%
of sugar was recovered. The impurity removal rate (removal rate of impurities other than sugar) of this sugar solution was 71%. In contrast, the impurity removal rate without softening treatment was
54%, which shows that the softening treatment can dramatically improve separability. After repeated chromatography,
Sugar fractions were collected for both the case of softening treatment and the case of not softening treatment, and the impurity removal rate of this sugar solution was determined. The results are shown in Table 1.

【表】 第1表より明らかな様に、軟化処理を実施して
おくと繰り返しクロマトグラフイーを行なつても
不純物の除去率は安定しており低下は認められな
い。これに対して、軟化処理を実施していないと
クロマトグラフイーを繰り返すに従つて分離性が
低下し、不純物の除去率が著しく低下し、軟化処
理により高い分離性を安定して維持できることが
わかる。 実施例 2 水で希釈し糖濃度55g/dlに調整したケインモ
ラセスに「バイオコン」を加え実施例1と同様の
方法で酵素反応を行なつた後に、高速遠心分離機
(ウエスト・フアリア社製SAOH型)によつて沈
降物を除去した。このようなインベルターゼ処理
したモラセス30をNa型カチオン交換樹脂(ダ
イヤイオンSK−1B)10を充填したカラムに供
給し、ついで水を供給し軟化処理した糖濃度44
g/dlのモラセスを33を得た。この軟化モラセ
スを高速液体クロマトグラフイー及び原子吸光に
よつてNH3、Na、Mg、Caを分析したところ、
カチオンのイオン当量の97%がNaに置換されて
いた。 このインベルターゼ処理・軟化処理したモラセ
スを糖濃度40g/dlに水で希釈調整した。Na型
カチオン交換樹脂(ダイヤイオンSK−104S)
240mlを充填したカラム(保温用ジヤケツト付
30φ×300mm)に、このモラセス30mlを供給し、
水で溶出した。ジヤケツトの温度は70℃に循環保
持し、供給したモラセス・水とも70℃に保持しつ
つ使用した。また水の供給速度は12ml/Hrとし
た。溶出液を高速液体クロマトグラフイーで分析
し、グルコースとフラクトースを含む画分を集め
て93%の糖を回収した。この糖液の不純物除去率
は71%であつた。 一方軟化処理しないモラセスについて、同様に
クロマトグラフイーを行い糖を94%回収した。こ
の糖液の不純物除去率は52%であつた。 このようにクロマトグラフイーを行なつて分離
した糖液を集め濃縮し糖濃度(シユークロース換
算)50%の糖液を調整し、その50mlを第2表に示
す組成の塩類溶液250mlと混合し夫々300mlのグル
タミン酸発酵用培地を調製した。
[Table] As is clear from Table 1, when the softening treatment is performed, the impurity removal rate is stable and no decrease is observed even if chromatography is repeated. On the other hand, if softening treatment is not performed, as chromatography is repeated, the separation performance decreases and the removal rate of impurities decreases significantly, indicating that high separation performance can be stably maintained by softening treatment. . Example 2 "Biocon" was added to Cane Molasses diluted with water and adjusted to a sugar concentration of 55 g/dl, and an enzymatic reaction was carried out in the same manner as in Example 1. The precipitate was removed using a mold. Such invertase-treated molasses 30 was supplied to a column packed with Na-type cation exchange resin (Diaion SK-1B) 10, and water was then supplied to soften the sugar concentration 44.
Obtained 33 g/dl of molasses. When this softened molasses was analyzed for NH3 , Na, Mg, and Ca by high performance liquid chromatography and atomic absorption,
97% of the ion equivalent of the cation was replaced by Na. The invertase-treated and softened molasses was diluted with water to a sugar concentration of 40 g/dl. Na type cation exchange resin (Diaion SK-104S)
Column packed with 240ml (with thermal jacket)
30φ×300mm), supply 30ml of this molasses to
It eluted with water. The temperature of the jacket was maintained at 70°C, and the supplied molasses and water were both maintained at 70°C. Moreover, the water supply rate was 12 ml/Hr. The eluate was analyzed by high-performance liquid chromatography, and fractions containing glucose and fructose were collected, and 93% of the sugars were recovered. The impurity removal rate of this sugar solution was 71%. On the other hand, chromatography was performed in the same manner on molasses that was not softened, and 94% of the sugar was recovered. The impurity removal rate of this sugar solution was 52%. The sugar solution separated by performing chromatography in this way was collected and concentrated to prepare a sugar solution with a sugar concentration (in terms of sucrose) of 50%, and 50 ml of this was mixed with 250 ml of a salt solution having the composition shown in Table 2. A 300 ml medium for glutamic acid fermentation was prepared.

【表】 このようにして調製したL−グルタミン酸生産
用培地300mlを1.0容発酵槽に夫々張込み、115
℃にて10分間加熱殺菌した。これに予め培養した
ブレビバクテリウム・ラクトフエルメンタム
ATCC13869を接種し、31.5℃にてPHをアンモニ
アガスにて7.8に保ちつつ、通気撹拌下培養した。
培養中培地中のシユークロース換算の糖濃度が3
%を切つた時、夫々用いた糖液を少量ずつ添加し
て糖濃度を2〜4%に調節しつつ36時間培養し
た。 添加した糖液量は、各実験区共80mlに統一し
た。又培養途中所定の菌量に達した時点で界面活
性剤「トウイーン60」を培地に対し0.6%になる
ように添加した。培養液中に蓄積したL−グルタ
ミン酸の量及び対糖収率を第3表に示す。
[Table] Pour 300 ml of the L-glutamic acid production medium prepared in this way into a 1.0 volume fermenter, and
It was heat sterilized at ℃ for 10 minutes. Brevibacterium lactofermentum cultured in advance
ATCC13869 was inoculated and cultured at 31.5°C with aeration and stirring while keeping the pH at 7.8 with ammonia gas.
The sugar concentration in the culture medium in terms of sucrose is 3
%, the sugar solution used was added little by little to adjust the sugar concentration to 2 to 4%, and the cells were cultured for 36 hours. The amount of sugar solution added was unified to 80 ml in each experimental group. During the culture, when a predetermined amount of bacteria was reached, the surfactant "Tween 60" was added to the medium at a concentration of 0.6%. Table 3 shows the amount of L-glutamic acid accumulated in the culture solution and the sugar yield.

【表】【table】 【図面の簡単な説明】[Brief explanation of the drawing]

第1図はインベルターゼ処理の後軟化処理した
ケーンモラセスのダイヤイオンSK104Sによるク
ロマトグラムを示し、又第2図は軟化処理のみ実
施しなかつたケーンモラセスのダイヤイオン
SK104Sによるクロマトグラムを示す。
Figure 1 shows a chromatogram using Diamond Ion SK104S of cane molasses that was softened after invertase treatment, and Figure 2 shows a Diamond Ion chromatogram of cane molasses that was not softened after invertase treatment.
A chromatogram using SK104S is shown.

Claims (1)

【特許請求の範囲】[Claims] 1 モラセスにインベルターゼ又は酸を作用させ
てシユークロースをグルコースとフラクトースに
転化せしめ、又陽イオン型カチオン交換樹脂を用
いてモラセスに含まれる数種類の陽イオンを1種
類の陽イオンに置換せしめた後に、陽イオン型カ
チオン交換樹脂を用いてクロマトグラフイーを行
い転化糖を分離することを特徴とする発酵原料の
製造方法。
1. After treating molasses with invertase or acid to convert sucrose into glucose and fructose, and using a cation-type cation exchange resin to replace several types of cations contained in molasses with one type of cation, A method for producing a fermented raw material, which comprises performing chromatography using an ionic cation exchange resin to separate invert sugar.
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