JPH0534956B2 - - Google Patents
Info
- Publication number
- JPH0534956B2 JPH0534956B2 JP61010847A JP1084786A JPH0534956B2 JP H0534956 B2 JPH0534956 B2 JP H0534956B2 JP 61010847 A JP61010847 A JP 61010847A JP 1084786 A JP1084786 A JP 1084786A JP H0534956 B2 JPH0534956 B2 JP H0534956B2
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- fatty acids
- fats
- lipase
- oils
- unsaturated fatty
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Lifetime
Links
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Description
〔発明の目的〕
産業上の利用分野
本発明は酵素による高度不飽和脂肪酸を含む油
脂の分解法に関する。さらに詳細には、アスペル
ギルス(Aspergillus)属に属する菌株の産生す
るリパーゼを用いる水産動物油脂などの高度不飽
和脂肪酸を含む油脂の分解方法に関する。
従来の技術
油脂を加水分解して脂肪酸とグリセロールを製
造する方法が古くから行われている。生成した脂
肪酸は、洗剤、界面活性剤、合成樹脂、ゴム、塗
料、繊維、グリース、医薬、化粧品などの原料と
して、またグリセロールは、化粧品、ハミガキ、
医薬などの原料として用いられる。
油脂の加水分解の方法には、トイツチエル法、
高圧分解法、ケン化分解法、酵素分解法などがあ
り、工業的には連続的な高圧分解法が主として行
われてきた。高圧分解法は、大量のエネルギー消
費をともなうこと、重合などの副反応が生ずるこ
と、二重結合を多く含む脂肪酸の場合は、二重結
合の転移が起こり異性体を生ずること、生成脂肪
酸が着色することなどの欠点がある。
これに対して、酵素分解法は常温、常圧に近い
条件で加水分解反応が進行し、副生物を生ずるこ
とがないため、近年特に注目を集め、牛脂の分解
などに応用されている(特公昭57−38239、同57
−39638、同59−20357、特開昭57−170193、同58
−146284、同59−175894、同59−179019、同60−
126090など)。
従来、加水分解するための油脂原料としては、
牛脂、豚脂およびヤシ油が主として用いられ、こ
れらの油脂だけで約8割以上を占める。
上記した牛脂、豚脂、ヤシ油などの油脂を構成
する脂肪酸は、主として炭素数8〜18、若しくは
炭素数12〜18の飽和脂肪酸および二重結合を1〜
2個有する不飽和脂肪酸から成る。これに対し、
イワシ油、ニシン油などの水産動物油脂には炭素
数20〜24で、二重結合を4〜6個含有する長鎖の
高度不飽和脂肪酸が比較的多く含まれる。これら
高度不飽和脂肪酸の一種であるエイコサペンタエ
ン酸、ドコサヘキサエン酸などは、人々の健康志
向の高まりとともに、その循環器障害改善の効果
が注目されている物質である。
炭素数20以上の長鎖の不飽和脂肪酸を含む油脂
は、炭素数18以下の脂肪酸から成る油脂に比較し
てリパーゼによる加水分解を受けにくいとされて
いる。このようなリパーゼの特性を利用して、ト
リグリセライドに対して位置特異性を有するリパ
ーゼと、そのような特異性を有しないリパーゼを
併用して油脂の分解率を高める方法(特開昭60−
130396)、油脂にリパーゼを作用させて生成した
未分解のグリセライド中に高度不飽和脂肪酸を豊
富に残す方法(特開昭60−234589)、長鎖の高度
不飽和脂肪酸を含む油脂をリパーゼで加水分解す
る際にアルコールを添加して分解率を高める方法
(特開昭60−234590)が報告されている。
発明が解決しようとする問題点
本発明は、酵素による高度不飽和脂肪酸を含む
油脂の加水分解方法を提供するものである。
工業的に油脂を加水分解するためには、少なく
とも90%以上の分解率が要求される。しかしなが
ら、高度不飽和脂肪酸を含む油脂を高分解率で分
解する酵素の存在は未だ報告されていない。本発
明者らは、市販の数多くのリパーゼによる高度不
飽和脂肪酸を含む水産動物油脂の加水分解を試み
たが最大でも約80%の分解率しか得られなかつ
た。従つて、本発明の目的は、分解率を高めた高
度不飽和脂肪酸を含む油脂の加水分解方法を提供
するところにある。
〔発明の構成〕
問題点を解決するための手段
本発明によれば、水産動物油脂などの高度不飽
和脂肪酸を含む油脂にアスペルギルス属に属する
菌株が産生し、基質トリグリセライドの構成脂肪
酸に対する特異性が低いという性質を少なくとも
有するリパーゼを作用させることによる当該油脂
の分解方法が提供される。本発明法でいう、基質
トリグリセライドの構成脂肪酸に対する特異性が
低いとは、トリグリセライドを構成する脂肪酸の
結合位置、鎖長、および飽和度に対する選択性が
低く、エステル結合を非特異的に加水分解する性
質を意味する。
従来アスペルギルス属菌がリパーゼを産生する
ことは公知である。しかしながら、例えばアスペ
ルギルス・ニガー(Aspergillus niger)のリパ
ーゼは、中鎖の脂肪酸を含むトリグリセライドに
よく作用し、位置特異性は1,3位にあり、2位
の脂肪酸は分解され難いとされている(科学と工
業、第58巻、60〜69頁、1984年)。
本発明に用いられるリパーゼは、アスペルギル
ス属に属し、基質トリグリセライドの構成脂肪酸
に対する特異性が低いという性質を少なくとも有
するリパーゼを産生する菌株を培地に培養し、得
られた培養物から採取することができる。
本発明に用いられるリパーゼを産生する菌株と
しては、本発明者らが土壌よりスクリーニングし
て見いだした下記の性質を有する菌株が好適に例
示される。
(1) 各培地における生育状態
麦芽エキス寒天培地:
生育は良好、菌糸は白色、分生子の形成は
良好で、色は暗い茶〜暗い赤味茶〜紫味黒で
ある。裏面は滑面で、色は無色〜黄味白〜黄
茶である。
ツアペツク寒天培地:
生育は良好、菌糸は白色、分生子の生成は
良好で色は暗い茶〜暗い赤味茶である。裏面
は滑面で、色は無色〜暗い黄茶である。
(2) ツアペツク寒天培地における形態
分生子頭:放射状あるいは裂けて円筒形と
なる。長さは500μに達する。
分生子柄:長さは0.2〜1.5mm、直径5〜
11μで、滑面。
頂嚢:球形〜亜球形で楕円形のものもみら
れる。直径10〜55μ。普通頂嚢全体に小梗を
生ずる。
メトレ:形成されない。
小梗:大きさ 6〜9μ×約3μ
分生子:球形〜亜球形、まれに卵型〜楕円
形のものがある。表面はとげ状。直径3.5〜
4.5μ。
子嚢胞子:形成されない。
(3) 生理学的性質
麦芽エキス寒天培地または麦芽エキス液体培地
における生育の条件、範囲は次のとおり。
最適生育条件:温度30℃付近、弱酸性のPH
でよく生育する。
生育の範囲:45℃では生育しない(5日間
培養)。5℃では生育しない(14日間培養)。
PH3〜9の範囲でよく生育する。
以上の菌学的性質をバロン(Barron,G.L.:
the Genera of Hyphomycetes from Soil,
Williams&Wilkins,Baltimore,1968年)に従
つて検索すると、分生子柄は集合することなく単
独であること、分生子は連鎖すること、分生子に
は隔壁がないこと、および頂嚢上に多数の小梗を
形成することによりアスペルギルス属に分類され
る。
種については、レイパーおよびフエンネル
(K.B.RaperおよびD.I.Fennel:the Genus
Aspergillus,Williams&Wilkins,Baltimore,
1965年)、および飯塚(農化、第27巻、801頁、
1953年)の検索表により検索すると、分生子の色
が緑色系ではなく黒色系であること、ツアペツク
寒天培地で分生子をよく形成すること、および分
生子頭が放射状であることよりアスペルギルス・
ニガー(Aspergillus niger)グループに属する
ことが分かる。そして、メトレがないこと(即
ち、梗子が1段であること)から、アスペルギル
ス・ジヤポニカス(A.japonicus)あるいはアス
ペルギルス・アキユレアタス(A.aculeatus)の
近縁となる。アスペルギルス・アキユレアタス
は、分生子が楕円形、頂嚢が50〜80μ、分生子柄
が3〜4mmである。これに対し本菌株は、大部分
の分生子が球形〜亜球形であること、頂嚢が10〜
55μであること、および分生子柄が比較的短く0.2
〜1.5mmであることからアスペルギルス・ジヤポ
ニカスとするのが妥当である。よつて本菌株をア
スペルギルス・ジヤポニカスNo.213F(Aspergillus
japonicus No.213F)と命名した。本菌株は工業
技術院微生物工業技術研究所に微工研菌寄第8608
号(FERM P−8608)の受託番号で寄託されて
いる。
アスペルギルス・ジヤポニカスNo.213Fの産生
するリパーゼの理化学的性質は以下の通りであ
る。
(1) 作用、基質特異性:
トリグリセライドの全ての位置のエステル結
合を加水分解し、脂肪酸とグリセロールを生成
する。広く天然の油脂に作用し、とくに炭素数
20以上の高度不飽和脂肪酸を含むトリグリセラ
イドをよく分解する。また、炭素数4〜18の飽
和または不飽和の脂肪酸を含むトリグリセライ
ドもよく分解する。
(2) 至適PH:6〜7(第1図に示す。)
(3) 安定PHの範囲:PH4〜8(第2図に示す。)
(4) 至適温度:約50℃(第3図に示す。)
(5) 温度安定性:PH7において、約50℃以下で安
定(第4図に示す。)
(6) 活性測定法:
市販のリパーゼ測定用キツト(リパーゼキツ
トS、大日本製薬社製)を用い、PH7.0、37℃
において15分間インキユベートした後、412nm
における吸光度の上昇を測定する。リパーゼの
単位は、上記条件でODを1上昇させる酵素量
を1単位とした。
本発明に用いられるリパーゼは、特に好ましく
はアスペルギルス・ジヤポニカスNo.213F株を栄
養培地に培養し、得られた培養物から採取するこ
とができる。得られたリパーゼは、本発明に用い
る場合には培養物そのもの、あるいは粗製または
精製された状態の何れでもよい。
本発明の実施にあたつては、高度不飽和脂肪酸
を含む油脂と前述のリパーゼを混合し、加水分解
反応を行わせることにより高分解率の生成物が得
られる。本発明において、分解の目的とする油脂
は、炭素数20以上で、二重結合を4〜6個有する
不飽和脂肪酸を構成脂肪酸として含む油脂であ
る。これらの脂肪酸を含む油脂としては、イワシ
油、サンマ油、ニシン油、イカ油、マグロ油、タ
ラ油などの水産動物油脂が挙げられる。
本発明による油脂の分解方法において、反応の
条件は、加水分解が行われる範囲内であれば如何
なる条件でもよい。特に好ましくは、温度30〜60
℃、反応混合物中の水分含量が油脂に対して0.2
〜20重量部、PH4〜8、酵素の使用量は油脂1g
当り10〜1000単位である。加水分解反応を促進す
るために、ポリビニルアルコール、脂肪酸エステ
ルなどの乳化剤、マグネシウムイオン、マンガン
イオン、カルシウムイオンなどの酵素の賦活剤、
リン酸緩衝液などの緩衝液を添加することもでき
る。また、分解産物である高度不飽和脂肪酸の劣
化を防ぐため、不活性ガス、酸化防止剤の存在下
に反応を行うこともできる。反応中は、撹拌など
の手段で乳濁状態に保つのが好ましい。
本発明に用いられるリパーゼは、これを担体に
固定化して油脂に作用させることもできる。固定
化されたリパーゼは繰り返し使用することがで
き、経済的である。リパーゼの固定化方法は公知
であり、例えば物理的吸着、イオン結合または共
有結合を利用した担体結合法、多官能試薬を用る
架橋法、高分子物質の格子またはマイクロカプセ
ルに閉じ込める包括法などにより調製される。
加水分解反応混合物からの脂肪酸およびグリセ
ロールの分離は常法に従つて行われる。例えば、
反応混合物を静置し、脂肪酸を含む油層とグリセ
ロール水(甘水)に分離することができる。
上述したように、本発明に用いられるリパーゼ
は従来のリパーゼにない特徴を有する。この性質
を利用すれば、例えば、長鎖の高度不飽和脂肪酸
を含む油脂を従来の脂肪酸選択性乃至位置特異性
を有する第一のリパーゼで分解し、生成したグリ
セライドを分離した後、さらに本発明で用いられ
る第二のリパーゼでグリセライドを分解すること
によつて長鎖の高度不飽和脂肪酸を濃縮すること
も可能である。
以下参考例、実施例を示して本発明をさらに詳
細に説明する。
参考例 リパーゼの製造
大豆粉2.5%、澱粉1.0%、大豆油0.5%、リン酸
アンモニウム0.5%、およびリン酸二カリウム0.2
%よりなる培地にアスペルギルス・ジヤポニカス
No.213Fを接種し、30℃において3日間培養した。
得られた培養物をろ過して菌体を除き、ろ液を限
外ろ過により濃縮した。濃縮液に3倍量のエタノ
ールを添加し、生成した沈澱を集め、真空乾燥す
ることにより5200u/gのリパーゼ標品が得られ
た。
実施例 1
イワシ油0.5g、0.5Mリン酸緩衝液(PH7.0)
1.5ml、前記参考例で得られたリパーゼの1.25、
2.5、5または10u/mlの水溶液8.0mlおよび直径
5mmのガラスビーズ30個を100ml容のフラスコに
入れ、40℃において、振盪しながら(140rpm、
振幅3cm)、24時間インキユベートした。反応混
合物中の油層を石油エーテルで抽出し、溶媒を除
去した後、その酸価(AV)およびケン化価
(SV)を測定した。得られた測定値より分解率
〔AV/SV(×100%)〕を算出した。酵素の使用
量と油脂の分解率の関係を第5図に示す。
比較例 1
実施例1において、酵素として市販のシユード
モナス(Pseudomonas)属菌由来のリパーゼ
(商品名:リパーゼP、天野製薬社製)およびカ
ンジダ(Candida)属菌由来のリパーゼ(商品
名:リパーゼOF、名糖産業社製)を用いた以外
は同様に操作した。
酵素の使用量と油脂の分解率の関係を第5図に
示す。
第5図から分かるように、本発明法によれば油
脂の分解率は最大96%に達したが、シユードモナ
ス属菌のリパーゼでは82%、カンジダ属菌のリパ
ーゼでは69%でであつた。
実施例 2
イワシ油3.0g、前記参考例のリパーゼ120単位
を含む水溶液4.5mlおよび直径5mmのガラスビー
ズ30個を100ml容のフラスコに入れ、37℃におい
て、振盪しながら(140rpm、振幅3cm)、24時間
インキユベートした。油脂の分解率は94%であつ
た。(第1表に示す。)
比較例 2
実施例2において、酵素として市販のリゾープ
ス(Rhizopus)属菌由来のリパーゼ(商品名:
リパーゼN、天野製薬社製)、ムコール
(Mucor)属菌由来のリパーゼ(商品名:リパー
ゼM、天野製薬社製)、アスペルギルス・ニガー
(Aspergillus niger)由来のリパーゼ(商品名:
リパーゼA、天野製薬社製)、カンジダ属菌由来
のリパーゼ(商品名:Sakemate、名糖産業社
製)またはシユードモナス属菌由来のリパーゼ
(商品名:リパーゼP、天野製薬社製)を用いた
以外は同様に操作した。油脂の分解率は第1表に
示すとおりであつた。
[Object of the Invention] Industrial Application Field The present invention relates to a method for decomposing fats and oils containing highly unsaturated fatty acids using an enzyme. More specifically, the present invention relates to a method for decomposing fats and oils containing highly unsaturated fatty acids, such as aquatic animal fats and oils, using lipase produced by a strain belonging to the genus Aspergillus. BACKGROUND ART Methods for producing fatty acids and glycerol by hydrolyzing fats and oils have been practiced for a long time. The fatty acids produced are used as raw materials for detergents, surfactants, synthetic resins, rubber, paints, fibers, greases, medicines, cosmetics, etc., and glycerol is used for cosmetics, toothpaste,
Used as a raw material for medicines, etc. Methods for hydrolyzing fats and oils include the Teutschell method,
There are high-pressure decomposition methods, saponification decomposition methods, enzymatic decomposition methods, etc., and continuous high-pressure decomposition methods have mainly been used industrially. The high-pressure decomposition method involves the consumption of a large amount of energy, side reactions such as polymerization occur, and in the case of fatty acids containing many double bonds, double bond transfer occurs to produce isomers, and the produced fatty acids are colored. There are drawbacks such as: In contrast, the enzymatic decomposition method proceeds at room temperature and near normal pressure, and does not produce any by-products, so it has attracted particular attention in recent years and has been applied to the decomposition of beef tallow (among other things). Kosho 57-38239, same 57
-39638, 59-20357, JP-A-57-170193, 58
-146284, 59-175894, 59-179019, 60-
126090 etc.). Conventionally, the oil and fat raw materials for hydrolysis are:
Beef tallow, lard, and coconut oil are mainly used, and these fats alone account for about 80% or more. The fatty acids constituting the above-mentioned fats and oils such as beef tallow, lard, and coconut oil are mainly saturated fatty acids with 8 to 18 carbon atoms, or 12 to 18 carbon atoms, and saturated fatty acids with 1 to 1 double bond.
Consists of two unsaturated fatty acids. In contrast,
Aquatic animal fats and oils such as sardine oil and herring oil contain relatively large amounts of long-chain highly unsaturated fatty acids having 20 to 24 carbon atoms and 4 to 6 double bonds. Eicosapentaenoic acid, docosahexaenoic acid, and the like, which are types of these highly unsaturated fatty acids, are substances that are attracting attention for their effect on improving cardiovascular disorders as people become more health conscious. Fats and oils containing long-chain unsaturated fatty acids with carbon atoms of 20 or more are said to be less susceptible to hydrolysis by lipases than fats and oils containing fatty acids with carbon atoms of 18 or less. Utilizing these properties of lipase, a method of increasing the decomposition rate of fats and oils by combining a lipase that has positional specificity for triglycerides and a lipase that does not have such specificity has been proposed
130396), a method for leaving abundant polyunsaturated fatty acids in undecomposed glycerides produced by applying lipase to fats and oils (JP-A-60-234589), hydration of fats and oils containing long-chain polyunsaturated fatty acids using lipase A method of increasing the decomposition rate by adding alcohol during decomposition has been reported (Japanese Patent Laid-Open No. 60-234590). Problems to be Solved by the Invention The present invention provides a method for hydrolyzing fats and oils containing highly unsaturated fatty acids using an enzyme. In order to hydrolyze fats and oils industrially, a decomposition rate of at least 90% is required. However, the existence of an enzyme that decomposes fats and oils containing highly unsaturated fatty acids at a high decomposition rate has not yet been reported. The present inventors attempted to hydrolyze aquatic animal fats and oils containing highly unsaturated fatty acids using a number of commercially available lipases, but could only achieve a decomposition rate of about 80% at maximum. Therefore, an object of the present invention is to provide a method for hydrolyzing fats and oils containing highly unsaturated fatty acids, which increases the decomposition rate. [Structure of the Invention] Means for Solving the Problems According to the present invention, a strain belonging to the genus Aspergillus is produced in fats and oils containing highly unsaturated fatty acids such as aquatic animal fats and oils, and the specificity for the constituent fatty acids of the substrate triglyceride is improved. Provided is a method for decomposing fats and oils by using a lipase that has at least the property of being low in fat and oil. In the method of the present invention, low specificity for the constituent fatty acids of the substrate triglyceride means that the selectivity for the bonding position, chain length, and degree of saturation of the fatty acids constituting the triglyceride is low, and the ester bond is nonspecifically hydrolyzed. means quality. It has been known that Aspergillus bacteria produce lipase. However, for example, Aspergillus niger lipase acts well on triglycerides containing medium-chain fatty acids, and its positional specificity is at the 1st and 3rd positions, and fatty acids at the 2nd position are said to be difficult to decompose ( Science and Industry, Vol. 58, pp. 60-69, 1984). The lipase used in the present invention belongs to the genus Aspergillus and can be collected from the culture obtained by culturing in a medium a strain that produces a lipase that has at least the property of having low specificity for the constituent fatty acids of the substrate triglyceride. . Suitable examples of the lipase-producing strain used in the present invention include strains having the following properties, which were discovered by the present inventors by screening soil. (1) Growth status on each medium Malt extract agar medium: Growth is good, mycelium is white, conidia are well formed, and the color is dark brown to dark reddish brown to purplish black. The underside is smooth and the color ranges from colorless to yellowish white to yellowish brown. Tuapetsk agar medium: Growth is good, mycelium is white, conidia are well produced, and the color is dark brown to dark reddish brown. The underside is smooth and the color is colorless to dark yellowish brown. (2) Morphology on Czapetsk agar medium Conidial head: radial or lobed to form a cylindrical shape. The length reaches 500μ. Conidiophore: length 0.2~1.5mm, diameter 5~
11μ, smooth surface. Apical capsule: spherical to subglobular, elliptical in some cases. Diameter 10~55μ. Small infarcts usually occur throughout the apical capsule. Metre: Not formed. Small stalks: Size 6-9μ x approx. 3μ Conidia: Globular to subglobular, rarely oval to oval. The surface is thorn-like. Diameter 3.5~
4.5μ. Ascospores: Not formed. (3) Physiological properties The conditions and range for growth on malt extract agar medium or malt extract liquid medium are as follows. Optimal growth conditions: Temperature around 30℃, slightly acidic PH
It grows well in Growth range: Does not grow at 45°C (cultured for 5 days). It does not grow at 5°C (cultured for 14 days).
It grows well in the pH range of 3 to 9. The above mycological properties were evaluated by Barron, GL:
the Genera of Hyphomycetes from Soil,
Williams & Wilkins, Baltimore, 1968), it was found that the conidiophores are solitary without aggregation, that the conidia are chained, that the conidia have no septa, and that there are numerous small It is classified as a member of the genus Aspergillus because of its stalk formation. For species, see Raper and DIFennel (KBRaper and DIFennel: the Genus
Aspergillus, Williams & Wilkins, Baltimore,
1965) and Iizuka (Noka, Vol. 27, p. 801,
(1953), it was found that the color of the conidia was black rather than green, that the conidia formed well on Tuapetsk agar medium, and that the conidial heads were radial, indicating that Aspergillus.
It can be seen that it belongs to the Aspergillus niger group. Since there is no metre (that is, there is only one stage of sycamore), it is a close relative of A. japonicus or A. aculeatus. The conidia of Aspergillus aquiuleatus are oval, the apical capsule is 50 to 80 μm, and the conidiophore is 3 to 4 mm. In contrast, in this strain, most of the conidia are spherical to subglobular, and the apical capsule is 10 to 10.
55μ, and the conidiophores are relatively short and 0.2
Since it is ~1.5 mm, it is appropriate to identify it as Aspergillus japonicus. This strain was then transformed into Aspergillus japonicus No. 213F (Aspergillus japonicus No. 213F).
japonicus No.213F). This strain was submitted to the Institute of Microbial Technology, Agency of Industrial Science and Technology, No. 8608.
It has been deposited under the accession number FERM P-8608. The physicochemical properties of the lipase produced by Aspergillus japonicus No. 213F are as follows. (1) Action, substrate specificity: Hydrolyzes ester bonds at all positions of triglyceride to produce fatty acids and glycerol. It acts on a wide range of natural oils and fats, especially on carbon numbers.
It effectively breaks down triglycerides containing more than 20 highly unsaturated fatty acids. It also decomposes triglycerides containing saturated or unsaturated fatty acids having 4 to 18 carbon atoms well. (2) Optimum PH: 6 to 7 (shown in Figure 1) (3) Stable PH range: PH 4 to 8 (shown in Figure 2) (4) Optimum temperature: approximately 50℃ (shown in Figure 2) (5) Temperature stability: Stable below approximately 50°C at pH 7 (shown in Figure 4) (6) Activity measurement method: Commercially available lipase measurement kit (Lipase Kit S, Dainippon Pharmaceutical Co., Ltd.) PH7.0, 37℃
After incubation for 15 minutes at 412nm
Measure the increase in absorbance at . The unit of lipase was defined as the amount of enzyme that increases the OD by 1 under the above conditions. The lipase used in the present invention is particularly preferably obtained by culturing Aspergillus japonicus No. 213F strain in a nutrient medium and collecting it from the resulting culture. When used in the present invention, the obtained lipase may be in the culture itself or in a crude or purified state. In carrying out the present invention, a product with a high decomposition rate can be obtained by mixing an oil or fat containing a highly unsaturated fatty acid with the above-mentioned lipase and carrying out a hydrolysis reaction. In the present invention, the fats and oils targeted for decomposition are fats and oils containing unsaturated fatty acids having 20 or more carbon atoms and 4 to 6 double bonds as constituent fatty acids. Examples of fats and oils containing these fatty acids include aquatic animal fats and oils such as sardine oil, saury oil, herring oil, squid oil, tuna oil, and cod oil. In the method for decomposing fats and oils according to the present invention, the reaction conditions may be any conditions as long as they are within the range where hydrolysis is carried out. Particularly preferably, the temperature is 30-60
°C, the water content in the reaction mixture is 0.2 relative to fat.
~20 parts by weight, PH4-8, amount of enzyme used is 1g of fat or oil
10 to 1000 units per unit. To accelerate the hydrolysis reaction, emulsifiers such as polyvinyl alcohol and fatty acid esters, enzyme activators such as magnesium ions, manganese ions, and calcium ions,
Buffers such as phosphate buffers can also be added. Further, in order to prevent deterioration of highly unsaturated fatty acids which are decomposition products, the reaction can also be carried out in the presence of an inert gas and an antioxidant. During the reaction, it is preferable to maintain the emulsion by stirring or other means. The lipase used in the present invention can also be immobilized on a carrier to act on fats and oils. Immobilized lipase can be used repeatedly and is economical. Methods for immobilizing lipase are known, such as physical adsorption, carrier bonding using ionic or covalent bonds, crosslinking using a multifunctional reagent, and entrapment in a polymer lattice or microcapsule. prepared. Separation of fatty acids and glycerol from the hydrolysis reaction mixture is carried out according to conventional methods. for example,
The reaction mixture is allowed to stand and can be separated into an oil layer containing fatty acids and glycerol water (sweet water). As mentioned above, the lipase used in the present invention has characteristics not found in conventional lipases. By utilizing this property, for example, after decomposing fats and oils containing long-chain highly unsaturated fatty acids with a conventional first lipase having fatty acid selectivity or position specificity and separating the generated glyceride, the present invention It is also possible to concentrate long chain polyunsaturated fatty acids by decomposing glycerides with a second lipase used in The present invention will be explained in further detail by referring to Reference Examples and Examples below. Reference example Production of lipase Soy flour 2.5%, starch 1.0%, soybean oil 0.5%, ammonium phosphate 0.5%, and dipotassium phosphate 0.2
Aspergillus japonicus in a medium consisting of %
No. 213F was inoculated and cultured at 30°C for 3 days.
The resulting culture was filtered to remove bacterial cells, and the filtrate was concentrated by ultrafiltration. A three-fold amount of ethanol was added to the concentrated solution, and the resulting precipitate was collected and vacuum-dried to obtain a lipase sample of 5200 u/g. Example 1 Sardine oil 0.5g, 0.5M phosphate buffer (PH7.0)
1.5ml, 1.25ml of lipase obtained in the above reference example,
8.0 ml of a 2.5, 5 or 10 u/ml aqueous solution and 30 glass beads with a diameter of 5 mm were placed in a 100 ml flask and heated at 40°C with shaking (140 rpm,
amplitude 3 cm) and incubated for 24 hours. After extracting the oil layer in the reaction mixture with petroleum ether and removing the solvent, its acid value (AV) and saponification value (SV) were measured. The decomposition rate [AV/SV (x100%)] was calculated from the obtained measured values. Figure 5 shows the relationship between the amount of enzyme used and the decomposition rate of fats and oils. Comparative Example 1 In Example 1, commercially available lipase derived from Pseudomonas bacteria (product name: Lipase P, manufactured by Amano Pharmaceutical Co., Ltd.) and lipase derived from Candida bacteria (product name: Lipase OF, The same procedure was carried out except that the method (manufactured by Meito Sangyo Co., Ltd.) was used. Figure 5 shows the relationship between the amount of enzyme used and the decomposition rate of fats and oils. As can be seen from FIG. 5, according to the method of the present invention, the decomposition rate of fats and oils reached a maximum of 96%, but it was 82% with lipase of Pseudomonas genus and 69% with lipase of Candida genus. Example 2 3.0 g of sardine oil, 4.5 ml of the aqueous solution containing 120 units of lipase from the above reference example, and 30 glass beads with a diameter of 5 mm were placed in a 100 ml flask and heated at 37° C. while shaking (140 rpm, amplitude 3 cm). Incubated for 24 hours. The decomposition rate of fats and oils was 94%. (See Table 1.) Comparative Example 2 In Example 2, a commercially available lipase derived from a Rhizopus bacterium (trade name:
Lipase N, produced by Amano Pharmaceutical Co., Ltd.), lipase derived from Mucor bacteria (product name: Lipase M, produced by Amano Pharmaceutical Co., Ltd.), lipase derived from Aspergillus niger (product name:
Lipase A, Amano Pharmaceutical Co., Ltd.), Candida-derived lipase (product name: Sakemate, Meito Sangyo Co., Ltd.), or Pseudomonas-derived lipase (product name: Lipase P, Amano Pharmaceutical Co., Ltd.). was operated in the same way. The decomposition rate of fats and oils was as shown in Table 1.
【表】【table】
本発明法によれば、アスペルギルス属菌の産生
するリパーゼを用いた高度不飽和脂肪酸を含む油
脂を高分解率で分解する方法が提供される。本発
明法は、従来の高圧分解法に比較してエネルギー
消費が少なく、また熱に不安定な脂肪酸などの重
合による副生物の生成、生成した脂肪酸の着色と
いつた問題もない。
According to the method of the present invention, a method is provided for decomposing fats and oils containing highly unsaturated fatty acids at a high decomposition rate using lipase produced by Aspergillus bacteria. The method of the present invention consumes less energy than conventional high-pressure decomposition methods, and is free from problems such as the production of by-products due to polymerization of heat-labile fatty acids and the like, and coloring of the produced fatty acids.
第1図は、アスペルギルス・ジヤポニカスNo.
213Fの産生するリパーゼの至適PHを表す図であ
り、また第2,3,4図はそれぞれ安定PHの範
囲、至適温度、温度安定性を表す図である。第5
図は、アスペルギルス・ジヤポニカスNo.213Fの
産生するリパーゼおよび市販のシユードモナス属
菌並びにカンジダ属菌由来のリパーゼをイワシ油
に作用させたときのリパーゼの使用量と油脂の分
解率の関係を表す図である。
Figure 1 shows Aspergillus japonicus No.
FIG. 2 is a diagram showing the optimal pH of lipase produced by 213F, and FIGS. 2, 3, and 4 are diagrams showing the stable PH range, optimal temperature, and temperature stability, respectively. Fifth
The figure shows the relationship between the amount of lipase used and the decomposition rate of fats and oils when lipase produced by Aspergillus japonicus No. 213F and commercially available lipases derived from Pseudomonas and Candida are applied to sardine oil. be.
Claims (1)
質トリグリセライドの構成脂肪酸に対する特異性
が低いという性質を少なくとも有するリパーゼを
高度不飽和脂肪酸を含む油脂に作用せしめること
を特徴とする高度不飽和脂肪酸を含む油脂の分解
法。 2 アスペルギルス属に属する菌株がアスペルギ
ルス・ジヤポニカスNo.213Fである特許請求の範
囲第1項記載の高度不飽和脂肪酸を含む油脂の分
解法。 3 高度不飽和脂肪酸を含む油脂が水産動物油脂
である特許請求の範囲第1項記載の高度不飽和脂
肪酸を含む油脂の分解法。[Scope of Claims] 1. A lipase produced by a strain belonging to the genus Aspergillus, which has at least the property of having low specificity for fatty acids constituting the substrate triglyceride, is made to act on fats and oils containing polyunsaturated fatty acids. A method for decomposing fats and oils containing saturated fatty acids. 2. The method for decomposing fats and oils containing highly unsaturated fatty acids according to claim 1, wherein the strain belonging to the genus Aspergillus is Aspergillus japonicus No. 213F. 3. The method for decomposing fats and oils containing highly unsaturated fatty acids according to claim 1, wherein the fats and oils containing highly unsaturated fatty acids are aquatic animal fats and oils.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP61010847A JPS62171691A (en) | 1986-01-21 | 1986-01-21 | Hydrolysis of oil containing highly unsaturated fatty acid |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP61010847A JPS62171691A (en) | 1986-01-21 | 1986-01-21 | Hydrolysis of oil containing highly unsaturated fatty acid |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS62171691A JPS62171691A (en) | 1987-07-28 |
| JPH0534956B2 true JPH0534956B2 (en) | 1993-05-25 |
Family
ID=11761743
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP61010847A Granted JPS62171691A (en) | 1986-01-21 | 1986-01-21 | Hydrolysis of oil containing highly unsaturated fatty acid |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS62171691A (en) |
Families Citing this family (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP4210437B2 (en) * | 2000-09-27 | 2009-01-21 | 池田食研株式会社 | Method for producing sterol fatty acid ester for food |
| JP2002136298A (en) * | 2000-11-01 | 2002-05-14 | Tama Seikagaku Kk | Method for producing acyl glyceride containing dha at high content |
| JP5099946B2 (en) * | 2001-01-10 | 2012-12-19 | 株式会社Adeka | Method for producing antitumor composition |
| EP2119781B1 (en) * | 2007-01-30 | 2012-08-22 | Mitsubishi-Kagaku Foods Corporation | Glyceroglycolipid lipase |
-
1986
- 1986-01-21 JP JP61010847A patent/JPS62171691A/en active Granted
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS62171691A (en) | 1987-07-28 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| CA2163278A1 (en) | Method for production of arachidonic acid | |
| US5093256A (en) | Essentially purified, thermostable and alkalophilic lipase from bacillus sp. a30-1 atcc 53841 | |
| Chen et al. | Lipase production by Trichosporon fermentans WU-C12, a newly isolated yeast | |
| Fadıloğlu et al. | Lipase production by Rhizopus oryzae growing on different carbon and nitrogen sources | |
| JPS6344891A (en) | Production of arachidonic acid | |
| JPH0534956B2 (en) | ||
| Čertík et al. | Lipid production and fatty acid composition of selected strains belonging to Mucorales | |
| EP0502525B1 (en) | Biotechnological process for the production of S-(+)-2,2-dimethylcyclopropanecarboxamide and R-(-)-2,2-dimethylcyclopropanecarboxylic acid | |
| CN1060518C (en) | Method for producing dictyophora indusiata nutritive mycelium using bamboo fungus submerged culture fermentation technology | |
| EP0425001B1 (en) | Natural delta-lactones and process of the production thereof | |
| JP3071088B2 (en) | Method for producing fats and oils and microorganisms used therefor | |
| US5166069A (en) | Bacillus sp. A30-1 ATCC no. 53841 | |
| US4717665A (en) | Recovery of microbial lipase | |
| JPS639835B2 (en) | ||
| JP2000014392A (en) | Method for producing glycerides containing highly unsaturated fatty acids | |
| Botha et al. | The production of eicosanoid precursors by mucoralean fungi | |
| JP3676841B2 (en) | Novel lipase, its production method and its use | |
| JPH0582197B2 (en) | ||
| JPH0866186A (en) | Novel lipase and method for producing the same | |
| JP2002159290A (en) | Novel lipase and method for producing the same | |
| EP0188628A1 (en) | Process for producing fatty acids by fermentation | |
| JPH11253157A (en) | Microbe having ability for producing new lipase, lipase, its production and its use | |
| JPH01132371A (en) | Novel microorganism and production of lipid component of high content of gamma-linolenic acid | |
| JP3088034B2 (en) | Waste oil treatment method and waste oil treatment agent | |
| JP4764309B2 (en) | Method for producing methyl ketones |