JPH0582399B2 - - Google Patents
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- JPH0582399B2 JPH0582399B2 JP59191753A JP19175384A JPH0582399B2 JP H0582399 B2 JPH0582399 B2 JP H0582399B2 JP 59191753 A JP59191753 A JP 59191753A JP 19175384 A JP19175384 A JP 19175384A JP H0582399 B2 JPH0582399 B2 JP H0582399B2
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- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
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- G01N33/564—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for pre-existing immune complex or autoimmune disease, i.e. systemic lupus erythematosus, rheumatoid arthritis, multiple sclerosis, rheumatoid factors or complement components C1-C9
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Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明は、慢性関節リウマチ等のリウマチ血漿
からリウマチ特異蛋白質を分離精製する方法に関
するものである。DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION (Field of Industrial Application) The present invention relates to a method for separating and purifying rheumatoid arthritis-specific proteins from rheumatoid plasma such as rheumatoid arthritis.
(従来の技術)
慢性関節リウマチ疾患は、患者数が多く〔後述
のアメリカ・リウマチ協会の診断基準によれば、
我が国では人口の0.3%が古典的な(classical)
あるいは明確な(definite)慢性関節リウマチ患
者であるとされている。さらにおそらく
(probable)あるいは起こりうる(possidle)慢
性関節リウマチ患者は、人口の1〜3%にものぼ
るといわれている。〕、また、身体障害に進み、と
きには重い臓器病変を伴う疾患である。その病態
は、滑膜を有する関節を主病変部とすることが特
徴的ではあるが、ひろく全身の結合組織に系統的
に炎症性病変を伴う全身病としてとらえられてい
る。臓器病変のうちでは心病変(心嚢炎、心筋
炎)が最も重く、しばしば死因となる。これにつ
いで肺病変(胸膜炎、肺臓炎)、さらに、多発性
神経炎、皮膚潰瘍、上強膜炎など多くの全身症状
がみられる。これらのことなどより、慢性関節リ
ウマチ疾患は医学的にも、社会的にも重要な疾患
である。(Prior art) Rheumatoid arthritis has a large number of patients [according to the American Rheumatism Association's diagnostic criteria described below].
In our country, 0.3% of the population is classical
Or, it is said that the patient has definite rheumatoid arthritis. Furthermore, it is said that probable or possible chronic rheumatoid arthritis patients account for as much as 1 to 3% of the population. ], it is also a disease that progresses to physical disability and is sometimes accompanied by severe organ lesions. Although the disease is characterized by primarily affecting joints with synovial membranes, it is considered to be a systemic disease with systematic inflammatory lesions in connective tissues throughout the body. Among organ lesions, cardiac lesions (pericarditis, myocarditis) are the most severe and often cause death. This is followed by lung lesions (pleurisy, pneumonitis), and many systemic symptoms such as polyneuritis, skin ulcers, and episcleritis. For these reasons, rheumatoid arthritis is an important disease both medically and socially.
ところが、慢性関節リウマチ疾患の医学的研究
は遅れており、発病については免疫学的異常が関
与することが明らかではあるが、病因については
ほとんど解明されておらず、その治療方法はよう
やく最近になつて発展しだしたところである。 However, medical research on rheumatoid arthritis disease has lagged behind, and although it is clear that immunological abnormalities are involved in the onset of the disease, the etiology remains largely unknown, and treatment methods have only recently been developed. It has just begun to develop.
慢性関節リウマチ疾患の診断は、一般にアメリ
カ・リウマチ協会の診断基準によつて行なわれて
いる。このアメリカ・リウマチ協会の診断基準が
確立されたことによつて、慢性関節リウマチ疾患
の診断は統一されるようになつてはきた。アメリ
カ・リウマチ協会の診断基準は11項目から成り、
そのうち、何項目を満たすかによつて慢性関節リ
ウマチの診断を行なうものであるが、(1)関節液検
査は関節液が採取できるとは限らず、また、病理
組織学的検査は医家で簡単に行なえるものではな
く、よつて、これらの項目の診断における利用価
値は少ない、(2)リウマトイド結節やリウマチ因
子、あるいは骨関節レントゲン写真上の変化は、
初めから陽性にでるとは限らず、早期診断の上で
決め手とはなりにくい、(3)よつて、上記1,2を
除いた全くの臨床症状からなる項目が重要となる
わけであるが、これらはいずれも慢性関節リウマ
チに特徴的ではない等の多くの問題点がある。し
たがつて、現在アメリカ・リウマチ協会の診断基
準が広く用いられてはいるが、必ずしも診断は容
易ではなく、慢性関節リウマチ診断のための新た
なパラメーターに対する期待は大きい。 Diagnosis of rheumatoid arthritis disease is generally made according to the diagnostic criteria of the American Rheumatology Association. With the establishment of the American Rheumatology Association's diagnostic criteria, the diagnosis of rheumatoid arthritis disease has become unified. The American Rheumatology Association's diagnostic criteria consist of 11 items.
Diagnosis of rheumatoid arthritis is made based on how many of these items are met, but (1) synovial fluid testing does not always allow collection of synovial fluid, and histopathological testing cannot be easily performed by a doctor. (2) Rheumatoid nodules, rheumatoid factors, or changes on bone and joint radiographs are
It is not always positive from the beginning, and it is difficult to be a decisive factor in early diagnosis. (3) Therefore, items consisting of all clinical symptoms other than 1 and 2 above are important. There are many problems such as the fact that none of these are characteristic of rheumatoid arthritis. Therefore, although the diagnostic criteria of the American Rheumatology Association are currently widely used, diagnosis is not necessarily easy, and there are high expectations for new parameters for diagnosing rheumatoid arthritis.
リウマチ特異蛋白質は、慢性関節リウマチ患者
血漿中より小田ら(昭和58年9月、第56回日本生
化学会)が最初に発見した蛋白質であり、慢性関
節リウマチ診断におけるその重要性が指摘され
た。小田らによると、リウマチ特異蛋白質は分子
量150000〜170000、等電点7.3〜7.8、移動度(蛋
白質変性剤を用いない2次元電気泳動法におい
て、アルブミン最先端部の移動度を1.0として)
0.30〜0.45の範囲内にある蛋白質である。さら
に、リウマチ特異蛋白質は、先に2−メルカプト
エタノール等の還元剤で還元した後に、SDSポリ
アクリルアミド電気泳動法によつて分子量を測定
する時、25000〜30000および55000〜60000の2種
の分子量を示す、このリウマチ特異蛋白質は、慢
性関節リウマチ患者の約80%で見い出されるが、
健常人や他の疾患患者ではみられないことより
(小田ら)、慢性関節リウマチ疾患の診断における
新たな診断方法としての期待が高まつている。 Rheumatoid arthritis-specific protein was first discovered by Oda et al. (September 1982, 56th Japanese Biochemical Society) in the plasma of patients with rheumatoid arthritis, and its importance in diagnosing rheumatoid arthritis was pointed out. According to Oda et al., rheumatoid arthritis-specific proteins have a molecular weight of 150,000 to 170,000, an isoelectric point of 7.3 to 7.8, and a mobility (in two-dimensional electrophoresis that does not use a protein denaturant, the mobility of the leading edge of albumin is assumed to be 1.0).
It is a protein within the range of 0.30 to 0.45. Furthermore, when rheumatoid-specific proteins are first reduced with a reducing agent such as 2-mercaptoethanol and then measured by SDS polyacrylamide electrophoresis, two types of molecular weights are determined: 25,000-30,000 and 55,000-60,000. This rheumatoid-specific protein is found in approximately 80% of patients with rheumatoid arthritis.
Since it is not seen in healthy people or patients with other diseases (Oda et al.), expectations are high for it to be a new diagnostic method for diagnosing rheumatoid arthritis.
リウマチ特異蛋白質の精製は、従来次のような
方法によつて行なわれていた。まず検体に硫酸ア
ンモニウム等を加えて塩析した後、DEAE−セフ
アデツクス(フアルマシア社、スウエーデン)等
のイオン交換ゲルによつてイオン交換クロマトグ
ラフイーを行ない、次に、例えばセフアクリルS
−300(フアルマシア社、スウエーデン)等のゲル
によつてゲルクロマトグラフイー、その後再度イ
オン交換クロマトグラフイーを行ない、2次元電
気泳動法によりリウマチ特異蛋白質が認められた
分画を回収することによつてなされてきた。 Purification of rheumatism-specific proteins has conventionally been carried out by the following method. First, ammonium sulfate or the like is added to the sample for salting out, and then ion exchange chromatography is performed using an ion exchange gel such as DEAE-Sephadex (Pharmacia, Sweden).
-300 (Pharmacia, Sweden), etc., followed by ion exchange chromatography again, and by collecting fractions in which rheumatism-specific proteins were detected by two-dimensional electrophoresis. It has been done.
(発明が解決しようとする問題点)
しかしながら、上記方法では、実際には各ステ
ツプ毎に透析および濃縮操作が必要であるため非
常に繁雑で、かつ全ステツプを行なうには長時間
(本発明者らの経験によればおよそ2週間)を要
する。さらに、最終的に得られたリウマチ特異蛋
白質の純度は50〜60%程度と低く、リウマチ特異
蛋白質の精製法として工業的に行なえる方法とは
言えない。(Problems to be Solved by the Invention) However, the above method actually requires dialysis and concentration operations for each step, making it very complicated and requiring a long time to perform all the steps (the present inventor According to their experience, it takes approximately 2 weeks). Furthermore, the purity of the rheumatoid arthritis-specific protein finally obtained is as low as about 50 to 60%, and this cannot be said to be an industrially viable method for purifying rheumatoid arthritis specific protein.
(問題点を解決するための手段)
リウマチ特異蛋白質は、本発明者らの研究によ
つてヒト免疫グロブリンG(IgG)と一部免疫学
的共通抗原性をもつIgGと類似した性質を示す蛋
白質であることが解明された。本発明者らは、こ
れらの研究結果をもとにさらに鋭意研究した結
果、上記方法より優れた高純度のリウマチ特異蛋
白質を簡便に、しかも短時間で得ることができる
工業的に有用な精製方法の確立に成功した。(Means for solving the problem) Rheumatoid-specific protein is a protein that exhibits similar properties to human immunoglobulin G (IgG) and IgG, which has some immunological common antigenicity, according to research by the present inventors. It was revealed that. As a result of further intensive research based on these research results, the present inventors have developed an industrially useful purification method that can easily and quickly obtain a rheumatoid-specific protein of high purity that is superior to the above methods. was successfully established.
すなわち、リウマチ特異蛋白質を含む原料(血
漿、血清等蛋白質の混液)について、電気泳動あ
るいはイオン交換クロマトグラフイーを行ない、
γグロブリン、特にIgGを除去する。γグロブリ
ンを除去した分画について、例えば抗ヒトIgG抗
体あるいはスタフイロコツカス由来の蛋白質であ
る、ヒトIgGとの結合性を有するプロテインAと
の反応性を有する分画を回収することによつて、
リウマチ特異蛋白質の精製を行なうものである。
より具体的に述べると、リウマチ患者血漿等の原
料を、ポリアクリルアミド等を支持体として電気
泳動し、β位に相当する分画を回収する。次に、
例えばリン酸緩衝液等の溶液で、回収した分画よ
り蛋白質成分を抽出する。あるいは、例えば
DEAE−セフアデツクスA−50(フアルマシア社、
スウエーデン)等のようなイオン交換ゲルによる
イオン交換クロマトグラフイーを行ない、例えば
塩化ナトリウム等の塩濃度0.3M以下の低塩濃度
で溶出される分画を除去した後、例えば塩化ナト
リウム等の塩濃度0.5Mで溶出される分画を回収
する。(本イオン交換クロマトグラフイーによる
精製ステツプは、γグロブリン、特にIgG分画の
除去を目的としている。リウマチ特異蛋白質とγ
グロブリン、特にIgGとはイオン交換クロマトグ
ラフイーでの挙動が異なるため、本ステツプの目
的のためには、種々のイオン交換ゲルを用いるこ
とが可能であるし、溶出方法も数多く選択でき
る。したがつて、本項記載のイオン交換ゲルの種
類や、イオン交換クロマトグラフイー条件に必ず
しも限定されない。)
一方、電気泳動あるいはイオン交換クロマトグ
ラフイーに先だつて、リウマチ患者血漿等を先に
塩析等によつて分画して、イオン交換クロマトグ
ラフイーに供する蛋白量を減らしておくことは、
通常の蛋白質の精製において用いられているとお
り有効である。すなわち、リウマチ患者血漿等に
硫酸アンモニウムを加えて、25〜35%飽和硫酸ア
ンモニウムで塩析される沈殿を回収する。 That is, electrophoresis or ion exchange chromatography is performed on raw materials (mixture of proteins such as plasma and serum) containing rheumatoid-specific proteins,
Removes gamma globulin, especially IgG. Regarding the fraction from which γ globulin has been removed, for example, by collecting a fraction that has reactivity with protein A, which is an anti-human IgG antibody or a protein derived from Staphylococcus, and which has binding properties with human IgG. ,
This is to purify rheumatism-specific proteins.
More specifically, a raw material such as rheumatism patient plasma is subjected to electrophoresis using polyacrylamide or the like as a support, and a fraction corresponding to the β position is collected. next,
For example, protein components are extracted from the collected fractions using a solution such as a phosphate buffer. Or for example
DEAE-Sephadex A-50 (Pharmacia,
After performing ion-exchange chromatography using an ion-exchange gel (e.g. (Sweden)) and removing fractions eluted at low salt concentrations such as sodium chloride (0.3M or less), Collect fractions eluting at 0.5M. (This purification step using ion-exchange chromatography is aimed at removing gamma globulin, especially the IgG fraction. Rheumatoid-specific protein and gamma globulin
Since globulin, especially IgG, behaves differently in ion exchange chromatography, various ion exchange gels can be used for the purpose of this step, and many elution methods can be selected. Therefore, the types of ion exchange gels and ion exchange chromatography conditions described in this section are not necessarily limited. ) On the other hand, prior to electrophoresis or ion-exchange chromatography, it is possible to first fractionate rheumatism patient plasma, etc. by salting out, etc. to reduce the amount of protein to be subjected to ion-exchange chromatography.
It is effective as used in conventional protein purification. That is, ammonium sulfate is added to rheumatism patient plasma, etc., and a precipitate salted out with 25 to 35% saturated ammonium sulfate is collected.
(本ステツプはイオン交換クロマトグラフイー
に供する蛋白量を減らすことが第一の目的である
から、塩析される飽和硫酸アンモニウム濃度は、
上記25〜35%に限定されない。例えば50%飽和硫
酸アンモニウムで塩析される沈澱を回収してもよ
い。さらに同様に、ここでは他に硫酸ナトリウム
ム等通常塩析に使用される塩を用いることができ
る。あるいは一般に行なわれているエチルアルコ
ールやアセトン等の有機溶媒等を用いた溶媒沈澱
法を用いることも可能である。)
次に、別に例えば抗ヒトIgG抗体、あるいはス
タフイロコツカス由来の蛋白質である、ヒトIgG
との結合性を有するプロテインAを、臭化シアン
等のリガンドによつてセフアロース4B(フアルマ
シア社、スウエーデン)等のようなゲルに結合さ
せる。そのゲル(抗ヒトIgG抗体、あるいはスタ
フイロコツカス由来のプロテインAを結合したセ
フアロース4B等のゲル:アフイニテイーゲル)
をつめたカラム(アフイニテイーカラム)に、先
のDEAE−セフアデツクスA−50等のような陰イ
オン交換ゲルによるイオン交換クロマトグラフイ
ーによつて粗精製したリウマチ特異蛋白質を通
す。アフイニテイーゲル非結合成分を除去した
後、グリシン緩衝液等によつてPHを変える方法、
あるいは尿素等を用いる穏やかな蛋白変性作用に
よる方法等、通常アフイニテークロマトグラフイ
ーにおいて用いられる、アフイニテイーゲルから
の蛋白質溶出に用いられる方法によつて、アフイ
ニテイーゲルからリウマチ特異蛋白質を分離し、
それを回収することによつてリウマチ特異蛋白質
を精製することができる。 (Since the primary purpose of this step is to reduce the amount of protein subjected to ion exchange chromatography, the saturated ammonium sulfate concentration to be salted out is
It is not limited to the above 25-35%. For example, a precipitate salted out with 50% saturated ammonium sulfate may be collected. Similarly, other salts commonly used in salting out, such as sodium sulfate, can also be used here. Alternatively, it is also possible to use a commonly used solvent precipitation method using an organic solvent such as ethyl alcohol or acetone. ) Next, for example, anti-human IgG antibody or human IgG, which is a protein derived from Staphylococcus
Protein A is bound to a gel such as Sepharose 4B (Pharmacia, Sweden) by a ligand such as cyanogen bromide. The gel (gel of Sepharose 4B etc. bound to anti-human IgG antibody or protein A derived from Staphylococcus: affinity gel)
A rheumatoid-specific protein crudely purified by ion-exchange chromatography using an anion-exchange gel such as DEAE-Sephadex A-50 is passed through a column (affinity column) packed with 300 ml of rheumatoid arthritis. A method of changing the pH using a glycine buffer, etc. after removing non-bound components of the affinity gel.
Alternatively, rheumatism-specific proteins are separated from the affinity gel by a method normally used in affinity chromatography to elute proteins from the affinity gel, such as a method using a mild protein denaturing effect using urea, etc.
By collecting it, the rheumatism-specific protein can be purified.
(発明の効果)
この時得たリウマチ特異蛋白質は、例えばポリ
アクリルアミドゲル等の電気泳動用支持体を用い
て電気泳動し、その後、コマシー・ブリリアン
ト・ブルー(Coomersie Brilliant Blue R−
250)等の蛋白染色剤によつて染色し、脱色した
支持体をデンシトメーター等によつて測定する
時、純度は90%以上である。さらに、本リウマチ
特異蛋白質は、2次元電気泳動する時、等電点
(pI:蛋白の泳動位置に相当するPHをその蛋白の
等電点とする)7.3〜7.8、移動度(アルブミン最
先端部の移動度を1.0として)0.30〜0.45の範囲の
単一のスポツトとして検出でき、SDSポリアクリ
ルアミド電気泳動法によつて測定するとき、分子
量150000〜170000を示す。また、本リウマチ特異
蛋白質を先に2−メルカプトエタノール等の還元
剤で還元した後に、SDSポリアクリルアミド電気
泳動法によつて分子量を測定する時、25000〜
30000および55000〜60000の2種の分子量を示す。(Effect of the invention) The rheumatism-specific protein obtained at this time is subjected to electrophoresis using an electrophoresis support such as polyacrylamide gel, and then subjected to Coomersie Brilliant Blue (Coomersie Brilliant Blue R-
When the support is stained with a protein stain such as 250) and decolorized, the purity is 90% or more when measured using a densitometer or the like. Furthermore, when this rheumatoid-specific protein is subjected to two-dimensional electrophoresis, it has an isoelectric point (pI: the protein's isoelectric point is the pH corresponding to the electrophoresis position of the protein) of 7.3 to 7.8, and a mobility (at the leading edge of albumin). It can be detected as a single spot in the range of 0.30 to 0.45 (assuming a mobility of 1.0) and exhibits a molecular weight of 150,000 to 170,000 when measured by SDS polyacrylamide electrophoresis. In addition, when this rheumatoid arthritis-specific protein is first reduced with a reducing agent such as 2-mercaptoethanol and then the molecular weight is measured by SDS polyacrylamide electrophoresis, the molecular weight is 25,000~
Two types of molecular weights are shown: 30,000 and 55,000-60,000.
(実施例)
実施例 1
リウマチ特異蛋白質を有する慢性関節リウマチ
患者における血漿交換によつて生じた排血漿1
に、硫酸アンモニウム144gを加えて25%飽和硫
酸アンモニウム溶液とした。25%飽和硫酸アンモ
ニウムによつて析出した沈澱を8000×g,20分の
遠心分離(冷却遠心機 SCR20BA、日立社)に
よつて除去した後、上清(ほぼ1回収)にさら
に硫酸アンモニウム61gを加えて、35%飽和硫酸
アンモニウム溶液とした。析出した沈澱を8000×
g,20分の遠心分離により回収した。回収した沈
澱に0.05M塩化ナトリウムを含む0.02Mリン酸緩
衝液(PH7.2)を加えて溶解し、セロフアン膜
(ビスキングカンパニー社製、米国)によつて、
0.05M塩化ナトリウムを含む0.02Mリン酸緩衝液
(PH7.2)で一晩透析して硫酸アンモニウムを除去
した(回収量:波長280nmにおける吸光度95.2、
液量90ml)。次に、あらかじめ0.05M塩化ナトリ
ウムを含む0.02Mリン酸緩衝液(PH7.2)で平衡
化したDEAE−セフアデツクスA−50(DEAE−
SephadexA−50 フアルマシア社製、スウエー
デン)を用いてイオン交換クロマトグラフイーを
行なつた。0.02Mリン酸緩衝液(PH7.2)におけ
る塩化ナトリウム濃度を、ステツプワイズに上げ
て、蛋白質を溶出させた。塩化ナトリウム濃度
0.3Mの0.02Mリン酸緩衝液(PH7.2)で溶出した
後、塩化ナトリウム濃度0.5Mの0.02Mリン酸緩
衝液(PH7.2)によつて溶出される分画を回収し
た(回収量:波長280nmにおける吸光度0.35、液
量100ml)。(Example) Example 1 Excreted plasma 1 generated by plasma exchange in a rheumatoid arthritis patient with rheumatoid arthritis-specific protein
144 g of ammonium sulfate was added to make a 25% saturated ammonium sulfate solution. After removing the precipitate precipitated with 25% saturated ammonium sulfate by centrifugation at 8000 x g for 20 minutes (refrigerated centrifuge SCR20BA, Hitachi), 61 g of ammonium sulfate was further added to the supernatant (approximately 1 recovery). , a 35% saturated ammonium sulfate solution. 8000×
g, collected by centrifugation for 20 minutes. The collected precipitate was dissolved by adding 0.02M phosphate buffer (PH7.2) containing 0.05M sodium chloride, and dissolved using a cellophane membrane (manufactured by Visking Company, USA).
Ammonium sulfate was removed by dialysis overnight against a 0.02M phosphate buffer (PH7.2) containing 0.05M sodium chloride (amount recovered: absorbance at a wavelength of 280 nm, 95.2;
Liquid volume: 90ml). Next, DEAE-Sephadex A-50 (DEAE-Sephadex A-50) equilibrated in advance with 0.02M phosphate buffer (PH7.2) containing 0.05M sodium chloride.
Ion exchange chromatography was performed using Sephadex A-50 (manufactured by Pharmacia, Sweden). The protein was eluted by increasing the sodium chloride concentration stepwise in 0.02M phosphate buffer (PH7.2). Sodium chloride concentration
After elution with 0.3M 0.02M phosphate buffer (PH7.2), fractions eluted with 0.02M phosphate buffer (PH7.2) with 0.5M sodium chloride concentration were collected (collected amount : Absorbance 0.35 at wavelength 280nm, liquid volume 100ml).
別に、臭化シアン活性化セフアロース4B
(CNBr−activated Sepharose4B、フアルマシ
ア社製、スウエーデン)2gに、抗ヒトIgG抗体
(ヤギ血清IgG分画、マイルス社製、米国、製造
元能書によれば蛋白量およそ9.6mg、内特異抗体
2.9mg)を反応させて、抗体結合ゲルを作成した。
この抗体結合ゲルをカラムにつめ、0.05M塩化ナ
トリウムを含む0.02Mリン酸緩衝液(PH7.2)で
洗浄した後、先にイオン交換クロマトグラフイー
によつて回収した分画を抗体結合ゲルに吸着させ
た。0.05M塩化ナトリウムを含む0.02Mリン酸緩
衝液(PH7.2)で抗体結合ゲルを十分に洗浄した
後、PH2.3のグリシン緩衝液(0.17M)で溶出し
た。溶出された蛋白質分画を回収し、それに直ち
に1/10量のPH11.5のグリシン緩衝液(1M)を加
えて中和した。この時得られたリウマチ特異蛋白
質はマイクロビウレツト法によつて蛋白量2.7mg
と測定できた。 Separately, cyanogen bromide activated Cephalose 4B
(CNBr-activated Sepharose 4B, manufactured by Pharmacia, Sweden), anti-human IgG antibody (goat serum IgG fraction, manufactured by Miles, USA, protein content approximately 9.6 mg, according to the manufacturer's insert, specific antibody)
2.9mg) was reacted to create an antibody-binding gel.
This antibody-binding gel was packed into a column, washed with 0.02M phosphate buffer (PH7.2) containing 0.05M sodium chloride, and then the fractions collected by ion-exchange chromatography were added to the antibody-binding gel. It was adsorbed. After thoroughly washing the antibody-bound gel with 0.02M phosphate buffer (PH7.2) containing 0.05M sodium chloride, it was eluted with glycine buffer (0.17M) at PH2.3. The eluted protein fraction was collected and immediately neutralized by adding 1/10 volume of glycine buffer (1M) of pH 11.5. The rheumatoid-specific protein obtained at this time was determined to have a protein content of 2.7 mg using the microbiuret method.
was able to be measured.
実施例 1
実施例1と同様の手技によつて、塩析、イオン
交換クロマトグラフイーを行ない、得られたリウ
マチ特異蛋白質分画を用いた。すなわち、慢性関
節リウマチ患者における血漿交換によつて生じ
た、リウマチ特異蛋白質を有する排血漿1につ
いて、25%飽和硫酸アンモニウムによつて析出し
た沈澱を除去した後、上清にさらに硫酸アンモニ
ウムを加えて、35%飽和硫酸アンモニウム溶液と
し、析出した沈澱を回収した。回収した沈澱を
0.05M塩化ナトリウムを含む0.02Mリン酸緩衝液
(PH7.2)で溶解し、透析して硫酸アンモニウムを
除去した(回収量:波長280nmにおける吸光度
93.6、液量85ml)。この蛋白液を、0.05M塩化ナ
トリウムを含む0.02Mリン酸緩衝液(PH7.2)で
平衡化したDEAE−セフアデツクスA−50
(DEAE−SephadexA−50 フアルマシア社製、
スウエーデン)カラムに流して、イオン交換クロ
マトグラフイーを行なつた。0.02Mリン酸緩衝液
(PH7.2)における塩化ナトリウム濃度を、ステツ
プワイズに上げて、蛋白質を溶出させ、塩化ナト
リウム濃度0.3M以下の0.02Mリン酸緩衝液(PH
7.2)で溶出される分画を除去し、塩化ナトリウ
ム濃度0.5Mの0.02Mリン酸緩衝液(PH7.2)によ
つて溶出される分画を回収した(回収量:波長
280nmにおける吸光度0.32、液量100ml)。Example 1 Salting out and ion exchange chromatography were performed using the same procedure as in Example 1, and the obtained rheumatism-specific protein fraction was used. Specifically, for excreted plasma 1 containing rheumatoid-specific proteins produced by plasma exchange in patients with rheumatoid arthritis, the precipitate precipitated was removed with 25% saturated ammonium sulfate, and ammonium sulfate was further added to the supernatant to give 35% % saturated ammonium sulfate solution, and the deposited precipitate was collected. The collected precipitate
It was dissolved in 0.02M phosphate buffer (PH7.2) containing 0.05M sodium chloride and dialyzed to remove ammonium sulfate (amount recovered: absorbance at a wavelength of 280 nm).
93.6, liquid volume 85ml). This protein solution was added to DEAE-Sephadex A-50 equilibrated with 0.02M phosphate buffer (PH7.2) containing 0.05M sodium chloride.
(DEAE-SephadexA-50 manufactured by Pharmacia,
Ion exchange chromatography was performed by passing the mixture through a Swedish column. The sodium chloride concentration in 0.02M phosphate buffer (PH7.2) was increased stepwise to elute the protein, and the protein was eluted in 0.02M phosphate buffer (PH7.2) with a sodium chloride concentration of 0.3M or less.
7.2) was removed, and the fraction eluted with 0.02M phosphate buffer (PH7.2) with a sodium chloride concentration of 0.5M was collected (recovered amount: wavelength
Absorbance at 280nm 0.32, liquid volume 100ml).
上記方法にて得られた分画を、次のようにして
精製した。プロテインAセフアロースCL−4B
(Protein A−Sepharose CL−4B、フアルマシ
ア社、スウエーデン)0.6gを膨潤させ(ゲルおよ
そ2mlに膨潤)てカラムにつめ、プロテインAカ
ラムとした。プロテインAカラムを0.1Mリン酸
緩衝液(PH8.0)で十分に洗浄した後、上記分画
をプロテインAカラムに流して、プロテインAに
吸着させた。プロテインAに吸着したリウマチ特
異蛋白質を0.1Mグリシン塩酸緩衝液(PH3.0)で
溶出させ、直ちに1/10量の0.2M炭酸水素ナトリ
ウム液を加えて中和した。この時得られたリウマ
チ特異蛋白質は、マイクロビウレツト法によつ
て、蛋白量2.1mgと測定できた。 The fraction obtained by the above method was purified as follows. Protein A Sepharose CL-4B
(Protein A-Sepharose CL-4B, Pharmacia, Sweden) 0.6 g was swollen (swelled to approximately 2 ml of gel) and packed into a column to prepare a protein A column. After thoroughly washing the Protein A column with 0.1M phosphate buffer (PH8.0), the above fraction was applied to the Protein A column and adsorbed to Protein A. The rheumatism-specific protein adsorbed to Protein A was eluted with 0.1M glycine-hydrochloride buffer (PH3.0), and immediately neutralized by adding 1/10 volume of 0.2M sodium bicarbonate solution. The rheumatoid arthritis-specific protein obtained at this time was determined to have a protein content of 2.1 mg using the microbiuret method.
実施例 3
慢性関節リウマチ患者における血漿交換によつ
て生じたリウマチ特異蛋白質を有する排血漿200
mlを、0.05M塩化ナトリウムを含む0.02Mリン酸
緩衝液(PH7.2)で平衡化したDEAE−セフアデ
ツクスA−50(DEAE−SephadexA−50フアルマ
シア社製、スウエーデン)カラムに流して、イオ
ン交換クロマトグラフイーを行なつた。塩化ナト
リウム濃度0.3M以下の0.02Mリン酸緩衝液(PH
7.2)で溶出される分画を除去し、塩化ナトリウ
ム濃度0.5Mの0.02Mリン酸緩衝液(PH7.2)によ
つて溶出される分画を回収した(回収量:波長
280nmにおける吸光度0.12、液量50ml)。Example 3 Excreted plasma 200 containing rheumatoid-specific proteins produced by plasmapheresis in patients with rheumatoid arthritis
ml was applied to a DEAE-Sephadex A-50 (DEAE-Sephadex A-50 Pharmacia, Sweden) column equilibrated with 0.02M phosphate buffer (PH7.2) containing 0.05M sodium chloride, and subjected to ion exchange chromatography. I did a graphie. 0.02M phosphate buffer (PH
7.2) was removed, and the fraction eluted with 0.02M phosphate buffer (PH7.2) with a sodium chloride concentration of 0.5M was collected (recovered amount: wavelength
Absorbance at 280nm 0.12, liquid volume 50ml).
上記方法にて得られたリウマチ特異蛋白質分画
を、次のようにして精製した。まず上記分画をセ
ロフアン膜(ビスキングカンパニー社、米国)を
用いて、0.1Mリン酸緩衝液(PH8.0)で十分に洗
浄した後、先に一晩透析した分画をプロテインA
カラムに流して、プロテインAに吸着させた。プ
ロテインAに吸着したリウマチ特異蛋白質を
0.1Mグリシン塩酸緩衝液(PH3.0)で溶出させ、
直ちに1/10量の0.2M炭酸水素ナトリウム液を加
えて中和した。この時得られたリウマチ特異蛋白
質は、マイクロビウレツト法によつて、蛋白量
0.22mg、電気泳動法で純度90%と測定できた。 The rheumatism-specific protein fraction obtained by the above method was purified as follows. First, the above fractions were thoroughly washed with 0.1M phosphate buffer (PH8.0) using a cellophane membrane (Visking Company, USA), and then the fractions, which had been dialyzed overnight overnight, were
It was applied to a column and adsorbed to protein A. Rheumatoid-specific protein adsorbed to protein A
Elute with 0.1M glycine-HCl buffer (PH3.0),
Immediately, 1/10 volume of 0.2M sodium hydrogen carbonate solution was added to neutralize. The rheumatoid-specific protein obtained at this time was determined by the microbiuret method.
0.22mg, purity determined to be 90% by electrophoresis.
実施例 4
実施例1および実施例2で得られたリウマチ特
異蛋白質をそれぞれ検体として、以下のように2
次元電気泳動を行なつた(実施例1で得られたリ
ウマチ特異蛋白質をリウマチ特異蛋白質1、実施
例2で得られたリウマチ特異蛋白質をリウマチ特
異蛋白質2とする)。Example 4 Using the rheumatoid arthritis-specific proteins obtained in Example 1 and Example 2 as specimens, the following two
Dimensional electrophoresis was performed (rheumatism-specific protein obtained in Example 1 is referred to as rheumatism-specific protein 1, and rheumatism-specific protein obtained in Example 2 is referred to as rheumatism-specific protein 2).
精製したリウマチ特異蛋白質60μl(リウマチ特
異蛋白質1の蛋白濃度0.40mg/ml、リウマチ特異
蛋白質2の蛋白濃度0.34mg/mlをそれぞれ、アン
フオライン〔Ampholine、フアルマシア社製、
6.25w/v%(PH3.5−10:PH3.5−5=4:1)〕
を含むポリアクリルアミドゲル上で、0.01Mリン
酸液と0.04N水酸化ナトリウム液を用いて、はじ
め一定電流(2mA)で泳動し、電圧が220Vに達
した後、220Vの一定電圧で20時間泳動した。次
に、これらの泳動ゲルを4%から17%の濃度勾配
をもつポリアクリルアミド・スラブゲル上に置い
て、一定電流(27mA)で20時間泳動した。泳動
液には、0.05Mトリス−0.384Mグリシン緩衝液
を用いた。2次元電気泳動した後、ゲルは、
0.025%コマシー・ブリリアント・ブルー
(Coomersie Brilliant Blue R−250)、50v/v
%メタノール、7v/v%酢酸液で8時間染色し、
7v/v%酢酸、10v/v%メタノール液で3日間
脱色して観察した。(リウマチ特異蛋白質1の泳
動像を第1図に示す。リウマチ特異蛋白質2の泳
動像も同様であつた。)
リウマチ特異蛋白質1およびリウマチ特異蛋白
質2の泳動像共、等電点(蛋白の泳動位置に相当
するPHをその蛋白の等電点とした)7.3〜7.8、移
動度(アルブミン最先端部の移動度を1.0として)
0.30〜0.45の範囲内に、単一のスポツトとして得
られ(第1図においては破線で囲んだ部分に見ら
れる)、このことよりリウマチ特異蛋白質である
ことを確認した。この時、いずれにおいても、2
次元電気泳動ゲル上には、上記範囲外に蛋白のス
ポツトは認められなかつた。なお、第2図に精製
前のリウマチ患者血漿の2次元電気泳動図を示し
たが、等電点7.3〜7.8、移動度0.30〜0.45の範囲
内にリウマチ特異蛋白質のスポツトがみられる
(破線で囲んだ部分)。 60 μl of purified rheumatoid-specific protein (protein concentration of rheumatoid-specific protein 1 0.40 mg/ml, protein concentration of rheumatoid-specific protein 2 0.34 mg/ml) was added to Ampholine [Ampholine, manufactured by Pharmacia,
6.25w/v% (PH3.5-10:PH3.5-5=4:1)]
On a polyacrylamide gel containing 0.01 M phosphoric acid solution and 0.04 N sodium hydroxide solution, electrophoresis was performed at a constant current (2 mA) at first, and after the voltage reached 220 V, electrophoresis was performed at a constant voltage of 220 V for 20 hours. did. These running gels were then placed on polyacrylamide slab gels with a concentration gradient of 4% to 17% and run at constant current (27 mA) for 20 hours. A 0.05M Tris-0.384M glycine buffer was used as the electrophoresis solution. After two-dimensional electrophoresis, the gel is
0.025% Coomersie Brilliant Blue R-250, 50v/v
% methanol, 7v/v% acetic acid solution for 8 hours,
It was decolorized for 3 days with a 7v/v% acetic acid solution and a 10v/v% methanol solution, and then observed. (The electrophoretic image of rheumatoid-specific protein 1 is shown in Figure 1. The electrophoretic image of rheumatoid-specific protein 2 is also similar.) Both the electrophoretic images of rheumatoid-specific protein 1 and rheumatoid-specific protein 2 show the isoelectric point The pH corresponding to the position is taken as the isoelectric point of the protein) 7.3 to 7.8, mobility (assuming the mobility of the leading edge of albumin is 1.0)
It was obtained as a single spot within the range of 0.30 to 0.45 (seen in the area surrounded by the broken line in Fig. 1), and from this it was confirmed that it was a rheumatoid-specific protein. At this time, in any case, 2
No protein spots outside the above range were observed on the dimensional electrophoresis gel. Figure 2 shows a two-dimensional electropherogram of rheumatoid patient plasma before purification, and spots of rheumatoid-specific proteins can be seen within the range of isoelectric point 7.3 to 7.8 and mobility 0.30 to 0.45 (dashed line indicates (enclosed part).
次に、リウマチ特異蛋白質1(0.40mg/ml)お
よびリウマチ特異蛋白質2(0.34mg/ml)10μlを、
それぞれ4〜17%の濃度勾配をもつポリアクリル
アミドスラブゲルによつて電気泳動した。次に、
泳動ゲルを0.025%コマシー・ブリリアントブル
ー(Coomersie Brilliant Blue R−250)、
50v/v%メタノール、7v/v%酢酸液で8時間
染色し、7v/v%酢酸、10v/v%メタノール液
で3日間脱色した。それぞれの泳動ゲルをデンシ
トメーター(DENSITRON 1M,常光社製、日
本)によつて測定した結果、リウマチ特異蛋白質
1の純度は92%、リウマチ特異蛋白質2の純度は
94%と測定できた。 Next, add 10 μl of rheumatoid-specific protein 1 (0.40 mg/ml) and rheumatoid-specific protein 2 (0.34 mg/ml),
Electrophoresis was performed through a polyacrylamide slab gel with a concentration gradient of 4-17%, respectively. next,
0.025% Coomersie Brilliant Blue (Coomersie Brilliant Blue R-250),
It was stained with a solution of 50v/v% methanol and 7v/v% acetic acid for 8 hours, and destained for 3 days with a solution of 7v/v% acetic acid and 10v/v% methanol. As a result of measuring each electrophoresis gel with a densitometer (DENSITRON 1M, Jokosha, Japan), the purity of rheumatoid-specific protein 1 was 92%, and the purity of rheumatoid-specific protein 2 was 92%.
I was able to measure it as 94%.
また、リウマチ特異蛋白質1では、SDSポリア
クリルアミドゲル電気泳動で分子量約160000、2
−メルカプトエタノールによつて還元した後に行
なつたSDSポリアクリルアミドゲル電気泳動で分
子量約28000および約60000の2サブユニツトと測
定でき、リウマチ特異蛋白質2では、SDSポリア
クリルアミドゲル電気泳動で分子量約155000、2
−メルカプトエタノールによつて還元した後に行
なつたSDSポリアクリルアミドゲル電気泳動で分
子量約25000および約55000の2サブユニツトと測
定できた。測定誤差を考えると、両リウマチ特異
蛋白質間の測定値には差がないといえる。 In addition, rheumatoid-specific protein 1 has a molecular weight of approximately 160,000 and 2
- Rheumatoid-specific protein 2 can be determined to have two subunits with molecular weights of approximately 28,000 and 60,000 by SDS polyacrylamide gel electrophoresis performed after reduction with mercaptoethanol, and rheumatoid-specific protein 2 has a molecular weight of approximately 155,000 and 2
SDS polyacrylamide gel electrophoresis after reduction with mercaptoethanol determined two subunits with molecular weights of about 25,000 and about 55,000. Considering measurement errors, it can be said that there is no difference in the measured values between the two rheumatoid arthritis-specific proteins.
第1図は実施例1で精製したリウマチ特異蛋白
質の2次元電気泳動図、第2図は精製前のリウマ
チ患者血漿の2次元電気泳動図である。
FIG. 1 is a two-dimensional electropherogram of the rheumatoid-specific protein purified in Example 1, and FIG. 2 is a two-dimensional electropherogram of rheumatoid patient plasma before purification.
Claims (1)
画とリウマチ特異蛋白質を含む分画とを分離する
工程と、抗ヒトIgG抗体あるいはスタフイロコツ
カス由来のヒトIgGとの結合性を有するプロテイ
ンAを用いたアフイニテイークロマトグラフイー
により吸着分画を回収する工程とを含むことを特
徴とする血漿からリウマチ特異蛋白質を分離精製
する方法。1 A step of separating an IgG fraction and a fraction containing rheumatoid-specific proteins by ion-exchange chromatography, and a step of separating an IgG fraction from a fraction containing rheumatoid arthritis-specific proteins, and an after-treatment step using protein A that has binding properties to anti-human IgG antibodies or human IgG derived from Staphylococcus. A method for separating and purifying rheumatoid arthritis-specific proteins from plasma, the method comprising the step of collecting an adsorbed fraction by initiating chromatography.
Priority Applications (6)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP59191753A JPS6170463A (en) | 1984-09-14 | 1984-09-14 | Refining method of protein specific to rheumatism |
| US06/776,022 US4742157A (en) | 1984-09-14 | 1985-09-13 | Substantially pure rheumatoid arthritis specific protein and an antibody against the same |
| EP85111630A EP0175310B1 (en) | 1984-09-14 | 1985-09-13 | A substantially pure rheumatoid arthritis specific protein and an antibody against the same |
| DE8585111630T DE3580882D1 (en) | 1984-09-14 | 1985-09-13 | A PROTEIN SPECIFICALLY PURE FOR RHEUMATOID ARTHRITIS AND AN ANTIBODY AGAINST IT. |
| US07/155,972 US4863850A (en) | 1984-09-14 | 1988-02-16 | Method for diagnosis of rheumatoid arthritis |
| US07/155,872 US4950741A (en) | 1984-09-14 | 1988-02-16 | Antibody against rheumatoid arthritis specific protein |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP59191753A JPS6170463A (en) | 1984-09-14 | 1984-09-14 | Refining method of protein specific to rheumatism |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS6170463A JPS6170463A (en) | 1986-04-11 |
| JPH0582399B2 true JPH0582399B2 (en) | 1993-11-18 |
Family
ID=16279928
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP59191753A Granted JPS6170463A (en) | 1984-09-14 | 1984-09-14 | Refining method of protein specific to rheumatism |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS6170463A (en) |
Family Cites Families (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| ES471585A1 (en) * | 1977-07-15 | 1979-01-16 | Behringwerke Ag | Carrier-bound immunoglobulin fission product and its use in immunologic analyses |
| DE3231204A1 (en) * | 1982-08-21 | 1984-03-01 | Boehringer Ingelheim Diagnostika GmbH, 8046 Garching | ANTIBODIES AGAINST BACTERIAL PEPTIDOGLYCANES, METHODS FOR THEIR PRODUCTION AND METHODS FOR THEIR QUANTITATIVE DETERMINATION |
| US4582793A (en) * | 1982-10-29 | 1986-04-15 | Research Corporation | Anti-RNA polymerase I antibody test for the diagnosis of rheumatological diseases |
-
1984
- 1984-09-14 JP JP59191753A patent/JPS6170463A/en active Granted
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS6170463A (en) | 1986-04-11 |
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