JPH0822232B2 - L−イソロイシンの製造法 - Google Patents
L−イソロイシンの製造法Info
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- JPH0822232B2 JPH0822232B2 JP10398087A JP10398087A JPH0822232B2 JP H0822232 B2 JPH0822232 B2 JP H0822232B2 JP 10398087 A JP10398087 A JP 10398087A JP 10398087 A JP10398087 A JP 10398087A JP H0822232 B2 JPH0822232 B2 JP H0822232B2
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Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Description
【発明の詳細な説明】 技術分野 本発明は、酵素法によるL−イソロイシンの製造法に
関するものである。
関するものである。
本発明によれば高収量で効率よくL−イソロイシンを
製造することができる。
製造することができる。
L−イソロイシンは必須アミノ酸として、人間および
動物の栄養上重要な役割りをするアミノ酸であり、医
薬、食品、飼料添加剤等としてその需要が近年急激に増
加しつつある。
動物の栄養上重要な役割りをするアミノ酸であり、医
薬、食品、飼料添加剤等としてその需要が近年急激に増
加しつつある。
公知技術 L−イソロイシンの工業的製造法としては、他のアミ
ノ酸の場合と同様に立体異性体が存在する為、化学合成
法ではL体のみの製造は困難であり、主に醗酵法により
生産が行われている。醗酵法としてはDL−α−アミノ酪
酸、スレオニン等のL−イソロイシンの前駆物質を使用
する方法(特公昭43−8709号、同40−2880号公報等)、
前駆物質を特に加えない所謂直接醗酵法(特公昭38−70
91号、特開昭49−93586号公報等)がある。一方酵素法
としては、アンモニウムイオンまたはイソロイシン以外
のL−若しくはDL−アミノ酸の存在下に、D−、L−、
またはDL−α−ケト−β−メチルバレリアン酸からL−
イソロイシンを製造する方法(特公昭46−29789号公
報)、アンモニウムイオンまたはイソロイシン以外のL
−若しくはDL−アミノ酸の存在下に、D−イソロイシン
あるいはD−アロイソロイシンの単独もしくは混合物、
又はこれらとその光学異性体との適宜混合物に作用させ
てL−イソロイシンを製造する方法(特公昭46−29788
号公報)、セラチア(Serratia)属細菌の固定化物を用
いてグルコースとD−スレオニンからL−イソロイシン
を製造する方法(日本醗酵工学会大会講演要旨集p.47〜
48昭和52年度)等が報告されている。しかしながらこれ
らの方法は、原料費が嵩むとか収率が低い課題を抱えて
いる。
ノ酸の場合と同様に立体異性体が存在する為、化学合成
法ではL体のみの製造は困難であり、主に醗酵法により
生産が行われている。醗酵法としてはDL−α−アミノ酪
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する方法(特公昭43−8709号、同40−2880号公報等)、
前駆物質を特に加えない所謂直接醗酵法(特公昭38−70
91号、特開昭49−93586号公報等)がある。一方酵素法
としては、アンモニウムイオンまたはイソロイシン以外
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またはDL−α−ケト−β−メチルバレリアン酸からL−
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又はこれらとその光学異性体との適宜混合物に作用させ
てL−イソロイシンを製造する方法(特公昭46−29788
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48昭和52年度)等が報告されている。しかしながらこれ
らの方法は、原料費が嵩むとか収率が低い課題を抱えて
いる。
発明の要旨 本発明は、ビオチン要求性のブレビバクテリウム(Br
evibacterium)属に属する微生物菌体の存在下、α−ケ
ト酪酸又はその塩を、少なくともエタノールを含有する
水溶液にて酵素反応させて該溶液中にL−イソロイシン
を生成せしめ、これからL−イソロイシンを採取するこ
とを特徴とするL−イソロイシンの製造法を提供するも
のである。
evibacterium)属に属する微生物菌体の存在下、α−ケ
ト酪酸又はその塩を、少なくともエタノールを含有する
水溶液にて酵素反応させて該溶液中にL−イソロイシン
を生成せしめ、これからL−イソロイシンを採取するこ
とを特徴とするL−イソロイシンの製造法を提供するも
のである。
発明の効果 本発明によれば、α−ケト酪酸又はその塩から、高収
率で効率よくL−イソロイシンが製造できる。本発明の
方法において、酵素反応時の水溶液として好ましく用い
られるエタノールを含有する完全合成培地は、発酵法の
場合に用いられる培地の滅菌等煩雑な操作が必要でない
ので、生産管理は容易である。
率で効率よくL−イソロイシンが製造できる。本発明の
方法において、酵素反応時の水溶液として好ましく用い
られるエタノールを含有する完全合成培地は、発酵法の
場合に用いられる培地の滅菌等煩雑な操作が必要でない
ので、生産管理は容易である。
本発明の方法は、従来このような酵素法によるL−イ
ソロイシンの生産は、報告が無く又実施されてもいな
く、本発明は新規な方法である。
ソロイシンの生産は、報告が無く又実施されてもいな
く、本発明は新規な方法である。
発明の具体的説明 本発明に使用される微生物は、ビオチン要求性のブレ
ビバクテリウム(Brevibacterium)属に属するものであ
り、好ましくはエタノール資化性のものである。このな
かにはL−イソロイシン生産菌が含まれる。本発明に使
用される微生物菌体としては例えば、ブレビバクテリウ
ム・フラバム(Brevibacterium flavum)MJ−233(FERM
BP−1497)、ブレビバクテリウム・フラバム(Breviba
cterium flavum)MJ−233−AB−41(FERM BP−1498)、
ブレビバクテリウム・フラバム(Brevibacterium flavu
m)MJ−233−ABT−11(FERM BP−1500)及びブレビバク
テリウム・フラバム(Brevibacterium flavum)MJ−233
−ABD−21(FERM BP−1499)等であり、これらの菌が本
発明に好適に用いられる。
ビバクテリウム(Brevibacterium)属に属するものであ
り、好ましくはエタノール資化性のものである。このな
かにはL−イソロイシン生産菌が含まれる。本発明に使
用される微生物菌体としては例えば、ブレビバクテリウ
ム・フラバム(Brevibacterium flavum)MJ−233(FERM
BP−1497)、ブレビバクテリウム・フラバム(Breviba
cterium flavum)MJ−233−AB−41(FERM BP−1498)、
ブレビバクテリウム・フラバム(Brevibacterium flavu
m)MJ−233−ABT−11(FERM BP−1500)及びブレビバク
テリウム・フラバム(Brevibacterium flavum)MJ−233
−ABD−21(FERM BP−1499)等であり、これらの菌が本
発明に好適に用いられる。
なお、上記の(FERM BP−1498)は、(FERM BP−149
7)を親株としてDL−α−アミノ酪酸耐性を積極的に付
与されたエタノール資化性微生物である(特公昭59−28
398号公報3〜4欄参照)。(FERM BP−1500)は、(FE
RM BP−1497)を親株としたL−α−アミノ酪酸トラン
スアミナーゼ高活性変異株である(特願昭60−190609号
明細書3〜5頁参照)。また、(FERM BP−1499)は(F
ERM BP−1497)を親株としたD−α−アミノ酪酸デアミ
ナーゼ高活性変異株である(特開昭61−177993号公報参
照)。
7)を親株としてDL−α−アミノ酪酸耐性を積極的に付
与されたエタノール資化性微生物である(特公昭59−28
398号公報3〜4欄参照)。(FERM BP−1500)は、(FE
RM BP−1497)を親株としたL−α−アミノ酪酸トラン
スアミナーゼ高活性変異株である(特願昭60−190609号
明細書3〜5頁参照)。また、(FERM BP−1499)は(F
ERM BP−1497)を親株としたD−α−アミノ酪酸デアミ
ナーゼ高活性変異株である(特開昭61−177993号公報参
照)。
これらの微生物菌体の他にブレビバクテリウム・アン
モニアゲネス(Brevibacterium ammoniagenes)ATCC 6
871、同ATCC 13745、同ATCC 13746、ブレビバクテリ
ウム・デバリカタム(Brevibacterium divaricatum)AT
CC 14020等を用いることもできる。
モニアゲネス(Brevibacterium ammoniagenes)ATCC 6
871、同ATCC 13745、同ATCC 13746、ブレビバクテリ
ウム・デバリカタム(Brevibacterium divaricatum)AT
CC 14020等を用いることもできる。
本発明に用いられるビオチン要求性のブレビバクテリ
ウム属に属する微生物菌体は、微生物菌体そのままで用
いることもできるし、又これらを公知の手法で固定化し
た固定化物を使用することもできる。この固定化手法と
しては、菌体をアクリルアミド等の重合性モノマーを用
いたり、アルギン酸塩あるいはカラギーナン等の適当な
担体に不溶化させる等がある。
ウム属に属する微生物菌体は、微生物菌体そのままで用
いることもできるし、又これらを公知の手法で固定化し
た固定化物を使用することもできる。この固定化手法と
しては、菌体をアクリルアミド等の重合性モノマーを用
いたり、アルギン酸塩あるいはカラギーナン等の適当な
担体に不溶化させる等がある。
本発明の方法に使用される上記のビオチン要求性のブ
レビバクテリウム属に属する微生物菌体の調製に使用す
る培地は、特に限定されるものではなく一般の微生物に
使用されるものでよい。中でも好ましいものは、エタノ
ールを主炭素源とする培地である。
レビバクテリウム属に属する微生物菌体の調製に使用す
る培地は、特に限定されるものではなく一般の微生物に
使用されるものでよい。中でも好ましいものは、エタノ
ールを主炭素源とする培地である。
本発明に使用する微生物菌体の調整に使用する培地の
窒素源としてはアンモニア、硫酸アンモニウム、塩化ア
ンモニウム、硝酸アンモニウム、尿素等を単独若しくは
混合して用いることが出来る。
窒素源としてはアンモニア、硫酸アンモニウム、塩化ア
ンモニウム、硝酸アンモニウム、尿素等を単独若しくは
混合して用いることが出来る。
無機塩としては、リン酸一水素カリウム、リン酸二水
素カリウム、硫酸マグネシウム等が用いられる。この他
に菌の生育及びL−イソロイシン生成に必要であれば、
ペプトン、肉エキス、酵母エキス、コーンステイープリ
カー、カザミノ酸、各種ビタミン等の栄養素を培地に添
加し用いる。
素カリウム、硫酸マグネシウム等が用いられる。この他
に菌の生育及びL−イソロイシン生成に必要であれば、
ペプトン、肉エキス、酵母エキス、コーンステイープリ
カー、カザミノ酸、各種ビタミン等の栄養素を培地に添
加し用いる。
培養は通気撹拌、振盪等の好気的条件下で行い、培養
温度は20〜40℃、好ましくは25〜35℃で行う。培養途中
のpHは5〜10、好ましくは7〜8付近にて行い、培養中
のpHの調整には酸、アルカリを添加して行う。
温度は20〜40℃、好ましくは25〜35℃で行う。培養途中
のpHは5〜10、好ましくは7〜8付近にて行い、培養中
のpHの調整には酸、アルカリを添加して行う。
培養開始時のエタノール濃度は好ましくは1〜5容量
%、更に好ましくは2〜3容量%が適する。培養期間は
2〜9日間、最適期間は4〜7日間である。
%、更に好ましくは2〜3容量%が適する。培養期間は
2〜9日間、最適期間は4〜7日間である。
このようにして得られた培養物から菌体を集めて、水
又は適当な緩衝液で洗浄し、本発明の方法の酵素反応に
使用する。
又は適当な緩衝液で洗浄し、本発明の方法の酵素反応に
使用する。
本発明の方法においては、上記で調製された微生物菌
体(ここには、その固定化物も含まれる)の存在下、α
−ケト酪酸又はその塩を、少なくともエタノールを含有
する水溶液にて酵素反応させる。ここで該水溶液に添加
されるエタノールの濃度は0.5〜40容量%、好ましくは
1〜20容量%である。
体(ここには、その固定化物も含まれる)の存在下、α
−ケト酪酸又はその塩を、少なくともエタノールを含有
する水溶液にて酵素反応させる。ここで該水溶液に添加
されるエタノールの濃度は0.5〜40容量%、好ましくは
1〜20容量%である。
該水溶液は、上記の様にエタノールを含有する水ある
いはリン酸又はトリス塩酸等の緩衝液を用いることもで
きるが、好ましくはエタノールを含有する完全合成培地
が用いられる。ここで完全合成培地とは、化学構造が公
知の無機窒素源及び無機塩を含有する水溶液である。本
発明に用いられる完全合成培地の無機窒素源としては、
アンモニア、塩化アンモニウム、硫酸アンモニウム、硝
酸アンモニウム、リン酸アンモニウム等が例示でき、ま
た無機塩としては、リン酸一水素カリウム、リン酸二水
素カリウム、硫酸マグネシウム、硫酸マンガン、硫酸鉄
等が例示される。これらの無機窒素源、無機塩は、単独
でも2種以上混合しても用いることもできる。
いはリン酸又はトリス塩酸等の緩衝液を用いることもで
きるが、好ましくはエタノールを含有する完全合成培地
が用いられる。ここで完全合成培地とは、化学構造が公
知の無機窒素源及び無機塩を含有する水溶液である。本
発明に用いられる完全合成培地の無機窒素源としては、
アンモニア、塩化アンモニウム、硫酸アンモニウム、硝
酸アンモニウム、リン酸アンモニウム等が例示でき、ま
た無機塩としては、リン酸一水素カリウム、リン酸二水
素カリウム、硫酸マグネシウム、硫酸マンガン、硫酸鉄
等が例示される。これらの無機窒素源、無機塩は、単独
でも2種以上混合しても用いることもできる。
これら無機窒素源及び/又は無機塩の水溶液としての
濃度は、通常の微生物菌体の培養に使用される培地と同
程度の範囲でよく、特に限定されない。
濃度は、通常の微生物菌体の培養に使用される培地と同
程度の範囲でよく、特に限定されない。
完全合成培地の一例を示すと、(NH4)2SO4 2g/;K
H2PO4 0.5g/;K2HPO4 0.5g/;MgSO4・7H2O 0.5g/
;FeSO4・7H2O 20ppm/MnSO4・4〜6H2O 20ppm含有す
るpH7.6の水溶液がある。
H2PO4 0.5g/;K2HPO4 0.5g/;MgSO4・7H2O 0.5g/
;FeSO4・7H2O 20ppm/MnSO4・4〜6H2O 20ppm含有す
るpH7.6の水溶液がある。
上述の様に、本発明に使用される完全合成培地には、
ビオチン又はビオチンを含む天然物は含有されない。ビ
オチンの含有されないことの明らかな化学構造公知のア
ミノ酸、ビタミン、糖類等は添加することはできる。
ビオチン又はビオチンを含む天然物は含有されない。ビ
オチンの含有されないことの明らかな化学構造公知のア
ミノ酸、ビタミン、糖類等は添加することはできる。
本発明の方法においては、α−ケト酪酸又はその塩の
酵素反応時の濃度には特に制限はないが、一般には0.1
〜20%(wt/vol)、好ましくは0.5〜10%(wt/vol)の
濃度範囲で使用するのが適当である。又、該菌体の使用
量も特に制限されるものではないが、一般に1〜50%
(wt/vol)の濃度で使用することが出来る。
酵素反応時の濃度には特に制限はないが、一般には0.1
〜20%(wt/vol)、好ましくは0.5〜10%(wt/vol)の
濃度範囲で使用するのが適当である。又、該菌体の使用
量も特に制限されるものではないが、一般に1〜50%
(wt/vol)の濃度で使用することが出来る。
本発明において、酵素反応は、約20〜約50℃、好まし
くは約30〜約40℃の温度で、通常約10〜約72時間行われ
る。
くは約30〜約40℃の温度で、通常約10〜約72時間行われ
る。
上記酵素反応は、反応に用いられるエタノールを含有
する水溶液、好ましくは上述のエタノールを含有する完
全合成培地、中の溶存酸素濃度が0.05ppm以上、8ppm以
下となる様に、反応系中に空気もしくは酸素を、連続又
は間歇的に供給して行うのが好ましい。
する水溶液、好ましくは上述のエタノールを含有する完
全合成培地、中の溶存酸素濃度が0.05ppm以上、8ppm以
下となる様に、反応系中に空気もしくは酸素を、連続又
は間歇的に供給して行うのが好ましい。
上記のような反応方法によつて得られる反応液中に生
成したL−イソロイシンの分離・精製は、公知のイオン
交換樹脂処理法あるいは、沈殿法等により行うことがで
きる。
成したL−イソロイシンの分離・精製は、公知のイオン
交換樹脂処理法あるいは、沈殿法等により行うことがで
きる。
実施例 以下の実験例において、L−イソロイシンの定性は、
ペーバークロマトグラフのRf値、電気泳動法の移動度、
微生物定量法による生物活性値により確認した。定量は
ロイコノストツク・メセンテロイデス(Leuconostoc me
senteroides)ATCC 8042を用いるマイクロバイオアツ
セイ法と高速液体クロマトグラフイー(島津LC−5A)と
を併用して行つた。また、下記の実験例において%と表
したのは重量%を意味する。
ペーバークロマトグラフのRf値、電気泳動法の移動度、
微生物定量法による生物活性値により確認した。定量は
ロイコノストツク・メセンテロイデス(Leuconostoc me
senteroides)ATCC 8042を用いるマイクロバイオアツ
セイ法と高速液体クロマトグラフイー(島津LC−5A)と
を併用して行つた。また、下記の実験例において%と表
したのは重量%を意味する。
実施例−1 培地(尿素0.4%、硫酸アンモニウム1.4%、KH2PO4
0.05%、K2HPO4 0.05%、MgSO4・7H2O 0.05%、CaCl2・
2H2O 2ppm、FeSO4・7H2O 2ppm、MnSO4・4〜6H2O 2pp
m、ZnSO4・7H2O 2ppm、NaCl 2ppm、ビオチン200μg/
、チアミン・HCl 100μg/、カザミノ酸0.1%、酵母
エキス0.1%)100mlを500ml容三角フラスコに分注、滅
菌(滅菌後pH7.0)した後ブレビバクテリウム・フラバ
ム(Brevibacterium flavum)MJ−233(FERM BP−149
7)を植菌し、無菌的にエタノールを2ml加え、30℃にて
2日間振盪培養を行つた。
0.05%、K2HPO4 0.05%、MgSO4・7H2O 0.05%、CaCl2・
2H2O 2ppm、FeSO4・7H2O 2ppm、MnSO4・4〜6H2O 2pp
m、ZnSO4・7H2O 2ppm、NaCl 2ppm、ビオチン200μg/
、チアミン・HCl 100μg/、カザミノ酸0.1%、酵母
エキス0.1%)100mlを500ml容三角フラスコに分注、滅
菌(滅菌後pH7.0)した後ブレビバクテリウム・フラバ
ム(Brevibacterium flavum)MJ−233(FERM BP−149
7)を植菌し、無菌的にエタノールを2ml加え、30℃にて
2日間振盪培養を行つた。
次に、本培養培地(硫酸アンモニウム2.3%、KH2PO4
0.05%、K2HPO4 0.05%、MgSO4・7H2O 0.05%、FeSO4・
7H2O 20ppm、MnSO4・nH2O 20ppm、ビオチン200μg/、
チアミン・HCl 100μg/、カザミノ酸0.3%、酵母エキ
ス0.3%)の1000mlの2容通気撹拌槽に仕込み、滅菌
(120℃、20分間)後、エタノールの20mlと前記前培養
物の20mlを添加して、回転数1000rpm、通気量1vvm、温
度33℃pH7.6にて48時間培養を行つた。
0.05%、K2HPO4 0.05%、MgSO4・7H2O 0.05%、FeSO4・
7H2O 20ppm、MnSO4・nH2O 20ppm、ビオチン200μg/、
チアミン・HCl 100μg/、カザミノ酸0.3%、酵母エキ
ス0.3%)の1000mlの2容通気撹拌槽に仕込み、滅菌
(120℃、20分間)後、エタノールの20mlと前記前培養
物の20mlを添加して、回転数1000rpm、通気量1vvm、温
度33℃pH7.6にて48時間培養を行つた。
尚、エタノールは、培養中培地の温度が2容量%を越
えないように、約1〜2時間ごと断続的に添加した。
えないように、約1〜2時間ごと断続的に添加した。
培養終了後、培養物500mlから遠心分離にて集菌し
た。これを脱塩蒸留水にて2度洗浄して得た菌体を、反
応液〔(NH4)2SO4 2g/;KH2PO4 0.5g/;KH2PO4 0.5g
/;MgSO4・7H2O 0.5g/;FeSO4・7H2O、20ppm;MnSO4・
4〜6H2O 20ppm;チアミン−塩酸100μg/、α−ケト酪
酸ソーダ10g/(pH7.6)〕の1000mlに懸濁後、該懸濁
液を2容通気撹拌槽に仕込み、エタノール20mlを添加
して、回転数300rpm、通気量を第1表に示すように変化
させ、温度33℃、pH7.6にて15時間反応を行つた。
た。これを脱塩蒸留水にて2度洗浄して得た菌体を、反
応液〔(NH4)2SO4 2g/;KH2PO4 0.5g/;KH2PO4 0.5g
/;MgSO4・7H2O 0.5g/;FeSO4・7H2O、20ppm;MnSO4・
4〜6H2O 20ppm;チアミン−塩酸100μg/、α−ケト酪
酸ソーダ10g/(pH7.6)〕の1000mlに懸濁後、該懸濁
液を2容通気撹拌槽に仕込み、エタノール20mlを添加
して、回転数300rpm、通気量を第1表に示すように変化
させ、温度33℃、pH7.6にて15時間反応を行つた。
反応終了後、遠心分離(4000rpm、15分間、4℃)に
て除菌した上清液中のL−イソロイシンを定量した。結
果を第1表に示した。
て除菌した上清液中のL−イソロイシンを定量した。結
果を第1表に示した。
実施例−2 実施例−1と同様の条件にて、ブレビバクテリウム・
フラバム(Brevibacterium flavum)MJ−233−AB−41
(FERM BP−1498)を培養し、また実施例−1と同様の
条件にて反応させた後上清液中のL−イソロイシンを定
量した。結果を第2表に示した。
フラバム(Brevibacterium flavum)MJ−233−AB−41
(FERM BP−1498)を培養し、また実施例−1と同様の
条件にて反応させた後上清液中のL−イソロイシンを定
量した。結果を第2表に示した。
実施例−3 実施例−1と同様の条件にてブレビバクテリウム・フ
ラバム(Brevibacterium flavum)MJ−233−ABT−11(F
ERM BP−1500)を培養し、また実施例−1と同様の条件
にて反応させた後上清液中のL−イソロイシンを定量し
た。結果を第3表に示した。
ラバム(Brevibacterium flavum)MJ−233−ABT−11(F
ERM BP−1500)を培養し、また実施例−1と同様の条件
にて反応させた後上清液中のL−イソロイシンを定量し
た。結果を第3表に示した。
実施例−4 実施例−1と同様の条件にてブレビバクテリウム・フ
ラバム(Brevibacterium flavum)MJ−233−ABD−21(F
ERM BP−1499)を培養し、また実施例−1と同様の条件
にて反応させた後上清液中のL−イソロイシンを定量し
た。結果を第4表に示した。
ラバム(Brevibacterium flavum)MJ−233−ABD−21(F
ERM BP−1499)を培養し、また実施例−1と同様の条件
にて反応させた後上清液中のL−イソロイシンを定量し
た。結果を第4表に示した。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 小浜 恵子 茨城県稲敷郡阿見町中央8丁目3番1号 三菱油化株式会社中央研究所内 (72)発明者 湯川 英明 茨城県稲敷郡阿見町中央8丁目3番1号 三菱油化株式会社中央研究所内
Claims (3)
- 【請求項1】ビオチン要求性のブレビバクテリウム(Br
evibacterium)属に属する微生物菌体の存在下、α−ケ
ト酪酸又はその塩を、少なくともエタノールを含有する
水溶液にて酵素反応させて該溶液中にL−イソロイシン
を生成せしめ、これからL−イソロイシンを採取するこ
とを特徴とするL−イソロイシンの製造法。 - 【請求項2】少なくともエタノールを含有する水溶液
が、エタノールを含有する完全合成培地である特許請求
の範囲第1項記載の方法。 - 【請求項3】酵素反応を該水溶液中の溶存酸素濃度が0.
05ppm以上となる様に保持して行うことを特徴とする特
許請求の範囲第1項又は第2項記載の方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP10398087A JPH0822232B2 (ja) | 1987-04-27 | 1987-04-27 | L−イソロイシンの製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP10398087A JPH0822232B2 (ja) | 1987-04-27 | 1987-04-27 | L−イソロイシンの製造法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS63269991A JPS63269991A (ja) | 1988-11-08 |
| JPH0822232B2 true JPH0822232B2 (ja) | 1996-03-06 |
Family
ID=14368465
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP10398087A Expired - Lifetime JPH0822232B2 (ja) | 1987-04-27 | 1987-04-27 | L−イソロイシンの製造法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH0822232B2 (ja) |
-
1987
- 1987-04-27 JP JP10398087A patent/JPH0822232B2/ja not_active Expired - Lifetime
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS63269991A (ja) | 1988-11-08 |
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