JPH0746987B2 - Method for tissue culture of Orchid plant - Google Patents
Method for tissue culture of Orchid plantInfo
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- JPH0746987B2 JPH0746987B2 JP60143883A JP14388385A JPH0746987B2 JP H0746987 B2 JPH0746987 B2 JP H0746987B2 JP 60143883 A JP60143883 A JP 60143883A JP 14388385 A JP14388385 A JP 14388385A JP H0746987 B2 JPH0746987 B2 JP H0746987B2
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Description
【発明の詳細な説明】 〔産業上の利用分野〕 本発明はオウレン属植物を組織培養して健胃薬、染料な
どに利用されるベルベリンなどのイソキノリン系アルカ
ロイドを製造する方法に関する。TECHNICAL FIELD The present invention relates to a method for producing an isoquinoline alkaloid such as berberine, which is used as a stomachic drug, a dye, etc., by tissue-culturing a plant of the genus Oren.
イソキノリン系アルカロイドを得る従来の方法として
は、天然で生育したオウレン属植物から抽出等によつて
該アルカロイドを直接採取する方法があるが、該方法は
植物の生育等が自然環境や天候に左右されまた該植物の
収集にも時間と手間がかかるため有利な方法とは言えな
い。As a conventional method for obtaining an isoquinoline alkaloid, there is a method of directly collecting the alkaloid from a naturally grown plant of the genus Orenum by extraction or the like, but the method is dependent on the natural environment and weather such as the growth of the plant. Moreover, it is not an advantageous method because it takes time and labor to collect the plants.
そこでこれに代わる方法として、例えばフアイトケミス
トリー(Phytochemistry)23巻281〜285頁(1984年)等
に記載されているように、オウレン属植物の組織培養方
法によつてベルベリン、パルマチン、コプテシン、ヤテ
オリジンなどのイソキノリン系アルカロイドを得る方法
が提案されている。しかし、これら従来公知の組織培養
方法においては、培養細胞から生産される目的物のイソ
キノリン系アルカロイドの収量が低いという問題があ
る。Therefore, as an alternative method, for example, as described in Phytochemistry, Vol. 23, pages 281-285 (1984), etc., berberine, palmatin, copthecin, ateoridin etc. A method for obtaining the isoquinoline-based alkaloids has been proposed. However, these conventionally known tissue culture methods have a problem that the yield of the desired isoquinoline alkaloid produced from the cultured cells is low.
したがつてこのような組織培養法によりイソキノリン系
アルカロイドの工業的な生産を目指す場合、さらに生産
性を高めることが重要な課題であつた。Therefore, when aiming at the industrial production of isoquinoline alkaloids by such a tissue culture method, it was an important issue to further increase the productivity.
このような事情にかんがみ、本発明者らは、オウレン属
植物の組織を効率よく培養してイソキノリン系アルカロ
イドを従来法に比べて多く得る方法について検討した。In view of such circumstances, the present inventors have studied a method of efficiently culturing the tissue of a plant of the genus Coptis to obtain more isoquinoline alkaloids than the conventional method.
その結果、本発明者等はオウレン属植物の組織培養にお
いては、組織培養物によるイソキノリン系アルカロイド
の生産性は培地の溶存酸素濃度に大きく影響されること
を見出し、本発明を完成するに到つた。すなわち本発明
の方法によれば、オウレン属植物を液体培地を用いて組
織培養するに当たり、該培地の溶存酸素濃度を10ないし
20ppmにしてイソキノリン系アルカロイドを生産するこ
とを特徴とするオウレン属植物の組織培養方法、が提供
される。As a result, the present inventors have found that, in tissue culture of a plant of the genus Orchid, the productivity of isoquinoline alkaloids by the tissue culture is greatly affected by the dissolved oxygen concentration of the medium, and have completed the present invention. . That is, according to the method of the present invention, in tissue culture of a plant of the genus Coptis, a dissolved oxygen concentration of the medium is adjusted to 10 to 10.
Provided is a tissue culture method for a plant of the genus Orensis, which comprises producing an isoquinoline alkaloid at 20 ppm.
本発明の方法において用いられるオウレン属植物として
は、例えばオウレン(Coptis japonica Makino)、セリ
バオウレン(C.japonika Makino var.dussecta Naka
i)、キクバオウレン(C.japonika Makino var.japonic
a)、コセリバオウレン(C.japonika Makino var.major
Satake)、バイカオウレン(C.quinquefolia Miq.)お
よびミツバオウレン(C.trifolia Salisb.)等を挙げる
ことができる。本発明ではこれらの植物の中では特にセ
リバオウレンを用いることが好ましい。Examples of the Orchidaceae plant used in the method of the present invention include, for example, Coptis japonica Makino, and Ceriobauren (C. japonika Makino var.dussecta Naka).
i), C. japonika Makino var.japonic
a), C. japonica Makino var.major
Satake), baioca lauren (C. quinquefolia Miq.) And honeywort (C. trifolia Salisb.). In the present invention, it is particularly preferable to use Ceriobaren among these plants.
本発明で使用される液体培地は、無機成分および炭素源
を必須成分とし、これに植物ホルモン類、ビタミン類を
添加し、更に必要に応じてアミノ酸類を添加した培地で
ある。The liquid medium used in the present invention is a medium in which an inorganic component and a carbon source are essential components, plant hormones and vitamins are added thereto, and amino acids are further added as necessary.
該培地の無機成分としては、窒素、リン、カリウム、ナ
トリウム、カルシウム、マグネシウム、イオウ、鉄、マ
ンガン、亜鉛、ホウ素、モリブデン、塩素、ヨウ素、コ
バルト等の元素を含む無機塩を挙げることができ、具体
的には硝酸カリウム、硝酸ナトリウム、硝酸アンモニウ
ム、塩化アンモニウム、塩化カリウム、塩化カルシウ
ム、リン酸1水素カリウム、リン酸2水素ナトリウム、
硫酸マグネシウム、塩化マグネシウム、硫酸ナトリウ
ム、硫酸第1鉄、硫酸第2鉄、硫酸マンガン、硫酸銅、
モリブデン酸ナトリウム、三酸化モリブデン、ヨウ化カ
リウム、硫酸亜鉛、ホウ酸、塩化コバルト等の化合物を
例示できる。Examples of the inorganic component of the medium include inorganic salts containing elements such as nitrogen, phosphorus, potassium, sodium, calcium, magnesium, sulfur, iron, manganese, zinc, boron, molybdenum, chlorine, iodine and cobalt, Specifically, potassium nitrate, sodium nitrate, ammonium nitrate, ammonium chloride, potassium chloride, calcium chloride, potassium monohydrogen phosphate, sodium dihydrogen phosphate,
Magnesium sulfate, magnesium chloride, sodium sulfate, ferrous sulfate, ferric sulfate, manganese sulfate, copper sulfate,
Examples thereof include compounds such as sodium molybdate, molybdenum trioxide, potassium iodide, zinc sulfate, boric acid, and cobalt chloride.
該培地の炭素原としては、シヨ糖等の炭水化物とその誘
導体、脂肪酸等の有機酸およびエタノール等の1級アル
コールなどを例示できる。Examples of the carbon source of the medium include carbohydrates such as sucrose and derivatives thereof, organic acids such as fatty acids, and primary alcohols such as ethanol.
該培地の植物ホルモン類としては、例えば、ナフタレン
酢酸(NAA)、インドール酢酸(IAA)、p−クロロフエ
ノキシ酢酸、2,4−ジクロロフエノキシ酢酸(2,4−
D)、インドール酪酸(IBA)およびこのらの誘導体等
のオーキシン類およびベンジルアデニン(BA)、カイネ
チン、ゼアチンのサイトカイニン類を例示できる。本発
明ではサイトカイニン類は通常は培地に添加しないこと
が望ましいが、必要に応じて添加する場合にはサイトカ
イニン類は濃度が通常10-7M(0.02mg/l)以下の低濃度
で使用することが好ましい。Examples of the plant hormones in the medium include naphthalene acetic acid (NAA), indole acetic acid (IAA), p-chlorophenoxyacetic acid, 2,4-dichlorophenoxyacetic acid (2,4-
D), auxins such as indolebutyric acid (IBA) and their derivatives, and cytokinins such as benzyladenine (BA), kinetin and zeatin. In the present invention, it is preferable that cytokinins are not usually added to the medium, but when added as necessary, cytokinins should be used at a low concentration of usually 10 −7 M (0.02 mg / l) or less. Is preferred.
該培地のビタミン類としては、ビオチン、チアミン(ビ
タミンB1)、ピリドキシン(ビタミンB6)、ピリドキサ
ール、ピリドキサミン、パントテン酸カルシウム、アス
コルビン酸(ビタミンC)、イノシトール、ニコチン
酸、ニコチン酸アミドおよびリボブラビン(ビタミン
B2)などを例示できる。The vitamins in the medium include biotin, thiamine (vitamin B 1 ), pyridoxine (vitamin B 6 ), pyridoxal, pyridoxamine, calcium pantothenate, ascorbic acid (vitamin C), inositol, nicotinic acid, nicotinic acid amide and ribobrabin ( vitamin
B 2 ) etc. can be illustrated.
該培地のアミノ酸類としては、例えばグリシン、アラニ
ン、グルタミン酸、システイン、フエニルアラニンおよ
びリジンなどを例示できる。Examples of amino acids in the medium include glycine, alanine, glutamic acid, cysteine, phenylalanine and lysine.
本発明の前記培地は、通常は、前記無機成分を約0.1μ
Mないし約100mM、前記炭素源を約1g/lないし約100g/
l、前記植物ホルモン類を約0.1mg/lないし約100mg/l、
前記ビタミン類を約0.1mg/lないし約150mg/lおよび前記
アミノ酸類を0ないし約1000mg/l含ませて使用すること
が望ましい。The medium of the present invention usually contains about 0.1 μm of the inorganic component.
M to about 100 mM, the carbon source is about 1 g / l to about 100 g /
l, the plant hormones about 0.1 mg / l to about 100 mg / l,
It is preferable to use the vitamins in an amount of about 0.1 mg / l to about 150 mg / l and the amino acids in an amount of 0 to about 1000 mg / l.
本発明のオウレン属植物の組織培養に用いられる前記培
地として具体的には、従来から知られている植物の組織
培養に用いられている培地、例えば、ムラシゲ・スクー
グ('62)〔Murashige & Skoog〕の培地、リンスマイ
ヤー・スクーグ(RM−1965)〔Linsmaier & Skoog〕の
培地、ホワイト('63)〔White〕の培地、ガンボルグ
〔Gamborg〕のB−5培地、三井のM−9培地、ニツチ
・ニツチの培地〔Nitsch & Nitsch〕等に前記した炭素
源および植物ホルモンを添加し、更に必要に応じて前記
したビタミン類、アミノ酸類を添加して調製される培地
を例示できるが、本発明ではこの中でも特にニツチ・ニ
ツチ、リンスマイヤー・スクーグ又はムラシゲ・スクー
グの培地を用いて調製される培地が好ましい。なお、上
記した従来公知の培地の組成に関しては、例えば、竹
内、中島、古谷著の「新植物組織培養」P386〜P391、朝
倉書店、1979年に記載されている。Specific examples of the medium used for tissue culture of the Orchid plant of the present invention include media conventionally used for tissue culture of plants, for example, Murashige Skoog ('62) [Murashige & Skoog ] Medium, Rinsmeier Skoog (RM-1965) [Linsmaier & Skoog] medium, white ('63) [White] medium, Gamborg B-5 medium, Mitsui M-9 medium, Nichichi A medium prepared by adding the above-mentioned carbon source and plant hormones to a Nitsch medium [Nitsch & Nitsch], etc., and further adding the above-mentioned vitamins and amino acids as necessary can be exemplified, but in the present invention, Of these, a medium prepared using a Nichi-Nitchi, Rinsmeier-Skoog or Murashige-Skoog medium is particularly preferable. The composition of the conventionally known medium described above is described, for example, in "New Plant Tissue Culture" P386 to P391 by Takeuchi, Nakajima and Furuya, Asakura Shoten, 1979.
本発明では前記した液体培地を用いてオウレン属植物の
組織培養を行い、イソキノリン系アルカロイドが生産さ
れるが、この場合、本発明では培地の溶存酸素濃度が通
常10ないし20ppm、好ましくは10ないし15ppmとなるよう
にして組織培養が行われる。溶存酸素濃度が通常10ppm
よりも低い場合および通常20ppmよりも高い場合にはオ
ウレン属の培養細胞によるイソキノリン系アルカロイド
の生産量が低下するので好ましくない。培地の溶存酸素
濃度を本発明で行われる前記濃度範囲にする方法として
は以下に示す方法を例示できる。すなわち通常10ないし
35℃で組織培養が行われる液体培地において、該培地に
接触する酸素含有ガスの酸素分圧を通常180mmHg以上、
好ましくは200mmHgないし800mmHgにしてこの酸素含有ガ
スと培地を適宜の方法によつて接触させることにより、
培地の溶存酸素濃度を前記範囲にすることができる。こ
の場合の酸素含有ガスとしては具体的にはチツ素等の不
活性成分を含んだ種々の酸素濃度を有するガスや純酸素
ガスを例示できる。酸素含有ガスとして空気を体気圧以
下で培地と接触させる方法は従来のズボイシア属植物の
組織培養において採用された方法であつて、この方法で
は培地の溶存酸素濃度は培養温度によつても多少異なる
が通常8ppm程度と低いためイソキノリン系アルカロイド
の生産量は少ないので好ましくない。本発明では必要に
応じて酸素含有ガスとして空気を用いることも出来、こ
の場合には該ガスを加圧することによつて系内の全圧を
高くしてガス中の酸素分圧を前記範囲にすることによつ
て、培地の溶存酸素濃度を本発明の範囲にすることがで
きる。大気圧下で組織培養を行う場合には純酸素ガスを
使用しても培地の溶存酸素濃度は通常40ppm程度しか高
まらないため、更に酸素濃度を高めたい場合には通常知
られている適宜方法によつて加圧した系で組織培養を行
う方法が採用される。要するに本発明では、状況に応じ
て酸素含有ガス中の酸素分圧を適宜選ぶことによつて培
地の溶存酸素濃度を前記範囲にして培養が行われる。In the present invention, tissue culture of the Orchid plant is performed using the liquid medium described above, and isoquinoline alkaloids are produced, but in this case, the dissolved oxygen concentration of the medium in the present invention is usually 10 to 20 ppm, preferably 10 to 15 ppm. The tissue culture is carried out as follows. Dissolved oxygen concentration is usually 10 ppm
If it is lower than the above range and usually higher than 20 ppm, the amount of isoquinoline alkaloids produced by cultured cells of the genus Coptis decreases, which is not preferable. Examples of the method for adjusting the dissolved oxygen concentration of the medium to the concentration range carried out in the present invention include the following methods. Ie usually 10 or
In a liquid medium in which tissue culture is performed at 35 ° C., the oxygen partial pressure of the oxygen-containing gas contacting the medium is usually 180 mmHg or more,
By contacting the oxygen-containing gas and the culture medium by an appropriate method preferably to 200 mmHg to 800 mmHg,
The dissolved oxygen concentration of the medium can be within the above range. Specific examples of the oxygen-containing gas in this case include gases having various oxygen concentrations containing an inert component such as titanium and pure oxygen gas. A method of contacting air as an oxygen-containing gas with a medium at a body pressure or below is a method adopted in the tissue culture of a conventional Zboisia plant, in which the dissolved oxygen concentration of the medium is slightly different depending on the culture temperature. Is usually as low as about 8 ppm, and the amount of isoquinoline-based alkaloids produced is small, which is not preferable. In the present invention, air can be used as the oxygen-containing gas as necessary, and in this case, the total pressure in the system is increased by pressurizing the gas so that the oxygen partial pressure in the gas falls within the above range. By doing so, the dissolved oxygen concentration of the medium can be within the range of the present invention. When performing tissue culture under atmospheric pressure, the dissolved oxygen concentration of the medium usually increases only about 40 ppm even if pure oxygen gas is used, so if you want to further increase the oxygen concentration, use a generally known appropriate method. Therefore, a method of performing tissue culture in a pressurized system is adopted. In short, according to the present invention, the dissolved oxygen concentration of the medium is adjusted to the above range to carry out the culture by appropriately selecting the oxygen partial pressure in the oxygen-containing gas depending on the situation.
本発明では酸素含有ガスと培地を接触させる方法として
は特にどのような方法を用いなければならないというこ
とは無く、通常知られているどのような方法でも採用で
きる。そして該接触方法として具体的には、例えば液体
培地中に置かれた多数の孔を有するガス分散器を介して
培地中に酸素含有ガスを放出させる通気培養方法、ある
いはシリコン、テフロン等の特殊な材料から作られた酸
素透過性の膜からできた任意形状のガス送入部を培地と
接触させてこの膜を介して培地中に酸素を供給する方法
などを例示できる。酸素透過性の膜を用いる方法では、
通気培養のときのような激しい気泡の発生も無いので培
養物に好ましくない外力をかけないようにすることがで
きるので一層好ましい。In the present invention, it is not necessary to use any method for bringing the oxygen-containing gas into contact with the culture medium, and any conventionally known method can be adopted. As the contact method, specifically, for example, an aeration culture method in which an oxygen-containing gas is released into the medium through a gas disperser having a large number of holes placed in the liquid medium, or a special method such as silicon or Teflon. It is possible to exemplify a method in which a gas inlet having an arbitrary shape made of an oxygen permeable membrane made of a material is brought into contact with a medium and oxygen is supplied into the medium through the membrane. In the method using the oxygen permeable membrane,
It is more preferable because it is possible to prevent undesired external force from being applied to the culture, since vigorous bubbles are not generated unlike in aeration culture.
培地の溶存酸素濃度を測定する方法としては例えば以下
に示すような方法がある。ガルバニツクセル型の酸素電
極を用いて溶存酸素濃度に比例して発生する電流を測定
し、所定の溶存酸素濃度に対応する電流以上になると自
動的に供給酸素量を減じ、かつ該電流値以下の場合、自
動的に供給量を増加せしめることによつて培地の溶存酸
素濃度を所定の値に維持する方法である。As a method for measuring the dissolved oxygen concentration of the medium, there are the following methods, for example. The galvanic cell type oxygen electrode is used to measure the current generated in proportion to the dissolved oxygen concentration, and when the current exceeds the current corresponding to the predetermined dissolved oxygen concentration, the supplied oxygen amount is automatically reduced, and below the current value. In this case, the dissolved oxygen concentration of the medium is maintained at a predetermined value by automatically increasing the supply amount.
本発明で実施される組織培養においは、培養槽あるいは
培養装置については特にどのようなものを用いなければ
ならないということはなく、前記した本発明の要件を満
足できるものであればどのようなものでも使用出来る。
本発明では培地を、必要に応じて培養槽自体の振とう、
旋回あるいは攪拌羽根等の手段によつて撹拌しても良い
し、又静置しても良い。あるいは又本出願人が特願昭59
−262099号によつて提案した液体散布の方法、すなわち
液体培地を培養物の上方からシヤワー状に散布するよう
にして培養する方法を採用することもできる。この場合
には液体培地を培養器とは別の所で酸素含有ガスと接触
させて培地の溶存酸素濃度を前記範囲に調整してからこ
の液体培地を培養器に導入し、リサイクル使用する方法
を例示できる。Regarding the tissue culture carried out in the present invention, it is not necessary to use any particular culture tank or culture apparatus, and any one can satisfy the requirements of the present invention described above. But you can use it.
In the present invention, the medium, if necessary, shaking of the culture tank itself,
It may be stirred by means such as swirling or stirring blades, or may be left stationary. Alternatively, the applicant filed Japanese Patent Application Sho 59
It is also possible to employ the liquid spraying method proposed by No. 262099, that is, a method of culturing by spraying a liquid medium from above the culture in a shower form. In this case, the liquid medium is brought into contact with an oxygen-containing gas at a place different from that of the incubator to adjust the dissolved oxygen concentration of the medium to the above range, and then the liquid medium is introduced into the incubator for recycling. It can be illustrated.
本発明では前記方法によつてオウレン属植物が組織培養
されてイソキノリン系アルカロイドが生産される。この
場合のイソキノリン系アルカロイドとして具体的にはベ
ルベリン、パルマチン、コプテシン、ヤテオリジン等で
あつてこの中ではベルベリンが好ましい。In the present invention, an Orchid plant is tissue-cultured by the above method to produce an isoquinoline alkaloid. Specific examples of the isoquinoline-based alkaloid in this case include berberine, palmatine, copthecin, yateolidine, and among them, berberine is preferable.
以下、本発明の組織培養の具体的方法について示す。The specific method of tissue culture of the present invention will be described below.
先ず、オウレン属に属する植物の植物体、例えば、根、
生長点、葉、茎、果実、種子等から採取された組織片
を、例えば、新植物組織培養(朝倉書店1979版)、21頁
に記載されている寒天で固めた、リンスマイヤースクー
グの培地(RM−1965)上に置床して、10〜35℃で7〜30
日間程度培養することによつて該組織片の一部をカルス
化させる。このようにして得られるオウレン属植物のカ
ルスを、通常知られている方法によつて継代培養する
と、カルスの生育速度が漸次高まる。次にこのカルスを
増殖に適した液体培地、例えば、新植物組織培養(朝倉
書店1979年版)、21頁に記載されているリンスマイヤー
スクーグの液体培地に移して更に増殖させると培養細胞
の生育速度は更に高められ安定化した培養細胞が得られ
る。本発明の方法では、このようにして得られる安定化
した培養細胞を本発明の前記液体培地に添加して更に培
養が行われる。First, a plant body of a plant belonging to the genus Coptis, for example, a root,
Tissue pieces collected from growing points, leaves, stems, fruits, seeds, etc., for example, new plant tissue culture (Asakura Shoten 1979 edition), hardened with agar described on page 21, Rinsmeier Skoog medium (RM-1965) placed on the floor, 7 ~ 30 at 10 ~ 35 ℃
By culturing for about one day, a part of the tissue piece is turned into callus. When the callus of the plant of the genus Orchid obtained in this manner is subcultured by a commonly known method, the growth rate of the callus gradually increases. Then, this callus is transferred to a liquid medium suitable for growth, for example, new plant tissue culture (Asakura Shoten, 1979 edition), Rinsmeier Skoog liquid medium described on page 21, and further grown to grow the cultured cells. The speed is further increased and stable cultured cells are obtained. In the method of the present invention, the stabilized cultured cells thus obtained are added to the liquid medium of the present invention and further cultured.
本発明の組織培養における培養温度としては、通常は、
約10ないし約35℃、この中でも特に約23ないし約28℃が
好適であり、該温度を約10℃未満にすると培養細胞の増
殖速度は小さく、また該温度を35℃以上にしたときも同
様に培養細胞の増殖速度は小さくなる。本発明の組織培
養を行うに当たつては、光は必ずしも必要ではないが、
光の照射はベルベリン等のイソキノリン系アルカロイド
の生成を妨げない。As the culture temperature in the tissue culture of the present invention, usually,
About 10 to about 35 ° C., especially about 23 to about 28 ° C. are particularly preferable, and if the temperature is lower than about 10 ° C., the growth rate of the cultured cells is low, and the same is true when the temperature is 35 ° C. or higher. In addition, the growth rate of cultured cells decreases. In performing the tissue culture of the present invention, light is not always necessary,
Irradiation with light does not prevent the formation of isoquinoline alkaloids such as berberine.
本発明の方法においては、培養終了後に培養細胞をデカ
ンテーシヨンあるいは濾過等の方法によつて液体培地か
ら分離し、次に該培養細胞から目的とするベルベリン等
のイソキノリン系のアルカロイドを従来から知られてい
る天然品のオウレン、オウバク等に適用されている抽出
等の方法によつて分離することができる。このようにし
て得られる該アルカロイドは必要に応じて再結晶等の方
法によつて純度を高めることができる。In the method of the present invention, after the culture is completed, the cultured cells are separated from the liquid medium by a method such as decantation or filtration, and then the desired isoquinoline alkaloids such as berberine are conventionally known. It can be separated by a known method such as extraction applied to natural products such as laurel and rye. The alkaloid thus obtained can be increased in purity by a method such as recrystallization, if necessary.
本発明のオウレン属植物の組織培養方法によれば従来法
に比べてベルベリン等のイソキノリン系アルカロイドを
多く生産することができる。According to the method for tissue culture of a plant of the genus Orchid of the present invention, more isoquinoline alkaloids such as berberine can be produced as compared with the conventional method.
以下、本発明の方法を実施例によつて更に具体的に説明
する。Hereinafter, the method of the present invention will be described more specifically with reference to Examples.
実施例1 セリバオウレン(Coptis japonica Makino Var.dissect
a Nakai)の葉を70%エタノール溶液および次亜鉛素酸
ソーダ水溶液(有効塩素量0.5%)で殺菌して後に、シ
ヨ糖3%、ナフタレン酢酸10-5M、ベンジルアデニン10
-8Mを含有する無菌のリンスマイヤー・スクーグの液体
培地(組成を第1表に示す)を寒天で固めた固体培地
(寒天1重量%)上に置床して25℃暗所で培養してセリ
バオウレンのカルスを得た。次に、このセリバオウレン
のカルスを上記と同様の条件でリンスマイヤー・スクー
グの液体培地で14日毎に植えつぎ、ロータリーシエーカ
ーで旋回培養(振幅25mm、100rpm)してセリバオウレン
の培養細胞の生育速度を速め、安定化したセリバオウレ
ン培養細胞を得た。Example 1 Ceribis japonica Makino Var.dissect
a Nakai) leaves were sterilized with 70% ethanol solution and sodium hypozinc acid aqueous solution (effective chlorine amount 0.5%), and then sucrose 3%, naphthalene acetic acid 10 -5 M, benzyladenine 10
-8 M aseptic Rinsmeier-Skoog liquid medium (composition is shown in Table 1) was placed on agar-solidified solid medium (agar 1% by weight) and cultured at 25 ° C in the dark. Got calli of Ceriba lauren. Next, this callus of Seriobauren was planted every 14 days in a liquid medium of Rinsmeier-Skoog under the same conditions as above, and subjected to swirling culture (amplitude 25 mm, 100 rpm) on a rotary shaker to increase the growth rate of cultured cells of Seriobauren. Accelerated and stabilized cerevisiae cultured cells were obtained.
溶存酸素濃度と酸素含有ガス通気管を備えた通気撹拌培
養槽(内容積2l)にCu2+濃度を1μMに変更した無菌の
上記液体培地1.5lおよび上記カルス15g新鮮重量を入
れ、溶存酸素濃度が10ppmになるように酸素含有ガスの
通気量を調節しながら25℃暗所で2週間培養した。得ら
れたカルスを乾燥した後の重量は17.9g(11.9g/l)であ
つた。乳鉢を用いて乾燥カルスを破砕した後に90%メタ
ノールでイソキノリン系アルカロイドを抽出した。この
抽出液を高速液体クロマトグラフイーを用いてベルベリ
ン、パルマチン、コプテシン、ヤテオリジン等のイソキ
ノリン系アルカロイドを分析したところ、乾燥カルス重
量あたりの該イソキノリン系アルカロイドの合計量は1
2.7重量%であつた。このうちベルベリンは8.1重量%で
あつた。Dissolved oxygen concentration was added to an aerated stirred culture tank (internal volume 2 l) equipped with a dissolved oxygen concentration and oxygen-containing gas aeration tube (1.5 l of sterile liquid medium with Cu 2+ concentration changed to 1 μM and 15 g fresh weight of callus). The culture was carried out at 25 ° C in the dark for 2 weeks while controlling the aeration amount of the oxygen-containing gas so that the concentration was 10 ppm. The weight of the obtained callus after drying was 17.9 g (11.9 g / l). After crushing the dry callus using a mortar, isoquinoline alkaloids were extracted with 90% methanol. When this extract was analyzed for isoquinoline alkaloids such as berberine, palmatine, copthecin, yateolidine using high performance liquid chromatography, the total amount of the isoquinoline alkaloids per dry callus weight was 1
It was 2.7% by weight. Of this, berberine was 8.1% by weight.
なお、アルカロイドの分析には山田らの方法〔Phytoche
mistry、23 281(1984)〕に従つて以下の条件を用い
た。 In addition, the method of Yamada et al. [Phytoche
mistry, 23 281 (1984)], the following conditions were used.
カラム:μ−ボンダパツクC1830cm×3.9mm 溶媒:オクタンスルホン酸ナトリウム5mMと酢酸1%を
含む水−アセトニトリル(13:7) 測定波長:254nm 実施例2〜5、比較例1〜2 溶存酸素濃度を第2表に示したように変えた以外は実施
例1と同様にして行つた結果を第2表に示した。Column: μ-bonder pack C 18 30 cm × 3.9 mm Solvent: Water containing 5 mM sodium octanesulfonate and 1% acetic acid-acetonitrile (13: 7) Measurement wavelength: 254 nm Examples 2-5, Comparative Examples 1-2 Dissolved oxygen concentration Table 2 shows the results obtained in the same manner as in Example 1 except that was changed as shown in Table 2.
フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 (C12N 5/04 C12R 1:91) C12R 1:91) Continuation of the front page (51) Int.Cl. 6 Identification number Office reference number FI technical display location (C12N 5/04 C12R 1:91) C12R 1:91)
Claims (1)
養するに当たり、該培地の溶存酸素濃度を10ないし20pp
mにしてイソキノリン系アルカロイドを生産することを
特徴とするオウレン属植物の組織培養方法。1. When tissue culture of a plant of the genus Coptis is carried out using a liquid medium, the dissolved oxygen concentration of the medium is adjusted to 10 to 20 pp.
A method for tissue culture of a plant of the genus Orenus, which comprises producing an isoquinoline alkaloid as m.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP60143883A JPH0746987B2 (en) | 1985-07-02 | 1985-07-02 | Method for tissue culture of Orchid plant |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP60143883A JPH0746987B2 (en) | 1985-07-02 | 1985-07-02 | Method for tissue culture of Orchid plant |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS626676A JPS626676A (en) | 1987-01-13 |
| JPH0746987B2 true JPH0746987B2 (en) | 1995-05-24 |
Family
ID=15349237
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP60143883A Expired - Lifetime JPH0746987B2 (en) | 1985-07-02 | 1985-07-02 | Method for tissue culture of Orchid plant |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH0746987B2 (en) |
-
1985
- 1985-07-02 JP JP60143883A patent/JPH0746987B2/en not_active Expired - Lifetime
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS626676A (en) | 1987-01-13 |
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