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JPH0533973B2 - - Google Patents
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JPH0533973B2 - - Google Patents

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Publication number
JPH0533973B2
JPH0533973B2 JP58180799A JP18079983A JPH0533973B2 JP H0533973 B2 JPH0533973 B2 JP H0533973B2 JP 58180799 A JP58180799 A JP 58180799A JP 18079983 A JP18079983 A JP 18079983A JP H0533973 B2 JPH0533973 B2 JP H0533973B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
koji
aspergillus
soy sauce
strain
glutaminase
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Lifetime
Application number
JP58180799A
Other languages
Japanese (ja)
Other versions
JPS6075253A (en
Inventor
Shigeomi Ushijima
Tadanobu Nakadai
Kinji Uchida
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Kikkoman Corp
Original Assignee
Kikkoman Corp
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Filing date
Publication date
Application filed by Kikkoman Corp filed Critical Kikkoman Corp
Priority to JP58180799A priority Critical patent/JPS6075253A/en
Publication of JPS6075253A publication Critical patent/JPS6075253A/en
Publication of JPH0533973B2 publication Critical patent/JPH0533973B2/ja
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Description

【発明の詳細な説明】[Detailed description of the invention]

本発明は、プロトプラスト融合による高プロテ
アーゼ生産能を有し且つ高グルタミナーゼ生産能
を有する麹菌を用いる醤油醸造法、特に窒素利用
率が高くしかもグルタミン酸含量が高い醤油醸造
法に関する。 醤油は、昔からアミノ酸の旨味を主体とする調
味料として日常の食生活に親しまれており、今
日、その呈味成分として重要な窒素及びグルタミ
ン酸を高濃度に含有する醤油を提供することは醤
油醸造界においては1つの重要な課題である。 ところで、高濃度食塩水中で原料の酵素分解を
行う醤油醸造法において、醤油諸味中に窒素及び
グルタミン酸を著量遊離蓄積せしめることは、極
めて困難である。この解決法の1つとして従来か
ら酵素作用の阻害を考慮して仕込当初の食塩水濃
度を調節したり、或いは諸味中に種々の微生物起
源のグルタミナーゼを添加したりして、醤油諸味
中に窒素及びグルタミン酸を緒量蓄積せしめよう
とする方法が行なわれているが、いずれも余分な
工程を必要とし醸造操作が煩雑となり、特に後者
のグルタミナーゼを使用する方法は酵素製造のた
めの設備費と人件費が余分にかかり、経済的に必
ずしも得策ではない。 本発明者らは、以上の現状を考慮して、醤油諸
味中に著量の窒素とグルタミン酸を遊離蓄積する
能力を有する醤油麹菌を取得し、この麹菌を用い
て醤油麹をつくり、これを食塩水に仕込むことに
より醤油諸味中に著量の窒素及びグルタミン酸を
生成蓄積させることが出来れば、醤油醸造界にと
つて極めて大きな貢献となることに着目し、多く
の醤油麹を対策として、高プロテアーゼ生産能を
有し且つ高グルタミナーゼ生産能を有する麹菌を
検索した。 一般に醤油用麹菌のプロテアーゼ生産能は208
単位/g麹であり、またグルタミナーゼ生産能は
3.19単位/g麹であることが知られている(醤研
Vol.7、No.4、1981、p166〜172「醤油用麹菌の
分類種による醸造特性の差異」における、p169
の「表4(醤油麹の酵素力の差)」参照)。 従来、このような優良な麹菌を得る方法の一手
段として人工変異により酵素生産能を高めた菌株
を取得する方法が知られているが、取得される変
異株はプロテアーゼ或いはグルタミナーゼのうち
一方については親株に比べ高くとも他方は逆に低
い場合が多く、両方とも親株に比べ高い菌株を取
得することは困難であつた。 そこで、本発明者らは、高プロテアーゼ生産能
を有し且つ高グルタミナーゼ生産能を有する麹菌
を得る目的で種々検討を重ねた結果、アスペルギ
ルス属に属する、高プロテアーゼ生産株と高グル
タミナーゼ生産株とをプロトプラスト融合させ、
該融合細胞を高張再生培地に培養したところ、そ
こから高プロテアーゼ生産能を有し、且つ高グル
タミナーゼ生産能を有する麹菌を取得できること
を知り、この知見に基づいて本発明を完成した。 即ち、本発明はアスペルギルス属に属する、
210単位/g麹以上の高プロテアーゼ生産株と3.2
単位/g麹以上の高グルタミナーゼ生産株とをプ
ロトプラスト融合させ、該融合細胞を高張再生培
地に培養し、培養物より300単位/g麹以上の高
プロテアーゼ生産能を有し且つ1.0単位/g麹以
上の高グルタミナーゼ生産能を有する麹菌を分
離、採取し、得られた麹菌を醤油麹原料に接種培
養して麹をつくり、この麹を用いて仕込みを行う
ことを特徴とする醤油醸造法である。 以下、本発明を詳細に説明する。 先ず、本発明で使用する、アスペルギルス属に
属する210単位/g麹以上の高プロテアーゼ生産
株としては、アスペルギルス属に属しプロテアー
ゼ生産能が上記値を有する菌株であればいずれで
もよく、醤油、味噌、清酒等の製造に用いられる
醸造用麹菌の中からプロテアーゼ生産能の高い菌
株を検索することにより容易に入手することがで
きる。例えば、アスペルギルス・ソーヤ
(ATCC42249)、同(ATCC42250)、同
(ATCC42251等が挙げられるが、更にこれらの変
種又は変異株も使用することができる。 また、アスペルギルス属に属する3.2単位/g
麹以上の高グルタミナーゼ生産株としては、アス
ペルギルス属に属し、グルタミナーゼ生産能が上
記値を有する菌株であればいずれでもよく、例え
ば醸造用麹菌の中からグルタミナーゼ生産能の高
い菌株を検索することにより容易に入手すること
ができる。例えば、グルタミナーゼ生産能が高い
アスペルギルス・ソーヤ262(FERM−P2128)、
同2165(FERM−P−7280)等が挙げられるが、
更にこれらの変種又は変異株も使用することがで
きる。 次にプロトプラスト融合に供される菌株として
は発芽させた菌株であればいずれも用いることが
出来るが、プロトプラスト形成の効率から殆んど
の発芽胞子の長さがもとの胞子外径の5〜15倍の
ものが好ましく、菌体の培養は麹菌の培養に用い
られる培地を用い常法に従つて固体培養、好まし
くは液体培養することより行なわれる。 培養に用いられる培地としては、アスペルギル
ス属に属する菌株が必要とする栄養源を含有する
ものであればよく、合成培地、半合成培地または
天然培地が用いられる。たとえば合成培地として
は炭素源としてグルコース、サツカロース等、窒
素源として硫安、硝安等が用いられ、その具体例
としてはツアペツク(Czapek)培地に酵母エキ
ス0.5%及びカザミノ酸0.2%を加え、PH6.0に調整
した培地が挙げられる。また、天然培地の組成と
しては、炭素源として割砕小麦、麹等、窒素源と
してスキムミルク、脱脂大豆等が挙げられる。ま
た、リン酸、カリウム、マグネシウム、カルシウ
ム等の適当な無機塩類を適宜使用することがで
き、さらに必要に応じて菌の生育等に必要なアミ
ノ酸、ビタミン類を培地に添加使用することがで
きる。 培養方法として液体培養を行う場合には、上記
の適当なる培地、たとえばグルコース、スキムミ
ルク等を適宜含有させた合成あるいは半合成培地
をPH6.5前後に調整し、常法による加熱殺菌処理
したものに種菌を接種し、25〜35℃で、発芽胞子
の長さがもとの胞子外径の5〜15倍に生育する5
〜15時間、静置、振盪、通気培養等好気的に培養
する。また、固体培養を行う場合は、〓、小麦な
どの炭素源、大豆などの窒素源、その他の有機質
あるいは無機質を原料とし、これらを蒸煮などの
殺菌処理を行つた固体培地に麹菌を接種混合し、
25〜38℃で、発芽胞子の長さがもとの胞子外径の
5〜15倍に生育するのに充分な時間、無菌的に培
養するのが好ましい。 このようにして培養された高プロテアーゼ生産
株または高グルタミナーゼ生産株からプロトプラ
ストを得るには、各々の菌株について、106〜108
個/ml(高張液)の濃度の各発芽胞子懸濁液を調
製し、上記各懸濁液を好ましくは等量混合した
後、あらかじめ無菌処理された細胞壁溶解酵素処
理を行うか、または各々の発芽胞子懸濁液を最初
に該細胞壁溶解酵素処理を行うことにより得られ
る。 ここに用いられる細胞壁溶解酵素としては、麹
菌の細胞壁を溶解する活性を有するものであれば
いずれでもよく、例えばセルラーゼ「オノズカR
−10(近畿ヤクルト社製)」、本発明者らが新たに
調製して得たバチラス・サーキユランス
(Bacillus circulans)IAM1165株及びストレプ
トマイセス(Streptomyces)属株起源の麹菌細
胞壁溶解酵素、及びキチナーゼ(米国ICN社製)
などが挙げられる。そして、これらの酵素は単独
あるいは併用して用いることができる。特に本発
明者らが実験したところ、バチラス・サーキユラ
ンス起源の酵素とキチナーゼの併用、またはスト
レプトマイセス属起源の酵素とキチナーゼとの併
用は、プロトプラストの形成率を著しく高めるこ
とができるので好ましい。 プロトスラストを得る際、細胞壁溶解酵素の使
用濃度は、麹菌の細胞壁を溶解しプロトプラスト
を得るのに充分な濃度とすることが好ましく、例
えばバチラス・サーキユランス起源の粗酵素(培
養濾液の硫安塩析乾燥物)の場合、10〜50mg/
ml、好ましくは、25〜35mg/mlである。また、キ
チナーゼを併用する場合、その使用濃度は1−10
mg/ml、好ましくは3〜5mg/mlである。酵素処
理の時間は麹菌の細胞壁を溶解しプロトプラスト
を得るのに充分な時間とすることが好ましく、通
常30分〜6時間が好ましい。また、PHは6.0〜7.0
が好ましい。このようにして酵素処理が終了した
ら、プロトプラストを保護する溶液、例えば0.7
〜1.5Mソルビトールあるいは0.5〜1.0M塩化カリ
ウム溶液等でプロトプラストを洗浄し、麹菌の細
胞壁が溶解除去されたプロトプラストを得る。 次に、ここで得られたプロトプラストの融合処
理及び融合プロトプラストの再生は、例えば、
Anne′等の方法〔J.Gen.Microbiol.,92,413
(1976)〕に準じて行なうことができる。 即ち、0.7〜1.5Mソルビトール、5〜
100mMCaCl2及び30〜80mMグリシンを含む15〜
33%ポリエチレングリコール6000(PH7.5)中に、
上記で得られた高プロテアーゼ生産株と高グルタ
ミナーゼ生産株のそれぞれの洗浄プロトプラスト
を添加混合し、20〜30℃で15〜45分間処理させる
ことによりプロトプラスト融合を行なわせる。 融合プロトプラストの再生は、プロトプラスト
を保護(損傷を防止)しつつ育成することが可能
な高張再生培地、例えば、0.7〜1.5Mのソルビト
ールを含む米麹汁(又は麦芽汁)に寒天2%を含
有させた高張再生寒天培地(PH6.5)及び、0.7〜
1.5Mのソルビトールを含むツアペツク液に寒天
2%を含有させた高張最少再生寒天培地(PH6.5)
に、上記で得た融合プロトプラストを移し、25〜
35℃で2〜10日間培養する方法により行なわれ
る。 次にこのようにして得られた再生コロニーから
プロトプラスト融合細胞の選別は、予じめ高プロ
テアーゼ生産株と、高グルタミナーゼ生産株の洗
浄プロトプラストについてもそれぞれで上記と同
様に再生させ、得られた再生コロニーの色相、色
彩、明度、光沢、形状、大きさ等の特徴を把握し
ておくことによつて、それらとは異なる特徴を備
えた再生コロニーとして選別することができる。 尚、上記麹菌の細胞壁溶解処理を行なう前のそ
れぞれの親株に人工変異処理(X線、紫外線等の
照射、ニトロソグアニジン、エチルメチルサルフ
イート等の化学変異処理)を施して、麹菌の分生
胞子に特徴のある白色、黄色、茶、黒褐色などの
色や、各種の栄養要求性、例えばアラニン、メチ
オニン等のアミノ酸要求性、ビオチン、ニコチン
酸、パラアミノ安息香酸等の要求性、を付与せし
めた変異株を得、この変異株を用いて上記と同様
に酵素処理、プロトプラスト融合処理を行い、次
いで再生させると、変異株のプロトプラストは特
徴ある色を有するので、この色を有しないプロト
プラスト融合細胞を明確に区別し、選別すること
ができる。また変異株のプロトプラストは再生の
際、特定の栄養源が存在しないと生育が困難又は
生育出来ないので、特定の栄養源が存在しなくて
も生育できるプロトプラスト融合細胞を明確に区
別し選別することができる。再生用の検出培地と
しては、親株が変異株でない場合には、それぞれ
の親株の集落を区別できる検出培地が、そして親
株が栄養要求性を有する変異株の場合には一般に
は最少寒天培地が用いられる。 上記で得られる高プロテアーゼ生産株の変異株
としては、例えば分生胞子が白色で、パラアミノ
安息香酸要求性の付与されたアスペルギルス・ソ
ーヤW2−91(FERM P−7277)が挙げられ、ま
た高グルタミナーゼ生産株の変異株としては、例
えば分生胞子が黄色で、ニコチン酸要求性の付与
されたアスペルギルス・ソーヤM12−2−61
(FERM P−7281)等が挙げられる。 次に、こうして高張寒天培地または高張最少寒
天培地で再生したプロトプラスト融合株は原親株
に戻り易いヘテロカリオンである場合が多く、不
安定である。 そこで、これらのヘテロカリオン株の分生胞子
に小田等の方法〔Agric.Biol.Chem.,27,758
(1963)〕に従つて紫外線照射(距離39cm、時間1
分〜5分)の処理を施し、検定することによつ
て、安定な2倍体、即ち目的とする麹菌を分離、
採取することができる。 例えば、アスペルギルス・ソーヤD−78は、こ
うして得た高プロテアーゼ生産能を有し且つ高グ
ルタミナーゼ生産能を有する安定な2倍体株であ
り、工業技術院微生物工業技術研究所に微工研菌
寄第7279号として寄託されている。 次にこうして得られた300単位/g麹以上の高
プロテアーゼ生産能を有し且つ1.0単位/g麹以
上の高グルタミナーゼ生産能を有する菌株を通常
の醤油麹原料に接種培養して麹をつくる。 例えば撒水し、蒸煮した大豆と炒熬割砕した小
麦の混合物にアスペルギルス・ソーヤD−78を接
種混合し、28〜32℃で3〜4日間培養し、醤油麹
をつくる。なお、醤油麹原料としては醤油醸造に
用いられる原料を全て使用することができる。 次に上記醤油麹を醤油醸造における通常の仕込
割合にて適当濃度の食塩水に仕込み、醤油醸造の
常法に従い適宜撹拌して3〜6ケ月間発酵熟成を
行うと、窒素及びグルタミン酸を著量に含有する
醤油諸味を得ることができる。 次に上記のようにして得られた熟成諸味は通常
の圧搾、炉過、火入、〓引等を行つて製品醤油と
する。 本発明は、上記の如く麹菌のプロトプラスト融
合により初めて創成された300単位/g麹以上の
高プロテアーゼ生産能を有し且つ1.0単位/g麹
以上の高グルタミナーゼ生産能を有する麹菌を培
養して得られた麹を使用するので、本発明によれ
ば酵素作用の阻害を考慮して仕込当初の塩水濃度
を調節したり、諸味中に種々の微生物起源のグル
タミナーゼを添加したりする等の余分な工程を全
く加えることなく、直接的方法によつて醤油諸味
中に窒素及びグルタミン酸を著量蓄積せしめるこ
とが可能となり、また醤油原料が頗るよく分解さ
れるので総窒素利用率がこれまでよりも約3%〜
10%増と遥かに向上し、非常に旨味の強い醤油が
極めて簡単に得ることができる。 実験例 1 高プロテアーゼ生産株〔アスペルギルス・ソー
ヤW2−91(FERM P−7277)〕及び高グルタミ
ナーゼ生産株〔アスペルギルス・ソーヤM12−2
−61(FERM P−7281)〕を、それぞれ試験管の
スラント培地(米麹汁寒天培地)に接種し、30℃
で66時間培養し、2種類の分生胞子を得た。この
分生胞子を、それぞれ1〜5×107個/mlとなる
ように、0.01%ソルビタン脂肪酸エステル溶液
「ソルゲンTW−60(第一工業製薬社製)」に分散
混合し、その1mlを前培養培地30ml〔ツアペツク
(Czapek)培地に酵母エキス0.5%及びカザミノ
酸0.2%加え、PH6.0に調整し、これを水で10倍に
希釈して得られたもの〕とともに、150ml容三角
フラスコに入れて混合し、30℃で12時間振盪培養
し、発芽した胞子の長さがもとの胞子の外径の約
10倍の発芽胞子を得た。次いで発芽胞子懸濁液を
遠心分離(4500g、20分)して、そこから発芽胞
子を分離した。次いでこの発芽胞子を水洗浄した
のち、これに麹菌の細胞壁溶解酵素溶液1mlを加
え、27℃で2時間、ゆるやかに振盪培養(50〜60
往復/分)し、プロトプラストを得た。 ここに用いた細胞壁溶解酵素溶液はバチラス・
サーキユランスIAM1165を常法により液体培養
し、得られた培養濾液に硫安を加えて塩析し、得
られた塩析物を凍結乾燥して得られた粗酵素と、
市販のキチナーゼ剤(米国ICN社製)をそれぞれ
溶液1ml中に30mg及び5mgの割合で溶解し得られ
たものである。 次に、こうして得たプロトプラストをG−3規
格のガラスフイルターにより分離し、これを高張
液(0.8Mソルビトール溶液)で数回、繰り返し
洗浄し、次いで洗浄プロトプラストを高張液1ml
に移し、懸濁する。 次いで、それぞれのプロトプラストが懸濁され
た高張液を混合し、20℃で遠心分離(700g、15
分)してプロトプラストのペレツトを得た。これ
に0.8Mソルビトール、10mMCaCl2及び50mMグ
リシンを含む20%ポリエチレングリコール6000
(PH7.5)溶液1mlを混合し、25℃で30分プロトプ
ラスト融合反応を行つた。 次いで融合プロトプラスト反応液を高張液
(0.8Mソルビトール)で希釈し、シヤーレ上の硬
質高張最少再生培地〔0.8Mソルビトールを含む
ツアペツク寒天培地(寒天2%)〕に播種し、そ
の上から溶解した軟質高張最少再生培地(寒天
0.5%)を流し固化させ重層させ、30℃で4〜7
日間培養し、プロトプラスト融合細胞の再生を行
つた。 ここで再生した集落をプロトプラスト融合株と
して選択し、これを米麹汁寒天斜面培養(30℃で
4日間)し、緑色、白色、及び黄色の胞子をもつ
ヘテロカリオン株を得る。このようにして得られ
たヘテロカリオン株の胞子に、39cmの距離から紫
外線を5分間照射し、得られた胞子を最少寒天培
地(平板)に塗布し、30℃で4日間培養し、緑色
のみの胞子からなる安定な集落を形成する麹菌を
得る。 こうして得られた麹菌のプロテアーゼ及びグル
タミナーゼの生産能について調べたところ、第1
表に示す如き結果が得られた。
The present invention relates to a soy sauce brewing method using a koji mold that has a high protease-producing ability through protoplast fusion and a high glutaminase-producing ability, and particularly relates to a soy sauce brewing method that has a high nitrogen utilization rate and a high glutamic acid content. Soy sauce has long been popular in our daily diet as a seasoning mainly based on the umami flavor of amino acids, and today it is important to provide soy sauce that contains high concentrations of nitrogen and glutamic acid, which are important flavor components. This is an important issue in the brewing world. By the way, in a soy sauce brewing method in which raw materials are enzymatically decomposed in highly concentrated saline, it is extremely difficult to free and accumulate a significant amount of nitrogen and glutamic acid in soy sauce moromi. One of the ways to solve this problem has been to adjust the concentration of the saline solution at the time of preparation, taking inhibition of enzyme action into consideration, or to add glutaminase derived from various microorganisms to the moromi, thereby adding nitrogen to the soy sauce moromi. Methods to accumulate glutamic acid and glutamic acid have been used, but both require extra steps and complicate the brewing operation. In particular, the latter method, which uses glutaminase, requires equipment costs and labor for enzyme production. It costs extra and is not necessarily economically advisable. Taking the above-mentioned current situation into consideration, the present inventors obtained a soy sauce koji mold that has the ability to freely accumulate a significant amount of nitrogen and glutamic acid in soy sauce moromi, produced soy sauce koji using this koji mold, and added it to salt. Focusing on the fact that it would be an extremely important contribution to the soy sauce brewing industry if a significant amount of nitrogen and glutamic acid could be produced and accumulated in soy sauce moromi by adding it to water, many soy sauce koji were developed to have high protease content. We searched for Aspergillus aspergillus that has production ability and high glutaminase production ability. In general, the protease production capacity of koji mold for soy sauce is 208
Unit/g koji, and glutaminase production ability is
It is known that 3.19 units/g of koji (Shoken)
Vol.7, No.4, 1981, p166-172, p169 in "Differences in brewing characteristics depending on the classification of koji mold for soy sauce"
(See “Table 4 (Differences in enzyme power of soy sauce koji)”). Conventionally, one method of obtaining such excellent koji molds is to obtain a strain with increased enzyme production ability through artificial mutation, but the obtained mutant strain does not have the ability to produce either protease or glutaminase. Even if it is higher than the parent strain, the other strain is often lower, and it has been difficult to obtain a strain that is higher than the parent strain. Therefore, as a result of various studies aimed at obtaining Aspergillus aspergillus having high protease-producing ability and high glutaminase-producing ability, the present inventors have developed a high-protease-producing strain and a high-glutaminase-producing strain belonging to the genus Aspergillus. protoplast fusion,
When the fused cells were cultured in a hypertonic regeneration medium, it was found that Aspergillus aspergillus having a high protease-producing ability and a high glutaminase-producing ability could be obtained therefrom, and based on this knowledge, the present invention was completed. That is, the present invention belongs to the genus Aspergillus.
High protease production strain of 210 units/g koji or more and 3.2
Protoplasts are fused with a strain that produces high glutaminase of 300 units/g or more of koji, and the fused cells are cultured in a hypertonic regeneration medium. This is a soy sauce brewing method characterized by separating and collecting koji molds having the above-mentioned high glutaminase production ability, inoculating and culturing the obtained koji molds into soy sauce koji raw materials to produce koji, and using this koji for preparation. . The present invention will be explained in detail below. First, the strain that belongs to the genus Aspergillus and produces a high protease of 210 units/g or more of koji used in the present invention may be any strain that belongs to the genus Aspergillus and has the above-mentioned protease production ability, such as soy sauce, miso, It can be easily obtained by searching for strains with high protease production ability from among the brewing koji molds used in the production of sake and the like. Examples include Aspergillus sojae (ATCC42249), Aspergillus sojae (ATCC42250), and Aspergillus sojae (ATCC42251), but variants or mutant strains of these can also be used.
As a strain producing glutaminase higher than that of koji, any strain belonging to the genus Aspergillus and having the above-mentioned glutaminase production ability may be used. can be obtained. For example, Aspergillus sojae 262 (FERM-P2128), which has high glutaminase production ability,
2165 (FERM-P-7280) etc., but
Furthermore, variants or mutant strains of these can also be used. Next, as the strain for protoplast fusion, any germinated strain can be used, but due to the efficiency of protoplast formation, the length of most germinated spores is 5 to 15 times the original spore outer diameter. Preferably, the cells are cultured by solid culture, preferably liquid culture, using a medium used for culturing Aspergillus oryzae according to a conventional method. The medium used for culturing may be any medium as long as it contains the nutrients required by the strain belonging to the genus Aspergillus, and a synthetic medium, a semi-synthetic medium, or a natural medium may be used. For example, as a synthetic medium, glucose, succalose, etc. are used as a carbon source, and ammonium sulfate, ammonium nitrate, etc. are used as a nitrogen source.A specific example is Czapek medium with 0.5% yeast extract and 0.2% casamino acid added to pH 6.0. For example, a culture medium adjusted to Furthermore, the composition of the natural medium includes cracked wheat, koji, etc. as a carbon source, and skim milk, defatted soybeans, etc. as a nitrogen source. In addition, appropriate inorganic salts such as phosphoric acid, potassium, magnesium, and calcium can be used as appropriate, and amino acids and vitamins necessary for the growth of bacteria can be added to the medium as necessary. When performing liquid culture as a culture method, use the appropriate medium mentioned above, such as a synthetic or semi-synthetic medium containing glucose, skim milk, etc., adjusted to a pH of around 6.5, and heat sterilized by a conventional method. Inoculate the inoculum and grow at 25 to 35°C until the germinated spores grow to 5 to 15 times the original spore outer diameter.
Cultivate aerobically for ~15 hours by standing still, shaking, or aerating. In addition, when performing solid culture, aspergillus oryzae is inoculated and mixed into a solid medium made from carbon sources such as wheat, nitrogen sources such as soybeans, and other organic or inorganic materials that have been sterilized by steaming. ,
It is preferable to culture aseptically at 25 to 38° C. for a sufficient period of time to grow the germinated spores to a length 5 to 15 times the original spore outer diameter. To obtain protoplasts from a high protease producing strain or a high glutaminase producing strain cultured in this way, 10 6 to 10 8 for each strain is required.
After preparing each germinated spore suspension with a concentration of germinated spores/ml (hypertonic solution) and mixing preferably equal amounts of each of the above suspensions, treatment with a cell wall lytic enzyme that has been previously sterilized, or each germinated spore suspension is performed. It is obtained by first treating a germinated spore suspension with the cell wall lytic enzyme. The cell wall lytic enzyme used here may be any enzyme as long as it has the activity of lysing the cell wall of Aspergillus oryzae, such as cellulase "Onozuka R".
-10 (manufactured by Kinki Yakult Co., Ltd.), Aspergillus cell wall lytic enzyme derived from Bacillus circulans strain IAM1165 and Streptomyces genus strain newly prepared by the present inventors, and chitinase ( (Manufactured by ICN, USA)
Examples include. These enzymes can be used alone or in combination. In particular, according to experiments conducted by the present inventors, the combined use of an enzyme derived from Bacillus circulans and chitinase, or the combined use of an enzyme derived from the genus Streptomyces and chitinase is preferable because the rate of protoplast formation can be significantly increased. When obtaining protothrust, the concentration of the cell wall lytic enzyme used is preferably a concentration sufficient to dissolve the cell wall of Aspergillus aspergillus and obtain protoplasts. 10 to 50 mg/
ml, preferably 25-35 mg/ml. In addition, when using chitinase in combination, the concentration used is 1-10
mg/ml, preferably 3 to 5 mg/ml. The time for the enzyme treatment is preferably a time sufficient to dissolve the cell wall of Aspergillus aspergillus and obtain protoplasts, and is usually preferably 30 minutes to 6 hours. Also, PH is 6.0-7.0
is preferred. Once the enzymatic treatment has finished in this way, a solution that protects the protoplasts, e.g.
Wash the protoplasts with ~1.5M sorbitol or 0.5-1.0M potassium chloride solution to obtain protoplasts in which the cell wall of Aspergillus aspergillus has been dissolved and removed. Next, the fusion treatment of the protoplasts obtained here and the regeneration of the fused protoplasts are carried out by, for example,
Anne' et al.'s method [J.Gen.Microbiol., 92 , 413
(1976)]. i.e. 0.7-1.5M sorbitol, 5-
15~ containing 100mMCaCl2 and 30~80mM glycine
In 33% polyethylene glycol 6000 (PH7.5),
The washed protoplasts of the high protease producing strain and the high glutaminase producing strain obtained above are added and mixed and treated at 20 to 30°C for 15 to 45 minutes to perform protoplast fusion. To regenerate fused protoplasts, use a hypertonic regeneration medium that can grow while protecting protoplasts (preventing damage), such as rice malt juice (or wort) containing 0.7 to 1.5M sorbitol containing 2% agar. Hypertonic regeneration agar medium (PH6.5) and 0.7~
Hypertonic minimum regeneration agar medium (PH6.5) containing 2% agar in Czapeck's solution containing 1.5M sorbitol.
Transfer the fused protoplasts obtained above to
This is carried out by culturing at 35°C for 2 to 10 days. Next, to select protoplast-fused cells from the regenerated colonies obtained in this way, the washed protoplasts of the high protease producing strain and the high glutaminase producing strain were regenerated in the same manner as above, respectively, and the obtained regenerated By understanding the characteristics of colonies such as hue, color, brightness, gloss, shape, size, etc., it is possible to select regenerated colonies with characteristics different from those. In addition, before performing the cell wall lysis treatment of Aspergillus aspergillus, each parent strain was subjected to artificial mutation treatment (irradiation with X-rays, ultraviolet rays, etc., chemical mutation treatment with nitrosoguanidine, ethyl methyl sulfate, etc.) to generate conidia of Aspergillus aspergillus. Mutations that give characteristic colors such as white, yellow, brown, and blackish brown, as well as various nutritional requirements, such as amino acid requirements such as alanine and methionine, and requirements for biotin, nicotinic acid, and para-aminobenzoic acid. Obtain a strain, use this mutant strain, perform enzyme treatment and protoplast fusion treatment in the same manner as above, and then regenerate. Since the protoplasts of the mutant strain have a characteristic color, it is possible to identify protoplast fused cells that do not have this color. can be distinguished and sorted. Furthermore, during regeneration, mutant protoplasts have difficulty or cannot grow in the absence of a specific nutrient source, so it is necessary to clearly distinguish and select protoplast fusion cells that can grow even in the absence of a specific nutrient source. I can do it. As a detection medium for regeneration, if the parent strain is not a mutant strain, a detection medium that can distinguish the colonies of each parent strain is used, and if the parent strain is a mutant strain that is auxotrophic, a minimal agar medium is generally used. It will be done. Examples of mutant strains of the high protease producing strain obtained above include Aspergillus sawjae W2-91 (FERM P-7277), which has white conidia and is endowed with a para-aminobenzoic acid requirement; Examples of mutant strains of the production strain include Aspergillus sojae M12-2-61, which has yellow conidia and is endowed with nicotinic acid auxotrophy.
(FERM P-7281), etc. Next, the protoplast fusion strain thus regenerated on a hypertonic agar medium or a hypertonic minimal agar medium is often a heterokaryon that easily reverts to the parent strain and is therefore unstable. Therefore, we applied the method of Oda et al. [Agric.Biol.Chem., 27 , 758] to the conidia of these heterokaryon strains.
(1963)], ultraviolet irradiation (distance 39 cm, time 1)
By performing a treatment for 5 minutes to 5 minutes) and testing, a stable diploid, that is, the desired koji mold, is isolated.
Can be collected. For example, Aspergillus sojae D-78 is a stable diploid strain that has a high protease-producing ability and a high glutaminase-producing ability, and was submitted to the Institute of Microbiological Technology, Agency of Industrial Science and Technology. Deposited as No. 7279. Next, the thus obtained strain having a high protease production ability of 300 units/g koji or more and a high glutaminase production ability of 1.0 units/g koji or more is inoculated and cultured into a normal soy sauce koji raw material to produce koji. For example, Aspergillus soya D-78 is inoculated into a mixture of watered and steamed soybeans and roasted and cracked wheat, and the mixture is cultured at 28 to 32°C for 3 to 4 days to produce soy sauce malt. In addition, all the raw materials used for soy sauce brewing can be used as soy sauce koji raw materials. Next, the above-mentioned soy sauce koji is added to a saline solution of an appropriate concentration at the usual mixing ratio for soy sauce brewing, stirred appropriately and fermented and aged for 3 to 6 months according to the usual method for soy sauce brewing, thereby producing a significant amount of nitrogen and glutamic acid. It is possible to obtain soy sauce moromi containing . Next, the aged moromi obtained as described above is subjected to conventional compression, furnace filtration, pasteurization, reduction, etc. to obtain a finished soy sauce. The present invention is obtained by culturing Aspergillus oryzae, which has a high protease production ability of 300 units/g or more of koji and a high glutaminase production of 1.0 units/g or more, which was first created by protoplast fusion of koji as described above. Since the koji used in the fermentation process is used, the present invention does not require extra steps such as adjusting the salt water concentration at the beginning of preparation in consideration of inhibition of enzyme action, and adding glutaminase derived from various microorganisms to the moromi. It is now possible to accumulate a significant amount of nitrogen and glutamic acid in soy sauce moromi by a direct method without adding any soy sauce, and because the soy sauce raw materials are decomposed very well, the total nitrogen utilization rate is about 3% higher than before. %〜
This is a much improved 10% increase, making it extremely easy to obtain soy sauce with extremely strong flavor. Experimental Example 1 High protease producing strain [Aspergillus sojae W2-91 (FERM P-7277)] and high glutaminase producing strain [Aspergillus sojae M12-2]
-61 (FERM P-7281)] was inoculated into a slant medium (rice malt juice agar medium) in a test tube, and incubated at 30°C.
After culturing for 66 hours, two types of conidia were obtained. These conidia were dispersed and mixed in a 0.01% sorbitan fatty acid ester solution "Sorgen TW-60 (manufactured by Dai-ichi Kogyo Seiyaku Co., Ltd.)" to a concentration of 1 to 5 x 10 7 cells/ml, and 1 ml of the conidia was mixed beforehand. Add 30 ml of culture medium [obtained by adding 0.5% yeast extract and 0.2% casamino acids to Czapek medium, adjusting the pH to 6.0, and diluting this 10 times with water] in a 150 ml Erlenmeyer flask. Mix and culture with shaking at 30℃ for 12 hours until the length of the germinated spores is approximately the outer diameter of the original spores.
10 times more germinated spores were obtained. The germinated spore suspension was then centrifuged (4500 g, 20 minutes) to separate the germinated spores therefrom. Next, after washing the germinated spores with water, 1 ml of Aspergillus aspergillus cell wall lytic enzyme solution was added thereto, and cultured with gentle shaking at 27°C for 2 hours (50-60°C).
round trip/min) to obtain protoplasts. The cell wall lytic enzyme solution used here was Bacillus
A crude enzyme obtained by culturing Circulans IAM1165 in liquid by a conventional method, salting out the obtained culture filtrate by adding ammonium sulfate, and freeze-drying the obtained salting out product;
These were obtained by dissolving a commercially available chitinase agent (manufactured by ICN, USA) at a ratio of 30 mg and 5 mg in 1 ml of solution, respectively. Next, the protoplasts thus obtained were separated using a G-3 standard glass filter, washed several times with a hypertonic solution (0.8M sorbitol solution), and then the washed protoplasts were separated with 1 ml of the hypertonic solution.
Transfer to and suspend. Next, the hypertonic solution in which each protoplast was suspended was mixed and centrifuged at 20°C (700 g, 15
minutes) to obtain protoplast pellets. This contains 20% polyethylene glycol 6000 containing 0.8M sorbitol, 10mMCaCl2 and 50mM glycine.
(PH7.5) solution was mixed and a protoplast fusion reaction was performed at 25°C for 30 minutes. Next, the fused protoplast reaction solution was diluted with a hypertonic solution (0.8M sorbitol) and seeded on a rigid hypertonic minimal regeneration medium [Zapetsk agar medium (2% agar) containing 0.8M sorbitol] on a shear plate, and the dissolved soft Hypertonic minimal regeneration medium (agar
0.5%), solidified and layered, and heated to 30℃ for 4 to 7
The cells were cultured for days to regenerate protoplast fused cells. The regenerated colony is selected as a protoplast fusion strain, and this is cultured on a rice malt agar slant (at 30°C for 4 days) to obtain a heterokaryon strain with green, white, and yellow spores. The spores of the heterokaryon strain thus obtained were irradiated with ultraviolet rays for 5 minutes from a distance of 39 cm, the obtained spores were applied to a minimal agar medium (plate), and cultured at 30°C for 4 days. Aspergillus aspergillus that forms a stable colony consisting of spores is obtained. When we investigated the protease and glutaminase production ability of the koji mold obtained in this way, we found that the
The results shown in the table were obtained.

【表】 グルタミナーゼ活性の測定法。
脱脂大豆30gと炒熬割砕小麦30gを原料とし
て、直径15cmのシヤーレ内で、通常の醤油麹製造
法と同様に製麹し、得られた麹について、水10倍
量を用いて2時間抽出し、プロテアーゼ活性につ
いてはアンソン−萩原法によつて測定した。その
活性は麹1g当り1分間に1μmolのチロシンを生
成する活性を1単位として表わした。グルタミナ
ーゼ活性は、前記抽出残渣の麹をホモジナイズし
て、そのホモジナイズ液とL−グルタミンを30℃
で1時間振盪反応させ、濾過後濾液のグルタミン
酸量を測定して求めた。グルタミナーゼ活性は、
麹1g当り1分間に1μmolのグルタミン酸量を生
成する活性を1単位として表示した。 第1表の結果から、プロテアーゼが高い株は、
グルタミナーゼ活性が低く、また反対にグルタミ
ナーゼ活性が高い株はプロテアーゼ活性が低いの
が一般的麹菌の特徴であつたが、本発明方法によ
れば、プロトプラスト融合により、両親株の持つ
特徴を合わせて有し、プロテアーゼ活性とグルタ
ミナーゼ活性がともに高い麹菌が得られることが
判る。 実施例 1 上記実験例1で得られた本発明麹菌及び対照麹
菌(親株)を用いて醤油醸造試験を行つた。 脱脂大豆300gと炒熬割砕小麦300gを原料とし
て、麹蓋にて通常の醤油麹製造法に従つて製麹
し、得られた麹を25%食塩水1200mlに仕込み、常
法の諸味発酵管理を行い、30℃で3ケ月発酵熟成
させ、得られた諸味液汁について、総窒素量
(TNと略記する)、グルタミン酸量(Gluと略記
する)、Glu/TN及び窒素利用率を測定した。 その結果を第2表に示す。
[Table] Method for measuring glutaminase activity.
Using 30g of defatted soybeans and 30g of roasted cracked wheat as raw materials, make koji in a 15cm diameter sieve in the same way as the normal soy sauce koji production method, and extract the resulting koji for 2 hours using 10 times the amount of water. However, protease activity was measured by the Anson-Hagiwara method. The activity was expressed as one unit, the activity of producing 1 μmol of tyrosine per minute per 1 g of koji. Glutaminase activity can be determined by homogenizing the koji from the extraction residue and adding the homogenized solution and L-glutamine at 30°C.
After filtration, the amount of glutamic acid in the filtrate was determined. Glutaminase activity is
The activity of producing 1 μmol of glutamic acid per minute per 1 g of koji was expressed as 1 unit. From the results in Table 1, the strains with high protease are
A typical characteristic of Aspergillus oryzae is that it has low glutaminase activity, and conversely, strains with high glutaminase activity have low protease activity, but according to the method of the present invention, by protoplast fusion, it is possible to combine the characteristics of both parents. However, it can be seen that Aspergillus aspergillus having both high protease activity and high glutaminase activity can be obtained. Example 1 A soy sauce brewing test was conducted using the koji mold of the present invention and the control koji mold (parent strain) obtained in Experimental Example 1 above. Using 300g of defatted soybeans and 300g of roasted cracked wheat as raw materials, make koji using a koji lid according to the normal soy sauce koji manufacturing method, add the resulting koji to 1200ml of 25% salt water, and manage moromi fermentation using the usual method. The moromi liquid obtained was fermented and aged for 3 months at 30°C, and the total nitrogen content (abbreviated as TN), glutamic acid content (abbreviated as Glu), Glu/TN, and nitrogen utilization rate were measured. The results are shown in Table 2.

【表】 第2表の結果から、本発明で得られた麹菌菌体
を用いて製麹し、醤油を製造すると、醤油原料が
頗る良く分解されて窒素利用率が約3〜10%増と
遥かに向上するばかりか、グルタミン酸が著しく
増加するので、窒素そのものの質が向上し、非常
に旨味の強い醤油が得られることが判る。
[Table] From the results in Table 2, it can be seen that when the koji mold cells obtained in the present invention are used to make koji and produce soy sauce, the soy sauce raw materials are decomposed very well and the nitrogen utilization rate increases by about 3 to 10%. Not only is this much improved, but glutamic acid is significantly increased, so the quality of nitrogen itself is improved, and it can be seen that soy sauce with extremely strong flavor can be obtained.

Claims (1)

【特許請求の範囲】[Claims] 1 アスペルギルス属に属する、210単位/g麹
以上の高プロテアーゼ生産株と3.2単位/g麹以
上の高グルタミナーゼ生産株とをプロトプラスト
融合させ、該融合細胞を高張再生培地に培養し、
培養物より300単位/g麹以上の高プロテアーゼ
生産能を有し且つ1.0単位/g麹以上の高グルタ
ミナーゼ生産能を有する麹菌を分離、採取し、得
られた麹菌を醤油麹原料に接種培養して麹をつく
り、この麹を用いて仕込みを行うことを特徴とす
る醤油醸造法。
1. Protoplast fusion of a high protease producing strain of 210 units/g koji or more and a high glutaminase producing strain of 3.2 units/g koji or more belonging to the genus Aspergillus, and culturing the fused cells in a hypertonic regeneration medium;
Aspergillus aspergillus having a high protease production ability of 300 units/g koji or more and a high glutaminase production ability of 1.0 unit/g koji or more is isolated and collected from the culture, and the obtained koji mold is inoculated and cultured into soy sauce koji raw material. A soy sauce brewing method that is characterized by making koji and using this koji for preparation.
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