JPH0710882B2 - ヘテロ多糖類１０５―４ - Google Patents
ヘテロ多糖類１０５―４Info
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- JPH0710882B2 JPH0710882B2 JP2197598A JP19759890A JPH0710882B2 JP H0710882 B2 JPH0710882 B2 JP H0710882B2 JP 2197598 A JP2197598 A JP 2197598A JP 19759890 A JP19759890 A JP 19759890A JP H0710882 B2 JPH0710882 B2 JP H0710882B2
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- C08—ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
- C08B—POLYSACCHARIDES; DERIVATIVES THEREOF
- C08B37/00—Preparation of polysaccharides not provided for in groups C08B1/00 - C08B35/00; Derivatives thereof
- C08B37/006—Heteroglycans, i.e. polysaccharides having more than one sugar residue in the main chain in either alternating or less regular sequence; Gellans; Succinoglycans; Arabinogalactans; Tragacanth or gum tragacanth or traganth from Astragalus; Gum Karaya from Sterculia urens; Gum Ghatti from Anogeissus latifolia; Derivatives thereof
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N1/00—Microorganisms; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
- C12N1/20—Bacteria; Culture media therefor
- C12N1/205—Bacterial isolates
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P19/00—Preparation of compounds containing saccharide radicals
- C12P19/04—Polysaccharides, i.e. compounds containing more than five saccharide radicals attached to each other by glycosidic bonds
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- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12R—INDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
- C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
- C12R2001/01—Bacteria or Actinomycetales ; using bacteria or Actinomycetales
- C12R2001/38—Pseudomonas
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Description
【発明の詳細な説明】 本発明は、微生物由来の多糖類の分野に関する。特に、
当該多糖類は、重合される反復単位を形成する単糖類が
２種以上含まれる、高分子量の一般に直鎖又は分枝鎖炭
水化物である外細胞性ヘテロ多糖類の形態で生じる。こ
れらのヘテロ多糖類は、農業並びに食品、鑿井、塗料等
を含む種々の工業的用途に広範に用いられ、その商業的
需要は増大し続けている。
当該多糖類は、重合される反復単位を形成する単糖類が
２種以上含まれる、高分子量の一般に直鎖又は分枝鎖炭
水化物である外細胞性ヘテロ多糖類の形態で生じる。こ
れらのヘテロ多糖類は、農業並びに食品、鑿井、塗料等
を含む種々の工業的用途に広範に用いられ、その商業的
需要は増大し続けている。
最も広く用いられるヘテロ多糖類の１つはキサンタン又
はキサンタンガムであって、これはキサントモナスXant
homonas属、特にXanthomonas campestrisの細菌による
発酵物中に生成される。このキサンタンヘテロ多糖類
は、グルコース、マンノース及びグルクロン酸を含有す
る。キサンタンガムには種々の工業的用途が知られてお
り、これについては米国特許第3,326,305号及び第4,24
4,826号を参照されたい。
はキサンタンガムであって、これはキサントモナスXant
homonas属、特にXanthomonas campestrisの細菌による
発酵物中に生成される。このキサンタンヘテロ多糖類
は、グルコース、マンノース及びグルクロン酸を含有す
る。キサンタンガムには種々の工業的用途が知られてお
り、これについては米国特許第3,326,305号及び第4,24
4,826号を参照されたい。
いま１つの広く用いられるヘテロ多糖類はスクシノグリ
カンであって、これはAlcaligenes属、Agrobacterium属
及びPseudomonas属の細菌によって生成される外細胞性
ヘテロ多糖類の１種である。これらスクシノグリカン
は、ガラストース、グルコース及び種々の割合いのピル
ビン酸塩、コハン酸塩及び酢酸塩のような酸残基を含有
する。これらスクシノグリカンに関する工業的用途も公
知であって、欧州特許出願第040445号並びに米国特許第
4,339,239号、第4,347,289号及び第4,298,795号を参照
されたい。
カンであって、これはAlcaligenes属、Agrobacterium属
及びPseudomonas属の細菌によって生成される外細胞性
ヘテロ多糖類の１種である。これらスクシノグリカン
は、ガラストース、グルコース及び種々の割合いのピル
ビン酸塩、コハン酸塩及び酢酸塩のような酸残基を含有
する。これらスクシノグリカンに関する工業的用途も公
知であって、欧州特許出願第040445号並びに米国特許第
4,339,239号、第4,347,289号及び第4,298,795号を参照
されたい。
第１図、は105-4を含む種々の溶液で剪断率と粘度の関
係を示す。
係を示す。
本発明は105-4と呼ばれるヘテロ多糖類を包含するが、
上記多糖類はマンノース、ガラクトース及びグルコース
を約1.3:1:3.6のモル比で含有し、さらに上記多糖類
は、多糖類重量基準で約10〜約25重量％のウロン酸及び
約10〜約15重量％の酢酸基をも含有する。
上記多糖類はマンノース、ガラクトース及びグルコース
を約1.3:1:3.6のモル比で含有し、さらに上記多糖類
は、多糖類重量基準で約10〜約25重量％のウロン酸及び
約10〜約15重量％の酢酸基をも含有する。
別の実施態様として、本発明はPseudomonas種ATCC 5392
3によって生成される、105-4と呼ばれるヘテロ多糖類を
包含する； この多糖類は、マンノース、ガラクトース及びグルコー
スを約1.3:1:3.6のモル比で含有し、さらに上記多糖類
は、多糖類重量基準で約10〜約25重量％のウロン酸及び
約10〜約15重量％の酢酸基をも含有する。
3によって生成される、105-4と呼ばれるヘテロ多糖類を
包含する； この多糖類は、マンノース、ガラクトース及びグルコー
スを約1.3:1:3.6のモル比で含有し、さらに上記多糖類
は、多糖類重量基準で約10〜約25重量％のウロン酸及び
約10〜約15重量％の酢酸基をも含有する。
本発明はさらに、ヘテロ多糖類がマンノース、ガラクト
ース及びグルコースを約1.3:1:3.6のモル比で含有し、
さらに上記多糖類が多糖類重量基準で約10〜約25重量％
のウロン酸及び約10〜約15重量％の酢酸基をも含有する
ヘテロ多糖類の製造方法を包含し、且つ資化可能な炭素
供給源の好気性発酵によって水性栄養培地中でPseudomo
nas種ATCC 53923培養させることを包含する。無機燐酸
イオンを約0.01〜約1g/の燐酸塩の範囲で含有する水
性培養液が好ましい。
ース及びグルコースを約1.3:1:3.6のモル比で含有し、
さらに上記多糖類が多糖類重量基準で約10〜約25重量％
のウロン酸及び約10〜約15重量％の酢酸基をも含有する
ヘテロ多糖類の製造方法を包含し、且つ資化可能な炭素
供給源の好気性発酵によって水性栄養培地中でPseudomo
nas種ATCC 53923培養させることを包含する。無機燐酸
イオンを約0.01〜約1g/の燐酸塩の範囲で含有する水
性培養液が好ましい。
ヘテロ多糖類105-4の好ましい用途は、少なくとも１つ
の水性液相を含有する媒体の増粘剤又は安定剤である。
の水性液相を含有する媒体の増粘剤又は安定剤である。
ヘテロ多糖類105-4を生成するPseudomonas種は、ベネズ
ェラのGuigue（Carabobo）で採集された土壌標本から単
離した。
ェラのGuigue（Carabobo）で採集された土壌標本から単
離した。
Pseudomonas ATCC 53923によって生成されるヘテロ多糖
類は、主として10〜15重量％置換アセチル基を有する炭
水化物から成る。炭水化物部分は、約10〜約25重量％の
ウロン酸（グルクロン酸として計算）並びに約1.3:1:3.
6のモル比のマンノース、ガラクトース及びグルコース
から成る。
類は、主として10〜15重量％置換アセチル基を有する炭
水化物から成る。炭水化物部分は、約10〜約25重量％の
ウロン酸（グルクロン酸として計算）並びに約1.3:1:3.
6のモル比のマンノース、ガラクトース及びグルコース
から成る。
多糖類の組成を測定するために、生成重合体を以下のよ
うにして取り出した。即ち、まず、液体培地を蒸留水で
20倍に稀釈し、18,000×ｇで30分遠心分離して菌体を除
き、0.1％容量まで塩化ナトリウムを加え、稀釈重合体
溶液の容量に基づいて３容量のイソプロパノールを加え
て重合体を沈殿させる。沈殿重合体を100メッシュの篩
を通して取り出し、100mlの70％イソプロパノール中で
再パルプ化し、過した。目的物を収集し、親液化によ
り恒量まで乾燥した（通常48時間）。重合体は、次のよ
うに硫酸又はトリフルオロ酢酸で加水分解した。10mgの
生成重合体を急速撹拌しながら2mlの蒸留水に溶解し
た。硫酸で加水分解するには、2mlの4N硫酸に加え、そ
の溶液を密封ガラスアンプル中で100℃で16時間加熱し
た。生じた溶液を冷却し、水酸化バリウムで中和し、pH
を固体二酸化炭素（ドライアイス）で５〜６に調整し
た。トリフルオロ酢酸（TFA）で加水分解するには、2ml
の4MTFAを加え、その溶液を密封ガラスアンプル中で120
℃で４時間加熱した。水酸化ナトリウム上で一晩室温で
TFAを減去留去した。残存する微量のTFAは、蒸留水中に
残留物を溶解し、真空下で再乾燥するという２段階によ
って除去した。
うにして取り出した。即ち、まず、液体培地を蒸留水で
20倍に稀釈し、18,000×ｇで30分遠心分離して菌体を除
き、0.1％容量まで塩化ナトリウムを加え、稀釈重合体
溶液の容量に基づいて３容量のイソプロパノールを加え
て重合体を沈殿させる。沈殿重合体を100メッシュの篩
を通して取り出し、100mlの70％イソプロパノール中で
再パルプ化し、過した。目的物を収集し、親液化によ
り恒量まで乾燥した（通常48時間）。重合体は、次のよ
うに硫酸又はトリフルオロ酢酸で加水分解した。10mgの
生成重合体を急速撹拌しながら2mlの蒸留水に溶解し
た。硫酸で加水分解するには、2mlの4N硫酸に加え、そ
の溶液を密封ガラスアンプル中で100℃で16時間加熱し
た。生じた溶液を冷却し、水酸化バリウムで中和し、pH
を固体二酸化炭素（ドライアイス）で５〜６に調整し
た。トリフルオロ酢酸（TFA）で加水分解するには、2ml
の4MTFAを加え、その溶液を密封ガラスアンプル中で120
℃で４時間加熱した。水酸化ナトリウム上で一晩室温で
TFAを減去留去した。残存する微量のTFAは、蒸留水中に
残留物を溶解し、真空下で再乾燥するという２段階によ
って除去した。
中性糖類及びウロン酸は、Whatman 3MM紙上で下行性ペ
ーパークロマトグラフィーによって暫定的に同定した。
クロマトグラムは、6:4:3の比のブタノール、氷酢酸及
び水の溶媒系で展開した。クロマトグラムを空気乾燥
し、20mlのアセトン中に硝酸銀の飽和水溶液0.1mlを混
合することにより調整した溶液で処理した。糖類及びウ
ロン酸は硝酸銀と反応して、濃度に応じ灰色〜黒色の斑
点を生じる。この各斑点を糖類及びウロン酸の標準クロ
マトグロフィと対比して同定すると、その位置は、マン
ノース、ガラクトース、クルコース及びグルクロン酸の
ものと一致した。加水分解物質中の糖組成をさらに同定
定量するため、酢酸アルジトール誘導体のガス−液体ク
ロマトグラフィ［Hisamatsuら、Carb.Res.,61,89（197
8）］を行った。両加水分解操作（即ち、H2SO4又はTF
A）のいずれについても、約1.3:1:3.6の比のマンノー
ス：ガラクトース：グルコースが得られた。
ーパークロマトグラフィーによって暫定的に同定した。
クロマトグラムは、6:4:3の比のブタノール、氷酢酸及
び水の溶媒系で展開した。クロマトグラムを空気乾燥
し、20mlのアセトン中に硝酸銀の飽和水溶液0.1mlを混
合することにより調整した溶液で処理した。糖類及びウ
ロン酸は硝酸銀と反応して、濃度に応じ灰色〜黒色の斑
点を生じる。この各斑点を糖類及びウロン酸の標準クロ
マトグロフィと対比して同定すると、その位置は、マン
ノース、ガラクトース、クルコース及びグルクロン酸の
ものと一致した。加水分解物質中の糖組成をさらに同定
定量するため、酢酸アルジトール誘導体のガス−液体ク
ロマトグラフィ［Hisamatsuら、Carb.Res.,61,89（197
8）］を行った。両加水分解操作（即ち、H2SO4又はTF
A）のいずれについても、約1.3:1:3.6の比のマンノー
ス：ガラクトース：グルコースが得られた。
重合体105-4の有機酸置換基は、Hisamatsu（上記）の温
和な酸加水分解（2N硫酸、100℃、60分）により切り離
して分析した。これらの分離は、206nmでUVにより確か
めながら、0.013NH2SO4を移動相とするアイソクラチッ
ク陽イオン交換クロマトグラフィ（Biorad Aminex HPX
−87H）により実施した。酢酸塩は、重合体の約10〜約1
5重量％で唯一の置換基であった。ウロン酸は、Blumenk
rantzら［Anal.Biochem.54,484（1973）］の手法によっ
て測定した。10〜25％（グルクロン酸として計算）の範
囲であることが判明した。
和な酸加水分解（2N硫酸、100℃、60分）により切り離
して分析した。これらの分離は、206nmでUVにより確か
めながら、0.013NH2SO4を移動相とするアイソクラチッ
ク陽イオン交換クロマトグラフィ（Biorad Aminex HPX
−87H）により実施した。酢酸塩は、重合体の約10〜約1
5重量％で唯一の置換基であった。ウロン酸は、Blumenk
rantzら［Anal.Biochem.54,484（1973）］の手法によっ
て測定した。10〜25％（グルクロン酸として計算）の範
囲であることが判明した。
重合体105-4は、水性媒体の粘度上昇剤として非常に有
効である。このこととその疑似塑性、並びに新鮮な水、
高塩度水及び高硬度ブラインのいずれにも相溶性である
が故に、本重合体は増粘、安定化、懸濁剤として広い実
用性を有する。この例としては、液体洗剤、工業用洗浄
剤、消毒剤、消化用エアゾール、鑿井及び仕上げ液、ラ
テックス塗料及び化粧品が挙げられるが、これに限定さ
れない。
効である。このこととその疑似塑性、並びに新鮮な水、
高塩度水及び高硬度ブラインのいずれにも相溶性である
が故に、本重合体は増粘、安定化、懸濁剤として広い実
用性を有する。この例としては、液体洗剤、工業用洗浄
剤、消毒剤、消化用エアゾール、鑿井及び仕上げ液、ラ
テックス塗料及び化粧品が挙げられるが、これに限定さ
れない。
実質例１ ヘテロ多糖類105-4を製造するための発酵手順 A.培養維持 PseudomonasSp.ATCC 53923は、表１に記載の培地上で十
分に増殖する。同一培地（以下に特記したような小変動
を伴う）を発酵用種菌調整及び最終段階発酵培地用に用
いた。
分に増殖する。同一培地（以下に特記したような小変動
を伴う）を発酵用種菌調整及び最終段階発酵培地用に用
いた。
各成分を蒸留水中に溶解又は懸濁し、121℃で30分間、
オートクレーブ処理して減菌した。50℃まで冷却した
後、寒天培地をペトリ皿中に小分けした。30℃で３日間
増殖させたPseudomonas種ATCC 53923のコロニーは白色
で、浮出し、ゴム状稠度を示した。
オートクレーブ処理して減菌した。50℃まで冷却した
後、寒天培地をペトリ皿中に小分けした。30℃で３日間
増殖させたPseudomonas種ATCC 53923のコロニーは白色
で、浮出し、ゴム状稠度を示した。
B.種菌調製 培地は、寒天を省きCaCO3を0.3％に減らした以外は表１
と同一にしたものを調整し、小分けした（各々300mlの
フラスコ中に培地100ml）。フラスコは、121℃で30分間
オートクレーブ処理して減菌した。冷却後、フラスコに
寒天平板からの３日間培養を１さじ接種した。フラスコ
を200rpmで24間振盪しながら30℃でインキュベートし、
1mlの培養物を同一組成及び容量の新たな種菌用フラス
コに移し（第二期接種物）、これを振盪しながら30℃で
48時間インキュベートした。
と同一にしたものを調整し、小分けした（各々300mlの
フラスコ中に培地100ml）。フラスコは、121℃で30分間
オートクレーブ処理して減菌した。冷却後、フラスコに
寒天平板からの３日間培養を１さじ接種した。フラスコ
を200rpmで24間振盪しながら30℃でインキュベートし、
1mlの培養物を同一組成及び容量の新たな種菌用フラス
コに移し（第二期接種物）、これを振盪しながら30℃で
48時間インキュベートした。
C.発酵生産培地 培地は、寒天及びCaCO3をともに省き、容量を下記の通
り発酵器の接種容量を基礎とした以外は表１と同一にし
た。培地を調製し、以下のように15のNew Brunswick
発酵器中に小分した。10の培地（グルコースは省く）
用成分を、8.5の蒸留水中に調整した。培地のpHは、
水酸化ナトリウムで、8.1に調整した。発酵器内容物を1
21℃で１時間オートクレーブ処理して減菌した。１の
30％グルコース溶液を、別に121℃で１時間減菌してお
き、発酵器に無菌的に加えた。発酵器にに第二期接種物
から0.5を接種した。醗酵温度は30℃に維持した。空気
流量は３／分であった。発酵中は水酸化ナトリウムを
加えることにより、New Brunswick pH計を用いてpHを6.
5〜7.5に維持した。初期撹拌速度は300rpmであったが、
これを24時間目及び48時間目にそれぞれ400rpm及び500r
pmに上げた。発酵は72〜96時間で終了させた。30rpmで
＃４スピンドルを用いて、Brookfield LVT型粘度計で
測定した。液体培地粘度は、9,000〜14,000cpの範囲で
あった。発酵器内の液体培地は、3,000ppmのホルムアル
デヒド又はその他の適当な殺生剤を加えて保存した。イ
ソプロパノールで細胞を沈殿させて除き透明化した上で
測定した重合体濃度は、0.8％であった。500ppmの塩化
ナトリウム溶液中に溶解した1425ppm溶液の粘度は、Fan
n粘度計、モデル＃35A及びＲ−１ロータを有するＢ−１
ボブを用いた場合、 5.1sec-1で1,000cpであった。
り発酵器の接種容量を基礎とした以外は表１と同一にし
た。培地を調製し、以下のように15のNew Brunswick
発酵器中に小分した。10の培地（グルコースは省く）
用成分を、8.5の蒸留水中に調整した。培地のpHは、
水酸化ナトリウムで、8.1に調整した。発酵器内容物を1
21℃で１時間オートクレーブ処理して減菌した。１の
30％グルコース溶液を、別に121℃で１時間減菌してお
き、発酵器に無菌的に加えた。発酵器にに第二期接種物
から0.5を接種した。醗酵温度は30℃に維持した。空気
流量は３／分であった。発酵中は水酸化ナトリウムを
加えることにより、New Brunswick pH計を用いてpHを6.
5〜7.5に維持した。初期撹拌速度は300rpmであったが、
これを24時間目及び48時間目にそれぞれ400rpm及び500r
pmに上げた。発酵は72〜96時間で終了させた。30rpmで
＃４スピンドルを用いて、Brookfield LVT型粘度計で
測定した。液体培地粘度は、9,000〜14,000cpの範囲で
あった。発酵器内の液体培地は、3,000ppmのホルムアル
デヒド又はその他の適当な殺生剤を加えて保存した。イ
ソプロパノールで細胞を沈殿させて除き透明化した上で
測定した重合体濃度は、0.8％であった。500ppmの塩化
ナトリウム溶液中に溶解した1425ppm溶液の粘度は、Fan
n粘度計、モデル＃35A及びＲ−１ロータを有するＢ−１
ボブを用いた場合、 5.1sec-1で1,000cpであった。
ATCC分類 形態観察：本株は、グラム陰性運動型杆状体である。鞭
毛は有極性単毛である。栄養寒天上のコロニーは、平滑
で、完全で、ピカピカ光り、寒天に付着する。液体培地
中では、表面に綿状の薄膜が形成される。窒素欠乏培地
で増殖させた場合、細胞はポリ−β−ヒドロキシブチレ
ート封入体を含有する。蛍光色素及びピオシアニン色素
は形成されない。
毛は有極性単毛である。栄養寒天上のコロニーは、平滑
で、完全で、ピカピカ光り、寒天に付着する。液体培地
中では、表面に綿状の薄膜が形成される。窒素欠乏培地
で増殖させた場合、細胞はポリ−β−ヒドロキシブチレ
ート封入体を含有する。蛍光色素及びピオシアニン色素
は形成されない。
Huge ＆ Leifson培地における酸化／発酵反応 次のものからの酸： Ｌ−アビノース Ｗ セロビオース Ｗ エタノール Ｋ Ｄ−フラクトース Ｗ Ｄ−グルコース（好気性） Ｗ Ｄ−グルコース（嫌気性） − Ｄ−グルコースにおけるアルカリ性pH − グリセロール Ｗ ｉ−イノシトール Ｋ ラクトース Ｋ マルトース ＋ Ｄ−マニトール Ｗ Ｄ−マンノース ＋ Ｌ−ラムノース Ｋ Ｄ−リボース Ｗ シェクロース Ｋ トレハロース Ｋ Ｄ−キシロース Ｗ 対照 Ｋ ＋＝酸 Ｋ＝強アルカリ反応 −＝変化なし Ｗ＝表面に酸、しかし試験管中で多少の
残留アルカリ反応 論 評： ATCC株データや文献からのデータを、本株データと比較
したが、一致するものは発見できなかった。
残留アルカリ反応 論 評： ATCC株データや文献からのデータを、本株データと比較
したが、一致するものは発見できなかった。
本株は、その栄養様式がPseudomonas solanacearumに似
ているが、その生化学的特徴、特にカゼイン、デンプン
及びゼラチン加水分解、並びに硝酸塩還元においては類
似しない。P.solanacearumは、１〜４本の有極性鞭毛を
有すると記載されているのに対し、単離した105-4は１
本の有極鞭毛を有するだけである。
ているが、その生化学的特徴、特にカゼイン、デンプン
及びゼラチン加水分解、並びに硝酸塩還元においては類
似しない。P.solanacearumは、１〜４本の有極性鞭毛を
有すると記載されているのに対し、単離した105-4は１
本の有極鞭毛を有するだけである。
実施例２ 低剪断での105-4の0.1及び1.0％溶液に関して生じる異
常高粘度を、表２に示す（TDS＝総溶解塩）。105-4溶液
の高度の疑似塑性又は剪断減粘性（これは固体懸濁液に
関しては低剪断で高粘度を、また高剪断では低粘度とな
って撹拌送液に便利である）を表１に示す。この図はま
た、非常に高塩度や高硬度の媒体にも105-4が優れた相
溶性及び増粘能を有することを示す。各実施例とも、溶
媒の渦（加減抵抗器で混合器の電圧を随時調整して維持
する）の中にバイオ重合体を徐々に加え、その後50ボル
トで２分剪断して、WaringR混合器で溶液を調製した。
生じた溶液の粘度を、Haake Buchler Instruments RV20
型流動計で測定した。
常高粘度を、表２に示す（TDS＝総溶解塩）。105-4溶液
の高度の疑似塑性又は剪断減粘性（これは固体懸濁液に
関しては低剪断で高粘度を、また高剪断では低粘度とな
って撹拌送液に便利である）を表１に示す。この図はま
た、非常に高塩度や高硬度の媒体にも105-4が優れた相
溶性及び増粘能を有することを示す。各実施例とも、溶
媒の渦（加減抵抗器で混合器の電圧を随時調整して維持
する）の中にバイオ重合体を徐々に加え、その後50ボル
トで２分剪断して、WaringR混合器で溶液を調製した。
生じた溶液の粘度を、Haake Buchler Instruments RV20
型流動計で測定した。
実施例３ 重合体105-4の製造は発酵生産培地中の燐酸塩濃度に感
応することが判明した。表３に記載した結果はこの感受
性を示す。
応することが判明した。表３に記載した結果はこの感受
性を示す。
第１図は、種々の塩度の溶液中における、剪断率と粘度
の関係を示す関係図である。
の関係を示す関係図である。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 ＦＩ 技術表示箇所 (Ｃ１２Ｐ 19/04 Ｃ１２Ｒ 1:38）
Claims (10)
- 【請求項１】105-4と呼ばれるヘテロ多糖類であって、
上記多糖類が約1.3:1:3.6のモル比でマンノース、ガラ
クトース及びグルコースを含有し、上記多糖類が多糖類
重量基準で約10〜約25重量％のウロン酸及び約10〜約15
重量％の酢酸基をも含有するヘテロ多糖類。 - 【請求項２】Pseudomonas種ATCC 53923により生成され
る105-4と呼ばれるヘテロ多糖類であって、上記多糖類
が約1.3:1:3.6のモル比でマンノース、ガラクトース及
びグルコースを含有し、上記多糖類がグルクロン酸とし
て計算して10〜25％のウロン酸及び約10〜約15％の酢酸
基をも含有するヘテロ多糖類。 - 【請求項３】資化可能な炭素供給源の好気性発酵により
水性栄養培地中でPseudomonas種ATCC 53923を増殖させ
ることから成る方法によって調製する請求項２記載のヘ
テロ多糖類。 - 【請求項４】シュードモナスPseudomonas種ATCC 5392
3。 - 【請求項５】Pseudomonas種ATCC 53923の生物学的に純
粋な培養物。 - 【請求項６】水性栄養培地が0.001〜1g/の範囲で無機
燐酸イオンを含む請求項３記載のヘテロ多糖類。 - 【請求項７】水性栄養培地が0.5g/未満の無機燐酸イ
オンを含む請求項３記載のヘテロ多糖類。 - 【請求項８】増粘、懸濁又は安定化量の請求項１記載の
ヘテロ多糖類を加えることを包含する液体系を濃縮、懸
濁又は安定化するための方法。 - 【請求項９】増粘、懸濁又は安定化量の請求項２記載の
ヘテロ多糖類を加えることを包含する液体系を濃縮、懸
濁又は安定化するための方法。 - 【請求項１０】増粘、懸濁又は安定化量の請求項３記載
のヘテロ多糖類を加えることを包含する液体系を増粘、
懸濁又は安定化するための方法。
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|---|---|---|---|
| US384939 | 1989-07-25 | ||
| US07/384,939 US5153320A (en) | 1989-07-25 | 1989-07-25 | Heteropolysaccharide 105-4 |
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| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH0374402A JPH0374402A (ja) | 1991-03-29 |
| JPH0710882B2 true JPH0710882B2 (ja) | 1995-02-08 |
Family
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Family Applications (1)
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| JP (1) | JPH0710882B2 (ja) |
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| US4247639A (en) * | 1979-09-11 | 1981-01-27 | Merck & Co., Inc. | Bacterial polysaccharide |
| US4401760A (en) * | 1981-10-21 | 1983-08-30 | Merck & Co., Inc. | Heteropolysaccharide S-194 |
| US4454316A (en) * | 1982-01-15 | 1984-06-12 | Merck & Co., Inc. | Heteropolysaccharide S-139 |
| GB8325445D0 (en) * | 1983-09-22 | 1983-10-26 | Shell Int Research | Preparing succinoglucan type of heteropolysaccharide |
| US4689160A (en) * | 1986-01-16 | 1987-08-25 | Merck & Co., Inc. | Acid stable heteropolysaccharide s-421 |
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- 1990-07-11 ES ES90307576T patent/ES2063279T3/es not_active Expired - Lifetime
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- 1990-07-25 JP JP2197598A patent/JPH0710882B2/ja not_active Expired - Lifetime
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1992
- 1992-09-11 US US07/944,144 patent/US5371012A/en not_active Expired - Fee Related
-
1994
- 1994-12-02 US US08/349,178 patent/US5532222A/en not_active Expired - Fee Related
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| IE902681A1 (en) | 1991-02-27 |
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| AU620257B2 (en) | 1992-02-13 |
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