JPH062649B2 - Antifungal agent - Google Patents
Antifungal agentInfo
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- JPH062649B2 JPH062649B2 JP1059582A JP5958289A JPH062649B2 JP H062649 B2 JPH062649 B2 JP H062649B2 JP 1059582 A JP1059582 A JP 1059582A JP 5958289 A JP5958289 A JP 5958289A JP H062649 B2 JPH062649 B2 JP H062649B2
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- polygalactosamine
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Description
【発明の詳細な説明】 (産業上の利用分野) 本発明は糸状菌類特に、植物病原菌であるFusarium属
菌、Botrytis属菌等に対する抗黴剤に関するものであ
る。更に詳細には、本発明はα-1,4結合のポリガラクト
サミンを有効成分とする抗黴剤に関するものである。TECHNICAL FIELD The present invention relates to an antifungal agent against filamentous fungi, particularly plant pathogens such as Fusarium spp. And Botrytis spp. More specifically, the present invention relates to an antifungal agent containing an α-1,4-linked polygalactosamine as an active ingredient.
本発明の抗黴剤は、土壌又は植物体に添加または散布に
より植物病原菌の成育を阻止することが可能であり、例
えば植物病原菌であるFusarium属菌、Botrytis属菌成育
阻止剤として非常に有効に利用できる。The antifungal agent of the present invention is capable of inhibiting the growth of phytopathogenic fungi by addition or spraying to soil or plants, for example, Fusarium sp., Which is a phytopathogenic fungus, very effectively as a Botrytis sp. Available.
(従来技術及び問題点) 従来の抗黴剤はボルドー液に代表されるような銅製剤ま
たはうどんこ病などに使用されている含ヘテロ環化合
物、黒星病などに使用されているイミダゾール系剤など
から知られている。しかし、近年薬剤の急性毒性、慢性
毒性、発ガン性の他に遺伝毒性等にも感心が寄せられ、
より安全性の高い抗黴剤が要求されている。(Prior art and problems) Conventional antifungal agents include copper preparations represented by Bordeaux's solution, heterocyclic compounds used for powdery mildew, imidazole agents used for scab, etc. Are known. However, in recent years, in addition to acute toxicity, chronic toxicity, carcinogenicity, genotoxicity, etc.
A more safe antifungal agent is required.
これらのことを反映して、天然の物質であるペクチン分
解物、プロタミン、スパイス類それにエビやカニの殻の
成分であるキチン、キトサンまたはその軽度分解物等に
ついての研究が行われ一部実用化の検討が行われてい
る。Reflecting these facts, research has been conducted on natural pectin degradation products, protamine, spices and chitin, chitosan or its mild degradation products, which are components of shrimp and crab shells, and partially commercialized. Is being considered.
α-1,4ポリガラクトサミンも微生物の生産する天然の多
糖類で構造上グルコサミンを構成糖とするキトサンとは
類似しており、生理活性等の類似性も期待されている。α-1,4 polygalactosamine is also a natural polysaccharide produced by microorganisms and is structurally similar to chitosan having glucosamine as a constituent sugar, and is expected to have similar physiological activities.
しかしながら、ポリガラクトサミン(α-1,4ガラクトサ
ミノガラクタン)は自然界では非常に珍しく、不完全菌
由来のPF-101及びPF-102が知られている程度である(特
公昭56-1239号、特開昭62-294093号)。However, polygalactosamine (α-1,4 galactosaminogalactan) is extremely rare in the natural world, and PF-101 and PF-102 derived from imperfect bacteria are known (Japanese Patent Publication No. 56-1239). JP-A-62-294093).
また、一般に多糖類は低分子化することにより物理化学
的性質が変わり、高分子の状態より取扱いが容易になっ
たり、生理活性が顕著になったりする等のことが知られ
ている。本ポリガラクトサミンに於いても、低分子化す
る方法として酸やアルカリで処理する方法だけでなく酵
素分解による方法、即ちシュードモナス属菌の生産する
ポリガラクトサミン分解酵素についても既に明らかにさ
れている(特開昭63-164884号、特開昭63-164885号)。Further, it is generally known that the physicochemical properties of a polysaccharide change due to its low molecular weight, which makes it easier to handle than the state of a polymer, and has remarkable physiological activity. Also in this polygalactosamine, not only the method of treating it with an acid or an alkali as a method for lowering the molecular weight but also the method by enzymatic decomposition, that is, the polygalactosamine-degrading enzyme produced by Pseudomonas sp. (Kaisho 63-164884, JP 63-164885).
(問題点を解決するための手段) 本発明の目的は、より安全性の高い抗黴剤を提供するこ
とにある。(Means for Solving Problems) An object of the present invention is to provide a more safe antifungal agent.
本発明はα-1,4結合のガラクトサミンを有効成分とする
抗黴剤に関するものである。本発明に於ける抗黴剤の有
効成分であるα-1,4結合のガラクトサミンは、不完全菌
ペエシロマイセスI-1(微工研条寄第1180 FERM BP-118
0)を培養することにより、PF-101及びPF-102として得
ることが出来る。また、PF-101、PF-102をシュードモナ
スsp H881(微工研菌寄第8955)の生産するポリガラク
トサミン分解酵素で加水分解することにより、または、
酸加水分解することにより得た分解物を限外濾過膜で分
画することにより各々、分画分子量5万以上、1万以上
〜5万未満、1万未満のα-1,4結合のポリガラクトサミ
ンとして得ることが出来る。The present invention relates to an antifungal agent containing α-1,4-linked galactosamine as an active ingredient. The α-1,4-bonded galactosamine, which is an active ingredient of the antifungal agent in the present invention, is an imperfect bacterium, P. esculomyces I-1 (Microtechnology Research Institute, 1180 FERM BP-118.
It can be obtained as PF-101 and PF-102 by cultivating 0). In addition, by hydrolyzing PF-101 and PF-102 with a polygalactosamine-degrading enzyme produced by Pseudomonas sp H881 (Microtechnology Research Institute, No. 8955), or
By degrading the degradation products obtained by acid hydrolysis with an ultrafiltration membrane, respectively, a poly (α-1,4) -bonded polymer having a molecular weight cutoff of 50,000 or more, 10,000 or more and less than 50,000 and less than 10,000 is obtained. It can be obtained as galactosamine.
本発明の抗黴剤としては、PF-101、PF-102、これらの分
解物及び分画物などα-1,4結合のガラクトサミンはすべ
て、単独もしくは混合して使用できるものである。As the antifungal agent of the present invention, α-1,4-bonded galactosamine such as PF-101, PF-102, degradation products and fractions thereof can all be used alone or in combination.
次に、α-1,4ポリガラクトサミン、PF-101及びPF-102の
生産菌について説明する。Next, the bacteria producing α-1,4 polygalactosamine, PF-101 and PF-102 will be described.
和歌山県の腐植層より分離した不完全菌I-1菌はペエシ
ロマイセス属(Paecilomyces)に属するものと認められ、
ペエシロマイセスI-1と命名され、該菌株は微工研にFER
M BP-1180として寄託されている。The incomplete bacterium I-1 isolated from the humus layer in Wakayama Prefecture is recognized as belonging to the genus Paecilomyces,
The strain was named P. esculomyces I-1, and the strain was designated as FER
Deposited as M BP-1180.
次にペエシロマイセスI-1(Paecilomyces I-1)の菌学的
性質を示す。Next, the mycological properties of Paecilomyces I-1 are shown.
〔a〕顕微鏡下での観察 本菌は分生胞子柄(conidiophore)を欠き、分生胞子は栄
養菌糸または栄養菌糸束から直接生えている一本一本独
立したフィアライド(phialide)の先端に長い連鎖をなし
て派生している。フィアライドは半透明で20〜45μの長
さを持ち、基部はやや太く(1.0〜1.5μ)先端はやや先
細り(0.5〜1.0μ)で、直線的あるいは先端部がやや湾
曲したものもある。分生胞子は電子顕微鏡により葉巻タ
バコ型(あるいは桿菌型)であり、そのサイズは4〜6
×1.0〜1.4μである。[A] Observation under a microscope This fungus lacks a conidiophore, and conidia are long at the tip of each independent phialide that grows directly from vegetative hyphae or bundles of vegetative hyphae. Derived in a chain. Phialides are translucent and have a length of 20-45μ, a slightly thicker base (1.0-1.5μ), a slightly tapered tip (0.5-1.0μ), and some with straight or slightly curved tips. Conidia are of cigar-tobacco type (or bacillus type) by electron microscope, and their size is 4-6.
× 1.0 to 1.4μ.
分生胞子は普通25〜35個の連鎖をなしているが、まれに
はもっと長鎖のものも観察される。この分生胞子の連鎖
は非常にもろく、一寸したショックで簡単にくずれる。Conidia are usually 25-35 linked, but in some rare cases, longer chains are observed. The chain of conidia is very brittle and easily breaks down with a slight shock.
〔b〕各培地における生育状態(25℃平面培養) (1)ツアペック寒天培地 コロニーの生育は良く14日目で直径約45mmに達する。白
色のビロード状から羊毛状の菌叢で、中央部に房状に盛
上りがあり、コロニー周辺は円形である。水滴・シワ共
になし。コロニー裏面は培養初期白色、培養後期中央部
が淡黄色を呈する。寒天への色素産生は認められない。[B] Growth state in each medium (25 ° C. plane culture) (1) Tuapec agar medium The colonies grow well and reach a diameter of about 45 mm on the 14th day. White velvety to wooly flora with tufted ridges in the center and a round colony. No water drops or wrinkles. The back of the colony is white in the early stage of culture and pale yellow in the middle of the latter stage of culture. No pigment production in agar is observed.
(2)麦芽寒天培地 コロニーの生育は良く、14日目で直径約54mm、コロニー
周辺は円形にならず梅鉢状を呈する。(2) Malt agar medium The growth of colonies is good, and the diameter of the colonies is about 54 mm on the 14th day.
菌叢の中央部は白色だが、周辺部は淡黄色を呈する。菌
叢の厚さは中程度で、中央部はやや凹状である。水滴・
シワ共に認められず、コロニー裏面は全面淡黄色を呈
す。寒天培地に淡黄色色素の産生あり。The central part of the flora is white, but the peripheral part is pale yellow. The flora is moderately thick and the center is slightly concave. Water drop
No wrinkles were observed, and the entire back surface of the colony was pale yellow. Production of pale yellow pigment on agar medium.
(3)ポテトデキストロース寒天培地 コロニーの生育は非常に良く14日目に直径約60mmに達す
る。白色のビロード状乃至羊毛状の可成り厚い菌叢を形
成し、中央部はやや盛上り、亜中央部は淡い黄色を呈す
るやや薄い菌叢、その周辺部は白色の比較的厚い菌叢と
なる。表面にシワはないが数個のうすい褐色の水滴が認
められる。コロニー裏面に放射状の数本のシワがあり、
同心円状の黄色の濃淡が認められる。寒天への淡黄色色
素の拡散がある。(3) Potato dextrose agar medium The colonies grow very well and reach a diameter of about 60 mm on the 14th day. White velvety or wooly thick flora is formed, the central part is slightly swelling, the sub-central part is pale yellow with a slightly thin flora, and the peripheral part is a white relatively thick flora. . There are no wrinkles on the surface, but some light brown water droplets are observed. There are several radial wrinkles on the back of the colony,
Concentric yellow shades are observed. There is diffusion of a pale yellow pigment into the agar.
(4)YpSs寒天培地(組成スターチ1.5%、イースエキス
0.4%、K2HPO40.1%、MgSO40.05%、寒天2%) コロニーの生育は良好で14日目に直径約50mmに達する。
白色の全体にふっくらとした羊毛状の厚い菌叢である。
水滴・シワなし。コロニー裏面は特記すべき特徴なし。
色素産生なし。(4) YpSs agar medium (composition starch 1.5%, ace extract)
0.4%, K 2 HPO 4 0.1%, MgSO 4 0.05%, agar 2%) The colonies grow well and reach a diameter of about 50 mm on the 14th day.
It is a white, fluffy, thick, flora of flora.
No water drops or wrinkles. There are no special features on the back of the colony.
No pigment production.
(5)MY20寒天培地(組成グルコース20%、ポリペプトン
0.5%、イーストエキス0.3%、モルトエキス0.3%、寒
天2%) コロニーの生育はあまり良くなく14日目で直径約30mmで
ある。気菌糸はあまりたたず細かいシワが多く、周辺部
は淡黄色、中央部は淡褐色を呈する。コロニーの裏面は
淡黄色で、細かいシワがある。色素産生なし。(5) MY 20 agar medium (composition glucose 20%, polypeptone
0.5%, yeast extract 0.3%, malt extract 0.3%, agar 2%) The growth of colonies is not so good, and the diameter is about 30 mm on the 14th day. The aerial mycelium does not fold so much and there are many fine wrinkles. The peripheral part is pale yellow and the central part is pale brown. The back side of the colony is pale yellow with fine wrinkles. No pigment production.
ペエシロマイセスI-1は通常の糸状菌の液体培養方法で
培養することができる。Peesiromyces I-1 can be cultivated by an ordinary liquid culture method for filamentous fungi.
ペエシロマイセスI-1の胞子または菌糸を液体培地に接
種し、好気的に培養する。炭素源としてはブドウ糖、麦
芽糖、蔗糖、澱粉、廃糖蜜等を使用することが出来るが
好ましくはブドウ糖を用いるのが良い。窒素源としては
硫酸アンモニウム、硝酸ソーダなどの無機窒素、ペプト
ン、酵母エキスなどの有機窒素が使用出来る。The spores or hyphae of P. cerevisiae I-1 are inoculated into a liquid medium and aerobically cultured. As the carbon source, glucose, maltose, sucrose, starch, molasses and the like can be used, but glucose is preferably used. As the nitrogen source, inorganic nitrogen such as ammonium sulfate and sodium nitrate, and organic nitrogen such as peptone and yeast extract can be used.
培養温度は本凝集活性物質生産菌が凝集活性物質を生産
する範囲内で適宜変更し得るが通常は20〜25℃で培養す
ることが好ましい。培養時間は培養条件によって異なる
が、通常4〜5日程度であり、凝集活性物質が最高に達
する時間を見積って適当な時間に終了すればよい。ここ
で培養濾液を減圧濃縮、限外濾過等の方法で濃縮して濃
縮液としてエタノール等の有機溶媒を加えて沈澱すれ
ば、特公昭56-12639号公報に記載のPF-101が得られるの
である。The culturing temperature may be appropriately changed within a range in which the present flocculant-active substance-producing bacterium produces the flocculant-active substance, but it is usually preferable to culture at 20 to 25 ° C. The culturing time varies depending on the culturing conditions, but is usually about 4 to 5 days, and it may be completed at an appropriate time by estimating the time when the aggregation-active substance reaches the maximum. Here, if the culture filtrate is concentrated by a method such as vacuum concentration or ultrafiltration and an organic solvent such as ethanol is added as a concentrate to cause precipitation, PF-101 described in JP-B-56-12639 can be obtained. is there.
また、PF-101生産菌であるペエシロマイセスI-1を培養
し、濾過し、得られた培養濾液または濾液濃縮液に各種
塩を添加し、沈澱が生じない場合は必要によってはアル
カリを添加してpHを7〜9として、析出させ、析出物を
分離し、水洗し、これを希酸水溶液に溶解し、再び塩を
添加するか、アルカリ等の添加によってpHを7〜9とし
て、析出させて、特開昭62-294093号公報に記載のPF-10
2を得ることができる。In addition, PF-101-producing bacterium, Pseudomyces I-1, was cultivated, filtered, various salts were added to the obtained culture filtrate or filtrate concentrate, and if precipitation did not occur, alkali was added if necessary. Precipitation is carried out by adjusting the pH to 7 to 9, and the precipitate is separated, washed with water, dissolved in a dilute aqueous acid solution, and salt is added again or the pH is adjusted to 7 to 9 by adding an alkali or the like to precipitate. , PF-10 described in JP-A-62-294093
You can get 2.
PF-101の理化学的性質は次の通りである。The physicochemical properties of PF-101 are as follows.
(1)凝集活性;きわめて微量で懸濁微細物を凝集する。(1) Aggregation activity: Aggregates suspended fine particles with an extremely small amount.
(2)凝集活性pH範囲;pH2〜9で安定に凝集活性を示
す。(2) Aggregation activity pH range: Stable aggregation activity is exhibited at pH 2-9.
(3)凝集活性温度範囲;0〜100℃で凝集活性が認めら
れる。(3) Aggregation activity temperature range; aggregation activity is recognized at 0 to 100 ° C.
(4)凝集活性イオン強度;炭酸イオンおよびFe2(SO4)3
により凝集活性が阻害させるがそれ以外の各種イオン及
びイオン強度によって凝集活性に影響はなく、NaCl、K2S
O4で1Mまで全く影響を与えない。(4) Aggregation active ionic strength; carbonate ion and Fe 2 (SO 4 ) 3
Agglutination activity is inhibited by, but agglutination activity is not affected by other various ions and ionic strength, and NaCl, K 2 S
O 4 has no effect up to 1M.
(5)元素分析;窒素5.44%、炭素37.45%、水素6.3%、
リン0.27%。(5) Elemental analysis; nitrogen 5.44%, carbon 37.45%, hydrogen 6.3%,
Phosphorus 0.27%.
(6)紫外部吸収スペクトル;第1図に示すとおり。(6) Ultraviolet absorption spectrum; as shown in FIG.
(7)赤外部吸収スペクトル;第2図に示すとおり。(7) Infrared absorption spectrum; as shown in FIG.
(8)呈色反応; ニンヒドリン反応 − キサントプロテイン反応 − エーリッヒ反応 − モーリッシュ反応 + フェノール硫酸反応 + レローゼンテスト − (9)酸による加水分解;6N塩酸、110°、20時間分解に
よりガラクトサミンとアンモニアが得られ、4N塩酸、10
0℃、16時間分解により標品の74%のガラクトサミンの
少量のアンモニアが得られる。(8) Color reaction; Ninhydrin reaction-Xanthoprotein reaction-Erich reaction-Morish reaction + Phenol-sulfuric acid reaction + Relzen test- (9) Hydrolysis with acid; 6N hydrochloric acid, 110 ° C, and galactosamine by decomposition for 20 hours Ammonia is obtained, 4N hydrochloric acid, 10
Decomposition at 0 ° C for 16 hours gives a small amount of ammonia, which is 74% of the standard, galactosamine.
(10)電気泳動;密度勾配等電点電気泳動により単一物質
として確認され、等電点(pI)は8.5である。(10) Electrophoresis; confirmed as a single substance by density gradient isoelectric focusing, with an isoelectric point (pI) of 8.5.
(11)物質の色;淡黄白色 (12)塩基生、酸性、中性の区別;等電点8.5でやや塩基
性を呈す。(0.1%水溶液のpHは6.2、脱イオン水のpHは
5.8) (13)溶剤に対する溶解性; ・熱水に可溶、溶解後冷却しても析出しない。(11) Color of substance; pale yellowish white (12) Basic, acidic, neutral; slightly basic at isoelectric point 8.5. (The pH of 0.1% aqueous solution is 6.2, the pH of deionized water is
5.8) (13) Solubility in solvent; ・ Soluble in hot water, and does not precipitate even if dissolved and cooled.
・冷水に難溶。・ Slightly insoluble in cold water.
・希酸、希アルカリに難溶。-Slightly soluble in dilute acid and dilute alkali.
・アルコール類、アセトン、クロロホルム、ベンゼン、
酢酸エチル、n−ペンタンに不溶。・ Alcohols, acetone, chloroform, benzene,
Insoluble in ethyl acetate and n-pentane.
PF-102の理化学的性質は次の通りである。The physicochemical properties of PF-102 are as follows.
(1)凝集活性;きわめて微量で懸濁微細物を凝集する。(1) Aggregation activity: Aggregates suspended fine particles with an extremely small amount.
(2)凝集活性pH範囲;pH2〜9で安定に凝集活性を示
す。(2) Aggregation activity pH range: Stable aggregation activity is exhibited at pH 2-9.
(3)凝集活性温度範囲;0〜100℃で凝集活性が認めら
れる。(3) Aggregation activity temperature range; aggregation activity is recognized at 0 to 100 ° C.
(4)凝集活性イオン強度;炭酸およびFe2(SO4)3により
凝集活性が阻害されるがそれ以外の各種イオン及びイオ
ン強度によって凝集活性に影響はなく、NaCl、K2SO4で1M
まで全く影響を与えない。(4) Aggregation activity Ionic strength: Aggregation activity is inhibited by carbonic acid and Fe 2 (SO 4 ) 3, but the aggregation activity is not affected by various other ions and ionic strength, and 1M with NaCl and K 2 SO 4 .
Does not affect at all.
(5)元素分析;窒素8.64%&、炭素42.80%、水素6.87
% 一般式:(C6H11NO4・xH2O)n (6)紫外部吸収スペクトル;第3図に示すとおり。(5) Elemental analysis; nitrogen 8.64% &, carbon 42.80%, hydrogen 6.87
% General formula: (C 6 H 11 NO 4 · xH 2 O) n (6) Ultraviolet absorption spectrum; as shown in FIG. 3.
(7)赤外部吸収スペクトル;第4図に示すとおり。(7) Infrared absorption spectrum; as shown in FIG.
(8)呈色反応; ニンヒドリン反応 + キサントプロテイン反応 − エーリッヒ反応 − モーリッシュ反応 − フェノール硫酸法 ± レローゼンテスト − (9)電気泳動;密度勾配等電点電気泳動により単一物質
として確認され、等電点(pI)は8.5である。(8) Color reaction; Ninhydrin reaction + Xanthoprotein reaction-Erich reaction-Morish reaction-Phenol-sulfuric acid method ± Rerosen test- (9) Electrophoresis; Confirmed as a single substance by density gradient isoelectric focusing , The isoelectric point (pI) is 8.5.
(10)物質の色;淡黄色 (11)塩基性、酸性、中性の区別 0.5%w/vで水に懸濁した場合のpHは7.5(脱イオン水のp
H5.8)である。(10) Color of substance; pale yellow (11) Distinction of basic, acidic, and neutral pH when suspended in water at 0.5% w / v is 7.5 (p
H5.8).
(12)溶剤に対する溶解性 ・熱水に難溶 ・冷水に難溶 ・希酸に易溶 ・希アルカリに難溶 ・アルコール類、アセトン、クロロホルム、ベンゼン、
n−ペンタンに不溶。(12) Solubility in solvent ・ Insoluble in hot water ・ Insoluble in cold water ・ Easy in dilute acid ・ Insoluble in dilute alkali ・ Alcohols, acetone, chloroform, benzene,
Insoluble in n-pentane.
(13)平均分子量 16万以上 上記PF-101及びPF-102はいずれもα-1,4ポリガラクトサ
ミンであると同定され、そして本発明においていずれも
抗菌性が認められ、更にそれらの分解物及び分解物の分
画物にも抗菌性が認められ、本発明が完成されたのであ
る。(13) Average molecular weight 160,000 or more The above PF-101 and PF-102 were both identified as α-1,4 polygalactosamine, and antibacterial properties were observed in the present invention. The antibacterial property was also recognized in the fractionated products, and the present invention was completed.
α-1,4ポリガラクトサミンの分解、即ち低分子化に際し
ては、塩酸、硫酸等の酸による加水分解又はポリガラク
トサミン分解酵素による加水分解が行なわれる。When the α-1,4 polygalactosamine is decomposed, that is, when the molecular weight is reduced, hydrolysis with an acid such as hydrochloric acid or sulfuric acid or hydrolysis with a polygalactosamine-degrading enzyme is performed.
次に、ポリガラクトサミン分解酵素の1例を説明する。
このポリガラクトサミン分解酵素はシュードモナスsp H
881 FERM P-8955によって生産されるものである。Next, one example of the polygalactosamine degrading enzyme will be described.
This polygalactosamine degrading enzyme is Pseudomonas sp H
It is produced by the 881 FERM P-8955.
(1)作用及び基質特異性 本酵素は重合度n=4(テトラ−ガラクトサミン)以上
のオリゴ及びポリガラクトサミン(α-1,4ポリガラクト
サミン)に作用してオリゴガラクトサミンを生成する。(1) Action and Substrate Specificity The present enzyme acts on oligo and polygalactosamine (α-1,4 polygalactosamine) having a degree of polymerization of n = 4 (tetra-galactosamine) or more to produce oligogalactosamine.
その他の多糖類、澱粉(α-1,4グルカン)、グリコーゲ
ン(α-1,4グルカン)、プルラン(α-1,4グルカン)、
デキストラン(α-1,6グルカン)、ラミナラン(β-1,3
グルカン)、カルボキシルセルロース(β-1,4-グルカ
ン)、キトサン(β-1,4グルコサミノグルカン)、エチ
レングリコールキチン(β-1,4N-アセチルグルコサミノ
グルカン)、 Pseudomonas solanacearumのポリN-アセチルガラクトサ
ミノガラクタン(ポリβ-1,3N-アセチルガラクトサミノ
ガラクタン)(Y.Akiyama.,et.al.,Agric.Biol.Chem.,50
(3)747,1986)などには全く作用しない。Other polysaccharides, starch (α-1,4 glucan), glycogen (α-1,4 glucan), pullulan (α-1,4 glucan),
Dextran (α-1,6 glucan), Laminaran (β-1,3
Glucan), carboxyl cellulose (β-1,4-glucan), chitosan (β-1,4 glucosaminoglucan), ethylene glycol chitin (β-1,4N-acetylglucosaminoglucan), Pseudomonas solanacearum poly N -Acetylgalactosaminogalactan (poly β-1,3N-acetylgalactosaminogalactan) (Y. Akiyama., Et.al., Agric. Biol. Chem., 50
(3) 747, 1986) etc. does not work at all.
また、重合度n=3(トリ−ガラクトサミン)以下のα
-1,4ガラクトサミノオリゴ糖にも作用しない。Further, the degree of polymerization n = 3 (tri-galactosamine) or less α
It has no effect on -1,4-galactosamino oligosaccharides.
(2)至適pH及び安定pH範囲 クエン酸リン酸緩衝液を用いた場合、至適pHは4.5〜7.0
である。また、安定pH範囲はpH4.5〜8.0である。この測
定は37℃で1時間放置した酵素の残存活性を相対値で示
した。(2) Optimum pH and stable pH range When citrate phosphate buffer is used, the optimum pH is 4.5-7.0.
Is. The stable pH range is pH 4.5 to 8.0. In this measurement, the residual activity of the enzyme left at 37 ° C. for 1 hour was shown as a relative value.
(3)酵素活性の測定法 酸素活性は基質にPaecilomyces I-1菌の生産するPF-101
又はPF-102(その主構成糖はα-1,4ガラクトサミノガラ
クタン)を用いた。この0.5%/0.1モル酢酸緩衝液pH6.0
溶液0.5mlに酵素溶液0.5mlを加え、37℃、10分間反応さ
せ、生じる還元力をSomogyi-Nelson法で測定した。なお
酵素単位は1分間当りに1μモルのガラクトサミンに相
当する還元力を増加させる活性を1単位とした。(3) Method for measuring enzyme activity Oxygen activity is PF-101 produced by Paecilomyces I-1 as a substrate
Alternatively, PF-102 (the main constituent sugar thereof is α-1,4 galactosaminogalactan) was used. This 0.5% / 0.1 molar acetate buffer pH 6.0
An enzyme solution (0.5 ml) was added to the solution (0.5 ml), the mixture was reacted at 37 ° C. for 10 minutes, and the resulting reducing power was measured by the Somogyi-Nelson method. The enzyme unit was defined as 1 unit of activity for increasing the reducing power corresponding to 1 μmol of galactosamine per minute.
(4)作用適温及び温度安定性の範囲 この酵素の至適温度は55℃であり、それ以上で急激に低
下する。50℃、1時間で70%の活性が残存している。(4) Optimum temperature of action and temperature stability range The optimum temperature of this enzyme is 55 ° C, and it drops sharply above that temperature. 70% of the activity remains at 50 ° C for 1 hour.
α-1,4ポリガラクトサミンの溶液にポリガラクトサミン
分解酵素を添加して35〜40℃程度で酵素分解することに
よってα-1,4ポリガラクトサミンの分解物を得ることが
できる。A decomposed product of α-1,4 polygalactosamine can be obtained by adding a polygalactosamine degrading enzyme to a solution of α-1,4 polygalactosamine and enzymatically decomposing at about 35 to 40 ° C.
α-1,4ポリガラクトサミンの分解物には抗特黴が認めら
れるので、そのまま抗黴剤として使用することができる
が、α-1,4ポリガラクトサミンの分解物を限外濾過膜等
によって分画することによって各種の分子量単位に分か
れた分画物を得ることができる。Since the anti-mildew is found in the decomposed product of α-1,4 polygalactosamine, it can be used as it is as an antifungal agent, but the decomposed product of α-1,4 polygalactosamine is separated by an ultrafiltration membrane or the like. Fractionation into various molecular weight units can be obtained by drawing.
α-1,4ポリガラクトサミンの分解物は限外濾過膜によっ
て、分子量5万以上、分子量1万以上5万未満、分子量
1万未満とそれぞれの分画物を得ることができるが、い
ずれの分画物も抗菌性を有しており、本発明の抗黴剤と
なるものである。The decomposed product of α-1,4 polygalactosamine can be obtained by an ultrafiltration membrane as a fractionated product having a molecular weight of 50,000 or more, a molecular weight of 10,000 or more and less than 50,000, and a molecular weight of less than 10,000. The product also has antibacterial properties and serves as the antifungal agent of the present invention.
本発明は、α-1,4ポリガラクトサミン、その分解物又は
分解物の分画物を有効成分とする抗黴剤である。The present invention is an antifungal agent containing α-1,4 polygalactosamine, a degradation product thereof or a fractionated product thereof as an active ingredient.
本発明において、有効成分はそのまま添加料として、又
は各種液剤、粉剤に製剤化して抗黴剤として有効に使用
されるものである。In the present invention, the active ingredient is used as an additive as it is, or is formulated into various liquids and powders and used effectively as an antifungal agent.
次に本発明の製造例、実施例を示す。Next, production examples and examples of the present invention will be shown.
製造例1 α-1,4ポリガラクトサミン(PF-102)の製造 グルコース600g、ポリペプトン60g、CaCl2・2H2O125
gを水道水17に溶解し、濃NaON溶液でpH7.0に調整し
た後30容ジャーファーメンターに移した。Production Example 1 Production of α-1,4 polygalactosamine (PF-102) Glucose 600 g, polypeptone 60 g, CaCl 2 .2H 2 O125
g was dissolved in tap water 17, adjusted to pH 7.0 with concentrated NaON solution, and transferred to a 30-volume jar fermenter.
この培地溶液に蒸気を注入することにより加圧、加熱滅
菌(121℃、20分間)を行った。冷却後の培地(最終液
量20)に、500ml三角フラスコに150ml同組成の培地
(グルコース3%、ポリペプトン0.3%、CaCl20.5%、p
H7.0)で26℃、4日間振盪培養したペエシロマイセスI-
1、FERM BP-1180(FERM P-3928)を容量比で約10%無菌的
に接種した。接種後27℃、通気量0.5VVM、撹拌数200RPM
の条件で5日間培養した。By injecting steam into this medium solution, pressurization and heat sterilization (121 ° C., 20 minutes) were performed. To the cooled medium (final volume 20), 150 ml medium of the same composition in a 500 ml Erlenmeyer flask (glucose 3%, polypeptone 0.3%, CaCl 2 0.5%, p
(H7.0) cultured at 26 ° C for 4 days with shaking Pesylomyces I-
1. FERM BP-1180 (FERM P-3928) was inoculated aseptically at a volume ratio of about 10%. 27 ℃ after inoculation, aeration rate 0.5 VVM, agitation number 200 RPM
The cells were cultured under the conditions of 5 days.
培養終了後培養物を濾布濾過することにより培養濾液17
を得た。この培養濾液を50℃〜60℃に加熱しながら分
画分子量16万の限外濾過膜(三菱レイヨン・エンジニア
リング社製UF膜チューブラーモジュールFタイプ)を通
過させることにより、低分子画分を除き液量が約3に
なる迄濃縮した。更に、約14000×Gで遠心分離するこ
とにより菌体残渣、熱編成蛋白質を除去した。After the completion of the culture, the culture filtrate is filtered by filtering the culture with a filter cloth.
Got The low molecular weight fraction was removed by passing this culture filtrate through an ultrafiltration membrane (UF membrane tubular module F type manufactured by Mitsubishi Rayon Engineering Co., Ltd.) having a molecular weight cutoff of 160,000 while heating at 50 ° C to 60 ° C. It concentrated until the liquid volume became about 3. Further, the cell residue and the heat-organized protein were removed by centrifugation at about 14000 × G.
遠心分離後に上澄液画分3に食塩約750g(約25%濃
度)を加え撹拌し、溶解後、濃NaOHでpHを7.0〜8.5に調
整した。一夜放置し塩析物を十分析出させた後、サラン
製の布(塩化ビニリデンと塩化ビニール共重合体)上に
塩析物を回収した。更にこの塩析物の上から大量の微ア
ルカリ性の水(pH7.0以上)を撤布することにより余分
の食塩及び培養液に同時に混在している中性糖、その他
の夾雑物を洗い流した。After centrifugation, about 750 g (about 25% concentration) of sodium chloride was added to the supernatant fraction 3 and stirred. After dissolution, the pH was adjusted to 7.0 to 8.5 with concentrated NaOH. After allowing to stand overnight to sufficiently deposit the salted out product, the salted out product was recovered on a cloth made of Saran (vinylidene chloride and vinyl chloride copolymer). Further, a large amount of slightly alkaline water (pH 7.0 or more) was removed from the salted-out product to wash away excess salt and neutral sugars and other contaminants simultaneously mixed in the culture solution.
次に、水洗後の塩析物に0.1M塩酸溶液を容量比で約3倍
量加え溶解した。この溶解物に濃NaOH溶液を加えポリガ
ラクトサミンの等電点であるpH8.5に合せた。一夜放置
し十分析出物を析出させた後、上気と同様サラン製の布
上に析出物を回収し、大量の水道水で洗った。この水洗
物をもう1度0.1M塩酸に溶解後、等電点沈澱を行い水洗
を繰返すことにより精製した。Next, the salted out product after washing with water was dissolved by adding a 0.1 M hydrochloric acid solution in an amount of about 3 times by volume. A concentrated NaOH solution was added to this lysate to adjust the isoelectric point of polygalactosamine to pH 8.5. After allowing to stand overnight to sufficiently deposit a precipitate, the precipitate was collected on a Saran cloth as in the case of air and washed with a large amount of tap water. This washed product was again dissolved in 0.1M hydrochloric acid, and then subjected to isoelectric point precipitation and repeated washing with water for purification.
この精製した析出物を121℃、15分間滅菌後、凍結乾燥
することにより、ポリガラクトサミンを主成分とするPF
-102の精製粉末(α-1,4ポリガラクトサミンとしての純
度約99%)を7g得た。The purified precipitate was sterilized at 121 ° C for 15 minutes and then lyophilized to obtain PF containing polygalactosamine as a main component.
7 g of a purified powder of -102 (purity of α-1,4 polygalactosamine of about 99%) was obtained.
製造例2 α-1,4ポリガラクトサミンの分画方法 精製α-1,4ポリガラクトサミン(PF-102)100gを4規定
塩酸2に分散させ、冷却管付き三角フラスコ中にて、
80℃、4時間塩酸加水分解した。Production Example 2 Fractionation Method of α-1,4 Polygalactosamine 100 g of purified α-1,4 polygalactosamine (PF-102) was dispersed in 4N hydrochloric acid 2 and placed in an Erlenmeyer flask equipped with a cooling tube.
Hydrochloric acid was hydrolyzed at 80 ° C. for 4 hours.
分解後、この塩酸加水分解溶液を10規定水酸化ナトリウ
ムで中和しpH7とした。この、溶液を先ず分画分子量5
万の限外濾過膜で処理(グレースジャパン社製)し、更
に分画分子量1万の限外濾過膜で処理した。この様にし
て、各々分子量5万以上、1〜5万、1万未満のα-1,4
結合のポリガラクトサミンを得た。After decomposition, this hydrochloric acid hydrolyzed solution was neutralized with 10N sodium hydroxide to pH 7. First, this solution is cut to a molecular weight cutoff of 5
Treatment with an ultrafiltration membrane of 10,000 (manufactured by Grace Japan) and further treatment with an ultrafiltration membrane having a molecular weight cutoff of 10,000. In this way, α-1,4 having a molecular weight of 50,000 or more, 1 to 50,000 and less than 10,000, respectively.
Bound polygalactosamine was obtained.
各々の画分を凍結乾燥することにより、粉末試料とし
た。A powder sample was obtained by freeze-drying each fraction.
製造例3 ポリガラクトサミン分解酵素の製造 シュードモナスsp H881、FERM P-8955を500ml三角フラス
コ中で、グルコース0.5%、酵母エキス0.05%、ポリペ
プトン0.05%の組成を有する種培地100mlに植菌し、30
℃で20時間培養する。Production Example 3 Production of Polygalactosamine Degrading Enzyme Pseudomonas sp H881 and FERM P-8955 were inoculated in a 500 ml Erlenmeyer flask into 100 ml of a seed medium having a composition of 0.5% glucose, 0.05% yeast extract and 0.05% polypeptone, and 30
Incubate at ℃ for 20 hours.
得られた種培養液を30のジャーファーメンター中で、
ポリガラクトサミン(PF-102)0.25%、グルコース0.25
%、酵母エキス0.05%、ポリペプトン0.05%の酵素生産
培地18に植菌し、30℃で48時間通気(18/分)撹拌
(200rpm)培養する。The resulting seed culture in 30 jar fermenters,
Polygalactosamine (PF-102) 0.25%, glucose 0.25
%, Yeast extract 0.05%, polypeptone 0.05%, inoculated into the enzyme production medium 18, and aerated (18 / min) at 30 ° C for 48 hours.
Incubate (200 rpm).
得られた培養液を遠心分離(14000rpm)して、菌体を除
き、得られた培養濾液(酵素活性0.0035U/ml、総活性63
U/18)に冷却したエタノールを60%濃度まで加えて、
タンパク質を沈殿させ、この沈殿タンパク質を遠心し
て、溶液から分離する。得られたタンパク質を0.1モル
酢酸緩衝液(pH5.0)で平衡化したCM-セファデックスC-25
カラム(2.5×60cm)に吸着させ、0〜0.5モル食塩の濃度
勾配を有する同緩衝液を用いて溶出させる。The obtained culture solution was centrifuged (14000 rpm) to remove bacterial cells, and the obtained culture filtrate (enzyme activity 0.0035 U / ml, total activity 63
Add cooled ethanol to U / 18) to 60% concentration,
The protein is precipitated and the precipitated protein is centrifuged and separated from the solution. The obtained protein was equilibrated with 0.1 molar acetate buffer (pH 5.0), CM-Sephadex C-25.
Adsorb to a column (2.5 × 60 cm) and elute with the same buffer having a concentration gradient of 0 to 0.5 molar sodium chloride.
溶出した酵素活性区分を集め、限外濾過装置(分子量1
万保持)を使って濃縮する。次に、2モル食塩を含む0.
1モル酢酸緩衝液(pH6.0)溶液とし、同緩衝液で平衡化し
たセファデックスG-50カラム(5×90cm)クロマトグラフ
ィーにかける。次いで、活性区分の食塩濃度を4モルに
まで高め、同様な溶液で平衡化したフェニル−セファロ
ースCL-4Bカラム(2.5×20cm)に吸着させ、食塩の逆濃度
勾配を持つ0.1モル酢酸緩衝液で溶出して精製ポリガラ
クトサミン分解酵素50mg(収率23.1%、比活性52μg
galN/min/mg protein)を得た。Collect the eluted enzyme activity fractions and use an ultrafiltration device (molecular weight 1
10,000 hold) to concentrate. Next, 0.2 mol containing sodium chloride.
A 1 molar acetic acid buffer solution (pH 6.0) is prepared and subjected to Sephadex G-50 column (5 × 90 cm) chromatography equilibrated with the same buffer solution. Then, the salt concentration of the active section was increased to 4 mol, and the column was adsorbed on a phenyl-Sepharose CL-4B column (2.5 × 20 cm) equilibrated with the same solution, and the column was treated with 0.1 mol acetate buffer having a reverse salt concentration gradient. Eluted and purified polygalactosamine degrading enzyme 50 mg (yield 23.1%, specific activity 52 μg
galN / min / mg protein) was obtained.
製造例4 α-1,4ポリガラクトサミンの分画方法 精製ポリガラクトサミン25gを4.8の0.1モル酢酸に溶
解し、次に水酸化ナトリウムでpH6.0に調整し、全液料
を5とした。このポリガラクトサミン溶液を基質と
し、これに製造例3で得た精製ポリガラクトサミン分解
酵素10mgを加え37℃で酵素分解した。この分解後の溶液
を先ず、分画分子量5万の限外濾過膜で処理(グレース
ジャパン社製)し、更に分画分子量1万の限外濾過膜で
処理した。この様にして、各々分子量5万以上、1〜5
万、1万未満のα-1,4結合のポリガラクトサミンを得
た。Production Example 4 Fractionation method of α-1,4 polygalactosamine 25 g of purified polygalactosamine was dissolved in 0.1 mol acetic acid of 4.8, and then adjusted to pH 6.0 with sodium hydroxide to give a total solution of 5. Using this polygalactosamine solution as a substrate, 10 mg of the purified polygalactosamine-degrading enzyme obtained in Production Example 3 was added, and the enzyme was decomposed at 37 ° C. The solution after the decomposition was first treated with an ultrafiltration membrane having a molecular weight cutoff of 50,000 (manufactured by Grace Japan) and further treated with an ultrafiltration membrane having a molecular weight cutoff of 10,000. In this way, molecular weights of 50,000 or more and 1-5
Tens of thousands and less than 10,000 α-1,4 linked polygalactosamines were obtained.
更に、各々の画分を凍結乾燥することにより、粉末試料
とした。Further, each fraction was freeze-dried to obtain a powder sample.
ここに得られた分画分子量5万以上のα-1,4結合のポリ
ガラクトサミンの理化学的諸性質は次の通りである。The physicochemical properties of the α-1,4-bonded polygalactosamine having a molecular weight cut off of 50,000 or more are as follows.
1 元素分析;窒素8.6%、炭素42.8%、水素6.9%、酸
素41.7% 2 比旋光度;▲〔α〕20 D▼=+215〜225 3 融点;160℃以上で褐変、210℃で炭化、230℃で灰
化 4 物質の色;淡黄色 5 呈色反応; ニンヒドリン反応 + キサントプロテイン反応 − エーリッヒ反応 − モーリッシュ反応 − フェノール硫酸反応 ± 6 溶剤に対する溶解性; ・水に難溶 ・希酸に可溶 ・メタノール、エタノール、アセトン、クロロフォル
ム、ヘキサンに難溶 7 紫外部吸収スペクトル;第5図に示される。1 Elemental analysis; Nitrogen 8.6%, Carbon 42.8%, Hydrogen 6.9%, Oxygen 41.7% 2 Specific optical rotation; ▲ [α] 20 D ▼ = + 215-225 3 Melting point; Browning at 160 ℃ or higher, Carbonization at 210 ℃, 230 Ash at 4 ℃ Color of 4 substances; Light yellow 5 Color reaction; Ninhydrin reaction + Xanthoprotein reaction-Erich reaction-Morish reaction-Phenol sulfuric acid reaction ± 6 Solubility in solvent; -Slightly soluble in water-In dilute acid Soluble-Slightly soluble in methanol, ethanol, acetone, chloroform, and hexane 7. Ultraviolet absorption spectrum; shown in FIG.
8 赤外部吸収スペクトル;第6図に示される。8 Red external absorption spectrum; shown in FIG.
また、分画分子量1万以上5万未満のα-1,4結合のポリ
ガラクトサミンの理化学的諸性質は次の通りである。The physicochemical properties of α-1,4-bonded polygalactosamine having a molecular weight cutoff of 10,000 or more and less than 50,000 are as follows.
1 元素分析;窒素8.7%、炭素45.7%、水素3.2%、酸
素42.4% 2 比旋光度;▲〔α〕20 D▼=+210〜220 3 融点;特定の融点を持たず、160℃で褐変、210℃で
炭化、230℃で灰化 4 物質の色;淡黄色 5 呈色反応; ニンヒドリン反応 + キサントプロテイン反応 − エーリッヒ反応 − モーリッシュ反応 − フェノール硫酸法 ± 6 溶剤に対する溶解性; ・水に可溶 ・メタノールに微溶 ・ジメチルスルホオキシドに微溶 ・エタノール、アセトン、クロロホルム、ヘキサンに難
溶 7 紫外部吸収スペクトル;第7図に示される。1 Elemental analysis; Nitrogen 8.7%, Carbon 45.7%, Hydrogen 3.2%, Oxygen 42.4% 2 Specific optical rotation; ▲ [α] 20 D ▼ = + 210 to 220 3 Melting point; No specific melting point, browning at 160 ° C Carbonization at 210 ℃, Ashing at 230 ℃ Color of 4 substances; Light yellow 5 Color reaction; Ninhydrin reaction + Xanthoprotein reaction-Erich reaction-Morish reaction-Phenol-sulfuric acid method ± 6 Solubility in solvent; Soluble-Slightly soluble in methanol-Slightly soluble in dimethyl sulfoxide-Slightly soluble in ethanol, acetone, chloroform, hexane 7 Ultraviolet absorption spectrum; shown in FIG.
8 赤外部吸収スペクトル;第8図に示される。8 Red external absorption spectrum; shown in FIG.
また、分画分子量1万未満のα-1,4結合のポリガラクト
サミンの理化学的諸性質は次の通りである。The physicochemical properties of α-1,4-bonded polygalactosamine having a molecular weight cut-off of less than 10,000 are as follows.
1 元素分析;窒素8.6%、炭素44.7%、水素3.9%、酸
素40.2% 2 比旋光度;▲〔α〕20 D▼:+206.8 3 融点;特定の融点を持たず、160℃以上で炭化をは
じめる。1 Elemental analysis; Nitrogen 8.6%, Carbon 44.7%, Hydrogen 3.9%, Oxygen 40.2% 2 Specific optical rotation; ▲ [α] 20 D ▼: +206.8 3 Melting point; Carbon having no specific melting point and above 160 ° C To start.
4 物質の色;淡黄色 5 呈色反応; ニンヒドリン反応 + インドール塩酸反応 + ソモギー−ネルソン反応 + フェノール硫酸反応 − ヨード反応 − 6 溶剤に対する溶解性; ・水に可溶 ・希酸に可溶 ・メタノールに微溶 ・ジメチルスルフォオキシドに微溶 ・エタノール、アセトン、クロロフォルムには難溶 7 紫外部吸収スペクトル;第9図に示される。4 Color of substance; pale yellow 5 Color reaction; Ninhydrin reaction + Indole hydrochloric acid reaction + Somogy-Nelson reaction + Phenol sulfuric acid reaction-Iodine reaction-6 Solubility in solvent; -Soluble in water-Soluble in dilute acid-Methanol・ Slightly soluble in dimethyl sulfoxide ・ Slightly soluble in ethanol, acetone, and chloroform 7 UV absorption spectrum; shown in FIG.
8 赤外部吸収スペクトル;第10図に示される。8 Red external absorption spectrum; shown in FIG.
実施例1 製造例1で製造したα-1,4ポリガラクトサミン(PF-10
2)、製造例2で製造したα-1,4ポリガラクトサミンの塩
酸分解物及び製造例2で調整した塩酸分解物の分画物で
各々の分子量のものについて、各α-1,4ポリガラクトサ
ミンをポトデキストロース培地(ポテトデキストロース
寒天培地:栄研化学株式会社)30gを1000mlの精製水に
加温溶解後、各々0.1%になるように添加し121℃、15
分オートクレーブした後、寒天平板培地を作成した。Example 1 α-1,4 polygalactosamine (PF-10) produced in Production Example 1
2), a hydrochloric acid decomposition product of α-1,4 polygalactosamine produced in Production Example 2 and a fractionated product of the hydrochloric acid decomposition product prepared in Production Example 2 each having a molecular weight of α-1,4 polygalactosamine 30 g of potato dextrose medium (potato dextrose agar medium: Eiken Kagaku Co., Ltd.) was dissolved in 1000 ml of purified water by heating, and then added so as to be 0.1% at 121 ° C. and 15 ° C., respectively.
After a minute autoclave, an agar plate medium was prepared.
この各分子量のポリガラクトサミンを含有する平板培地
上に、予め前培養した黴のスラントより1白金耳接種
し、27℃、4日間培養後、コロニーの直径を測定した。
そして抗菌活性はポリガラクトサミン無添加の培地に接
種した黴のコロニーの直径を100とした時の各試験区の
コロニーの比で示した。On the plate medium containing polygalactosamine of each molecular weight, 1 platinum loop was inoculated from a pre-cultured mold slant and cultured at 27 ° C. for 4 days, and then the diameter of the colony was measured.
The antibacterial activity was shown by the ratio of colonies in each test group when the diameter of the mold colonies inoculated on the medium without polygalactosamine was 100.
供試した黴は、 Aiternaria kikuchiana IFO 8414, Botrytis cinerea, Cochibolus miyabeanus IFO 5277, Diaporthe citri IFO 9170, Elsinoe fawcetti IFO 8417, Fusarium oxysporum capae, Fusarium solni, Gibberella zeae IFO 7160, Guignardia larisina IFO 7888, Helminthosporium sigmoidium var.irregulare IFO 527
3, Pestalotia funerea, Piricularia oryzae IFO 5279, Sclerotinia scleotiorum IFO 9395, Venturia prina IFO 6189である。The molds tested were Aiternaria kikuchiana IFO 8414, Botrytis cinerea, Cochibolus miyabeanus IFO 5277, Diaporthe citri IFO 9170, Elsinoe fawcetti IFO 8417, Fusarium oxysporum capae, Fusarium solni, Gibberella zeae IFO 7888, Iria 7ris, Guiaberia irregulare IFO 527
3, Pestalotia funerea, Piricularia oryzae IFO 5279, Sclerotinia scleotiorum IFO 9395, Venturia prina IFO 6189.
結果は、第1表に示した通りである。The results are as shown in Table 1.
実施例2 製造例2で得た分画分子量1万未満を更に、分別してガ
ラクトサミノオリゴー6糖を得た。ガラクトサミノオリ
ゴー6糖の性質は次の通りである。 Example 2 The fractionated molecular weight of less than 10,000 obtained in Production Example 2 was further fractionated to obtain a galactosamino oligo-6 sugar. The properties of galactosamino oligo-6 sugar are as follows.
1) α1→4結合のみで構成されるガラクトサミンの
6糖 GalN1→4GalN1→4GalN1→4GalN1→4GalN1→4GalN(但
し、GalNはα-D-ガラクトピラノシル基を示す。) 2) 色と形状:淡黄色不定形の粉末。1) Hexasaccharide of galactosamine consisting only of α1 → 4 bonds GalN 1 → 4 GalN 1 → 4 GalN 1 → 4 GalN 1 → 4 GalN 1 → 4 GalN (where GalN is α-D-galactopyranosyl group 2) Color and shape: pale yellow amorphous powder.
3) 味:弱い甘味を有する。3) Taste: It has a weak sweetness.
4) 溶解性:薄い酸、塩溶液、水に可溶。ジメチルス
ルホキシドを除く一般的な有機溶媒に難溶。4) Solubility: Soluble in dilute acid, salt solution and water. Insoluble in common organic solvents except dimethyl sulfoxide.
5) 下記の元素分析値を示す。5) The following elemental analysis values are shown.
C:43.90、H:6.91、N:8.54、O:40.65 予想される分子式:C36H68O25N6 6) 分子量と構造式は下記の通り。C: 43.90, H: 6.91, N: 8.54, O: 40.65 Expected molecular formula: C 36 H 68 O 25 N 6 6) The molecular weight and structural formula are as follows.
分子量:984.6 7) 呈色反応:インドール塩酸反応、エルソン−モル
ガン反応、ソモギ−ネルソン反応にそれぞれ陽性。Molecular weight: 984.6 7) Color reaction: Positive for indole hydrochloric acid reaction, Elson-Morgan reaction and Somogi-Nelson reaction.
(8) 旋光度 ▲〔α〕20 D▼:+190.2 9) 融点:160℃以上で炭化。(8) Optical rotation ▲ [α] 20 D ▼: +190.2 9) Melting point: Carbonization at 160 ° C or higher.
10) 第11図に紫外部吸収スペクトルを示す。10) Fig. 11 shows the ultraviolet absorption spectrum.
11) 第12図に赤外部吸収スペクトルを示す。11) Fig. 12 shows the infrared absorption spectrum.
得られたガラクトサミノオリゴー6糖を実施例1と同様
ポテトデキストロース寒天培地に0.1%になるように含
有させた。The obtained galactosaminooligo-6 sugar was added to the potato dextrose agar medium in the same manner as in Example 1 so that the content was 0.1%.
実施例1と同様の黴を接種し、無添加の区分を対照100
として、各菌株の抗黴活性を表に示した。The same mold as in Example 1 was inoculated, and the no-addition category was used as control 100.
As a result, the antifungal activity of each strain is shown in the table.
第1図はPF-101の紫外部吸収スペクトルを示す図で、第
2図はPF-101の赤外部吸収スペクトルを示す図で、第3
図はPF-102の紫外部吸収スペクトルを示す図で、第4図
はPF-102の赤外部吸収スペクトルを示す図で、第5図は
PF-102の分解物の分子量5万以上の分画物の紫外部吸収
スペクトルを、第6図はその赤外部吸収スペクトルを示
す図で、第7図はPF-102の分解物の分子量1万以上5万
未満の分画物の紫外部吸収スペクトルを、第8図はその
赤外部吸収スペクトルを示す図で、第9図はPF-102の分
解物の分子量1万未満の分画物の紫外部吸収スペクトル
を、第10図はその赤外部吸収スペクトルを示す図で、第
11図はガラクトサミノオリゴー6糖の紫外部吸収スペク
トルを、第12図はその赤外部吸収スペクトルを示す図で
ある。FIG. 1 is a diagram showing an ultraviolet absorption spectrum of PF-101, FIG. 2 is a diagram showing an infrared absorption spectrum of PF-101, and FIG.
Figure shows the UV absorption spectrum of PF-102, Figure 4 shows the infrared absorption spectrum of PF-102, and Figure 5 shows
Fig. 6 shows the UV absorption spectrum of the fraction of PF-102 degradation product with a molecular weight of 50,000 or more. Fig. 6 shows the infrared absorption spectrum. Fig. 7 shows the molecular weight of PF-102 degradation product of 10,000. Fig. 8 shows the UV absorption spectrum of the fractions above 50,000, and Fig. 8 shows the infrared absorption spectrum of the fractions. Fig. 9 shows the violet spectrum of the fractions of PF-102 decomposition products with a molecular weight of less than 10,000. Figure 10 shows the infrared absorption spectrum of the external absorption spectrum.
FIG. 11 is an ultraviolet absorption spectrum of galactosamino oligo-6 sugar, and FIG. 12 is an infrared absorption spectrum thereof.
Claims (4)
は分解物の分画物を有効成分とする抗黴剤。1. An antifungal agent comprising, as an active ingredient, α-1,4 polygalactosamine, a degradation product thereof, or a fractionated product thereof.
物が分子量5万以上のα-1,4ポリガラクトサミンである
ことを特徴とする第1項記載の抗黴剤。2. The antifungal agent according to claim 1, wherein the fraction of the decomposed product of α-1,4 polygalactosamine is α-1,4 polygalactosamine having a molecular weight of 50,000 or more.
物が分子量1万以上5万未満のα-1,4ポリガラクトサミ
ンであることを特徴とする第1項記載の抗黴剤。3. The antifungal agent according to claim 1, wherein the fraction of the decomposed product of α-1,4 polygalactosamine is α-1,4 polygalactosamine having a molecular weight of 10,000 or more and less than 50,000. .
物が分子量1万未満のα-1,4ポリガラクトサミンである
ことを特徴とする第1項記載の抗黴剤。4. The antifungal agent according to claim 1, wherein the fraction of the decomposed product of α-1,4 polygalactosamine is α-1,4 polygalactosamine having a molecular weight of less than 10,000.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP1059582A JPH062649B2 (en) | 1989-03-14 | 1989-03-14 | Antifungal agent |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP1059582A JPH062649B2 (en) | 1989-03-14 | 1989-03-14 | Antifungal agent |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH02240007A JPH02240007A (en) | 1990-09-25 |
| JPH062649B2 true JPH062649B2 (en) | 1994-01-12 |
Family
ID=13117364
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP1059582A Expired - Lifetime JPH062649B2 (en) | 1989-03-14 | 1989-03-14 | Antifungal agent |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH062649B2 (en) |
Families Citing this family (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH0725646B2 (en) * | 1989-08-01 | 1995-03-22 | ヒゲタ醤油株式会社 | Anti-yeast agent |
| AU7414394A (en) * | 1993-09-22 | 1995-04-06 | State Of Israel - Ministry Of Agriculture | Fungicides and method for using same |
-
1989
- 1989-03-14 JP JP1059582A patent/JPH062649B2/en not_active Expired - Lifetime
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH02240007A (en) | 1990-09-25 |
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