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JP2567664B2 - Monoclonal antibody against human Mn superoxide dismutase - Google Patents
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JP2567664B2 - Monoclonal antibody against human Mn superoxide dismutase - Google Patents

Monoclonal antibody against human Mn superoxide dismutase

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JP2567664B2 JP63128165A JP12816588A JP2567664B2 JP 2567664 B2 JP2567664 B2 JP 2567664B2 JP 63128165 A JP63128165 A JP 63128165A JP 12816588 A JP12816588 A JP 12816588A JP 2567664 B2 JP2567664 B2 JP 2567664B2
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Description

【発明の詳細な説明】 〔産業上の利用分野〕 本発明は、ヒトMn−SOD(以下、「ヒトMn−SOD」と略
す)のみに対して高い特異性を有するモノクローナル抗
体及びそのモノクローナル抗体の製法に関する。
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION [Field of Industrial Application] The present invention relates to a monoclonal antibody having high specificity only for human Mn-SOD (hereinafter, abbreviated as “human Mn-SOD”) and a monoclonal antibody thereof. Regarding manufacturing method.

〔従来の技術〕[Conventional technology]

ヒトMn−SODは、ミトコンドリアのマトリックス部分
に存在する酵素(1ドメインの分子量が約25,000であ
り、そのダイマーまたはテトラマーからなる)であり、
次に示すように、毒性酸素の主要な分子種であるスーパ
ーオキシドアニオンラジカル(O2)を不均化する反応を
触媒する。
Human Mn-SOD is an enzyme (molecular weight of one domain is about 25,000 and consists of its dimer or tetramer) existing in the matrix part of mitochondria,
As shown below, it catalyzes a reaction that disproportionates the superoxide anion radical (O 2 ) which is a major molecular species of toxic oxygen.

2O- 2+2H+→H2O2+O2 ところで、肝疾患における血清中のヒトMn−SOD濃度
の測定には、ポリクローナル抗体を用いた検討によっ
て、高い診断的意義が存在すると考えられている(医薬
ジャーナル;稲垣、沢木、20、1、1984年。第5回腫瘍
マーカー研究会;飯塚、新井ら、1985年)。また、谷口
らも、ヤギに免疫して作製したポリクローナル抗体を用
いた免疫学的な方法で、ヒトMn−SOD濃度が肺癌で高い
ことを示しており(Journal of National Cancer Insti
tute、72、5、1984年)、血清中のヒトMn−SOD濃度の
測定の重要性が指摘されている。
2O - 2 + 2H + → H 2 O 2 + O 2 By the way, the measurement of human Mn-SOD concentration in serum in liver disease by study using polyclonal antibodies, it is believed that there are high diagnostic significance ( Pharmaceutical Journal; Inagaki, Sawaki, 20 , 1, 1984. 5th Tumor Marker Study Group; Iizuka, Arai et al., 1985). Taniguchi et al. Also showed that human Mn-SOD concentration was high in lung cancer by an immunological method using a polyclonal antibody prepared by immunizing goat (Journal of National Cancer Insti).
(Tute, 72 , 5, 1984), the importance of measuring human Mn-SOD concentration in serum has been pointed out.

しかし、これらの各疾患における血清中のヒトMn−SO
D濃度の測定には、ポリクローナル抗体が用いられてい
るので、ヒトMn−SODに対する反応の特異性をさらに高
め、常に同品質の高い特異的な反応性を有する抗体を得
るためにもモノクローナル抗体を作製し、その製造方法
を確立する必要があるが、今だにヒトMn−SODに対して
非常に高い特異的な反応性を有するモノクローナル抗体
に関する報告は認められていない。
However, human Mn-SO in serum in each of these diseases
Since a polyclonal antibody is used to measure the D concentration, the monoclonal antibody is used to further enhance the specificity of the reaction to human Mn-SOD and to always obtain an antibody having the same high specific reactivity. Although it has been necessary to prepare and establish a method for producing the same, there are still no reports regarding a monoclonal antibody having a very high specific reactivity with human Mn-SOD.

〔発明が解決すべき問題点〕[Problems to be solved by the invention]

本発明の目的は、ヒト血清中のヒトMn−SODに対して
非常に高い特異的な反応性を有するモノクローナル抗体
を提供することである。
The object of the present invention is to provide a monoclonal antibody having a very high specific reactivity to human Mn-SOD in human serum.

〔問題点を解決するための手段〕[Means for solving problems]

本発明者らは、前記の問題点を解決するために鋭意研
究した結果、ヒトMn−SODをマウスに免疫し、細胞融合
することによって得られた細胞株を培養することによっ
て、ヒトMn−SODに対して非常に高い特異的な反応性を
示すモノクローナル抗体を生産できることを見出し、本
発明を完成するに至った。
The present inventors have conducted extensive studies to solve the above problems, as a result of immunizing mice with human Mn-SOD, and culturing the cell line obtained by cell fusion to obtain human Mn-SOD. It was found that a monoclonal antibody having a very high specific reactivity with can be produced, and the present invention has been completed.

即ち、本発明は、 ヒトMn−SODをマウスに免疫し、そのマウスから得た
リンパ球とマウスミエローマ細胞とを融合して得られた
細胞株が産生したヒトMn−SODのみに対して高い特異性
を有することを特徴とするモノクローナル抗体 に関するものである。
That is, the present invention is highly specific only to human Mn-SOD produced by a cell line obtained by immunizing a mouse with human Mn-SOD and fusing lymphocytes obtained from the mouse with mouse myeloma cells. The present invention relates to a monoclonal antibody characterized by having a property.

以下、本発明について詳細に説明する。 Hereinafter, the present invention will be described in detail.

本発明のモノクローナル抗体は、ヒトMn−SODをマウ
スに免疫し、細胞融合することによって得られた細胞株
が産生するものであり、ヒトMn−SODに対して非常に高
い特異的な反応性を有するものである。
The monoclonal antibody of the present invention is produced by a cell line obtained by immunizing a mouse with human Mn-SOD and cell fusion, and has a very high specific reactivity to human Mn-SOD. I have.

本発明でマウスの免疫に用いる免疫原としては、ヒト
Mn−SODに対して非常に高い特異的な反応性を有するモ
ノクローナル抗体を得ることができるものであれば特に
制限されないが、例えば、ヒトMn−SODを構成するモノ
マー、ヒトMn−SOD、およびヒトMn−SODの一部分を合成
したペプチドなどを挙げることができるが、好ましくは
ヒトMn−SODを用いるのが良い。本発明のヒトMn−SODの
みに対して高い特異性を有するモノクローナル抗体は、
ヒトCu,Znスーパーオキシドジスムターゼ(以下、ヒトC
u,Zn−SODと略す)、ヒトアルブミン、ヒトグロブリン
とは反応性が認められないものである。そのような特異
性を有するモノクローナル抗体は、例えば、ヒトMn−SO
Dを免疫したマウスから得たリンパ球とマウスのミエロ
ーマ細胞とを融合して得たハイブリドーマ株のNI8株
(微工研条寄第1606号)、PE9株(微工研条寄第1607
号)、PG11株(微工研条寄第1608号)などを培養するこ
とによって得ることができる。
The immunogen used for immunizing mice in the present invention includes human
It is not particularly limited as long as it is possible to obtain a monoclonal antibody having a very high specific reactivity to Mn-SOD, for example, a monomer constituting human Mn-SOD, human Mn-SOD, and human. A peptide obtained by synthesizing a part of Mn-SOD can be mentioned, but human Mn-SOD is preferably used. The monoclonal antibody having high specificity only to the human Mn-SOD of the present invention,
Human Cu, Zn superoxide dismutase (hereinafter human C
u, Zn-SOD), human albumin, and human globulin have no reactivity. Monoclonal antibodies having such specificity include, for example, human Mn-SO
NI8 strain of hybridoma strain obtained by fusing lymphocytes obtained from mice immunized with D and myeloma cells of mouse (Microtech Lab Article 1606), PE9 strain (Microtech Lab Article 1607)
No.), the PG11 strain (Microtechnology Research Institute No. 1608) and the like.

このようなハイブリドーマの作製は、従来公知の方
法、例えば、MilsteinとKholerの方法〔Nature,256,495
(1976)〕に準じて行うことができる。そのようなハイ
ブリドーマ株の好ましい作製方法について、概略を以下
順次説明する。
Such a hybridoma can be produced by a conventionally known method, for example, the method of Milstein and Kholer [Nature, 256 , 495].
(1976)]. The outline of a preferable method for producing such a hybridoma strain will be sequentially described below.

モノクローナル抗体産生ハイブリドーマ株の作製 (i)免疫動物リンパ球の調製 マウスの免疫方法は、PBS(リン酸緩衝食塩水)に溶
解したヒトMn−SOD(10〜400μg)をマウスに1回また
は数週間隔で数回投与することで行うことができる。
Preparation of Monoclonal Antibody-Producing Hybridoma Strain (i) Preparation of Immunized Animal Lymphocytes Mice were immunized by human Mn-SOD (10 to 400 μg) dissolved in PBS (phosphate buffered saline) once or for several weeks. It can be performed by administering several times at intervals.

1回目の免疫は、アジュバント(ミョウバン、結核死
菌体、核酸などを含む免疫促進物質)を投与せずに行う
こともできるが、アジュバントを用いて調製したエマル
ジョンを投与することが好ましい。
The first immunization can be performed without administering an adjuvant (immunity-promoting substance including alum, killed tuberculosis cells, nucleic acid, etc.), but it is preferable to administer an emulsion prepared using an adjuvant.

リンパ球は、その免疫動物であるマウスの充分な抗体
価を確認後、最終免疫から数日後の、血液、リンパ節、
脾臓などから得ることができるが、脾臓から得た方が好
ましい。
Lymphocytes are blood, lymph nodes, several days after the final immunization, after confirming a sufficient antibody titer in the immunized mouse.
It can be obtained from the spleen or the like, but is preferably obtained from the spleen.

(ii)ミエローマ細胞の準備 細胞融合には、マウス由来のMPC−11、P3−X63−Ag8
・653(653)、P3−X63−Ag8−U1(P3U1)、P3−NS−1
(NS−1)、SP2/0−Ag14(SP2/0)など、およびラット
由来の210.RC Y3.Ag1.2.3(Y3)などのミエローマ細胞
を用いることができるが、653、P3U1、NS−1、SP2/0な
どの細胞外に抗体を産生分泌しないミエローマ細胞を用
いた方が好ましい。
(Ii) Preparation of myeloma cells For cell fusion, MPC-11, P3-X63-Ag8 derived from mouse was used.
・ 653 (653), P3-X63-Ag8-U1 (P3U1), P3-NS-1
(NS-1), SP2 / 0-Ag14 (SP2 / 0) and the like, and rat-derived myeloma cells such as 210.RC Y3.Ag1.2.3 (Y3) can be used, but 653, P3U1, NS- It is preferable to use myeloma cells that do not produce and secrete extracellular antibodies such as 1, SP2 / 0.

(iii)細胞融合 細胞融合は、前記のようにして免疫されたマウスのリ
ンパ球とミエローマ細胞との細胞数を(3〜20):1の割
合で、細胞融合に支障をきたさない細胞懸濁溶液、例え
ば、一般に用いられるリンパ球培養用培地成分(MEM、D
MEM、McCoy、RPMI1640などの培地成分)溶液、等張緩衝
液などを用いて良く混合し、遠心分離した後のペレット
(細胞塊)に、HVJ(センダイウイルス)またはPEG(ポ
リエチレングリコール)溶液を添加することによって行
うことができるが、好ましくはPEG溶液を用いるのがよ
く、さらに好ましくは平均分子量が1000〜8000で30〜60
重量%のPEG溶液を用いるのがよい。この時、細胞融合
を促進するために、コルヒチン、ジメチルスルホキシ
ド、ポリ−L−アルギニンなどを添加することもでき
る。
(Iii) Cell fusion Cell fusion is a cell suspension in which the cell number of lymphocytes and myeloma cells of the mouse immunized as described above is (3 to 20): 1 and does not interfere with cell fusion. Solution, for example, commonly used lymphocyte culture medium components (MEM, D
HVJ (Sendai virus) or PEG (polyethylene glycol) solution is added to the pellet (cell mass) after thorough mixing using MEM, McCoy, RPMI1640, etc.) solution, isotonic buffer, etc., and centrifugation. However, it is preferable to use a PEG solution, more preferably 30 to 60 with an average molecular weight of 1,000 to 8,000.
It is advisable to use a weight% PEG solution. At this time, colchicine, dimethyl sulfoxide, poly-L-arginine and the like can be added to promote cell fusion.

細胞融合に用いるミエローマ細胞としては、免疫され
たマウスと異種の動物由来のものを使用することもでき
るが、得られるモノクローナル抗体産生ハイブリドーマ
株の抗体産生量および安定性の面を考えると、免疫され
たマウスとは同種のミエローマ細胞を用いた方がよく、
さらに好ましくは同系のものを用いた方がよい。
As the myeloma cells used for cell fusion, those derived from an animal different from the immunized mouse can be used, but considering the antibody production amount and stability of the resulting monoclonal antibody-producing hybridoma strain, It is better to use allogeneic myeloma cells with
It is more preferable to use the same type.

(iv)ハイブリドーマの選択 ハイブリドーマの選択は、細胞融合の操作後の細胞を
HAT培地(ヒポキサンチン、アミノプテリン、チミジ
ン、ウシ胎児血清を含有した培地。この培地成分として
は一般に用いられるリンパ球培養用培地成分を用いるこ
とができる)で培養して行うことができる。
(Iv) Selection of hybridoma Hybridoma is selected by selecting cells after the operation of cell fusion.
It can be carried out by culturing in a HAT medium (medium containing hypoxanthine, aminopterin, thymidine and fetal calf serum. As the medium component, a commonly used lymphocyte culture medium component can be used).

ハイブリドーマの培養は、培養プレートの各ウェル
(培養ウェル)に抗体産生ウェルの検索に適した細胞個
数を入れて行い、この時、ハイブリドーマの増殖促進物
質またはそれを産生する細胞(例えば、胸腺、脾臓、リ
ンパ節由来のリンパ球など)をフィーダー細胞として必
要に応じて使用することができる。
Hybridomas are cultivated by inserting a number of cells suitable for searching antibody-producing wells into each well of the culture plate (culture well), and at this time, the hybridoma growth-promoting substance or cells producing it (eg, thymus, spleen). , Lymph nodes-derived lymphocytes) can be used as feeder cells as required.

HAT培地で増殖することによって選択されたハイブリ
ドーマは、抗体産生ウェルの検索に適した細胞個数に達
するまで、HT培地(ヒポキサンチン、チミジン、ウシ胎
児血清を含有した培地、この培地成分としては一般に用
いられるリンパ球培養用培地成分を用いることができ
る)で数日間培養し、さらに、一般的に用いられるウシ
胎児血清を含有するリンパ球培養用培地で培養する。
Hybridomas selected by growing in HAT medium were used as HT medium (medium containing hypoxanthine, thymidine, fetal calf serum, generally used as a component of this medium) until the number of cells suitable for searching antibody-producing wells was reached. The lymphocyte culture medium component can be used) for several days, and further, it is further cultured in a commonly used lymphocyte culture medium containing fetal bovine serum.

(v)抗体産生ハイブリドーマの選択 前記(iv)で得られたハイブリドーマが、目的とする
抗体を産生しているか否かの検定は、例えば、ELISA法
(酵素免疫測定法)、プラーク形成法、凝集反応法、RI
A(ラジオアイソトープを用いた方法)、間接蛍光抗体
法(IFA)などで行うことができるが、検定数が非常に
多い場合には、ELISA法で行うことが好ましい。
(V) Selection of Antibody-Producing Hybridoma The test whether or not the hybridoma obtained in (iv) produces the target antibody can be carried out by, for example, ELISA (enzyme-linked immunosorbent assay), plaque formation, aggregation. Reaction method, RI
A (method using radioisotope), indirect fluorescent antibody method (IFA) and the like can be performed, but when the number of assays is very large, the ELISA method is preferable.

このELISA法は、以下のようにして行う。 This ELISA method is performed as follows.

ヒトMn−SODを固定化したELISAプレートの各ウェル
(測定ウェル)に、ハイブリドーマ培養上清を加えて一
定時間静置する。そして、これらの洗浄した各測定ウェ
ルに結合したマウス由来の抗体と反応して結合すること
ができる酵素標識抗体(標識に用いる酵素は、例えば、
ペルオキシダーゼ、アルカリフォスファターゼ、β−ガ
ラクトシダーゼなどを挙げることができる。標識される
抗体は測定ウェルに結合した動物由来の抗体だけと反応
して結合することができる限り特に限定されず、例え
ば、マウス、ラット、ウサギ、ヤギなどから得られた血
清、またはマウス細胞などを用いて作製されたハイブリ
ドーマ株が産生したモノクローナル抗体を挙げることが
できる。)をこれらの測定ウェルに加えて一定時間静置
する。次に、これらの測定ウェルを洗浄し、用いた酵素
に対応した基質溶液を加えて酵素活性を測定する。そし
て、酵素活性が認められれば、その培養上清をとった培
養ウェル中に目的とする抗体を産生するハイブリドーマ
が存在していたことがわかる。
The hybridoma culture supernatant is added to each well (measurement well) of an ELISA plate on which human Mn-SOD is immobilized, and the mixture is left standing for a certain period of time. Then, an enzyme-labeled antibody capable of binding by reacting with the mouse-derived antibody bound to each of these washed measurement wells (the enzyme used for labeling is, for example,
Peroxidase, alkaline phosphatase, β-galactosidase and the like can be mentioned. The antibody to be labeled is not particularly limited as long as it can bind only by reacting with the antibody of animal origin bound to the measurement well, and for example, serum obtained from mouse, rat, rabbit, goat, etc., or mouse cell, etc. The monoclonal antibody produced by the hybridoma strain produced by using ) Is added to these measurement wells and left for a certain period of time. Next, these measurement wells are washed, and a substrate solution corresponding to the enzyme used is added to measure the enzyme activity. If the enzyme activity is observed, it can be seen that the hybridoma producing the desired antibody was present in the culture well from which the culture supernatant was collected.

このようにして、細胞増殖が認められ、かつ抗体を産
生しているハイブリドーマを得ることができる。
In this way, a hybridoma in which cell proliferation is recognized and which produces an antibody can be obtained.

(vi)ハイブリドーマの株化(クローニング) 抗体産生が認められた培養ウェル中のハイブリドーマ
は、限界希釈法、シングル・セル・マニプレーション法
(倒立顕微鏡下、1ウェルに1個のハイブリドーマを入
れる方法、軟寒天を用いてコロニーを拾い上げる方法、
FACS(Fluorecent Activated Cell Sorter)を用いた方
法などでクローニングすることができる。この時、前記
のいずれかのクローニング方法によって(v)で見出し
た抗体産生ハイブリドーマを培養し、その増殖が認めら
れた培養ウェルの上清を用い、(v)の抗体産生ハイブ
リドーマの選択で行ったELISA法と同様の方法で、抗体
産生ウェルを検索する。
(Vi) Hybridoma Straining (Cloning) The hybridomas in the culture wells in which antibody production was observed were the limiting dilution method, the single cell manipulation method (under an inverted microscope, one hybridoma was placed in each well). , Picking colonies using soft agar,
It can be cloned by a method using FACS (Fluorecent Activated Cell Sorter). At this time, the antibody-producing hybridoma found in (v) was cultured by any of the above-mentioned cloning methods, and the supernatant of the culture well in which the growth was observed was used to select the antibody-producing hybridoma in (v). The antibody producing wells are searched in the same manner as the ELISA method.

このようにして、ヒトMn−SODに対して特異性が高
く、かつ抗体価が高いモノクローナル抗体を産生するハ
イブリドーマ株を選択することができる。
In this way, a hybridoma strain that produces a monoclonal antibody with high specificity for human Mn-SOD and high antibody titer can be selected.

モノクローナル抗体の製法 ヒトMn−SODに対して特異性が高く、かつ抗体価が高
いモノクローナル抗体の生産は、前記(vi)で得たハイ
ブリドーマ株をフラスコ内で培養したり、または動物の
腹腔内で培養することによって行うことができる。
Production of Monoclonal Antibody High specificity for human Mn-SOD, and production of a high antibody titer can be performed by culturing the hybridoma strain obtained in (vi) above in a flask, or in the abdominal cavity of an animal. It can be performed by culturing.

前記(vi)で得たハイブリドーマ株のフラスコ内培養
での該モノクローナル抗体の生産は、例えば、0〜20%
ウシ胎児血清を含む一般的に用いられるリンパ球培養用
培地(例えば、MEM、DMEM、McCoy、RPMI1640などの培地
成分を含む培地)で細胞濃度が上限に達するまで培養す
ることによって行うことができる。この時、該モノクロ
ーナル抗体は、遠心操作で得た培養上清中に含まれてい
る。
The production of the monoclonal antibody in the flask culture of the hybridoma strain obtained in (vi) above is, for example, 0 to 20%.
It can be carried out by culturing in a commonly used lymphocyte culture medium containing fetal bovine serum (for example, a medium containing medium components such as MEM, DMEM, McCoy and RPMI1640) until the cell concentration reaches the upper limit. At this time, the monoclonal antibody is contained in the culture supernatant obtained by centrifugation.

一方、前記(vi)で得たハイブリドーマ株の動物腹腔
内培養での該モノクローナル抗体の生産は、細胞融合に
用いた細胞が由来する動物とは異種の動物を用いて行う
こともできるが、同種の動物を用いて行った方が好まし
く、さらに好ましくは同系の動物を用いて行った方がよ
い。
On the other hand, the production of the monoclonal antibody by intraperitoneal culture of the hybridoma strain obtained in (vi) above can be performed using an animal of a different type from the animal from which the cells used for cell fusion are derived. It is preferable to use the animal of 1st line, and more preferable to use the animal of the same line.

このような方法によるヒトMn−SODに対して特異性が
高く、かつ抗体価が高い該モノクローナル抗体の生産
は、マウス、ラット、ハムスターなどの適当な動物の腹
腔内にこの動物の免疫能を低下させる物質、例えば、プ
リスタンなどの鉱物油を投与し、数週間後に106〜107
の前記(vi)で得たハイブリドーマ株細胞を投与し、そ
の腹腔内にこの株細胞を数週間で高密度に増殖させるこ
とによって行うことができる。この時、該モノクローナ
ル抗体は、遠心操作で得た腹水上清中に含まれている。
そして、その抗体濃度は、フラスコ内培養で得た時の培
養上清の抗体濃度の10〜1000倍である。
The production of the monoclonal antibody having high specificity for human Mn-SOD and high antibody titer by such a method reduces the immunocompetence of an appropriate animal such as mouse, rat or hamster in the abdominal cavity of the animal. Substance, for example, mineral oil such as pristane, is administered, and several weeks later, 10 6 to 10 7 of the hybridoma cell line obtained in (vi) above are administered, and this cell line is injected intraperitoneally for several weeks. This can be done by growing to density. At this time, the monoclonal antibody is contained in the ascites supernatant obtained by centrifugation.
The antibody concentration is 10 to 1000 times the antibody concentration of the culture supernatant when it is obtained by in-flask culture.

ハイブリドーマ株のフラスコ内または動物腹腔内での
培養で得らてた該モノクローナル抗体は、蛋白質の一般
的な精製法に適用されている塩析、透析、イオン交換ク
ロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー
などを行うことによって精製され、高純度のモノクロー
ナル抗体となる。
The monoclonal antibody obtained by culturing the hybridoma strain in a flask or in the abdominal cavity of an animal undergoes salting out, dialysis, ion exchange chromatography, affinity chromatography, etc., which are applied to general protein purification methods. By doing so, it becomes a highly pure monoclonal antibody.

前記のようにして得た該モノクローナル抗体は、ヒト
Mn−SODに対して非常に高い特異的な反応性を有するも
のである。
The monoclonal antibody obtained as described above is human
It has a very high specific reactivity to Mn-SOD.

〔実施例〕〔Example〕

以下、本発明の実施例を具体的に説明する。なお、こ
れらの実施例は、本発明の範囲を限定するものではな
い。
Hereinafter, examples of the present invention will be specifically described. It should be noted that these examples do not limit the scope of the present invention.

実施例1 〔ヒトMn−SODに対するモノクローナル抗体産生ハイブ
リドーマ株の作製〕 (a)マウスの免疫及び脾臓リンパ球の調製 80μgのヒトMn−SODを溶解した1mlのPBS(リン酸緩
衝液、pH7.4)と1mlのフロントの完全アジュバントとを
充分に混合して得られたエマルジョンの0.5mlをBALB/c
マウス(♀、8週齢)の腹腔内に投与した。
Example 1 [Production of monoclonal antibody-producing hybridoma strain against human Mn-SOD] (a) Immunization of mouse and preparation of spleen lymphocytes 1 ml of PBS (phosphate buffer, pH7.4) in which 80 μg of human Mn-SOD was dissolved ) And 1 ml of Freund's complete adjuvant were thoroughly mixed and 0.5 ml of the emulsion obtained was mixed with BALB / c.
It was intraperitoneally administered to mice (♀, 8 weeks old).

この初回免疫から2週間後にフロイントの完全アジュ
バントのかわりにフロイントの不完全アジュバントを用
いた以外は前記と同様にして調製したエマルジョンの0.
5mlを前記マウスの腹腔内に投与した。
An emulsion prepared in the same manner as above except that Freund's incomplete adjuvant was used instead of Freund's complete adjuvant two weeks after the first immunization.
5 ml was intraperitoneally administered to the mouse.

さらに、2週間後に、最終免疫として、前記のヒトMn
−SODを20μg溶解した0.2mlのPBSを前記マウスの尾静
脈に投与した。
Furthermore, after 2 weeks, the above-mentioned human Mn was used as the final immunization.
0.2 ml of PBS containing 20 μg of SOD was administered to the tail vein of the mouse.

このようにして免疫されたマウスから、最終免疫から
4日目に摘出した脾臓を、氷冷下に、10mlのRPMI1640溶
液(リンパ球培養用倍地粉末を蒸溜水に溶解したもの)
を入れたシャーレ中で洗い、新たに用意したRPMI1640溶
液の中に移し、ハサミで4等分し、ピンセットでほぐし
た。
From the mice immunized in this way, the spleen extracted on the 4th day after the final immunization was cooled to 10 ml with RPMI1640 solution (a medium in which distilled medium for lymphocyte culture was dissolved in distilled water).
It was washed in a petri dish containing the mixture, transferred into a newly prepared RPMI1640 solution, divided into 4 equal parts with scissors, and loosened with tweezers.

このようにして得た浮遊リンパ球を、RPMI1640溶液に
懸濁して、遠心分離し(回転数;1000rpm,時間;5分
間)、RPMI1640溶液に再懸濁し、細胞融合に使用するマ
ウス脾臓リンパ球とした。
The floating lymphocytes thus obtained were suspended in RPMI1640 solution, centrifuged (rotation speed; 1000 rpm, time; 5 minutes), resuspended in RPMI1640 solution, and mouse spleen lymphocytes used for cell fusion. did.

(b)細胞融合 1.82×107個の対数増殖期にある8−アザグアニン耐
性のマウスミエローマ細胞(NS−1)と前記マウスの脾
臓リンパ球1.39×108個とを50ml容プラスチック製コニ
カル遠心管に入れ、混合し、次いで、上清を遠心分離し
た後に(回転数;1500rpm,時間;5分間)、同遠心管を軽
くたたいてペレットをほぐした。
(B) Cell fusion 1.82 × 10 7 8-azaguanine-resistant mouse myeloma cells (NS-1) in the logarithmic growth phase and 1.39 × 10 8 spleen lymphocytes of the mouse in a 50 ml plastic conical centrifuge tube The mixture was placed in a tube, mixed, and then the supernatant was centrifuged (rotation speed; 1500 rpm, time; 5 minutes), and then the same centrifuge tube was tapped to loosen the pellet.

このペレットを激しく振とうしながら、この中に、50
%PEG4000溶液(37℃)を1分間かけて1ml入れ、さら
に、1分間激しく振とうした。
While shaking the pellet vigorously,
% PEG4000 solution (37 ° C.) was added in 1 ml over 1 minute, and the mixture was vigorously shaken for 1 minute.

同遠心管を穏やかに振とうしながら10mlのRPMI1640溶
液(37℃)を3分間かけて徐々に加え、さらに40mlのRP
MI1640溶液(37℃)を加え、室温で20分間静置した。そ
の後、室温で遠心分離(回転数;1000rpm,時間;5分間)
して、上清を吸引除去した。
While gently shaking the centrifuge tube, gradually add 10 ml of RPMI1640 solution (37 ° C) over 3 minutes, and further add 40 ml of RP.
MI1640 solution (37 ° C) was added, and the mixture was allowed to stand at room temperature for 20 minutes. Then, centrifuge at room temperature (rotation speed; 1000 rpm, time; 5 minutes)
Then, the supernatant was removed by suction.

同遠心管を軽くたたいてペレットをほぐし、75mlのHA
T培地(1×10-4Mヒポキサンチン,4×10-7Mアミノプリ
テン,1.6×10-5Mチミジン及び20%ウシ胎児血清を含有
するRPMI1640培地、37℃に保温)に懸濁して、96ウェル
の培養プレート7枚の各培養ウェルに100μづつ分注
して、CO2インキュベーターを用いて培養した(5%C
O2、95%空気、37℃、湿度100%)。
Tap the same centrifuge tube to loosen the pellet, and add 75 ml of HA.
Suspend in T medium (RPMI1640 medium containing 1 × 10 -4 M hypoxanthine, 4 × 10 -7 M aminopretene, 1.6 × 10 -5 M thymidine and 20% fetal calf serum, kept at 37 ° C.), 100 μl was dispensed into each of the 7 wells of a 96-well culture plate and cultured using a CO 2 incubator (5% C
O 2 , 95% air, 37 ° C, 100% humidity).

細胞融合から4日目と6日目に上記HAT培地を50μ
づつ加え、それ以後は2日おきに50μのHT培地(1×
10-4Mヒポキサンチン,1.6×10-5Mチミジン及び20%ウシ
胎児血清を含有するRPMI1640倍地、37℃に保温)と同量
交換した。
On the 4th and 6th days after cell fusion, 50 μl of the above HAT medium was used.
50 μl HT medium (1 x
The same amount was exchanged with RPMI1640 medium containing 10 −4 M hypoxanthine, 1.6 × 10 −5 M thymidine and 20% fetal bovine serum, kept at 37 ° C.).

(c)ハイブリドーマの選択 前述(b)の培養開始から1〜3週間かけて、細胞増
殖が認められた培養プレートの各ウェルの培養上清中
に、ヒトMn−SODに対する抗体が含まれているか否か
を、次に示すELISA法で検討した。
(C) Selection of hybridoma Is the antibody against human Mn-SOD contained in the culture supernatant of each well of the culture plate in which cell proliferation was observed from 1 to 3 weeks after the start of culture in (b) above? Whether or not it was examined by the following ELISA method.

まず、96ウェル平底ELISAプレートの各分析ウェル
に、ヒトMn−SODに対するポリクローナル抗体溶液(ヤ
ギ製、100μg/ml、pH9.8の0.05M炭酸緩衝液に溶解)を5
0μづつ分注し、室温で2時間静置した。
First, to each analysis well of a 96-well flat bottom ELISA plate, a polyclonal antibody solution against human Mn-SOD (manufactured by Goat, 100 μg / ml, dissolved in 0.05M carbonate buffer of pH 9.8) was added 5
It was dispensed in 0 μm aliquots and allowed to stand at room temperature for 2 hours.

次いで、ELISAプレートの各分析ウェルを洗浄液(0.0
5%のTween20を含むPBS)で2回洗浄した後、0.1%のOV
A(卵白アルブミン)溶液(PBSに溶解)を各分析ウェル
に100μづつ分注して室温で30分間静置し、洗浄液で
2回洗浄し、ヒトMn−SOD溶液(1μg/ml)を50μづ
つ分注し、4℃で1晩静置した。この各分析ウェルを同
洗浄液で2回洗浄した後、前記培養プレートの各培養ウ
ェルの培養上清を、これらの各分析ウェルに50μづつ
分注して37℃で1時間静置した(陰性対照には、マウス
ミエローマ細胞を同様に培養して得た上清を用いた。一
方、陽性対照には、本発明での細胞融合に用いたマウス
の血清を洗浄液で10倍に希釈したものを用いた。)。
Then wash each assay well of the ELISA plate with wash solution (0.0
After washing twice with PBS containing 5% Tween20, 0.1% OV
Aliquot A (ovalbumin) solution (dissolved in PBS) into each analysis well by 100μ, leave at room temperature for 30 minutes, wash twice with washing solution, and add human Mn-SOD solution (1μg / ml) by 50μ It dispensed and left still at 4 degreeC overnight. After washing each analysis well twice with the same washing solution, 50 μl of the culture supernatant of each culture well of the culture plate was dispensed into each of the analysis wells and allowed to stand at 37 ° C. for 1 hour (negative control). The supernatant obtained by similarly culturing mouse myeloma cells was used as the positive control, while the positive control was prepared by diluting the mouse serum used for cell fusion of the present invention 10-fold with a washing solution. I was there.).

次に、ELISAプレートの各分析ウェルを洗浄液で3回
洗浄し、マウスのIgC及びIgMと反応性を有する西洋ワサ
ビペルオキシダーゼ標識抗体溶液を、50μづつ、各分
析ウェルに分注して、室温で1時間静置した。そして、
ELISAプレートの各分析ウェルを洗浄液で4回洗浄後、
基質溶液(20mgのo−フェニレンジアミン、10μの35
%H2O2をpH5.0の0.1Mクエン酸緩衝液50mlに溶解)を100
μづつ各分析ウェルに分注し、遮光して室温で30分反
応後、各分析ウェルに50μの2N硫酸を分注して酵素反
応を停止し、マイクロプレート用の吸光度測定装置を用
いて各ウエルの490nmにおける吸光度を測定した。
Next, each assay well of the ELISA plate was washed three times with a washing solution, and a horseradish peroxidase-labeled antibody solution having reactivity with mouse IgC and IgM was dispensed into each assay well in an amount of 50 µ, at room temperature for 1 hour. Let stand for hours. And
After washing each analysis well of the ELISA plate four times with the washing solution,
Substrate solution (20 mg o-phenylenediamine, 10 μ 35
% H 2 O 2 in 50 ml of 0.1 M citrate buffer, pH 5.0)
Dispense μ into each analysis well, shield from light and react at room temperature for 30 minutes, then dispense 50 μ of 2N sulfuric acid into each analysis well to stop the enzyme reaction and use an absorbance measuring device for a microplate to The absorbance of the wells at 490 nm was measured.

このような検討の結果、培養プレート中の678個の培
養ウェルの中の8個で、ヒトMn−SODに対する抗体の産
生が認められた。
As a result of such examination, production of an antibody against human Mn-SOD was observed in 8 out of 678 culture wells in the culture plate.

(d)ハイブリドーマの株化(クローニング) 20%ウシ胎児血清を含むRPMI1640培地を用いて、前述
の(c)工程において示した抗体産生が確認された8個
の培養ウェルのうちの1個の培養ウェルについて限界希
釈法でハイブリドーマをクローニングした。
(D) Establishing hybridoma strain (cloning) Using RPMI1640 medium containing 20% fetal bovine serum, one of eight culture wells in which antibody production shown in step (c) above was confirmed Hybridomas were cloned in the wells by the limiting dilution method.

培養には、96ウェル培養プレートを用い、支持細胞と
してBALB/cマウスの胸腺細胞懸濁液(107個/ml)を使用
して、(ハイブリドーマ0.1〜5個)/(胸腺細胞懸濁
液100μ)/ウェルで培養した。
For the culture, a 96-well culture plate was used, and BALB / c mouse thymocyte suspension (10 7 cells / ml) was used as feeder cells, and (hybridoma 0.1-5 cells) / (thymocyte suspension). 100 μ) / well.

前記の1個の培養ウェルのクローニングにおいて、10
日目頃から単一コロニーとして観察される培養ウェルの
上清を採取して、ヒトMn−SODを用いたELISA法(前述の
(c)工程と同様の方法)で抗体産生ウェルのスクリー
ニングを行なった。ヒトMn−SODに対して抗体産生が認
められた上清については、さらに、ヒトグロブリン、ヒ
トアルブミン及びヒトCu,Zn−SODとの反応性をELISA法
(前述の(c)工程と同様の方法)で検討した。このよ
うにして、ヒトMn−SODのみと反応性を示す抗体を産生
したハイブリドーマ株を、各々のクローニングにおいて
少なくとも1株づつ得、これらを再クローニングした。
In cloning one culture well as described above, 10
The supernatant of the culture well observed as a single colony from around the day is collected, and the antibody-producing well is screened by the ELISA method using human Mn-SOD (the same method as the above-mentioned step (c)). It was Regarding the supernatant in which antibody production was observed against human Mn-SOD, the reactivity with human globulin, human albumin and human Cu, Zn-SOD was further determined by the ELISA method (the same method as step (c) above). ) Examined. In this way, at least one hybridoma strain that produced an antibody reactive with only human Mn-SOD was obtained in each cloning, and these were recloned.

このようにして得られた株をNI8株(微工研条寄第160
6号)と称し、この株が産生したモノクローナル抗体
を、NI8と称す。
The strains thus obtained were NI8 strains (Microtech Lab.
No. 6), and the monoclonal antibody produced by this strain is called NI8.

NI8株の培養上清中に含まれるモノクローナル抗体の
クラス・サブクラスを次の測定試験Iで決定し、ヒトMn
−SODとモノクローナル抗体との反応性を測定試験IIで
確認し、各種蛋白質に対する反応性を測定試験IIIで検
討した。
The class / subclass of the monoclonal antibody contained in the culture supernatant of the NI8 strain was determined by the following measurement test I, and human Mn
-The reactivity between SOD and the monoclonal antibody was confirmed in the measurement test II, and the reactivity with respect to various proteins was examined in the measurement test III.

測定試験I 〔ヒトMn−SODに対するモノクローナル抗体のクラム・
サブクラスの決定〕 NI8株が産生した免疫グロブリンのクラス・サブクラ
スの決定は、マウス抗体の各クラス・サブクラスに特異
的な抗体溶液(IgG1、IgG2a、IgG2b、IgG3、IgM、IgAな
どに対する抗体)を用いたオクタロニー法で行った。
Assay Test I [Clam of monoclonal antibody against human Mn-SOD
Determination of subclass] The class / subclass of the immunoglobulin produced by the NI8 strain is determined by an antibody solution (IgG 1 , IgG 2 a, IgG 2 b, IgG 3 , IgM, IgA) specific to each class / subclass of mouse antibody. (Antibodies against etc.) was used.

その結果、NI8株が産生したモノクローナル抗体(NI
8)は、IgMに属する抗体であることがわかった。
As a result, the monoclonal antibody (NI
8) was found to be an antibody belonging to IgM.

測定試験II 〔ヒトMn−SODとモノクローナル抗体との反応性の確
認〕 30μのヒトMn−SOD(10μg/ml)と50mlのNI8を含む
培養上清(1倍、10倍または100倍希釈液を使用)とを
混合して、37℃で30分間反応させた後、プロテインAア
ガロース溶液(プロテインAの結合量;1〜2mg/mlアガロ
ースゲル)を10μ加え、さらに、37℃で10分間反応さ
せた後に、遠心分離し(1万rpm、5分間)、上澄液の
ヒトMn−SOD活性を測定した(なお、陰性のコントロー
ルにはミエローマの上清を用いた)。
Measurement test II [Confirmation of reactivity between human Mn-SOD and monoclonal antibody] Culture supernatant containing 30 μm human Mn-SOD (10 μg / ml) and 50 ml NI8 (1 time, 10 times or 100 times dilution) Used) and reacted at 37 ° C for 30 minutes, then add 10 μl of protein A agarose solution (protein A binding amount; 1-2 mg / ml agarose gel), and further react at 37 ° C for 10 minutes After that, centrifugation was performed (10,000 rpm, 5 minutes), and the human Mn-SOD activity of the supernatant was measured (the myeloma supernatant was used as a negative control).

その結果、上澄液のヒトMn−SOD活性は、低下してい
た(第1図に示す)。
As a result, the human Mn-SOD activity of the supernatant was decreased (shown in FIG. 1).

測定試験III 〔ヒトMn−SODに対するモノクローナル抗体と各種蛋白
質との反応性の検討〕 NI8と反応特異性について、ヒトアルブミン、ヒトグ
ロブリン、ヒトCu,Zn−SOD、ヒトMn−SODなどの各種蛋
白質との反応性をウエスタンブロッティング法によって
検討した。その結果、NI8はヒトMn−SODとのみ反応性が
認められ、その他の蛋白質とは反応性が認められなかっ
た。
Measurement test III [Study of reactivity of human Mn-SOD with monoclonal antibody and various proteins] Regarding reaction specificity with NI8, various proteins such as human albumin, human globulin, human Cu, Zn-SOD, and human Mn-SOD Was examined by Western blotting. As a result, NI8 was found to be reactive only with human Mn-SOD, and not with other proteins.

実施例2 〔ヒトMn−SODに対するモノクローナル抗体産生ハイブ
リドーマ株の作製〕 (a)マウスの免疫及び脾臓リンパ球の調製 実施例1と同様にして、免疫及び脾臓リンパ球の調製
を行った。
Example 2 [Preparation of monoclonal antibody-producing hybridoma strain against human Mn-SOD] (a) Immunization of mouse and preparation of spleen lymphocytes In the same manner as in Example 1, immunization and spleen lymphocytes were prepared.

(b)細胞融合 実施例1に記載した操作のうちで、1.7×107個の対数
増殖期にある8−アザグアニン耐性のマウスミエローマ
細胞(P3U1)と前記の調製したマウスの脾臓リンパ球8.
5×107個とを用いた以外は、同様の操作で行った。
(B) Cell fusion Among the procedures described in Example 1, 1.7 × 10 7 8-azaguanine-resistant mouse myeloma cells (P3U1) in the logarithmic growth phase and the above-prepared mouse spleen lymphocytes 8.
The same operation was performed except that 5 × 10 7 cells were used.

(c)ハイブリドーマの選択 実施例1に記載した操作で行った。(C) Selection of hybridoma The procedure described in Example 1 was performed.

このような検討の結果、培養プレート中の678個の培
養ウェルの中の20個で、ヒトMn−SODに対する抗体の産
生が認められた。
As a result of such examination, production of antibodies against human Mn-SOD was observed in 20 out of 678 culture wells in the culture plate.

(d)ハイブリドーマの株化(クローニング) 20%ウシ胎児血清を含むRPMI1640培地を用いて、前述
の(c)工程において示した抗体産生が確認された20個
の培養ウェルのうちの1個の培養ウェルについて、実施
例1と同様の操作を行うことによって、ハイブリドーマ
をクローニングした。
(D) Hybridoma Straining (Cloning) Using RPMI1640 medium containing 20% fetal bovine serum, one of 20 culture wells in which antibody production shown in the above step (c) was confirmed Hybridomas were cloned by performing the same operation as in Example 1 on the wells.

このようにして得られた株をPE9株(微工研条寄第160
7号)と称し、この株が産生したモノクローナル抗体
を、PE9と称す。
The strain thus obtained was used as PE9 strain
7), and the monoclonal antibody produced by this strain is called PE9.

PE9株の培養上清中に含まれるモノクローナル抗体の
諸性質を実施例1と同様の操作を行うことによって検討
した。その結果、PE9のクラス・サブクラスは、IgMに属
していた。PE9とプロテインAアガロース溶液とを反応
させて得られた上澄液のヒトMn−SOD活性は、低下して
いた(第1図に示す)。PE9はヒトMn−SODとのみ反応性
が認められ、その他の蛋白質とは反応性が認められなか
った。
Various properties of the monoclonal antibody contained in the culture supernatant of PE9 strain were examined by performing the same operation as in Example 1. As a result, the class and subclass of PE9 belonged to IgM. The human Mn-SOD activity of the supernatant obtained by reacting PE9 with a protein A agarose solution was decreased (shown in FIG. 1). PE9 was found to be reactive only with human Mn-SOD and not with other proteins.

実施例3 〔ヒトMn−SODに対するモノクローナル抗体産生ハイブ
リドーマ株の作製〕 (a)マウスの免疫及び脾臓リンパ球の調製 実施例1と同様にして、免疫及び脾臓リンパ球の調製
を行った。
Example 3 [Preparation of monoclonal antibody-producing hybridoma strain against human Mn-SOD] (a) Immunization of mouse and preparation of spleen lymphocytes In the same manner as in Example 1, immunization and spleen lymphocytes were prepared.

(b)細胞融合 実施例1に記載した操作のうちで、1.4×107個の対数
増殖期にある8−アザグアニン耐性のマウスミエローマ
細胞(P3U1)と前記の調製したマウスの脾臓リンパ球5.
3×107個とを用いた以外は、同様の操作で行った。
(B) Cell fusion Among the procedures described in Example 1, 1.4 × 10 7 8-azaguanine-resistant mouse myeloma cells (P3U1) in the logarithmic growth phase and the mouse spleen lymphocytes prepared as described above 5.
The same operation was performed except that 3 × 10 7 cells were used.

(c)ハイブリドーマの選択 実施例1に記載した操作で行った。(C) Selection of hybridoma The procedure described in Example 1 was performed.

このような検討の結果、培養プレート中の678個の培
養ウェルの中の15個で、ヒトMn−SODに対する抗体の産
生が認められた。
As a result of such examination, production of antibodies against human Mn-SOD was observed in 15 out of 678 culture wells in the culture plate.

(d)ハイブリドーマの株化(クローニング) 20%ウシ胎児血清を含むRPMI1640培地を用いて、前述
の(c)工程において示した抗体産生が確認された15個
の培養ウェルのうちの1個の培養ウェルについて、実施
例1と同様の操作を行うことによって、ハイブリドーマ
をクローニングした。
(D) Hybridoma Straining (Cloning) Using RPMI1640 medium containing 20% fetal bovine serum, one of 15 culture wells in which antibody production shown in step (c) above was confirmed Hybridomas were cloned by performing the same operation as in Example 1 on the wells.

このようにして得られた株をPG11株(微工研条寄第16
08号)と称し、この株が産生したモノクローナル抗体
を、PG11と称す。
The strain thus obtained was designated as PG11 strain
08) and the monoclonal antibody produced by this strain is called PG11.

PG11株の培養上清中に含まれるモノクローナル抗体の
諸性質を実施例1と同様の操作を行うことによって検討
した。その結果、PG11のクラス・サブクラスは、IgG2 a
に属していた。PG11とプロテインAアガロース溶液とを
反応させて得られた上澄液のヒトMn−SOD活性は、IgMで
ある抗体のNI8及びPE9よりもプロテインAと反応し易い
ので、これらの場合よりも著しく低下していた(第1図
に示す)。PE11はヒトMn−SODとのみ反応性が認めら
れ、その他の蛋白質とは反応性は認められなかった。
Various properties of the monoclonal antibody contained in the culture supernatant of the PG11 strain were examined by performing the same operations as in Example 1. As a result, class-subclass of PG11 is, IgG 2 a
Belonged to. The human Mn-SOD activity of the supernatant obtained by reacting PG11 with a protein A agarose solution is much lower than those of IgM antibodies NI8 and PE9 because they react more easily with protein A. (As shown in FIG. 1). PE11 was found to be reactive only with human Mn-SOD and not with other proteins.

実施例4 〔フラスコ培養でのヒトMn−SODに対するモノクローナ
ル抗体の生産〕 15%ウシ胎児血清を含むRPMI1640培地で培養して得た
NI8株の培養細胞を10mlのRPMI1640液(ウシ胎児血清を
含まない)に移しかえて、死滅直前まで培養した。
Example 4 [Production of monoclonal antibody against human Mn-SOD in flask culture] It was obtained by culturing in RPMI1640 medium containing 15% fetal bovine serum.
The cultured cells of the NI8 strain were transferred to 10 ml of RPMI1640 solution (without fetal bovine serum) and cultured until just before death.

ヒトMn−SODに対するモノクローナル抗体(NI8)は、
培養液を遠心分離(回転数;3000rpm、時間;5分間)して
得られた上清中に35μg/ml(一次元平板免疫拡散法によ
り測定)含有されていた。
The monoclonal antibody (NI8) against human Mn-SOD is
The supernatant obtained by centrifuging the culture solution (rotation speed; 3000 rpm, time; 5 minutes) contained 35 μg / ml (measured by the one-dimensional plate immunodiffusion method).

実施例5 〔マウス腹腔内でのヒトMn−SODに対するモノクローナ
ル抗体の生産〕 ヒトMn−SODに対する大量のモノクローナル抗体を得
るために、マウス腹腔内でPG11株の細胞を培養した。
Example 5 [Production of monoclonal antibody against human Mn-SOD in mouse peritoneal cavity] To obtain a large amount of monoclonal antibody against human Mn-SOD, cells of PG11 strain were cultured in mouse intraperitoneal cavity.

BALB/cマウス(♀、6周齢、2週間前にプリスタンを
0.5ml腹腔内に投与しておく)の腹腔内に、RPMI1640で
浮遊させたPG11株の細胞を5×106個投与した。
BALB / c mice (♀, 6 weeks old, 2 weeks before pristane
0.5 ml was intraperitoneally administered (5 ml) and 5 × 10 6 cells of the PG11 strain suspended in RPMI1640 were administered.

このマウスの体重は、1週間目頃から顕著な増加を示
し、2週間目に腹水(10ml/匹)を採取した。この腹水
を遠心分離(回転数;3000rpm、時間;5分間)して、腹水
上清を得た。
The body weight of this mouse showed a remarkable increase from about 1 week, and ascites (10 ml / mouse) was collected at 2 weeks. The ascites was centrifuged (rotation speed; 3000 rpm, time; 5 minutes) to obtain an ascites supernatant.

ヒトMn−SODに対するモノクローナル抗体(PG11)
は、この腹水上清中に8.0mg/ml(一次元平板免疫拡散法
により測定)含有されていた。
Monoclonal antibody against human Mn-SOD (PG11)
Was contained in this ascites supernatant in an amount of 8.0 mg / ml (measured by the one-dimensional plate immunodiffusion method).

〔発明の効果〕〔The invention's effect〕

本発明の『細胞株の培養によって得られたヒトMn−SO
Dに対して非常に高い特異的な反応性を有するモノクロ
ーナル抗体』は、ヒトMn−SODに関する基礎研究のため
の試薬、および臨床検査において用いる測定試験などへ
の用途として期待できる。
The “human Mn-SO obtained by culturing a cell line of the present invention
The “monoclonal antibody having a very high specific reactivity to D” can be expected to be used as a reagent for basic research on human Mn-SOD and a measurement test used in clinical tests.

【図面の簡単な説明】[Brief description of drawings]

第1図は、ヒトMn−SODとNI8(□)、PE9(■)またはP
G11(●)を含む培養上清(1倍、10倍または100倍希釈
液を使用)とを混合して、37℃で30分間反応させた後、
プロテインAアガロースを加え、さらに、37℃で10分間
反応させた後に、遠心分離して得られた上澄液のヒトMn
−SODの相対活性を示す〔なお、対照としては、NS−1
株の培養上清(○)を用いた〕。
Figure 1 shows human Mn-SOD and NI8 (□), PE9 (■) or P
After mixing with culture supernatant containing G11 (●) (use 1-fold, 10-fold or 100-fold diluted solution) and react at 37 ℃ for 30 minutes,
Human Mn of supernatant obtained by adding protein A agarose and further reacting at 37 ° C for 10 minutes and then centrifuging
-Indicates relative activity of SOD [Note that NS-1 is used as a control.
The culture supernatant of the strain (○) was used].

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 G01N 33/573 9162−4B C12N 15/00 ZNAC 33/577 9281−4B 5/00 B (C12P 21/08 C12R 1:91) 合議体 審判長 石田 吉信 審判官 田中 久直 審判官 鵜飼 健 (56)参考文献 特開 昭62−167479(JP,A) 北海道医学雑誌,59[6](1984)飯 塚、P.739−749─────────────────────────────────────────────────── ─── Continuation of the front page (51) Int.Cl. 6 Identification code Internal reference number FI Technical display location G01N 33/573 9162-4B C12N 15/00 ZNAC 33/577 9281-4B 5/00 B (C12P 21 / 08 C12R 1:91) Jury President Yoshinobu Ishida Judge Judge Naohisa Tanaka Judge Ken Ukai (56) References JP 62-167479 (JP, A) Hokkaido Medical Journal, 59 [6] (1984) Iizuka , P .; 739-749

Claims (1)

(57)【特許請求の範囲】(57) [Claims] 【請求項1】ヒトMnスーパーオキシドジスムターゼ(以
下「ヒトMn−SOD」と略する)をマウスに免疫し、その
マウスから得たリンパ球とマウスミエローマ細胞とを融
合して得られた細胞株(PG11株)が産生した、ヒトアル
ブミン、ヒトグロブリン、ヒトCu,Zn−SODとは実質的に
反応せず、ヒトMn−SODと反応することを特徴とするヒ
トMn−SODに対するモノクローナル抗体
1. A cell line obtained by immunizing a mouse with human Mn superoxide dismutase (hereinafter abbreviated as “human Mn-SOD”) and fusing lymphocytes obtained from the mouse with mouse myeloma cells ( PG11 strain) produced, human albumin, human globulin, human Cu, Zn-SOD substantially does not react, human Mn-SOD monoclonal antibody against human Mn-SOD characterized by reacting
JP63128165A 1988-05-27 1988-05-27 Monoclonal antibody against human Mn superoxide dismutase Expired - Fee Related JP2567664B2 (en)

Priority Applications (5)

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