JPH0787798B2 - Method for producing monoclonal antibody - Google Patents
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- JPH0787798B2 JPH0787798B2 JP62165890A JP16589087A JPH0787798B2 JP H0787798 B2 JPH0787798 B2 JP H0787798B2 JP 62165890 A JP62165890 A JP 62165890A JP 16589087 A JP16589087 A JP 16589087A JP H0787798 B2 JPH0787798 B2 JP H0787798B2
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Description
〔産業上の利用分野〕 本発明は、少くともN−グリコリルGM2ガングリオシド
と反応するモノクローナル抗体のハイブリドーマによる
産生、製造方法に関する。 〔従来の技術〕 糖脂質は細胞膜の構成成分であり、構成糖の種類、数、
結合方法の違いにより多様な分子種が存在し、種特異
的、臓器特異的、細胞特異的な分布を示す。その機能と
しては、細菌毒素、ホルモン等の受容体として、また血
液型物質等免疫学的決定基としての働きの他増殖又は分
化の制御や細胞間の相互作用に関し、重要な役割りを演
じていることが明らかになりつつある。更に細胞の癌化
に伴い、質的、量的な組成変化が起り、一部は癌抗原と
なりうることが示され、またある種の糖脂質が増殖因
子、蛋白質キナーゼを介する細胞増殖機構の調節者とし
て働く例など、その組成変化が癌化機構に直接的に関与
している可能性も示唆されている。 一方、1種類の抗原決定基に対し特異性を有する均一な
抗体を産生する細胞株の樹立方法がミルスタインらによ
り報告され(ネーチャ;Nature,256 495〜497,1975)、
微量物質の定性、定量が可能となった。癌抗原や分化抗
原の検索を行うためこの技術を用い、癌細胞や分化しつ
つある胎児性細胞に特異的な多くのモノクローナル抗体
が作製されたが、このうちのいくつかは糖脂質あるいは
糖蛋白質の糖鎖を認識する抗体であることが明らかにさ
れた(ジャーナル オフ ナショナルキャンサ インス
テイチュート;J.Natl.Cancer Inst.71 231〜251,198
3)。 例えば、人のメラノーマに対するモノクローナル抗体と
してGD2ガングリオシドあるいはGD3ガングリオシドなど
の糖脂質と反応する抗体が得られている。また膵癌に特
異的なモノクローナル抗体NS19-9は、シアロシルルイス
A型の糖鎖を有する糖脂質及び糖蛋白質と反応する。こ
れらの抗体は癌の診断、治療経過の観察に有用であり、
更に治療への利用も試みられている。糖脂質の癌化に伴
う質的、量的変化は、遺伝子の発現異常により糖鎖生合
成機構における種々の糖転移酵素の活性が変化すること
に起因しており、その結果、正常組織に存在しないよう
な糖鎖構造が作り出される。その糖鎖構造は、癌マーカ
としての利用が可能である。 このように、癌化機構解明の手掛りとして、また、癌抗
原及び癌マーカとしての糖脂質の重要性、有用性が注目
されており、診断、治療等、臨床分野への応用が期待さ
れる。 糖脂質のうち、酸性糖であるシアル酸をその糖鎖中に含
有するものはガングリオシドと総称される。シアル酸の
種類としては、N−アセチルノイラミン酸と、N−グリ
コリルノイラミン酸が主なものである。シアル酸は動物
種の諸臓器、細胞、体液中に広く検出されるがN−グリ
コリルノイラミン酸については、正常人及びニワトリに
は今までのところ見出されていない。 以後の記述でこれらシアル酸の種類を特に区別する必要
がある時は、糖脂質の名称の前にN−グリコリルもしく
はN−アセチルをつけて区別するものとする。 血清病患者に検出され、ヒツジ、ウマ、ブタ、ウサギ、
モルモットの赤血球を凝集する異好性抗体にはハンガナ
チウ−ダイヘル(Hanganatziu-Deicher.以下H-Dと略記
する)抗体と呼ばれる。この抗体により確認される抗原
はH-D抗原とよばれる。N−グリコリルノイラミン酸含
有ガングリオシドがH-D抗原活性を有することが報告さ
れ〔バイオケミカル アンド バイオフィジカル リサ
ーチ コミュニケーションズ(Biochem.Biophys.Res.Co
mmun.)第79巻、第388〜395頁(1977)〕、NeuGcα2-3
Galの糖鎖構造が主な抗原決定基として同定された。 近年、H-D抗原活性を有するガングリオシドであるN−
グリコリルGM3ガングリオシド(II3NeuGc-LacCer)をニ
ワトリに免疫して、血清からH-D抗原活性を有する種々
のガングリオシドと反応する抗体を作製し、この抗体を
用いて、N−グリコリルノイラミン酸が人ガン組織に特
徴的に存在することが報告された[ビケン・ジャーナル
(Biken J.)、第25巻、第47〜50頁(1982年)]。ま
た、人大腸ガン組織より抽出された糖脂質中に、数種の
H-D抗原活性なN−グリコリルノイラミン酸含有ガング
リオシドが検出され、奇形腫の組織中からは、H-D抗原
活性な糖鎖を有する糖蛋白質が検出された[ガン(Gan
n)、第75巻、第1025〜1029頁(1984年)]。ニワトリ
にて作製した抗体を用いて人大腸ガン組織より検出され
るH-D抗原活性を有する糖脂質を分析したところ、N−
グリコリルGM2ガングリオシド、N−グリコリルGM3ガン
グリオシド、o−アシル−N−グリコリルGM3ガングリ
オシド、IV3NeuGc-nLcOse4Cerであり、これらは正常組
織には検出されなかった[キャンサー・リサーチ(Canc
er Res.)、第45巻、第3796〜3802頁(1985年)]。 また、ニワトリのリンパ腫の1種であるマレック病の細
胞株中にも、H-D抗原活性を有するガングリオシドが検
出された〔ジャーナル・オブ・バイオケミストリー(東
京);J.Biochem.(Tokyo)]、第95巻、第785〜794頁
(1984年)〕。 N−グリコリルノイラミン酸及びN−グリコリルGM2ガ
ングリオシドの糖鎖を含め、N−グリコリルノイラミン
酸含有糖鎖はガン関連抗原と考えられ、これらを高感度
に精度よく検出することはガン診断上極めて重要であ
る。 N−グリコリルノイラミン酸又はN−グリコリルGM2ガ
ングリオシドの糖鎖を含め、N−グリコリルノイラミン
酸含有糖鎖を効率よく検出するには、検出感度、精度の
面から、免疫学的測定法が優れていると考えられる。 H-D抗原活性を有するN−グリコリルノイラミン酸含有
糖鎖と反応する抗体は、従来、ニワトリにH-D抗原活性
を有する精製糖脂質抗原を免疫し、その血清より分離す
ることにより得られた〔モレキュラー・イムノロジー
(Molec.Jmmunol.)第19巻、第87〜94頁(1982年)〕。 N−グリコリルGM2ガングリオシドに特異性の高いポリ
クローナル抗体は、ニワトリにN−グリコリルGM2ガン
グリオシドを免疫する事により得る事ができ〔バイオケ
ミカル アンド バイオフィジカル リサーチ コミュ
ニケーションズ(Biochem.Biophys.Res.Commun.)、第1
29巻、第334〜341頁(1985年)〕、N−グリコリルGM2
ガングリオシド及びN−グリコリルGM3ガングリオシド
に対し反応性を有するポリクローナル抗体はニワトリに
N−グリコリルGM3ガグリオシドを免疫する事により得
る事ができる〔キャンサー・リサーチ(Cancer Res.)
第45巻、第3796〜3802頁(1985年)〕。 しかしながら、これら方法はいくつかの欠点を有してい
る。即ち、(1)抗血清を得るためには、そのたびごと
に大量の精製抗原が必要である。(2)主として免疫動
物の固体差に起因する、親和性や力価のバラツキがあ
る。(3)目的とする抗体以外の抗体も混在するため、
目的の抗体を精製するためには繁雑な操作が必要であ
る。(4)一度に作製できる量に限度がある等の欠点が
ある。それ故、正確にかつ最大の効果を持って免疫学的
測定を行うためには、他の抗体の混入しない品質の安定
した均一な抗体が大量に供給できることが望まれてい
た。このような抗体の作製は、既に、モノクローナル抗
体産性技術として報告されている。 一方、メラノーマ患者のりんぱ球をEBウィルスにて癌化
させる事により得られたメラノーマを特異的に認識する
ヒトモノクローナル抗体が、GM2ガングリオシドと反応
する事が報告されている(プロシーディングス オフ
ザ ナショナル アカデミィオフ サイエンスズ オフ
ザ ユーエスエイ;Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.,80,53
92〜5396,1985)。 また、正常の赤血球にはGM2ガングリオシドがほとんど
存在しないにもかかわらず、ヒト赤白血病細胞には、GM
2ガングリオシドが蓄積する事が報告されている(ブラ
ッド;Blood,62,1230〜1241,1983)。 また、マウスミエローマを免疫する事により得られたN
−アセチルGM2ガングリオシド及びN−グリコリルGM2ガ
ングリオシドを認識するモノクローナル抗体を用いてGM
2ガングリオシドが主として神経外胚葉由来の癌細胞に
発現する事が示されている(キャンサリサーチ;Cancer
Res.,46,4116〜4120,1986)。 このように、N−アセチルGM2ガングリオシド及びN−
グリコリルGM2ガングリオシドは癌関連抗原と考えら
れ、これらを高感度に精度よく検出することは癌の診断
上重要である。 上述したように、N−グリコリルGM2ガングリオシド及
びその関連糖脂質及びそれらの糖鎖構造はガン関連抗原
として極めて重要であり、それ故N−グリコリルGM2ガ
ングリオシドとの反応性を有するモノクローナル抗体、
たとえばN−グリコリルGM2ガングリオシド及びN−ア
セチルGM2ガングリオシドとの特異的反応性を有するモ
ノクローナル抗体や、N−グリコリルGM2ガングリオシ
ド及びその他のN−グリコリルノイラミン酸を含有する
糖脂質との特異的な反応性を有するモノクローナル抗体
は、各種の疾患の診断、特に組織、細胞診断又は血液、
尿診断又は画像診断等による人癌診断に極めて有用であ
る。また、抗体に薬物を結合させるミサイル療法や細胞
傷害性を利用した治療への応用が可能であり糖鎖に対す
る抗体の検出による診断にも応用可能である。また、N
−グリコリルGM2ガングリオシドとの反応性を有する種
々のモノクローナル抗体は糖鎖と癌化機構との関連や、
糖鎖や糖脂質の構造や生体内での役割機能等についての
基礎的研究において、有用な道具として用いることが可
能である。 このように、少くともN−グリコリルGM2ガングリオシ
ドを認識するモノクローナル抗体を製造する事は極めて
重要な事と考えられる。 しかしながら、N−グリコリルノイラミン酸は人及びニ
ワトリを除きマウスを含む多くの動物体内に存在する事
及び本発明において対象とするN−グリコリルGM2ガン
グリオシドを含むN−グリコリルノイラミン酸含有糖脂
質はマウス組織内に広く存在することが知られており、
マウスにとっては、これらの糖脂質は自己抗原であり、
免疫原性は極めて弱いと考えられ、従ってBalb/cマウス
等の正常マウスを免疫動物として用いる従来の方法にお
いてはN−グリコリルGM2ガングリオシドを含めN−グ
リコリルノイラミン酸含有糖脂質に対するモノクローナ
ル抗体産生ハイブリドーマを得ることは極めて困難であ
った。 一方、自己免疫疾患動物は、抗核抗体や抗赤血球抗体等
自己抗原に対する抗体を産生する事が知られている〔イ
ムノロジカル レビュー(Immunol.Rev.)、第55巻、第
121〜154頁(1981年)〕。本発明者は自己免疫疾患動物
特に自己免疫疾患マウスに免疫感作する事により、自己
抗原と考えられるN−グリコリルノイラミン酸含有糖脂
質に対し免疫反応性を高める事ができバイブリドーマの
作成が可能となると考え、これを試みその目的を達し
た。この過程で特に、N−グリコリルGM2ガングリオシ
ドを認識するモノクローナル抗体を産生するハイブリド
ーマを容易に作成する事ができる事を見い出し、本発明
を完成するに至った。 〔発明の目的〕 本発明の目的は少くともN−グリコリルGM2ガングリオ
シドを特異的に認識するモノクローナル抗体の製造方法
を提供することにある。 〔発明の構成〕 (問題点を解決するための手段) 本発明は、少なくともN−グリコリルGM2ガングリオシ
ドを認識するモノクローナル抗体の製造方法に関するも
のであり骨髄腫細胞と自己免疫動物の形質細胞を融合さ
せたハイブリドーマにより産生する事を特徴とする。 以後に記述される糖脂質の構造を下記に示す。 N−グリコリルGM2ガングリオシド(II3NeuGc-GgOse3Ce
r) N−グリコリルGM3ガングリオシド(II3NeuGc-Lac Ce
r) N−アセチルGM2ガングリオシド(II3NeuAc-GgOse3 Ce
r) N−アセチルGM3ガングリオシド(II3NeuAc-LacCer) アシアロGM2(GgOse3 Cer) GalNAcβ1→4Galβ1→4Glcβ1→1Cer CDH(Lac Cer) Galβ1→4Glcβ1→1Cer 式中、Galはガラクトース、Glcはグリコース、GalNAcは
N−アセチルガラクトサミン、GlcNAcはN−アセチルグ
ルコサミン、NeuGcはN−グリコリルノイラミン酸、Neu
AcはN−アセチルノイラミン酸、Cerはセラミドを意味
する。 該モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマの作成
方法を以下に説明する。形質細胞を得るための哺乳動物
として自己免疫疾患動物を用いるが、その際細胞融合に
使用する骨髄種細胞との適合性を考慮して選択するのが
好ましく、マウス、ラットが好ましい。 使用可能な自己免疫疾患マウスとしてはNZB,NZW,B/WF1,
MRL/1,BXSB雄、SL/N1の各系統のマウス等が挙げられ、
自己免疫疾患ラットとしては高血圧自然発症ラットが挙
げられる。 また、グラム陰性菌脂質多糖体(LPS)、デキストラン
硫酸等のポリクローナルB 細胞活性化剤(PBA)を投
与することにより自己抗体産生能を高めさせたBalb/c等
の正常マウスを自己免疫疾患状態にし、用いても良い。 免疫原としては、対象とするN−グリコリルGM2ガング
リオシドを有する細胞自体、該細胞より分離した細胞膜
成分及び該細胞より分離したN−グリコリルGM2ガング
リオシドのいずれも用いることが可能である。また、糖
脂質を燐脂質とコレステロールと共にリポソームとし用
いることも可能である。免疫は一般的方法により行わ
れ、上記免疫原を燐酸緩衝溶液(以下PBSと称する)等
にて希釈し、腹腔内若しくは静脈内に投与すればよい。
その際、免疫原を牛血清アルブミン(BSA)や菌体等の
担体に担持させてもよく、また、フロイントアジュバン
トや菌体アジュバント等のアジュバントを共に注射して
もよい。 また自己免疫疾患マウスを用いる本発明の方法では必ず
しも免疫原を用いる必要はない。 マウス赤血球にはN−グリコリルGM2ガングリオシドが
存在する事〔ジャーナル・オブ・バイオケミストリー
(東京)(J.Biochem.(Tokyo)),第91巻,第1039〜1
046頁(1982年)〕、及び自己免疫疾患マウスは、抗赤
血球抗体を含む自己抗体を産生する事から自己免疫疾患
マウスはN−グリコリルGM2ガングリオシドに対する抗
体を抗赤血球自己抗体もしくは他の自己抗体として産生
している、もしくは産生しやすい状態にあると考えられ
る。それ故、N−グリコリルGM2ガングリオシド、その
糖鎖、又はそれらを含む物質で免疫感作された事のない
自己免疫疾患マウスを用いる場合は免疫原を用いる事な
く、N−グリコリルGM2ガングリオシドと反応するモノ
クローナル抗体産生ハイブリドーマの作成が可能であ
る。免疫原を用いない場合においては、自己免疫疾患マ
ウスに対し何ら注射しなくても良いが、フロイントの完
全アジュバントやフロイントの不完全アジュバンドや百
日ぜき死菌体やサルモネラ死菌体等、各種アジュバント
を注射し、自己免疫疾患マウスの免疫応答能を高める事
が好ましい。 動物から採取した形質細胞は骨髄腫細胞と融合させる。
形質細胞は一般に脾細胞として得られる。骨髄腫細胞と
しては、マウス骨髄種細胞が好ましく、既に公知の種々
の細胞、例えばNS-1、SP-2、X63.6.5.3、P3-U1等が使用
できる。融合方法は公知の手法に準じて行われる。融合
促進剤としては、例えばポリエチレングリコール(PE
G)、センダイウイルス(HVJ)等が使用される。脾細胞
と骨髄腫細胞との使用比は一般的方法と同様であり、1
対1〜10対1が好ましい。 融合終了後、通常の選択用培地にて培養することにより
ハイブリドーマを選択する。前記した骨髄腫細胞はHAT
培地(ヒポキサンチン、アミノプテリン及びチミジンを
含む培地)中では生育できないため、HAT培地中で生育
する細胞を選択すればよい。 ハイブリドーマのコロニが充分大きくなったところで目
的とする抗体の産生株の検索及びクローニングが行われ
る。 該抗体産生株の検索は、一般に抗体の検出に用いられて
いる方法、例えばELISA法(メソッド イン エンザイ
モロジ;Meth.Enzymol.,70,419〜439,1980)、凝集反応
法、RIA法、二重免疫拡散法などにより行われる。 具体的には、精製した糖脂質抗原を付着させたプレート
をBSAにてブロッキングした後、被検ハイブリドーマの
培養上清と反応させ、更に、酵素標識したマウス抗体に
対する抗体を反応させ、該抗原に結合した抗体の存在
を、酵素活性を測定することにより確認し、所望の抗体
産生株を選択する。 また、クローニングは限界希釈法により行われる。すな
わち、96穴マイクロタイタ プレート上に、ハイブリド
ーマが各ウエル当り1個以下になるように分配し、単一
コロニを生育させる。この際、フィーダ細胞としてマウ
ス胸腺細胞を添加することが好ましい。 上述のクローニングを繰返し、モノクローン化されたハ
イブリドーマを得る。 ハイブリドーマが産生するモノクローナル抗体を得るに
は、ハイブリドーマを培地中にて培養し、培養上清から
分離する方法、あるいはハイブリドーマをマウス腹腔内
に投与し、その腹水より回収する方法がある。更に、一
般的な方法、すなわち硫安沈殿、ゲル瀘過、イオン交換
カラムクロマトグラフィ等を用いて精製することも可能
である。 〔実施例〕 以下、実施例により本発明を更に詳細に説明するが、こ
れらの実施例は本発明の範囲を何ら制限するものではな
い。 実施例1 1)抗原及び各種糖脂質の単離、精製 ウサギ胸腺細胞膜成分 生後6週齢のウサギ2匹より得た胸腺組織をPBS中ホモ
ジナイズし、800rpmにて5分間遠心分離した。上清を1
0,000gにて1時間遠心分離し、得られたペレットをPBS
10mlに分散し、免疫原として用いた。 糖脂質 牛腎臓を冷アセトン中ホモジナイズし、更に、多量の冷
アセトンを加え、得られた沈殿物より、容量比クロロホ
ルム:メタノール:水(10:20:1)(10:10:0)(20:10:
1)の各混合溶液にて順次抽出操作を行った。得られた
粗製糖脂質をDEAE−セファデックスA-25カラムクロマト
グラフィにかけ、酸性画分と中性画分に分け、酸性画分
をイアトロビーズカラムクロマトグラフィにかけ、N−
グリコリルGM2ガングリオシドを得た。同様にして馬赤
血球よりN−グリコリルGM3ガングリオシドを、牛赤血
球よりIV3NeuGc-nLcOse4 Cerを、人脳よりN−アセチル
GM2ガングリオシド及びN−アセチルGM3ガングリオシド
を、人赤血球よりCDHを得た。N−アセチルGM2ガングリ
オシドを1N蟻酸中にて100℃、1時間反応させ、DEAE−
セファデックスA-25カラムクロマトグラフィ、次いでイ
アトロビーズカラムクロマトグラフィを行い、アシアロ
GM2を得た。免疫感作用の糖脂質含有リポソームは、糖
脂質1mg、ホスファチジルコリン4mg、コレステロール10
mgの容量比クロロホルム:メタノール(1:1)混合溶液
をフラスコ中、減圧下、完全に溶媒を除去した後、PBS5
mlを加え、超音波をかけることにより調製した。 2)免疫法及び細胞融合 1回目 ウナギ胸腺細胞膜成分PBS溶液と、同量のフロイント完
全アジュバントを乳化混合し、400μlをNZBマウス
(雌、6週齢)の腹腔内に注射した。2週間後、更にフ
ロイント不完全アジュバンドを用い、同様に注射した。
13週間後、IV3NeuGc-nLcOse4Cer含有リポソームPBS溶液
100μlを腹腔内注射し、更に2週間後同様にリポソー
ムを注射した。 細胞融合 最終免疫の3日後にマウスより脾臓を取出し、単細胞に
ほぐした後、脾細胞を、RPMI 1640培地にて洗浄した。
一方、対数増殖期にあるマウス骨髄腫細胞X63.6.5.3を
集め、RPMI1640培地にて洗浄した。脾細胞7×107個の
浮遊液とマウスミエローマ1.4×107個の浮遊液を混合し
遠心分離にて培地を除去した。37℃加温した水浴中に
て、混合した細胞に50%ポリエチレングリコール−RPMI
1640培地1mlを1分間かけて徐々に加え、1分間ゆるや
かにかくはんさせ融合を行った。RPMI1640培地2mlを2
分間かけ、更に7mlを2分間かけゆるやかにかくはんし
つつ添加した。遠心分離にて培地を除去し、細胞に10%
牛胎児血清含有RPMI1640培地20mlを加え、96穴プレート
2枚に1穴当り0.1mlずつ分配した。翌日、HAT培地(4
×10-7Mアミノプリテン、1.6×10-5Mチミジン、1×10
-4Mヒポキサンチン、10%牛胎児血清を含むRPMI1640培
地)0.1ml各ウエルに加えた。各ウエルの培地は、更
に、3日又は4日毎にHAT培地に半量ずつ交換した。3
週間後、80%のウエルにハイブリドーマの生育が見られ
た。 2回目 ウサギ胸線細胞膜成分PBS溶液と、同量のフロイント完
全アジュバントを乳化混合し、300μlをNZBマウス
(雌、6週齢)の腹腔内に注射した。以後、酸で処理し
たサルモネラミネタバクテリア80μgに吸着させたN−
グリコリルGM3ガングリオシド20μgのPBS溶液200μl
を2週間ごとに5回静脈注射した。 最終免疫の3日後にマウスより脾臓を取出し、単細胞に
ほぐした後、脾細胞を、RPMI1640培地にて洗浄した。一
方、対数増殖期にあるマウス骨髄腫細胞X63.6.5.3を集
め、RPMI1640培地にて洗浄した。脾細胞4.7×108個の浮
遊液とマウスミエローマ9.2×107個の浮遊液を混合し遠
心分離にて培地を除去した。37℃に加温した水浴中に
て、混合して細胞に50%ポリエチレングリコール−RPMI
1640培地2mlを1分間かけて徐々に加え、1分間ゆるや
かにかくはんさせ融合を行た。RPMI1640培地4mlを2分
間かけ、更に14mlを2分間かけゆるやかにかくはんしつ
つ添加した。遠心分離にて培地を除去し、細胞に10%牛
胎児血清含有RPMI1640培地120mlを加え、96穴プレート1
2枚に1穴当り0.1mlずつ分配した。翌日、HAT培地(4
×10-7Mアミノプリテン、1.6×10-5Mチミジン、1×10
-4Mヒポキサンチン、10%牛胎児血清を含むRPMI1640培
地)0.1mlを各ウエルに加えた。各ウエルの培地は、更
に、3日又は4日ごとにHAT培地に半量ずつ交換した。
3週間後、90%のウエルハイブリドーマの生育が見られ
た。 3回目 免疫法は、静脈注射を8回行った以外は2回目と同様に
行った。 細胞融合は、脾細胞3.6×108個、マウスミエローマ7.1
×107個を用い、100mlの10%牛胎児血清含有RPMI培地を
加え、96穴プレート10枚に分配した以外は2回目と同様
に行った。 3週間後、80%のウエルにハイブリドーマの生育が見ら
れた。 3)ハイブリドーマの選択 ハイブリドーマ培養上清中の抗体の検索はELISA法にて
行った。 抗原として、N−グリコリルGM2ガングリオシド、N−
グリコリルGM3ガングリオシド及びIV3NeuGc-nLcOse4Cer
を用いた。各抗原500ngをELISA用マイクロタイタプレー
トに吸着させ、1%BSA・PBS溶液にてブロッキングした
後、培養上清を反応させた。更に、パーオキシダーゼ標
識ヤギ抗マウス免疫グロブリン抗体を反応させ、基質と
してオルトフェニレンジアミンを用い、492nmの吸光度
を測定することにより、目的の抗体を検出した。その結
果、1回目の免疫、細胞融合にて作製したハイブリドー
マ中、1つのウエルに活性が検出され、また2回目の免
疫、細胞融合にて作製したハイブリドーマ中、2つのウ
エルに活性が検出された。 また、3回目の免疫、細胞融合にて作製したハイブリド
ーマ中、4つのウエルに活性が検出された。 これらのハイブリドーマはHAT培地からアミノプリテン
を除いたHT培地に移し、更に10%牛胎児血清(FCS)含
有RPMI1640培地に移し培養した。 実施例2 ELISA法による各モノクローナル抗体の抗原特異性の測
定: 各種糖脂質0.2nmolを抗原とし、ELISA法を行った。プレ
ート上に吸着させた抗原とハイブリドーマ培養上清を反
応させ、更にパーオキシダーゼ標識ヤギ抗マウス免疫グ
ロブリン抗体を反応させた。オルトフェニレンジアミン
を基質とし、492nmの吸光度を測定し、各種抗原に対す
るモノクローナル抗体の反応性を調べた。その結果を次
表に示す。 得られたモノクローナル抗体のうち、PyK-2、YHD-04及
びYHD-07はN−グリコリルGM2ガングリオシドに対し強
い反応性を示し、YHD-02、YHD-03及びYHD-05はN−グリ
コリルGM2ガングリオシドのほかにN−グリコリルGM3ガ
ングリオシドやIV3NenGL-nLcOse4Cerとの反応性も示し
た。またYHD-06はN−グリコリルGM2ガングリオシドの
ほかN−アセチルGM2ガングリオシドとの反応を示し
た。すなわち、PyK-2、YHD-04、YHD-06及びYHD-07は免
疫源として用いたIV3NenGc-nLcOse4Cer又はN−グリコ
リルGM3ガングリオシドに対する反応性は示さず、N−
グリコリルGM2ガングリオシドに対し強い反応性を示す
ものであった。 実施例3 薄層クロマトグラフィー(以下「TCL」という)プレー
ト上でのウサギ胸線組織中の糖脂質の検討: 実施例1にて免疫源として用いたウサギ胸線組織中には
N−グリコリルGM3ガングリオシドやIV3NenGc-nLcOse4C
er等、多くのN−グリコリルノイラミン酸含有糖脂質が
存在する事が報告されている〔バイオキミカ エト バ
イオフィジカ アクタ(Biochim,Biophys.Acta)、第66
5巻第205〜213頁(1981年)〕がN−グリコリルGM2ガン
グリオシドの存在については不明である。モノクローナ
ル抗体を用い、その確認を試みた。 ウサギ胸線組織に対し、容量比クロロホルム:メタノー
ル:水(10:20:1),(10:10:0),(20:10:1)の各混
合溶液にて順次抽出操作を行い、得られた粗製糖脂質を
DEAE−セファデックスA-25カラムクロマトグラフィにか
け、ガングリオシドを含む酸性画分を得た。得られた酸
性画分に対し、モノクローナル抗体PyK-2を用いTLC上酵
素免疫染色を行った。 TLCプレートの下端から1cmの場所に6mmの幅でサンプル
をスポッティグし、溶媒系クロロホルム:メタノール:
2.5Nアンモニア水(55:45:10容量比)にて展開した。同
じ操作を行った2枚のプレートのうち、1枚はオルシノ
ール試薬にて発色させた。もう1枚にはPyK-2を反応さ
せ、更にパーオキシダーゼ標識ヤギ抗マウス免疫グロブ
リン抗体を反応させた。基質として4-クロロ−1−ナフ
トールを用い、青紫色の発色スポットを検出した。 図にその結果を示す。 Aはオルシノール試薬による発色を、Bは酵素免疫染色
を行ったプレートである。1及び3にはN−グリコリル
GM2ガングリオシドをおのおの2nmol、30pmolスポット
し、2、4にはシアル酸含量2nmolのウサギ胸線組織ク
ロロホルム:メタノール抽出酸性画分をスポットし展開
した。 本発明の実施例1にて免疫源として用いたウサギ胸線組
織にはN−グリコリルGM2ガングリオシドが存在しない
事が本実施例により確かめられ、実施例1により作成さ
れたN−グリコリルGM2ガングリオシドに対し反応性を
有する抗体を産生するハイブリドーマは、N−グリコリ
ルGM2ガングリオシドがNZBマウスに注射される事なく作
成された事が確認された。[Field of Industrial Application] The present invention relates to a method for producing and producing a monoclonal antibody that reacts with at least N-glycolyl GM 2 ganglioside by a hybridoma. [Prior Art] Glycolipids are constituent components of cell membranes.
Various molecular species exist depending on the binding method, and show species-specific, organ-specific, and cell-specific distribution. As its function, it plays an important role as a receptor for bacterial toxins, hormones, etc., and as an immunological determinant for blood group substances, as well as in controlling proliferation or differentiation and in cell-cell interactions. It is becoming clear that Furthermore, it has been shown that qualitative and quantitative compositional changes occur as cells become cancerous, and that some of them can become cancer antigens. In addition, certain glycolipids regulate the cell growth mechanism mediated by growth factors and protein kinases. It is also suggested that the compositional change, such as the case of working as a person, may be directly involved in the canceration mechanism. On the other hand, a method for establishing a cell line that produces a uniform antibody having specificity for one type of antigenic determinant was reported by Milstein et al. (Nature; Nature, 256 495-497, 1975),
It became possible to qualitatively and quantitatively analyze trace substances. This technique was used to search for cancer antigens and differentiation antigens, and many monoclonal antibodies specific for cancer cells and fetal cells undergoing differentiation were produced. Some of them were glycolipids or glycoproteins. It was revealed to be an antibody that recognizes the sugar chain of J. Natl. Cancer Inst. 71 231-251,198.
3). For example, as a monoclonal antibody against human melanoma, an antibody that reacts with a glycolipid such as GD 2 ganglioside or GD 3 ganglioside has been obtained. The pancreatic cancer-specific monoclonal antibody NS19-9 reacts with glycolipids and glycoproteins having a sialosyl Lewis A type sugar chain. These antibodies are useful for diagnosing cancer and observing the course of treatment,
Further, its use for treatment has also been attempted. The qualitative and quantitative changes associated with canceration of glycolipids are due to changes in the activity of various glycosyltransferases in the sugar chain biosynthesis mechanism due to abnormal gene expression, and as a result, they are present in normal tissues. A sugar chain structure that does not occur is created. The sugar chain structure can be used as a cancer marker. As described above, the importance and usefulness of glycolipids as cancer antigens and cancer markers and as cancer markers are attracting attention, and they are expected to be applied to clinical fields such as diagnosis and treatment. Among glycolipids, those containing sialic acid, which is an acidic sugar, in their sugar chains are collectively called gangliosides. The main types of sialic acid are N-acetylneuraminic acid and N-glycolylneuraminic acid. Sialic acid is widely detected in various organs, cells and body fluids of animal species, but N-glycolylneuraminic acid has not been found so far in normal humans and chickens. In the following description, when it is necessary to distinguish between these types of sialic acid, N-glycolyl or N-acetyl will be added before the name of glycolipid to distinguish them. Detected in patients with serum sickness, sheep, horses, pigs, rabbits,
The heterophilic antibody that aggregates guinea pig erythrocytes is called Hanganatziu-Deicher (hereinafter abbreviated as HD) antibody. The antigen identified by this antibody is called the HD antigen. It has been reported that gangliosides containing N-glycolylneuraminic acid have HD antigenic activity [Biochemical and Biophysical Research Communications (Biochem.Biophys.Res.Co.
mmun.) 79, 388-395 (1977)], NeuGcα2-3
The sugar chain structure of Gal was identified as the major antigenic determinant. In recent years, N- which is a ganglioside having HD antigenic activity
Immunize chickens with glycolyl GM 3 ganglioside (II 3 NeuGc-LacCer) to prepare antibodies that react with various gangliosides having HD antigen activity from serum. Using this antibody, N-glycolylneuraminic acid It was reported to be characteristically present in human cancer tissues [Biken J., Vol. 25, pp. 47-50 (1982)]. In addition, some of the glycolipids extracted from human colon cancer tissue
HD antigen-active N-glycolylneuraminic acid-containing ganglioside was detected, and HD antigen-active glycoprotein-containing glycoprotein was detected in the teratoma tissue [Gan (Gan
n), Vol. 75, pp. 1025-1029 (1984)]. When a glycolipid having HD antigen activity detected from human colon cancer tissue was analyzed using an antibody prepared in chicken, N-
Glycolyl GM 2 ganglioside, N-glycolyl GM 3 ganglioside, o-acyl-N-glycolyl GM 3 ganglioside, IV 3 NeuGc-nLcOse 4 Cer, which were not detected in normal tissues [Cancer Research (Canc.
er Res.), Vol. 45, pp. 3996-3802 (1985)]. Gangliosides with HD antigenic activity were also detected in a Marek's disease cell line, one of chicken lymphomas [Journal of Biochemistry (Tokyo); J. Biochem. (Tokyo)], No. 95, 785-794 (1984)]. Including N- glycolylneuraminic acid and N- glycolyl GM 2 ganglioside sugar chain, N- glycolyl neuraminic acid containing sugar chain is considered to cancer-associated antigens, cancer can be detected accurately these high sensitivity It is extremely important for diagnosis. Including N- glycolylneuraminic acid or N- glycolyl GM 2 ganglioside sugar chain to efficiently detect the N- glycolyl-neuraminic acid containing sugar chain, the detection sensitivity, in terms of accuracy, immunoassay The law is considered excellent. An antibody that reacts with an N-glycolylneuraminic acid-containing sugar chain having HD antigen activity has been conventionally obtained by immunizing a chicken with a purified glycolipid antigen having HD antigen activity and separating it from its serum [Molecular • Immunology (Molec.Jmmunol.) Vol. 19, pp. 87-94 (1982)]. N- glycolyl GM higher polyclonal antibody specificity to ganglioside can be obtained by immunizing chicken to N- glycolyl GM 2 ganglioside [Biochemical and Biophysical Research Communications (Biochem.) , First
29, 334-341 (1985)], N-glycolyl GM 2
Polyclonal antibodies reactive against gangliosides and N- glycolyl GM 3 ganglioside can be obtained by immunizing an N- glycolyl GM 3 Gagurioshido chicken [Cancer Research (Cancer Res.)
Volume 45, pages 3996-3802 (1985)]. However, these methods have some drawbacks. That is, (1) A large amount of purified antigen is required each time to obtain antiserum. (2) There are variations in affinity and titer mainly due to individual differences in immunized animals. (3) Since antibodies other than the target antibody are mixed,
A complicated operation is required to purify the desired antibody. (4) There are drawbacks such as a limited amount that can be manufactured at one time. Therefore, in order to perform an immunological assay accurately and with the maximum effect, it has been desired to supply a large amount of a uniform antibody having a stable quality and free from the contamination of other antibodies. The production of such an antibody has already been reported as a technology for producing monoclonal antibodies. On the other hand, it has been reported that a human monoclonal antibody that specifically recognizes melanoma obtained by transforming phosphoplasm of melanoma patient with EB virus reacts with GM 2 ganglioside (Proceedings Off
The National Akademyiofu Science's off-the-Yuesuei; Proc.Natl.Acad.Sci.USA, 80, 53
92-5396,1985). Also, even though GM 2 ganglioside hardly present in normal erythrocytes, the human erythroleukemia cell, GM
Accumulation of 2 gangliosides has been reported (Blood; Blood, 62 , 1230 to 1241, 1983). In addition, N obtained by immunizing mouse myeloma
- acetyl GM 2 ganglioside and N- glycolyl GM 2 ganglioside and with monoclonal antibodies recognizing GM
It has been shown that 2 gangliosides are mainly expressed in cancer cells of neuroectodermal origin (Cancer Research; Cancer
Res., 46 , 4116-4120, 1986). Thus, N-acetyl GM 2 ganglioside and N-acetyl
Glycolyl GM 2 ganglioside is considered to be a cancer-associated antigen, and it is important to detect these with high sensitivity and accuracy for the diagnosis of cancer. As described above, N-glycolyl GM 2 ganglioside and its related glycolipids and their sugar chain structures are extremely important as cancer-related antigens, and thus monoclonal antibodies having reactivity with N-glycolyl GM 2 ganglioside,
For example, a monoclonal antibody having specific reactivity with N-glycolyl GM 2 ganglioside and N-acetyl GM 2 ganglioside, and specificity with a glycolipid containing N-glycolyl GM 2 ganglioside and other N-glycolyl neuraminic acid Monoclonal antibodies having specific reactivity are useful for diagnosing various diseases, particularly tissue, cytodiagnosis or blood,
It is extremely useful for diagnosing human cancer by urine diagnosis or image diagnosis. Further, it can be applied to a missile therapy in which a drug is bound to an antibody, a therapy utilizing cytotoxicity, and a diagnosis by detecting an antibody against a sugar chain. Also, N
- Various monoclonal antibodies reactive with glycolyl GM 2 ganglioside related and the sugar chain and carcinogenesis mechanisms,
It can be used as a useful tool in basic research on the structures of sugar chains and glycolipids, their role in vivo, and the like. Thus, it is considered extremely important to produce a monoclonal antibody that recognizes at least N-glycolyl GM 2 ganglioside. However, N-glycolylneuraminic acid exists in many animal bodies including mice except humans and chickens, and the N-glycolylneuraminic acid-containing sugar containing N-glycolyl GM 2 ganglioside, which is the object of the present invention, is included. It is known that lipids are widely present in mouse tissues,
For mice, these glycolipids are self-antigens,
Immunogenicity is considered to be extremely weak. Therefore, in the conventional method using normal mice such as Balb / c mice as immunized animals, monoclonal antibodies against N-glycolylneuraminic acid-containing glycolipids including N-glycolyl GM 2 ganglioside are used. Obtaining a producing hybridoma was extremely difficult. On the other hand, animals with autoimmune diseases are known to produce antibodies against autoantigens such as antinuclear antibodies and anti-erythrocyte antibodies [Immunological Review (Immunol. Rev.), Vol. 55, Vol.
121-154 (1981)]. The present inventor can enhance the immunoreactivity to an N-glycolylneuraminic acid-containing glycolipid, which is considered to be a self-antigen, by immunizing an autoimmune disease animal, particularly a mouse having an autoimmune disease, and thus producing a hybridoma. I thought it would be possible, tried this, and achieved its purpose. In this process, in particular, it was found that a hybridoma producing a monoclonal antibody that recognizes N-glycolyl GM 2 ganglioside can be easily prepared, and the present invention has been completed. [Object of the Invention] An object of the present invention is to provide a method for producing a monoclonal antibody that specifically recognizes at least N-glycolyl GM 2 ganglioside. [Structure of the Invention] (Means for Solving Problems) The present invention relates to a method for producing a monoclonal antibody that recognizes at least N-glycolyl GM 2 ganglioside, and fuses myeloma cells with plasma cells of an autoimmune animal. It is characterized in that it is produced by the hybridoma. The structures of glycolipids described below are shown below. N-glycolyl GM 2 ganglioside (II 3 NeuGc-GgOse 3 Ce
r) N-glycolyl GM 3 ganglioside (II 3 NeuGc-Lac Ce
r) N-acetyl GM 2 ganglioside (II 3 NeuAc-GgOse 3 Ce
r) N-Acetyl GM 3 Ganglioside (II 3 NeuAc-LacCer) Asialo GM 2 (GgOse 3 Cer) GalNAcβ1 → 4Galβ1 → 4Glcβ1 → 1Cer CDH (Lac Cer) Galβ1 → 4Glcβ1 → 1Cer In the formula, Gal is galactose, Glc is glucose, GalNAc is N-acetylgalactosamine, and GlcNAc is N-acetylglucosamine. NeuGc is N-glycolylneuraminic acid, Neu
Ac means N-acetylneuraminic acid, and Cer means ceramide. A method for producing a hybridoma that produces the monoclonal antibody will be described below. An autoimmune disease animal is used as a mammal for obtaining plasma cells, and it is preferable to select it in consideration of compatibility with myeloma cells used for cell fusion, and mice and rats are preferable. Available autoimmune disease mice are NZB, NZW, B / WF 1 ,
MRL / 1, BXSB male, SL / N1 mouse of each strain, etc.,
Examples of autoimmune disease rats include spontaneously hypertensive rats. In addition, normal mice such as Balb / c whose autoantibody-producing ability was enhanced by administering a polyclonal B cell activator (PBA) such as gram-negative bacterial lipid polysaccharide (LPS) and dextran sulfate were treated for autoimmune disease. May be used. The immunogen can be used any of the cells themselves, N- glycolyl GM 2 ganglioside isolated from cell membrane components and the cells isolated from the cells with N- glycolyl GM 2 ganglioside of interest. It is also possible to use glycolipids as liposomes together with phospholipids and cholesterol. Immunization is performed by a general method, and the above immunogen may be diluted with a phosphate buffer solution (hereinafter referred to as PBS) or the like and administered intraperitoneally or intravenously.
At that time, the immunogen may be carried on a carrier such as bovine serum albumin (BSA) or bacterial cells, or may be injected together with an adjuvant such as Freund's adjuvant or bacterial cell adjuvant. Further, in the method of the present invention using an autoimmune disease mouse, it is not always necessary to use an immunogen. The presence of N-glycolyl GM 2 ganglioside in mouse erythrocytes [J. Biochem. (Tokyo)], Vol. 91, 1039-1
046 (1982)], and since autoimmune disease mice produce autoantibodies including anti-erythrocyte antibodies, autoimmune disease mice are treated with anti-erythrocyte autoantibodies or other autoantibodies against N-glycolyl GM 2 ganglioside. Is considered to be produced or is likely to be produced. Therefore, when using an autoimmune disease mouse that has never been immunized with N-glycolyl GM 2 ganglioside, its sugar chain, or a substance containing them, N-glycolyl GM 2 ganglioside is used without using an immunogen. It is possible to produce a reactive monoclonal antibody-producing hybridoma. When no immunogen is used, no injection is required for autoimmune disease mice, but various adjuvants such as Freund's complete adjuvant, Freund's incomplete adjuvant, pertussis killed cells, and Salmonella killed cells are used. It is preferable to inject it to enhance the immune response capacity of autoimmune disease mice. Plasma cells collected from the animal are fused with myeloma cells.
Plasma cells are generally obtained as splenocytes. As the myeloma cells, mouse myeloma cells are preferable, and various known cells such as NS-1, SP-2, X63.6.5.3, P3-U1 and the like can be used. The fusion method is performed according to a known method. Examples of fusion promoters include polyethylene glycol (PE
G), Sendai virus (HVJ), etc. are used. The ratio of splenocytes to myeloma cells used was the same as in the general method.
1 to 10 to 1 is preferable. After completion of the fusion, hybridomas are selected by culturing in a usual selection medium. The myeloma cells described above are HAT
Since it cannot grow in a medium (medium containing hypoxanthine, aminopterin and thymidine), cells that grow in a HAT medium may be selected. When the colony of the hybridoma becomes sufficiently large, the production strain of the desired antibody is searched and cloned. The antibody-producing strain is searched by a method generally used for antibody detection, for example, an ELISA method (method in enzymology; Meth. Enzymol., 70 , 419 to 439, 1980), an agglutination reaction method, a RIA method, a double method. It is performed by an immunodiffusion method or the like. Specifically, after blocking the plate on which the purified glycolipid antigen has been attached with BSA, the plate is reacted with the culture supernatant of the test hybridoma, and further reacted with an enzyme-labeled mouse antibody antibody to the antigen. The presence of the bound antibody is confirmed by measuring the enzyme activity, and the desired antibody-producing strain is selected. Moreover, cloning is performed by the limiting dilution method. That is, a single colony is grown on a 96-well microtiter plate so that the number of hybridomas is 1 or less per well. At this time, it is preferable to add mouse thymocytes as feeder cells. The above cloning is repeated to obtain a monocloned hybridoma. To obtain the monoclonal antibody produced by the hybridoma, there is a method of culturing the hybridoma in a medium and separating it from the culture supernatant, or a method of administering the hybridoma into the abdominal cavity of a mouse and collecting it from the ascites. Further, it can be purified by a general method such as ammonium sulfate precipitation, gel filtration, ion exchange column chromatography and the like. [Examples] Hereinafter, the present invention will be described in more detail with reference to Examples, but these Examples do not limit the scope of the present invention. Example 1 1) Isolation and Purification of Antigen and Various Glycolipids Rabbit Thymus Cell Membrane Components Thymus tissues obtained from two 6-week-old rabbits were homogenized in PBS and centrifuged at 800 rpm for 5 minutes. 1 supernatant
Centrifuge at 0,000g for 1 hour and use the resulting pellet in PBS.
It was dispersed in 10 ml and used as an immunogen. Glycolipid Homogenize bovine kidney in cold acetone and add a large amount of cold acetone. From the resulting precipitate, volume ratio chloroform: methanol: water (10: 20: 1) (10: 10: 0) (20 :Ten:
Extraction operation was sequentially performed with each mixed solution of 1). The crude glycolipid thus obtained was subjected to DEAE-Sephadex A-25 column chromatography to divide it into an acidic fraction and a neutral fraction, and the acidic fraction was subjected to iatrobeads column chromatography to obtain N-
Glycolyl GM 2 ganglioside was obtained. Similarly, N-glycolyl GM 3 ganglioside from horse red blood cells, IV 3 NeuGc-nLcOse 4 Cer from bovine red blood cells, and N-acetyl from human brain.
CDH was obtained from human erythrocytes for GM 2 ganglioside and N-acetyl GM 3 ganglioside. N-acetyl GM 2 ganglioside was reacted in 1N formic acid at 100 ° C for 1 hour to give DEAE-
Sephadex A-25 column chromatography followed by iatro beads column chromatography
Got GM 2 . The glycolipid-containing liposome for immunity has 1 mg of glycolipid, 4 mg of phosphatidylcholine and 10 mg of cholesterol.
Volumetric ratio chloroform: methanol (1: 1) mixed solution in a flask under reduced pressure to completely remove the solvent, then PBS5
It was prepared by adding ml and applying ultrasonic waves. 2) Immunization method and cell fusion First time, PBS solution of eel thymus cell membrane component and the same amount of Freund's complete adjuvant were emulsified and mixed, and 400 μl was intraperitoneally injected into NZB mouse (female, 6 weeks old). Two weeks later, the same injection was performed using Freund's incomplete adjuvant.
13 weeks later, IV 3 NeuGc-nLcOse 4 Cer-containing liposome PBS solution
100 μl was intraperitoneally injected, and two weeks later, liposomes were similarly injected. Cell fusion Three days after the final immunization, the spleen was taken out from the mouse, dissociated into single cells, and the splenocytes were washed with RPMI 1640 medium.
On the other hand, mouse myeloma cells X63.6.5.3 in the logarithmic growth phase were collected and washed with RPMI1640 medium. A suspension of 7 × 10 7 splenocytes and a suspension of 1.4 × 10 7 mouse myeloma were mixed and centrifuged to remove the medium. 50% polyethylene glycol-RPMI was added to the mixed cells in a water bath heated at 37 ℃.
1 ml of 1640 medium was gradually added over 1 minute to gently stir for 1 minute to perform fusion. 2 ml of RPMI1640 medium
Over a period of 2 minutes, another 7 ml was added over a period of 2 minutes with gentle stirring. Remove the medium by centrifugation and add 10% to the cells.
20 ml of RPMI1640 medium containing fetal bovine serum was added, and 0.1 ml per well was distributed to two 96-well plates. Next day, HAT medium (4
× 10 -7 M aminopuritene, 1.6 × 10 -5 M thymidine, 1 × 10
-4 M hypoxanthine, RPMI1640 medium containing 10% fetal bovine serum) 0.1 ml was added to each well. Half of the medium in each well was replaced with HAT medium every 3 or 4 days. Three
After a week, growth of hybridomas was observed in 80% of the wells. Second time Rabbit thoracic cell membrane component PBS solution and the same amount of Freund's complete adjuvant were emulsified and mixed, and 300 μl was intraperitoneally injected into NZB mice (female, 6 weeks old). Then, N- adsorbed on 80 μg of Salmonella minetabacteria treated with acid
Glycolyl GM 3 Ganglioside 20μg in PBS solution 200μl
Was intravenously injected 5 times every 2 weeks. Three days after the final immunization, the spleen was taken out from the mouse, dissociated into single cells, and the splenocytes were washed with RPMI1640 medium. On the other hand, mouse myeloma cells X63.6.5.3 in the logarithmic growth phase were collected and washed with RPMI1640 medium. A suspension of 4.7 × 10 8 splenocytes and a suspension of 9.2 × 10 7 mouse myeloma were mixed and centrifuged to remove the medium. Mix in cells in a water bath heated to 37 ℃ to add 50% polyethylene glycol-RPMI to the cells.
2 ml of 1640 medium was gradually added over 1 minute, and gently stirred for 1 minute to perform fusion. 4 ml of RPMI1640 medium was added for 2 minutes, and 14 ml was added for 2 minutes with gentle stirring. The medium was removed by centrifugation, 120 ml of RPMI1640 medium containing 10% fetal bovine serum was added to the cells, and 96-well plate 1
0.1 ml was distributed to each of the two holes. Next day, HAT medium (4
× 10 -7 M aminopuritene, 1.6 × 10 -5 M thymidine, 1 × 10
-4 M hypoxanthine, RPMI1640 medium containing 10% fetal calf serum) 0.1 ml was added to each well. Half of the medium in each well was replaced with HAT medium every 3 or 4 days.
After 3 weeks, 90% of well hybridoma growth was observed. Third immunization method was performed in the same manner as the second immunization except that the intravenous injection was performed eight times. Cell fusion is 3.6 × 10 8 splenocytes, mouse myeloma 7.1
× 10 7 cells was used, plus 10% fetal bovine serum-containing RPMI medium 100 ml, except that distributed in 96-well plates 10 sheets was carried out in the same manner as the second. After 3 weeks, growth of hybridomas was observed in 80% of the wells. 3) Selection of hybridoma The antibody in the hybridoma culture supernatant was searched by ELISA. As an antigen, N-glycolyl GM 2 ganglioside, N-
Glycolyl GM 3 Ganglioside and IV 3 NeuGc-nLcOse 4 Cer
Was used. 500 ng of each antigen was adsorbed on an ELISA microtiter plate, blocked with a 1% BSA / PBS solution, and then the culture supernatant was reacted. Furthermore, a target antibody was detected by reacting a peroxidase-labeled goat anti-mouse immunoglobulin antibody and using orthophenylenediamine as a substrate and measuring the absorbance at 492 nm. As a result, activity was detected in one well in the hybridoma prepared by the first immunization and cell fusion, and activity was detected in two wells in the hybridoma prepared by the second immunization and cell fusion. . In addition, the activity was detected in four wells of the hybridoma prepared by the third immunization and cell fusion. These hybridomas were transferred from HAT medium to HT medium lacking aminopuritene, and further transferred to RPMI1640 medium containing 10% fetal calf serum (FCS) and cultured. Example 2 Measurement of Antigen Specificity of Each Monoclonal Antibody by ELISA Method: ELISA method was carried out using 0.2 nmol of various glycolipids as an antigen. The hybridoma culture supernatant was reacted with the antigen adsorbed on the plate, and further with peroxidase-labeled goat anti-mouse immunoglobulin antibody. Using ortho-phenylenediamine as a substrate, the absorbance at 492 nm was measured to examine the reactivity of the monoclonal antibody with various antigens. The results are shown in the table below. Among the obtained monoclonal antibodies, PyK-2, YHD-04 and YHD-07 show strong reactivity with N-glycolyl GM 2 ganglioside, and YHD-02, YHD-03 and YHD-05 have N-glycolyl GM. In addition to 2 gangliosides, reactivity with N-glycolyl GM 3 ganglioside and IV 3 NenGL-nLcOse 4 Cer was also shown. In addition, YHD-06 showed a reaction with N-glycolyl GM 2 ganglioside as well as N-acetyl GM 2 ganglioside. That is, PyK-2, YHD-04, YHD-06 and YHD-07 do not show reactivity with IV 3 NenGc-nLcOse 4 Cer or N-glycolyl GM 3 ganglioside used as an immunogen, and N-
Glycolyl GM 2 showed strong reactivity with ganglioside. Example 3 Examination of glycolipids in rabbit pleural tissue on thin layer chromatography (hereinafter referred to as “TCL”) plates: N-glycolyl GM was contained in the rabbit pleural tissue used as an immunogen in Example 1. 3 Ganglioside or IV 3 NenGc-nLcOse 4 C
It has been reported that many glycolipids containing N-glycolylneuraminic acid, such as er, are present [Biochim, Biophys.Acta, No. 66].
5: 205-213 (1981)] is unknown about the existence of N-glycolyl GM 2 ganglioside. The confirmation was tried using the monoclonal antibody. Rabbit thoracic tissue was sequentially extracted with mixed solutions of chloroform: methanol: water (10: 20: 1), (10: 10: 0), (20: 10: 1) in volume ratio, and obtained. The crude glycolipid
DEAE-Sephadex A-25 column chromatography was performed to obtain an acidic fraction containing ganglioside. The obtained acidic fraction was subjected to enzyme immunostaining on TLC using the monoclonal antibody PyK-2. Spot the sample with a width of 6 mm 1 cm from the bottom edge of the TLC plate and use the solvent system chloroform: methanol:
It was developed with 2.5N ammonia water (55:45:10 volume ratio). Of the two plates subjected to the same operation, one plate was colored with the orcinol reagent. The other plate was reacted with PyK-2, and further with a peroxidase-labeled goat anti-mouse immunoglobulin antibody. Using 4-chloro-1-naphthol as a substrate, a blue-violet colored spot was detected. The results are shown in the figure. A is a plate developed with an orcinol reagent, and B is a plate subjected to enzyme immunostaining. N-glycolyl for 1 and 3
2 nmol and 30 pmol of GM 2 ganglioside were spotted, respectively, and 2 and 4 were developed by spotting a chloroform / methanol-extracted acidic fraction of rabbit thymus tissue having a sialic acid content of 2 nmol. Rabbits thymus tissue used in Example 1 of the present invention as an immunogen is that no N- glycolyl GM 2 ganglioside is confirmed by this example, N- glycolyl GM 2 ganglioside created by Example 1 It was confirmed that a hybridoma producing an antibody reactive with was produced without injection of N-glycolyl GM 2 ganglioside into NZB mice.
本発明によれば、N−グリコリルGM2ガングリオシドと
の反応性を有する種々のモノクローナル抗体を提供する
ことができる。該抗体は、癌の発生機構の解明、診断及
び治療に非常に有効なものであり、また、糖脂質、糖蛋
白の基礎的研究に有用なものである。According to the present invention, various monoclonal antibodies having reactivity with N-glycolyl GM 2 ganglioside can be provided. The antibody is very effective for elucidating the mechanism of cancer development, diagnosis and treatment, and is also useful for basic research on glycolipids and glycoproteins.
図は、モノクローナル抗体RyKとN−グリコリルGM2ガン
グリオシド及びウサギ胸線組織クロロホルムメタノール
抽出酸性画分との反応性を示す図である。The figure is a diagram showing the reactivity of the monoclonal antibody RyK with N-glycolyl GM 2 ganglioside, and an acidic fraction of rabbit thoracic tissue tissue chloroform-methanol extraction.
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 G01N 33/577 B (C12P 21/08 C12R 1:91) ─────────────────────────────────────────────────── ─── Continuation of the front page (51) Int.Cl. 6 Identification code Internal reference number FI technical display location G01N 33/577 B (C12P 21/08 C12R 1:91)
Claims (4)
ドと反応するモノクローナル抗体を、骨髄腫細胞と自己
免疫疾患動物の形質細胞を融合させて作成したハイブリ
ドーマにより産生する事を特徴とする前記モノクローナ
ル抗体の製造方法。1. A monoclonal antibody which reacts with at least N-glycolyl GM 2 ganglioside is produced by a hybridoma prepared by fusing myeloma cells and plasma cells of an autoimmune disease animal. Production method.
請求の範囲第1項記載のモノクローナル抗体の製造方
法。2. The method for producing a monoclonal antibody according to claim 1, wherein the myeloma cell is a mouse myeloma cell.
ある特許請求の範囲第1項又は第2項記載のモノクロー
ナル抗体の製造方法。3. The method for producing a monoclonal antibody according to claim 1 or 2, wherein the animal having an autoimmune disease is a mouse having an autoimmune disease.
ガングリオシド、その糖鎖、又はそれらを含む物質で免
疫感作された事のない自己免疫疾患マウスである特許請
求の範囲第3項記載のモノクローナル抗体の製造方法。4. A mouse having autoimmune disease is N-glycolyl GM 2.
The method for producing a monoclonal antibody according to claim 3, wherein the mouse is an autoimmune disease mouse that has never been immunized with ganglioside, its sugar chain, or a substance containing them.
Priority Applications (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP62165890A JPH0787798B2 (en) | 1987-04-27 | 1987-07-01 | Method for producing monoclonal antibody |
| US07/186,353 US4965198A (en) | 1985-12-24 | 1988-04-26 | Monoclonal antibody and method of manufacturing hybridoma producing the same |
Applications Claiming Priority (3)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP10385087 | 1987-04-27 | ||
| JP62-103850 | 1987-04-27 | ||
| JP62165890A JPH0787798B2 (en) | 1987-04-27 | 1987-07-01 | Method for producing monoclonal antibody |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS6447390A JPS6447390A (en) | 1989-02-21 |
| JPH0787798B2 true JPH0787798B2 (en) | 1995-09-27 |
Family
ID=26444446
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP62165890A Expired - Lifetime JPH0787798B2 (en) | 1985-12-24 | 1987-07-01 | Method for producing monoclonal antibody |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH0787798B2 (en) |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2004022595A1 (en) * | 2002-09-04 | 2004-03-18 | Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha | CONSTRUCTION OF ANTIBODY USING MRL/lpr MOUSE |
-
1987
- 1987-07-01 JP JP62165890A patent/JPH0787798B2/en not_active Expired - Lifetime
Non-Patent Citations (3)
| Title |
|---|
| CancerResearch,46[8(1986)P.4116−4120 |
| Eur.J.Immunol,12[9(1982)P.761−766 |
| NeurochemicalResearch,10[4(1985)P.499−513 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS6447390A (en) | 1989-02-21 |
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