JPH0824599B2 - 病原糸状真菌遺伝子増幅プライマー - Google Patents
病原糸状真菌遺伝子増幅プライマーInfo
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- JPH0824599B2 JPH0824599B2 JP5130778A JP13077893A JPH0824599B2 JP H0824599 B2 JPH0824599 B2 JP H0824599B2 JP 5130778 A JP5130778 A JP 5130778A JP 13077893 A JP13077893 A JP 13077893A JP H0824599 B2 JPH0824599 B2 JP H0824599B2
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- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Saccharide Compounds (AREA)
Description
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は、病原糸状真菌のリボソ
ームRNA遺伝子(DNA)の検出方法に関する。本発
明はまた、該遺伝子検出のための検出キットに関する。
ームRNA遺伝子(DNA)の検出方法に関する。本発
明はまた、該遺伝子検出のための検出キットに関する。
【0002】
【従来の技術】高度医療の普及に伴い、易感染患者は増
加の一途をたどっている。アスペルギルス症を初めとす
る深部(全身性)真菌症は、易感染患者が高率に罹患す
る重要な感染症として医療上の問題となっている。しか
し深部真菌症、とりわけ糸状菌感染症であるアスペルギ
ルス症の診断は極めて困難であり、様々な抗真菌剤が開
発されている今日においても、有効な診断法が未だに確
立されていないために、多くの患者が治療を受けられな
いままに亡くなっているのが現状である。アスペルギル
ス症の診断は、臨床検体からの培養同定によって行われ
ているが、例え病理学的にアスペルギルス感染が明らか
な症例であったとしても、アスペルギルスの培養陽性率
は低い上に、培養が出来たとしてもアスペルギルス属の
同定の根拠となる分生子頭が形成されるまでに2週間以
上かかるのが普通であり、このことがアスペルギルス症
の生前診断を困難にしている。また、アスペルギルス症
の診断キットとして現在までに認可されているものは無
く、実験室的な診断法としてはアスペルギルス抗原また
は抗体を免疫学的に検出する方法、病原真菌の菌体成分
または代謝産物を生化学的に検出する方法があるが、い
ずれの方法も、感度が低い上に、病理学的に真菌感染が
認められない患者(健常人を含む)に対しても有意に高
値を示す欠点がある。従って、アスペルギルス症により
特異的であり、かつ迅速な診断方法の確立が求められて
いる。
加の一途をたどっている。アスペルギルス症を初めとす
る深部(全身性)真菌症は、易感染患者が高率に罹患す
る重要な感染症として医療上の問題となっている。しか
し深部真菌症、とりわけ糸状菌感染症であるアスペルギ
ルス症の診断は極めて困難であり、様々な抗真菌剤が開
発されている今日においても、有効な診断法が未だに確
立されていないために、多くの患者が治療を受けられな
いままに亡くなっているのが現状である。アスペルギル
ス症の診断は、臨床検体からの培養同定によって行われ
ているが、例え病理学的にアスペルギルス感染が明らか
な症例であったとしても、アスペルギルスの培養陽性率
は低い上に、培養が出来たとしてもアスペルギルス属の
同定の根拠となる分生子頭が形成されるまでに2週間以
上かかるのが普通であり、このことがアスペルギルス症
の生前診断を困難にしている。また、アスペルギルス症
の診断キットとして現在までに認可されているものは無
く、実験室的な診断法としてはアスペルギルス抗原また
は抗体を免疫学的に検出する方法、病原真菌の菌体成分
または代謝産物を生化学的に検出する方法があるが、い
ずれの方法も、感度が低い上に、病理学的に真菌感染が
認められない患者(健常人を含む)に対しても有意に高
値を示す欠点がある。従って、アスペルギルス症により
特異的であり、かつ迅速な診断方法の確立が求められて
いる。
【0003】
【発明が解決しようとする課題】PCR法は、特定のプ
ライマー対を用いることによって任意の遺伝子を迅速か
つ簡便に増幅する事ができる、現在のところ最も鋭敏な
遺伝子検出法である。病原糸状真菌の特徴はその遺伝子
により規定される。そこで、その病原糸状真菌に特徴的
な遺伝子領域に対応したプライマー対を用いてPCR法
を施行し、病原糸状真菌に特徴的な遺伝子を検出する事
により、病原糸状真菌の存在を確定することができる。
本発明者は、アスペルギルス属又はペニシリウム属の病
原糸状真菌に特異的な配列を、病原糸状真菌遺伝子中に
繰り返して存在するリボソームRNA遺伝子(DNA)
中に見いだした。従って、リボソームRNA遺伝子中の
病原糸状真菌に特異的な配列をプライマー対として用い
るPCR法によって、該遺伝子を高感度かつ迅速に検出
できれば、病原糸状真菌の存在を簡便に確定することが
出来る。すなわち、本発明は、試料中の病原糸状真菌に
特徴的なリボソームRNA遺伝子の検出方法及びそれに
用いるキットを提供することを目的とする。
ライマー対を用いることによって任意の遺伝子を迅速か
つ簡便に増幅する事ができる、現在のところ最も鋭敏な
遺伝子検出法である。病原糸状真菌の特徴はその遺伝子
により規定される。そこで、その病原糸状真菌に特徴的
な遺伝子領域に対応したプライマー対を用いてPCR法
を施行し、病原糸状真菌に特徴的な遺伝子を検出する事
により、病原糸状真菌の存在を確定することができる。
本発明者は、アスペルギルス属又はペニシリウム属の病
原糸状真菌に特異的な配列を、病原糸状真菌遺伝子中に
繰り返して存在するリボソームRNA遺伝子(DNA)
中に見いだした。従って、リボソームRNA遺伝子中の
病原糸状真菌に特異的な配列をプライマー対として用い
るPCR法によって、該遺伝子を高感度かつ迅速に検出
できれば、病原糸状真菌の存在を簡便に確定することが
出来る。すなわち、本発明は、試料中の病原糸状真菌に
特徴的なリボソームRNA遺伝子の検出方法及びそれに
用いるキットを提供することを目的とする。
【0004】
【課題を解決するための手段】本発明を概説すれば、第
1の発明は病原糸状真菌の検出方法に関し、配列表の配
列番号1及び2で表される合成プライマー対を用いて、
アスペルギルス属又はペニシリウム属の病原糸状真菌リ
ボソームRNA遺伝子をPCR法により増幅させて検出
することを特徴とする。第2の発明は、病原糸状真菌の
検出用キットに関し、上記第1の発明の方法に用いて該
病原真菌の検出を行うための検出用キットであって、該
病原糸状真菌のリボソームRNA遺伝子をPCR法によ
り増幅させるための上記合成プライマー対及び増幅され
たDNAを検出するためのプローブからなることを特徴
とする。
1の発明は病原糸状真菌の検出方法に関し、配列表の配
列番号1及び2で表される合成プライマー対を用いて、
アスペルギルス属又はペニシリウム属の病原糸状真菌リ
ボソームRNA遺伝子をPCR法により増幅させて検出
することを特徴とする。第2の発明は、病原糸状真菌の
検出用キットに関し、上記第1の発明の方法に用いて該
病原真菌の検出を行うための検出用キットであって、該
病原糸状真菌のリボソームRNA遺伝子をPCR法によ
り増幅させるための上記合成プライマー対及び増幅され
たDNAを検出するためのプローブからなることを特徴
とする。
【0005】リボソームRNA遺伝子中の、病原糸状真
菌に特徴的なプライマー対の配列は、以下の手順で決定
することができる。 (1)遺伝子配列データバンク(GenBank )に登録され
ている遺伝子配列のうち、アスペルギルス、そのほかの
各種病原真菌、ヒト及び大腸菌の18SリボソームRN
A遺伝子(DNA)を各々の塩基配列間で比較し、アス
ペルギルス・フミガタス(登録番号M55626)及び
ペニシリウム・ノタツム(登録番号M55628)に特
徴的であり、ヒト(登録番号M10098)、大腸菌
(登録番号M24996)及び表1に示す各種病原真菌
には共通しない配列領域を限定する。
菌に特徴的なプライマー対の配列は、以下の手順で決定
することができる。 (1)遺伝子配列データバンク(GenBank )に登録され
ている遺伝子配列のうち、アスペルギルス、そのほかの
各種病原真菌、ヒト及び大腸菌の18SリボソームRN
A遺伝子(DNA)を各々の塩基配列間で比較し、アス
ペルギルス・フミガタス(登録番号M55626)及び
ペニシリウム・ノタツム(登録番号M55628)に特
徴的であり、ヒト(登録番号M10098)、大腸菌
(登録番号M24996)及び表1に示す各種病原真菌
には共通しない配列領域を限定する。
【0006】表1 カンジダ・アルビカンス M60302 カンジダ・ギリエルモンディイ M60304 カンジダ・ケフィル M60303 カンジダ・クルゼイ M60305 カンジダ・ルシタニエ M60306 カンジダ・パラプシローシス M60307 カンジダ・ヴィスワナティイ M60309 カンジダ・グラブラータ M60311 ハンセヌラ・ポリモルファ M60310 サッカロマイセス・セレビシエ V01335 クリプトコッカス・ネオフォルマンス M55625
【0007】(2)上記の配列領域から、アスペルギル
ス・フミガタス及びペニシリウム・ノタツムに共通した
18SリボソームRNA遺伝子のみを特異的に増幅する
ことができ、ヒト、大腸菌及び表1に示したその他の病
原真菌の遺伝子は増幅しないプライマー対DNA配列
(配列表の配列番号1及び2)を決定する。プライマー
は、オリゴヌクレオチドDNAとしてDNA合成機によ
り合成でき、HPLCにて精製できる。
ス・フミガタス及びペニシリウム・ノタツムに共通した
18SリボソームRNA遺伝子のみを特異的に増幅する
ことができ、ヒト、大腸菌及び表1に示したその他の病
原真菌の遺伝子は増幅しないプライマー対DNA配列
(配列表の配列番号1及び2)を決定する。プライマー
は、オリゴヌクレオチドDNAとしてDNA合成機によ
り合成でき、HPLCにて精製できる。
【0008】検出する病原糸状真菌DNAは、血液等、
病原糸状真菌感染試料より調製することができる。PC
R法については、タック・ポリメラーゼ(Taq polymera
se)を含む遺伝子増幅キット及び自動遺伝子増幅装置が
市販されており、これと本発明のプライマー対を用い、
病原糸状真菌DNAの増幅反応を行わせることができ
る。PCR法では、酵素として、例えば耐熱性タック・
ポリメラーゼを用い、DNAの変性(94℃)の過程、
プライマーDNAのアニーリング(55℃)の過程及び
DNA相補鎖の酵素的合成(72℃)の過程、より成る
温度サイクルを任意の回数繰り返すことで、目的遺伝子
のみを指数的に増幅させることができる。例えば温度サ
イクルを25回繰り返せば、目的DNAは約10万倍に
増幅される。微量試料より高感度にDNAを検出するに
は、現在このPCR法が最も有効な方法である。増幅後
のリボソームRNA遺伝子の検出は、例えばアガロース
ゲル電気泳動、ポリアクリルアミドゲル電気泳動、スポ
ット法、及びサザンブロット法等を用いて行うことがで
きる。スポット法、サザンブロット法の際は増幅領域内
に特異的なDNA配列をプローブとして選択すればよ
い。その一例として配列表の配列番号3のプローブ1が
ある。
病原糸状真菌感染試料より調製することができる。PC
R法については、タック・ポリメラーゼ(Taq polymera
se)を含む遺伝子増幅キット及び自動遺伝子増幅装置が
市販されており、これと本発明のプライマー対を用い、
病原糸状真菌DNAの増幅反応を行わせることができ
る。PCR法では、酵素として、例えば耐熱性タック・
ポリメラーゼを用い、DNAの変性(94℃)の過程、
プライマーDNAのアニーリング(55℃)の過程及び
DNA相補鎖の酵素的合成(72℃)の過程、より成る
温度サイクルを任意の回数繰り返すことで、目的遺伝子
のみを指数的に増幅させることができる。例えば温度サ
イクルを25回繰り返せば、目的DNAは約10万倍に
増幅される。微量試料より高感度にDNAを検出するに
は、現在このPCR法が最も有効な方法である。増幅後
のリボソームRNA遺伝子の検出は、例えばアガロース
ゲル電気泳動、ポリアクリルアミドゲル電気泳動、スポ
ット法、及びサザンブロット法等を用いて行うことがで
きる。スポット法、サザンブロット法の際は増幅領域内
に特異的なDNA配列をプローブとして選択すればよ
い。その一例として配列表の配列番号3のプローブ1が
ある。
【0009】プローブDNAは、前記プライマーDNA
と同様の方法で合成、精製することができる。プローブ
DNAは、標識することにより、高感度な検出が可能と
なる。 標識化の方法は放射性同位元素標識法に限ら
ず、アビジン・ビオチン系標識を含む酵素標識、ケミプ
ローブ標識を含む蛍光標識法等、公知の方法なら何でも
よい。実際選定されたプライマーを用い、病原真菌のリ
ボソームRNA遺伝子のPCR反応を行い、電気泳動
法、サザンハイブリダイゼーション法等により高感度に
検出することができる。
と同様の方法で合成、精製することができる。プローブ
DNAは、標識することにより、高感度な検出が可能と
なる。 標識化の方法は放射性同位元素標識法に限ら
ず、アビジン・ビオチン系標識を含む酵素標識、ケミプ
ローブ標識を含む蛍光標識法等、公知の方法なら何でも
よい。実際選定されたプライマーを用い、病原真菌のリ
ボソームRNA遺伝子のPCR反応を行い、電気泳動
法、サザンハイブリダイゼーション法等により高感度に
検出することができる。
【0010】このように病原糸状真菌のリボソームRN
A遺伝子に特有な塩基配列から設計したプライマー対を
用いたPCR法によって、病原糸状真菌を高感度に検出
することができる。また、本発明に従って、病原糸状真
菌のリボソームRNA遺伝子領域を増幅させるためのプ
ライマー対及び増幅されたDNA領域を検出するための
プローブをそろえてキットとしておくことにより、病原
糸状真菌の検出を簡便に行うことができる。なお、キッ
トに用いる試薬は溶液状、凍結乾燥物あるいはプレート
等に固定化した状態等でもよい。以上、本発明によって
病原糸状真菌症の早期診断が可能となり、その早期治療
に結びつく。
A遺伝子に特有な塩基配列から設計したプライマー対を
用いたPCR法によって、病原糸状真菌を高感度に検出
することができる。また、本発明に従って、病原糸状真
菌のリボソームRNA遺伝子領域を増幅させるためのプ
ライマー対及び増幅されたDNA領域を検出するための
プローブをそろえてキットとしておくことにより、病原
糸状真菌の検出を簡便に行うことができる。なお、キッ
トに用いる試薬は溶液状、凍結乾燥物あるいはプレート
等に固定化した状態等でもよい。以上、本発明によって
病原糸状真菌症の早期診断が可能となり、その早期治療
に結びつく。
【0011】
【実施例】以下、本発明を実施例をもって詳細に説明す
るが、本発明はこれら実施例によって制限されるもので
はない。
るが、本発明はこれら実施例によって制限されるもので
はない。
【0012】実施例1 アスペルギルス・フミガタスJCM1738のリボソー
ムRNA遺伝子のPCR法による検出 (1)プライマー(DNA)及びプローブ(DNA)の
合成及び精製 配列表の配列番号1〜3に示したプライマー(DNA)
及びプローブ(DNA)の合成、精製は、クラボウ(倉
敷紡績株式会社)、バイオメディカル部に依頼した。 (2)アスペルギルス・フミガタスJCM1738のゲ
ノムDNAの調製 アスペルギルス・フミガタスの培養及びゲノムDNAの
調製は、Bainbridgeらの方法〔Bainbridge BW et.al.FE
MS Microbiology Letters 66:113-118,1990.〕により行
い、最終的に培養液1. 5mlから約25μg のゲノムD
NAを得た。 (3)病原真菌各種各株のゲノムDNAの調製 表2に示した病原真菌各種各株の培養、スフェロプラス
トの調製及びゲノムDNAの調製は、阿部らの方法〔昭
和62年11月10日、(株)ソフトサイエンス社発
行、口野嘉幸ほか2名編「遺伝子・タンパク質・実験操
作ブロッティング法」(初版)〕により行い、最終的に
培養液15mlから約100μg のゲノムDNAを得た。
ムRNA遺伝子のPCR法による検出 (1)プライマー(DNA)及びプローブ(DNA)の
合成及び精製 配列表の配列番号1〜3に示したプライマー(DNA)
及びプローブ(DNA)の合成、精製は、クラボウ(倉
敷紡績株式会社)、バイオメディカル部に依頼した。 (2)アスペルギルス・フミガタスJCM1738のゲ
ノムDNAの調製 アスペルギルス・フミガタスの培養及びゲノムDNAの
調製は、Bainbridgeらの方法〔Bainbridge BW et.al.FE
MS Microbiology Letters 66:113-118,1990.〕により行
い、最終的に培養液1. 5mlから約25μg のゲノムD
NAを得た。 (3)病原真菌各種各株のゲノムDNAの調製 表2に示した病原真菌各種各株の培養、スフェロプラス
トの調製及びゲノムDNAの調製は、阿部らの方法〔昭
和62年11月10日、(株)ソフトサイエンス社発
行、口野嘉幸ほか2名編「遺伝子・タンパク質・実験操
作ブロッティング法」(初版)〕により行い、最終的に
培養液15mlから約100μg のゲノムDNAを得た。
【0013】 表2 カンジダ・アルビカンス TIMM1623 カンジダ・アルビカンス TIMM2726 カンジダ・アルビカンス (ステラトイデア) TIMM0310 カンジダ・ギリエルモンディイ TIMM0260 カンジダ・ケフィル TIMM0302 カンジダ・クルゼイ TIMM0269 カンジダ・トロピカリス TIMM0313 カンジダ・パラプシローシス TIMM0292 カンジダ・グラブラータ TIMM1064 ハンセヌラ・アノマラ JCM3585 サッカロマイセス・セレビシエ TIMM0925 クリプトコッカス・ネオフォルマンス TIMM0354 クリプトコッカス・ネオフォルマンス No.0061
【0014】(4)アスペルギルス・フミガタスJCM
1738のリボソームRNA遺伝子に特異的な領域のP
CR法による増幅 実施例1−(2)、(3)で調製したアスペルギルス・
フミガタスJCM1738のDNA10ng、表2に示し
た病原真菌各種各株のDNA各々10ng、公知の方法で
調製したヒトのDNA 1μg 、ウシのDNA 1μg
及び大腸菌のDNA10ngをそれぞれ0. 5ml用チュー
ブに取り、10μl の10×増幅用緩衝液(100mM
Tris−HCl pH8.3, 500mM KCl,1
5mM MgCl2 , 0.01%(w/v) ゼラチン)、8
μl のdNTP混合液(dATP、dGTP、dTT
P、dCTP;各100mM)、1μl の30pmol/μl
プライマー1、1μl の30pmol/μl プライマー2及
び0. 5μl の5ユニット/μl タックポリメラーゼを
加え、更に滅菌水を加えて100μl の溶液にした。こ
の反応液に、上層に100μl のミネラルオイルを加え
た後、自動遺伝子増幅装置サーマルサイクラーにより増
幅反応を行った。反応条件は、94℃で5分間の変性の
後、94℃で1分間の変性→55℃で2分間のプライマ
ーのアニーリング→72℃で1分間の合成反応のサイク
ルを25サイクル行った後、72℃10分間伸長反応を
行った。反応後、下層の反応液を5μl 取り、1. 2%
アガロースゲル電気泳動を行い、エチジウムブロマイド
でDNAを染色し、増幅されたDNAを確認した。その
結果、アスペルギルス・フミガタスJCM1738を鋳
型にした場合のみに385bpの単一のバンドを確認し
た。他のDNAを鋳型にしたときは増幅は認められなか
った。 (5)サザンハイブリダイゼーションによる、PCR法
により増幅されたアスペルギルス・フミガタスのリボソ
ームRNA遺伝子の検出 実施例1−(4)に記載のPCR反応液を電気泳動し
た、1.2%アガロースゲルをアルカリ変性後、ナイロ
ンメンブラン(アマーシャムハイボンド−N)に一晩サ
ザンブロットした。紫外線トランスイルミネーター(2
54nm)で10分間照射し、DNAをメンブランに固定
した。このメンブランからのDNA検出は、ECL 3
´ーオリゴラベリング・検出システム(アマシャム・ジ
ャパン社)を用いた蛍光発光によって、次のように行っ
た。プレハイブリダイゼーション緩衝液(0.5%ブロ
ッキング液、5×SSC、0.1%SDS、5%硫酸デ
キストラン及び100μg /mlサケ精子DNA)5ml中
で37℃で30分間プレハイブリダイゼーションを行っ
た。次にターミナルトランスフェラーゼを用いて、フル
オレセイン修飾dUTPをテーリングさせたプローブ1
を加え、37℃で一晩ハイブリダイゼーションを行っ
た。ハイブリダイゼーション後、メンブランを洗浄バッ
ファー1(1×SSC/0.1%SDS)中で15分
間、60℃で振とうしながら洗浄し、続いて洗浄バッフ
ァー2(0.5×SSC/0.1%SDS)中で15分
間、60℃で振とうしながら2回洗浄した。更にバッフ
ァー1の中でメンブランを1分間軽く洗浄後、室温で6
0分間、0.5%ブロッキング液中で振とうを行った。
次にバッファー2を用いて1000倍希釈したHRP標
識抗フルオレセイン抗体溶液中で、室温で60分間イン
キュベーションを行った。メンブランを乾燥させた後、
ハイパーフィルム−ECL(アマシャム・ジャパン社)
を入れたカセット内で40分間露光を行った。この結
果、アスペルギルス・フミガタスのPCR増幅DNA
は、プローブ1とハイブリダイズしてバンドが現れた
が、その他のサンプルではバンドが認められなかった。
このことは、プライマー1及びプライマー2でアスペル
ギルス・フミガタスのDNAのみが特異的に増幅され、
プローブ1とのハイブリダイゼーションでアスペルギル
ス・フミガタスのリボソームRNA遺伝子に特異的な配
列が検出できることを示すものである。
1738のリボソームRNA遺伝子に特異的な領域のP
CR法による増幅 実施例1−(2)、(3)で調製したアスペルギルス・
フミガタスJCM1738のDNA10ng、表2に示し
た病原真菌各種各株のDNA各々10ng、公知の方法で
調製したヒトのDNA 1μg 、ウシのDNA 1μg
及び大腸菌のDNA10ngをそれぞれ0. 5ml用チュー
ブに取り、10μl の10×増幅用緩衝液(100mM
Tris−HCl pH8.3, 500mM KCl,1
5mM MgCl2 , 0.01%(w/v) ゼラチン)、8
μl のdNTP混合液(dATP、dGTP、dTT
P、dCTP;各100mM)、1μl の30pmol/μl
プライマー1、1μl の30pmol/μl プライマー2及
び0. 5μl の5ユニット/μl タックポリメラーゼを
加え、更に滅菌水を加えて100μl の溶液にした。こ
の反応液に、上層に100μl のミネラルオイルを加え
た後、自動遺伝子増幅装置サーマルサイクラーにより増
幅反応を行った。反応条件は、94℃で5分間の変性の
後、94℃で1分間の変性→55℃で2分間のプライマ
ーのアニーリング→72℃で1分間の合成反応のサイク
ルを25サイクル行った後、72℃10分間伸長反応を
行った。反応後、下層の反応液を5μl 取り、1. 2%
アガロースゲル電気泳動を行い、エチジウムブロマイド
でDNAを染色し、増幅されたDNAを確認した。その
結果、アスペルギルス・フミガタスJCM1738を鋳
型にした場合のみに385bpの単一のバンドを確認し
た。他のDNAを鋳型にしたときは増幅は認められなか
った。 (5)サザンハイブリダイゼーションによる、PCR法
により増幅されたアスペルギルス・フミガタスのリボソ
ームRNA遺伝子の検出 実施例1−(4)に記載のPCR反応液を電気泳動し
た、1.2%アガロースゲルをアルカリ変性後、ナイロ
ンメンブラン(アマーシャムハイボンド−N)に一晩サ
ザンブロットした。紫外線トランスイルミネーター(2
54nm)で10分間照射し、DNAをメンブランに固定
した。このメンブランからのDNA検出は、ECL 3
´ーオリゴラベリング・検出システム(アマシャム・ジ
ャパン社)を用いた蛍光発光によって、次のように行っ
た。プレハイブリダイゼーション緩衝液(0.5%ブロ
ッキング液、5×SSC、0.1%SDS、5%硫酸デ
キストラン及び100μg /mlサケ精子DNA)5ml中
で37℃で30分間プレハイブリダイゼーションを行っ
た。次にターミナルトランスフェラーゼを用いて、フル
オレセイン修飾dUTPをテーリングさせたプローブ1
を加え、37℃で一晩ハイブリダイゼーションを行っ
た。ハイブリダイゼーション後、メンブランを洗浄バッ
ファー1(1×SSC/0.1%SDS)中で15分
間、60℃で振とうしながら洗浄し、続いて洗浄バッフ
ァー2(0.5×SSC/0.1%SDS)中で15分
間、60℃で振とうしながら2回洗浄した。更にバッフ
ァー1の中でメンブランを1分間軽く洗浄後、室温で6
0分間、0.5%ブロッキング液中で振とうを行った。
次にバッファー2を用いて1000倍希釈したHRP標
識抗フルオレセイン抗体溶液中で、室温で60分間イン
キュベーションを行った。メンブランを乾燥させた後、
ハイパーフィルム−ECL(アマシャム・ジャパン社)
を入れたカセット内で40分間露光を行った。この結
果、アスペルギルス・フミガタスのPCR増幅DNA
は、プローブ1とハイブリダイズしてバンドが現れた
が、その他のサンプルではバンドが認められなかった。
このことは、プライマー1及びプライマー2でアスペル
ギルス・フミガタスのDNAのみが特異的に増幅され、
プローブ1とのハイブリダイゼーションでアスペルギル
ス・フミガタスのリボソームRNA遺伝子に特異的な配
列が検出できることを示すものである。
【0015】実施例2 病原糸状真菌各種各株のリボソームRNA遺伝子のPC
R法による検出 (1)ゲノムDNAの調製 表3に示した病原糸状真菌各種各株について、実施例1
−(2)の方法による培養及びゲノムDNAの調製を行
った。
R法による検出 (1)ゲノムDNAの調製 表3に示した病原糸状真菌各種各株について、実施例1
−(2)の方法による培養及びゲノムDNAの調製を行
った。
【0016】表3 アスペルギルス・フミガタス JCM1738 アスペルギルス・フミガタス TIMM1335 アスペルギルス・フミガタス No.2005 アスペルギルス・フミガタス No.2014 アスペルギルス・フミガタス No.2021 アスペルギルス・フミガタス No.2022 アスペルギルス・テレウス No.2036 アスペルギルス・フラーブス TIMM0057 アスペルギルス・ベルシカラー TIMM1290 アスペルギルス・ニドゥランス TIMM0111 アスペルギルス・ニゲル TIMM0113 ペニシリウム・エクスパンスム TIMM1293
【0017】(2)プライマー1及びプライマー2を用
いたPCRによるリボソームRNA遺伝子の検出 上記DNA10ngをそれぞれ0. 5ml用チューブに取
り、実施例1と同じ組成に調製した10μl の10×増
幅用緩衝液、8μl のdNTP混合液(dATP、dG
TP、dTTP、dCTP;各100mM)、1μl の3
0pmol/μl プライマー1、1μl の30pmol/μl プ
ライマー2及び0. 5μl の5ユニット/μl タックポ
リメラーゼを加え、更に滅菌水を加えて100μl の溶
液にした。この反応液に、上層に100μl のミネラル
オイルを加えた後、自動遺伝子増幅装置サーマルサイク
ラーにより増幅反応を行った。反応条件は、94℃で5
分間変性の後、94℃で1分間の変性→55℃で2分間
のプライマーのアニーリング→72℃で1分間の合成反
応のサイクルを25サイクル行った後、72℃で10分
間の伸長反応を行った。反応後、下層の反応液を5μl
取り、1. 2%アガロースゲル電気泳動を行い、エチジ
ウムブロマイドでDNAを染色し、増幅されたDNAを
確認した。この結果、表3に示した7種12菌株の病原
糸状真菌全てに385bpの単一のバンドを確認した。
いたPCRによるリボソームRNA遺伝子の検出 上記DNA10ngをそれぞれ0. 5ml用チューブに取
り、実施例1と同じ組成に調製した10μl の10×増
幅用緩衝液、8μl のdNTP混合液(dATP、dG
TP、dTTP、dCTP;各100mM)、1μl の3
0pmol/μl プライマー1、1μl の30pmol/μl プ
ライマー2及び0. 5μl の5ユニット/μl タックポ
リメラーゼを加え、更に滅菌水を加えて100μl の溶
液にした。この反応液に、上層に100μl のミネラル
オイルを加えた後、自動遺伝子増幅装置サーマルサイク
ラーにより増幅反応を行った。反応条件は、94℃で5
分間変性の後、94℃で1分間の変性→55℃で2分間
のプライマーのアニーリング→72℃で1分間の合成反
応のサイクルを25サイクル行った後、72℃で10分
間の伸長反応を行った。反応後、下層の反応液を5μl
取り、1. 2%アガロースゲル電気泳動を行い、エチジ
ウムブロマイドでDNAを染色し、増幅されたDNAを
確認した。この結果、表3に示した7種12菌株の病原
糸状真菌全てに385bpの単一のバンドを確認した。
【0018】実施例3 病原糸状真菌遺伝子の増幅・検出キットの作製 試料中の病原糸状真菌遺伝子を増幅・検出するためのキ
ットを作製した。DNA増幅用プライマーとしてプライ
マー1及びプライマー2が各30pmol/μl 溶液となる
ようにTE緩衝液(10mM Tris、 1mM EDT
A、pH8.2)40μl に溶解し、病原糸状真菌遺伝子
増幅プライマー液(A剤)とした。DNA検出用プロー
ブとして、プローブ1の1μg をTE緩衝液20μl に
溶解し、病原真菌遺伝子検出プローブ液(B剤)とし
た。A剤、B剤を1組として、病原糸状真菌遺伝子DN
Aの増幅・検出キットとした(表4)。
ットを作製した。DNA増幅用プライマーとしてプライ
マー1及びプライマー2が各30pmol/μl 溶液となる
ようにTE緩衝液(10mM Tris、 1mM EDT
A、pH8.2)40μl に溶解し、病原糸状真菌遺伝子
増幅プライマー液(A剤)とした。DNA検出用プロー
ブとして、プローブ1の1μg をTE緩衝液20μl に
溶解し、病原真菌遺伝子検出プローブ液(B剤)とし
た。A剤、B剤を1組として、病原糸状真菌遺伝子DN
Aの増幅・検出キットとした(表4)。
【0019】表4 A剤 病原糸状真菌遺伝子増幅プライマーA液 40μ
l (2μl ×20回分) B剤 病原糸状真菌遺伝子検出プローブB液 20μ
l (1μl ×20回分)
l (2μl ×20回分) B剤 病原糸状真菌遺伝子検出プローブB液 20μ
l (1μl ×20回分)
【0020】
【発明の効果】以上詳細に説明したように、本発明によ
り、病原糸状真菌のリボソームRNA遺伝子を検出する
ことによる、試料中の病原糸状真菌の高感度検出法及び
検出キットが提供される。
り、病原糸状真菌のリボソームRNA遺伝子を検出する
ことによる、試料中の病原糸状真菌の高感度検出法及び
検出キットが提供される。
【配列表】 配列番号:1 配列の長さ:19 配列の型:核酸 鎖の数:1本鎖 トポロジー:直線状 配列の種類:他の核酸(合成DNA) ハイポセティカル配列:NO アンチセンス:NO 配列の特徴: 1-19 E primer 配列: ACTTTCGATGGTAGGATAG 19 配列番号:2 配列の長さ:19 配列の型:核酸 鎖の数:1本鎖 トポロジー:直線状 配列の種類:他の核酸(合成DNA) ハイポセティカル配列:NO アンチセンス:YES 配列の特徴: 1-19 E primer 配列: CAGAAGGAAAGGTCCAGCC 19 配列番号:3 配列の長さ:20 配列の型:核酸 鎖の数:1本鎖 トポロジー:直線状 配列の種類:他の核酸(合成DNA) ハイポセティカル配列:NO アンチセンス:NO 配列の特徴: 1-20 E probe 配列: CTGAGAAACGGCTACCACAT 20
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 C12R 1:67) (C12Q 1/68 C12R 1:80) (56)参考文献 JOURNAL OF MEDICAL MICROBIOLOGY,36〜4! (1992)(英)P.255−263 JOURNAL OF CLINICA L MICROBIOLOGY,29〜11! (1991)(米)P.2543−2549 JOURNAL OF CLINICA L MICROBIOLOGY,30〜5! (1992)(米)P.1210−1215
Claims (2)
- 【請求項1】 配列表の配列番号1及び2で表される合
成DNAプライマー対を用いて、アスペルギルス属又は
ペニシリウム属の病原糸状真菌リボソームRNA遺伝子
(DNA)をPCR法により増幅させて検出することを
特徴とするアスペルギルス属またはペニシリウム属の病
原糸状真菌の検出方法。 - 【請求項2】 請求項1記載の合成DNAプライマー
対、及び増幅されたDNAを検出するためのプローブか
らなることを特徴とする病原糸状真菌の検出キット。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP5130778A JPH0824599B2 (ja) | 1993-06-01 | 1993-06-01 | 病原糸状真菌遺伝子増幅プライマー |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP5130778A JPH0824599B2 (ja) | 1993-06-01 | 1993-06-01 | 病原糸状真菌遺伝子増幅プライマー |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH06339400A JPH06339400A (ja) | 1994-12-13 |
| JPH0824599B2 true JPH0824599B2 (ja) | 1996-03-13 |
Family
ID=15042453
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP5130778A Expired - Fee Related JPH0824599B2 (ja) | 1993-06-01 | 1993-06-01 | 病原糸状真菌遺伝子増幅プライマー |
Country Status (1)
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-
1993
- 1993-06-01 JP JP5130778A patent/JPH0824599B2/ja not_active Expired - Fee Related
Non-Patent Citations (3)
| Title |
|---|
| JOURNALOFCLINICALMICROBIOLOGY,29〜11!(1991)(米)P.2543−2549 |
| JOURNALOFCLINICALMICROBIOLOGY,30〜5!(1992)(米)P.1210−1215 |
| JOURNALOFMEDICALMICROBIOLOGY,36〜4!(1992)(英)P.255−263 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH06339400A (ja) | 1994-12-13 |
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