JP3062841B2 - Polypeptide - Google Patents
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Description
【0001】[0001]
【産業上の利用分野】本発明は、哺乳動物の肝癌組織か
ら樹立された培養細胞が分泌する新規ポリペプチドに関
するものであり、肝臓疾患などに対する医薬品、または
その臨床検査試薬などの分野に利用可能である。BACKGROUND OF THE INVENTION 1. Field of the Invention The present invention relates to a novel polypeptide secreted by cultured cells established from mammalian liver cancer tissue, and can be used in the field of drugs for liver diseases and the like, and reagents for clinical tests thereof. It is.
【0002】[0002]
【従来の技術】ヒトの肝癌組織より樹立されたHuH−
7肝癌細胞株は無血清培地で増殖し、種々の血清蛋白質
を分泌することが知られている(中林など、キャンサー
・リサーチ(Cancer research) 、1982年、42巻、
3858頁〜3863頁)。2. Description of the Related Art HuH-established from human liver cancer tissue
7 hepatoma cell lines are known to grow in serum-free media and secrete various serum proteins (Nakabayashi et al., Cancer Research, 1982, 42,
3858 to 3863).
【0003】従来、肝癌細胞からの分泌蛋白質として
は、塩基性繊維芽細胞成長因子(FGF)を単離・精製
したことが報告されている。この蛋白質はヘパリン−セ
ファロースに強く結合し、1モル/リットル以上の濃度
の塩化ナトリウム水溶液で初めて溶離されるとある(Kl
agsbrun ら、プロシーディング・ナショナル・アカデミ
ック・サイエンス(Proceeding national academic sci
ence) 、1987年、84巻、1839頁〜1843
頁)。[0003] It has been reported that a basic fibroblast growth factor (FGF) was isolated and purified as a protein secreted from hepatoma cells. This protein binds strongly to heparin-sepharose and is first eluted with aqueous sodium chloride at concentrations of 1 mol / l or more (Kl
agsbrun et al., Proceeding national academic sci.
ence, 1987, 84, 1839-1843.
page).
【0004】また、酸性FGFがHuH−7細胞の増殖
を促すことがMckeehanによって報告されている。It has been reported by Mckeehan that acidic FGF promotes the proliferation of HuH-7 cells.
【0005】さらに、ヒト肝癌培養細胞HuH−7細胞
株の培養上清より、イオン交換クロマトグラフィー、ヘ
パリンをリガンドとするアフィニティクロマトグラフィ
ーおよびゲル濾過クロマトグラフィーを経て、部分的に
精製された細胞増殖因子が得られることが報告されてい
る(H.Nakamuraら、クリニカ・シミカ・アクタ(Clinic
a Chimica Acta)1989年、183巻、273〜28
4頁)。[0005] Further, cell culture factors partially purified from the culture supernatant of human hepatoma cultured HuH-7 cell line through ion exchange chromatography, affinity chromatography using heparin as a ligand and gel filtration chromatography. (H. Nakamura et al., Clinica Simica Acta)
a Chimica Acta) 1989, 183, 273-28
4).
【0006】[0006]
【発明の解決しようとする課題】しかし、上記肝癌由来
細胞因子の更なる精製品は、未だ得られておらず、した
がってその構造も判明していない。However, a further purified product of the above-mentioned cell factor derived from liver cancer has not yet been obtained, and its structure has not been elucidated.
【0007】本発明は、ヒトの肝癌由来の細胞増殖活性
因子の精製品を提供し、もって肝臓疾患その他に対する
医薬品、またはその臨床検査試薬などの分野への実用化
に資することを目的とする。An object of the present invention is to provide a purified product of a cell growth activating factor derived from human liver cancer, thereby contributing to its practical use in the field of drugs for liver diseases and the like, or clinical test reagents thereof.
【0008】[0008]
【課題を解決するための手段】本発明によるポリペプチ
ドは、分子量が2万〜3万5千の範囲にあり、N末端か
ら20残基が下記(1)(2)(3) のいずれかのアミノ酸配列
で構成されているものである。The polypeptide according to the present invention has a molecular weight in the range of 20,000 to 35,000, and 20 residues from the N-terminus are any of the following (1), (2) and (3): Is composed of the amino acid sequence of
【0009】配列(1) Ser Asn Asn Gln Lys Glu Tyr Lys Cys Gly Asp Leu Val Phe Ala Lys Met Lys Gly Tyr 配列(2) Ser Asn Asn Gln Lys Glu Tyr Lys Ser Gly Asp Leu Val Phe Ala Lys Met Lys Gly Tyr 配列(3) Ser Asn Asn Gln Lys Glu Tyr Lys Thr Gly Asp Leu Val Phe Ala Lys Met Lys Gly TyrSequence (1) Ser Asn Asn Gln Lys Glu Tyr Lys Cys Gly Asp Leu Val Phe Ala Lys Met Lys Gly Tyr Sequence (2) Ser Asn Asn Gln Lys Glu Tyr Lys Ser Gly Asp Leu Val Phe Ala Lys Met Lys Gly Tyr sequence (3) Ser Asn Asn Gln Lys Glu Tyr Lys Thr Gly Asp Leu Val Phe Ala Lys Met Lys Gly Tyr
【0010】上記アミノ酸配列を有する本発明ポリペプ
チドは、スイス3T3細胞に対し細胞増殖活性を有し、
該活性が下記(a)(b)(c)(d)のいずれかの処理で失活する
性質を有する。The polypeptide of the present invention having the above amino acid sequence has cell proliferation activity on Swiss 3T3 cells,
The activity is deactivated by any of the following treatments (a), (b), (c) and (d).
【0011】(a) 熱処理、例えば100℃、5分間の
熱処理(b) 還元試薬処理 、例えばジチオスライトールなどの
還元試薬処理(c) 酸溶液処理 、例えば1モル/リットルの酢酸溶液
処理(d) トリプシン水溶液処理 、例えば0.5mg/ミリ
リットルのトリプシン水溶液処理 (A) heat treatment , eg, 100 ° C. for 5 minutes; (b) treatment with a reducing reagent , eg, treatment with a reducing reagent such as dithiothreitol; (c) treatment with an acid solution , eg, treatment with a 1 mol / liter acetic acid solution (d ) Trypsin aqueous solution treatment , for example, 0.5 mg / milliliter trypsin aqueous solution treatment
【0012】上記アミノ酸配列を有する本発明ポリペプ
チドは、ヒト肝癌培養細胞HuH−7細胞株の培養上清
よりイオン交換クロマトグラフィー、ヘパリンをリガン
ドとするアフィニティクロマトグラフィー、ゲル濾過ク
ロマトグラフィーおよび逆相クロマトグラフィーの各精
製工程を順次経ることによって製造せられる。The polypeptide of the present invention having the above-mentioned amino acid sequence can be obtained from a culture supernatant of human hepatoma cell line HuH-7 by ion-exchange chromatography, affinity chromatography using heparin as a ligand, gel filtration chromatography and reverse phase chromatography. It is produced by successively passing through each purification step of chromatography.
【0013】本発明によるポリペプチドはヒト肝癌由来
であり、次に述べるような細胞増殖活性を有するので、
以下ヒト肝癌由来増殖因子と呼び、HuHGFと略称す
る。本発明によるポリペプチドを製造するために、ま
ず、ヒトの肝癌組織より樹立されたHuH−7肝癌細胞
の培養上清からイオン交換クロマトグラフィー、ヘパリ
ンをリガンドとするアフィニティクロマトグラフィーお
よびゲル濾過クロマトグラフィーを用いてHuHGFを
約1000倍まで精製した。細胞増殖活性はスイス3T
3細胞で検定した。こうして精製した後のHuHGF
は、1〜2μg/ミリリットルの濃度でスイス3T3細
胞の増殖を促進した。HuHGFは熱および酸に不安定
でありかつトリプシン処理によって増殖活性を失った。
還元条件下でHuHGFは完全に失活したので、ジスル
フィド結合が活性を維持するのに必要であることが示唆
された。The polypeptide according to the present invention is derived from human liver cancer and has the following cell proliferation activity.
Hereinafter, it is referred to as a human liver cancer-derived growth factor, and is abbreviated as HuHGF. In order to produce the polypeptide according to the present invention, first, ion exchange chromatography, affinity chromatography using heparin as a ligand and gel filtration chromatography are performed from the culture supernatant of HuH-7 hepatoma cells established from human hepatoma tissues. Was used to purify HuHGF up to about 1000-fold. Cell proliferation activity is 3T in Switzerland
Assayed in 3 cells. HuHGF after purification in this manner
Promoted the growth of Swiss 3T3 cells at a concentration of 1-2 μg / milliliter. HuHGF was heat and acid labile and lost proliferative activity upon trypsinization.
HuHGF was completely inactivated under reducing conditions, suggesting that a disulfide bond is required to maintain activity.
【0014】上記ゲル濾過クロマトグラフィー後にドデ
シル硫酸ナトリウム存在下のポリアクリルアミド電気泳
動によって数本のタンパク質のバンドが見られたため、
更に逆相クロマトグラフィーを用いて精製を行なった。
その結果、上記電気泳動で単一バンドが得られ、分子量
は2万〜3万5千の間に見積られた。これらの結果は、
HuHGFが上皮細胞成長因子(EGF)、繊維芽細胞
成長因子(FGF)、血小板由来増殖因子(PDG
F)、腫瘍増殖因子(TGF)等とは異なる増殖因子で
あることを示唆している。ただし、HuHGFはヘパリ
ンに対しては親和性を有する。After the gel filtration chromatography, several protein bands were observed by polyacrylamide electrophoresis in the presence of sodium dodecyl sulfate.
Further purification was performed using reverse phase chromatography.
As a result, a single band was obtained by the above electrophoresis, and the molecular weight was estimated to be between 20,000 and 35,000. These results
HuHGF is epidermal growth factor (EGF), fibroblast growth factor (FGF), platelet-derived growth factor (PDG
F), suggesting that it is a growth factor different from tumor growth factor (TGF) and the like. However, HuHGF has an affinity for heparin.
【0015】HuHGFのクロマトグラフィー等の溶出
挙動について説明する。Klagsbrunらは、上述の如く塩
基性FGFを肝癌細胞から単離・精製し、この蛋白質が
ヘパリン−セファロースに強く結合し、1モル/リット
ル以上の濃度の塩化ナトリウム水溶液で初めて溶離され
ることを報告している。これに対し、HuHGFは0.
6〜0.7モル/リットルの塩化ナトリウム水溶液でヘ
パリン−セファロースから脱離する。この結果より、H
uHGFは塩基性FGFと異なることが判る。HuHG
Fの等電点は酸性側にあり、その点ではこれは酸性FG
Fに類似している。The elution behavior of HuHGF such as chromatography will be described. Klagsbrun et al. Reported that basic FGF was isolated and purified from hepatoma cells as described above, and that this protein strongly bound to heparin-sepharose and was eluted for the first time in an aqueous solution of sodium chloride having a concentration of 1 mol / liter or more. doing. On the other hand, HuHGF is 0.1.
Desorption from heparin-Sepharose with 6-0.7 mol / l aqueous sodium chloride solution. From these results, H
It can be seen that uHGF is different from basic FGF. HuHG
The isoelectric point of F is on the acidic side, at which point it is the acidic FG
Similar to F.
【0016】Mckeehanは上述のごとく酸性FGFがHu
H−7細胞の増殖を促すことを報告しており、このこと
からもHuHGFが酸性FGFに類似していることが示
唆される。しかし、酸性FGFの分子量は約1万7千で
あり、ヘパリン結合性もHuHGFより若干強い。As described above, Mckeehan shows that acidic FGF is Hu
It reports that it promotes the growth of H-7 cells, suggesting that HuHGF is similar to acidic FGF. However, the molecular weight of acidic FGF is about 17,000 and heparin binding is slightly stronger than HuHGF.
【0017】逆相クロマトグラフィーによって精製した
単一バンドのアミノ酸配列を分析したところ、N末端か
ら20残基のアミノ酸配列はこれまで報告されているポ
リペプチドの配列とは合致しなかった。すなわち、上記
HuHGFは新規なポリペプチドである。When the amino acid sequence of a single band purified by reverse phase chromatography was analyzed, the amino acid sequence of the 20 residues from the N-terminus did not match the sequence of the polypeptide reported so far. That is, HuHGF is a novel polypeptide.
【0018】増殖因子のいくつかは臨床的診断や治療に
利用されている。たとえば、EGFは火傷の治療薬や角
膜損傷治療薬として期待されている。FGF活性は膀胱
癌や腎癌の患者の尿中で上昇するという報告がある(Ch
odakら、キャンサー・リサーチ(Cancer research) 、1
988年、48巻、2083頁〜2088頁)。PDG
Fは軟骨の損傷治療や創傷治癒として開発中である。T
GF−アルファは癌患者の体液中でしばしば観察され、
その活性の強さは患者の生存率と相関するという報告が
ある。(Arteaga ら、キャンサー・リサーチ(Cancer re
search) 、1988年、48巻、5023頁〜5028
頁)。ヒトエリスロポエチンは造血ホルモンとして貧血
の診断薬や腎臓透析による貧血の治療薬として知られて
いる。顆粒球マクロファージコロニー刺激因子はガンの
化学療法や放射線治療による副作用や甲状線機能こう進
症に伴う顆粒球減少症の治療薬として期待される。Some of the growth factors are used for clinical diagnosis and treatment. For example, EGF is expected as a therapeutic agent for burns and a therapeutic agent for corneal damage. It has been reported that FGF activity is increased in urine of patients with bladder cancer and kidney cancer (Ch
odak et al., Cancer research, 1
988, 48, 2083-2088). PDG
F is under development for cartilage damage treatment and wound healing. T
GF-alpha is often observed in body fluids of cancer patients,
There are reports that the strength of its activity correlates with patient survival. (Arteaga et al., Cancer Research
search), 1988, 48, 5023 pages-5028
page). Human erythropoietin is known as a hematopoietic hormone as a diagnostic agent for anemia and a therapeutic agent for anemia by renal dialysis. Granulocyte-macrophage colony-stimulating factor is expected as a therapeutic drug for side effects of cancer chemotherapy and radiation therapy and for granulocytopenia associated with hyperthyroidism.
【0019】同様に、本発明によるポリペプチドHuH
GFも肝臓疾患を初めとして種々の診断や治療に役立つ
可能性を有する。肝実質細胞増殖因子は肝細胞の増殖因
子として知られているが、これはまた非A非B型肝炎な
どの診断薬や肝細胞再生のための治療薬として期待され
ており、本発明によるHuHGFもこの方面への応用が
期待される。Similarly, the polypeptide HuH according to the invention
GF also has the potential to be useful for various diagnoses and treatments, including liver disease. Hepatocyte growth factor is known as a hepatocyte growth factor, which is also expected as a diagnostic agent for non-A non-B hepatitis and the like and a therapeutic agent for hepatocyte regeneration. Is also expected to be applied in this area.
【0020】[0020]
1.HuHGFの精製 (1)培養上清の調整 HuH−7細胞(JCRB0403、財団法人がん研究
振興財団細胞バンク)を75cm2 の細胞培養用平底フ
ラスコを用いて炭酸ガスインキュベーターで温度37
℃、CO2 含有量5%の雰囲気下で培養した。使用した
培養液は下記表1に示したとおりである。1. Purification of HuHGF (1) Preparation of culture supernatant HuH-7 cells (JCRB0403, Cancer Research Foundation Cell Bank) were heated at 37 ° C. in a carbon dioxide incubator using a 75 cm 2 flat bottom flask for cell culture.
The cells were cultured in an atmosphere at a temperature of 5 ° C. and a CO 2 content of 5%. The culture solution used is as shown in Table 1 below.
【0021】[0021]
【表1】 [Table 1]
【0022】培養液は2日おきに交換し、交換時に培養
上清を集め、その後の精製を行なうまでこれを温度−3
0℃で保存した。サブカルチャーはトリプシン−EDT
Aで細胞を処理することにより実施した。The culture solution was replaced every two days, and the culture supernatant was collected at the time of replacement, and the temperature was kept at -3 until the subsequent purification.
Stored at 0 ° C. Subculture is trypsin-EDT
A was performed by treating the cells with A.
【0023】 (2) クロマトグラフィーによるHuHGFの精製 保存した培養上清5リットルを限外濾過装置(YM−5
メンブレン内装、アミコン社製)を用いて300ミリリ
ットルに濃縮した。濃縮液を50ミリモル/リットルの
トリス(ヒドロキシメチル)アミノメタン・塩酸塩緩衝
液(pH8.0に設定、以下この緩衝液をトリス緩衝液
と略す)で透析した。半透膜としてはセロファンチュー
ブ(分画分子量12,000〜14,000、ユニオン
カーバイド社製)を用いた。(2) Purification of HuHGF by Chromatography 5 liters of the preserved culture supernatant was passed through an ultrafiltration device (YM-5).
The solution was concentrated to 300 ml using a membrane interior (manufactured by Amicon). The concentrated solution was dialyzed against 50 mmol / liter of tris (hydroxymethyl) aminomethane hydrochloride buffer (set to pH 8.0; this buffer is hereinafter abbreviated as Tris buffer). A cellophane tube (fraction molecular weight 12,000 to 14,000, manufactured by Union Carbide) was used as the semipermeable membrane.
【0024】i) イオン交換クロマトグラフィー 透析後、イオン交換体としてDEAE−セファロースC
L−6Bを充填したカラム(1.6×50cm、ファル
マシア社製)を用いて、上記透析物のイオン交換クロマ
トグラフィーを行なった。すなわち、上記カラムに濃縮
液をアプライした後、450ミリリットルのトリス緩衝
液でカラムを十分に洗浄し、ついで吸着物を塩化ナトリ
ウムを含有するトリス緩衝液で溶離した。溶離法として
は、塩化ナトリウム濃度0〜0.6モル/リットルの範
囲で直線グラディエント溶離を行なった。溶出液を2ミ
リリットルずつの分画で集め、スイス3T3細胞に対し
て増殖活性を示す分画部分120ミリリットルを一緒に
し、次のアフィニティクロマトグラフィー工程に使用し
た。I) Ion exchange chromatography After dialysis, DEAE-Sepharose C was used as an ion exchanger.
The dialysate was subjected to ion exchange chromatography using a column (1.6 × 50 cm, manufactured by Pharmacia) packed with L-6B. That is, after applying the concentrated solution to the column, the column was sufficiently washed with 450 ml of Tris buffer, and the adsorbate was eluted with Tris buffer containing sodium chloride. As an elution method, a linear gradient elution was performed in a sodium chloride concentration range of 0 to 0.6 mol / liter. The eluate was collected in fractions of 2 ml each, and 120 ml fractions showing proliferative activity on Swiss 3T3 cells were combined and used for the next affinity chromatography step.
【0025】 ii) ペパリンアフィニティクロマトグラフィー 一緒にした上記活性分画を2,000ミリリットルのト
リス緩衝液で上記半透膜を用いて透析した。得られた透
析物を、ヘパリン−セファロースCL−6Bを充填した
カラム(1.3×3.8cm、ファルマシア社製)にア
プライし、トリス緩衝液360ミリリットルでカラムを
洗浄した後、吸着物を0〜1.5モル/リットル塩化ナ
トリウム含有トリス緩衝液の直線グラディエントで溶離
した。溶出液を2ミリリットルずつの分画で集め、スイ
ス3T3細胞に対して増殖活性を示す分画部分100ミ
リリットルを一緒にし、次のゲル濾過のクロマトグラフ
ィー工程に使用した。Ii) Peparin affinity chromatography The combined active fractions were dialyzed against 2,000 milliliters of Tris buffer using the semipermeable membrane. The obtained dialysate was applied to a column (1.3 × 3.8 cm, manufactured by Pharmacia) packed with heparin-Sepharose CL-6B, and the column was washed with 360 ml of Tris buffer. Elution was performed with a linear gradient of Tris buffer containing .about.1.5 mol / l sodium chloride. The eluate was collected in 2 ml fractions, and 100 ml fractions showing proliferative activity on Swiss 3T3 cells were combined and used for the next gel filtration chromatography step.
【0026】iii) ゲル濾過クロマトグラフィー 一緒にした上記活性分画を2,000ミリリットルのト
リス緩衝液で上記半透膜を用いて透析した。得られた透
析物をセファデックスG−150を充填したカラム
(2.6×100cm、ファルマシア社製)にアプライ
し、ゲル濾過クロマトグラフィーを行なった。溶出液を
2ミリリットルずつの分画で集め、分子量が5万以下で
スイス3T3細胞に対して増殖活性を示す60ミリリッ
トルの分画を一緒にし、次の逆相クロマトグラフィー工
程に用いた。Iii) Gel Filtration Chromatography The combined active fractions were dialyzed against 2,000 milliliters of Tris buffer using the semipermeable membrane. The obtained dialysate was applied to a column (2.6 × 100 cm, manufactured by Pharmacia) packed with Sephadex G-150, and gel filtration chromatography was performed. The eluate was collected in fractions of 2 ml each, and the 60 ml fractions having a molecular weight of 50,000 or less and showing proliferative activity on Swiss 3T3 cells were combined and used for the next reverse phase chromatography step.
【0027】IV) 逆相クロマトグラフィー 一緒にした上記分画を前記の限外濾過装置によって10
倍に濃縮し、濃縮物を逆相クロマトグラフィーに付し
た。逆相クロマトグラフィー条件は以下のとおりであ
る。使用したカラムはシリカ系の逆相カラム(コスモシ
ル5C−18、4.6×150mm、半井テスク社製)
であり、溶離は濃度0〜50重量%のアセトニトリルの
直線グラディエントで行なった。ただし、最初の10分
間で0〜30重量%、次の60分間で30〜50重量%
の二段階でアセトニトリルの比率を増加させた。基本液
には0.1重量%トリフルオロ酢酸含有水を用いた。こ
のクロマトグラフィーは流速1ミリリットル/分で行な
い、分画は1ミリリットルずつ行なった。IV) Reversed phase chromatography The combined fractions were separated by ultrafiltration as described above.
Concentrated by a factor of 1 and the concentrate was subjected to reverse phase chromatography. The reverse phase chromatography conditions are as follows. The column used was a silica-based reversed-phase column (Cosmosil 5C-18, 4.6 × 150 mm, manufactured by Hanui Tesque).
The elution was performed with a linear gradient of acetonitrile at a concentration of 0 to 50% by weight. However, 0 to 30% by weight in the first 10 minutes, 30 to 50% by weight in the next 60 minutes
The ratio of acetonitrile was increased in two steps. Water containing 0.1% by weight of trifluoroacetic acid was used as the base solution. This chromatography was performed at a flow rate of 1 ml / min, and fractionation was performed in 1 ml portions.
【0028】こうして得られた各分画のSDSポリアク
リルアミドゲル電気泳動を実施した。その結果、分子量
3万付近に単一のタンパク質のバンドが見られた。スイ
ス3T3細胞に対する増殖活性の高い22番目の分画を
以下のアミノ酸配列分析に用いた。The fractions thus obtained were subjected to SDS polyacrylamide gel electrophoresis. As a result, a single protein band was observed at a molecular weight of about 30,000. The 22nd fraction with high proliferative activity on Swiss 3T3 cells was used for the following amino acid sequence analysis.
【0029】 2.スイス3T3細胞に対する細胞増殖活性の測定 測定に用いた培養細胞は、大阪大学医学部の喜多野博士
より供与されたスイス3T3繊維芽細胞である。[0029] 2. Measurement of Cell Proliferating Activity on Swiss 3T3 Cells The cultured cells used for the measurement were Swiss 3T3 fibroblasts provided by Dr. Kitano of Osaka University School of Medicine.
【0030】上記活性はスイス3T3細胞増殖能を測定
することにより求めた。すなわち、スイス3T3細胞を
96ウェルのマイクロプレートに、1ウェル当り3×1
03個の細胞を200μリットルのDME培養液(フロ
ーラボラトリー社製、10容量%牛胎児血清(FCS)
含有)に懸濁させたものをシードした。48時間炭酸ガ
スインキュベーターで培養し(CO2 :5%、温度37
℃)、次に各ウェルとも濃度0.2容量%でFCSを含
むDME培養液200μリットルで置換し、更に36時
間培養を続けた。この状態でHuH−7培養上清のスイ
ス3T3細胞に対する細胞増殖活性をみるために、培養
上清または陽性コントロールとしてFCS、陰性コント
ロールとしてリン酸緩衝液で細胞を刺激した。18時間
後に0.5μキューリーの 3Hチミジン(アメルシャム
社製)を各ウェルに加え、DNAに上記チミジンを37
℃で6時間取り込ませ、その後DNAに取り込まれた 3
Hチミジンの放射活性を測定した。The above activity was determined by measuring the ability to proliferate Swiss 3T3 cells. That is, Swiss 3T3 cells were placed in a 96-well microplate at 3 × 1 per well.
0 3 cells with DME culture 200μ liters (Flow Laboratories, Inc., 10% by volume fetal calf serum (FCS)
) Was seeded. Incubate for 48 hours in a carbon dioxide gas incubator (CO 2 : 5%, temperature 37)
° C), and each well was replaced with 200 µl of a DME culture solution containing FCS at a concentration of 0.2% by volume, and the culture was continued for further 36 hours. In this state, the cells were stimulated with the culture supernatant or FCS as a positive control and phosphate buffer as a negative control in order to examine the cell growth activity of the HuH-7 culture supernatant on Swiss 3T3 cells. Eighteen hours later, 0.5 μCurie of 3 H-thymidine (manufactured by Amersham) was added to each well, and the above-mentioned thymidine was added to the DNA for 37 hours.
℃ In was taken 6 hours, were then incorporated into DNA 3
The radioactivity of H-thymidine was measured.
【0031】刺激したサンプルに対してスイス3T3細
胞に取り込まれた放射活性を下記表2に示す。The radioactivity incorporated into Swiss 3T3 cells for the stimulated samples is shown in Table 2 below.
【0032】[0032]
【表2】 [Table 2]
【0033】*培養上清ミリリットルあたりの蛋白質量
を示す。この蛋白質量は紫外線吸光法(UV280n
m)によって測定した。* Indicates the amount of protein per milliliter of culture supernatant. The amount of this protein is determined by the ultraviolet absorption method (UV280n
m).
【0034】上記各精製工程における細胞増殖活性も上
記と同様の方法で測定した。The cell proliferation activity in each of the above purification steps was also measured in the same manner as described above.
【0035】 3.HuHGFの種々の処理による活性の変化 HuHGFの性質を明らかにするために、これを以下の
ような試薬で処理した時にスイス3T3細胞に対する細
胞増殖活性がどのように変化するかを調べた。使用した
HuHGFは上記逆相クロマトグラフィーで精製したサ
ンプルである。このサンプルの活性を100%とした
時、種々の試薬処理後の残存活性を下記表3に示す。[0035] 3. Changes in the activity of HuHGF by various treatments In order to clarify the properties of HuHGF, it was examined how the cell growth activity on Swiss 3T3 cells was changed when the HuHGF was treated with the following reagents. The HuHGF used was a sample purified by the above reverse phase chromatography. Assuming that the activity of this sample was 100%, the remaining activities after various reagent treatments are shown in Table 3 below.
【0036】[0036]
【表3】 [Table 3]
【0037】4.アミノ酸配列分析 本発明による精製HuHGFを気相式シーケンサーにか
け、アミノ酸配列分析を20サイクル行なった。シーケ
ンサーとしてはApplied Biosystems 477A型を使用
し、PTH−アミノ酸同定用としてApplied Biosystems
120A型を使用した。その結果、N末端から20残
基が下記配列表に示す配列番号(1)(2)(3) のいずれかの
アミノ酸配列で構成されていることが判った。4. Amino acid sequence analysis Purified HuHGF according to the present invention was applied to a gas-phase sequencer, and amino acid sequence analysis was performed for 20 cycles. Applied Biosystems Model 477A was used as a sequencer, and Applied Biosystems
A 120A type was used. As a result, it was found that 20 residues from the N-terminal consisted of any one of the amino acid sequences of SEQ ID NOs: (1), (2) and (3) shown in the following sequence listing.
【0038】このアミノ酸配列は、全く新規なものであ
る。This amino acid sequence is completely novel.
【0039】[0039]
【発明の効果】本発明によれば、ヒトの肝癌由来の細胞
増殖活性因子の精製品を提供することができ、もって肝
臓癌疾患その他に対する医薬品、またはその臨床検査試
薬などの分野への実用化に資することができる。According to the present invention, it is possible to provide a purified product of a cell growth activating factor derived from human liver cancer, and to commercialize it in the field of drugs for liver cancer diseases and others, or clinical test reagents thereof. Can contribute to.
【0040】[0040]
配列番号:1 配列の長さ:20 配列の型:アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド フラグメント:N末端フラグメント 起源:ヒトの肝癌培養細胞 直接の起源:JCRBO403、財団法人がん研究振興
財団細胞バンク 配列番号:2 配列の長さ:20 配列の型:アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド フラグメント:N末端フラグメント 起源:ヒトの肝癌培養細胞 直接の起源:JCRBO403、財団法人がん研究振興
財団細胞バンク 配列番号:3 配列の長さ:20 配列の型:アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド フラグメント:N末端フラグメント 起源:ヒトの肝癌培養細胞 直接の起源:JCRBO403、財団法人がん研究振興
財団細胞バンク SEQ ID NO: 1 Sequence length: 20 Sequence type: Amino acid Topology: Linear Sequence type: Peptide Fragment: N-terminal fragment Origin: Human hepatoma cultured cell Direct origin: JCRBO403, Cancer Research Foundation Cell bank SEQ ID NO: 2 Sequence length: 20 Sequence type: amino acid Topology: linear Sequence type: peptide Fragment: N-terminal fragment Origin: Human hepatoma cultured cell Direct origin: JCRBO403, Cancer Research Foundation Cell bank SEQ ID NO: 3 Sequence length: 20 Sequence type: amino acid Topology: linear Sequence type: peptide Fragment: N-terminal fragment Origin: Human hepatoma cultured cell Direct origin: JCRBO403, Cancer Research Foundation Cell bank
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 FI // C12P 21/02 C12P 21/02 A (C12P 21/02 C12R 1:91) (72)発明者 中村 秀次 大阪府吹田市千里丘中4−2 (72)発明者 神戸 泰 兵庫県芦屋市翠ケ丘20−16 (58)調査した分野(Int.Cl.7,DB名) C07K 14/47 C12P 21/00 - 21/02 BIOSIS(DIALOG) WPI(DIALOG)──────────────────────────────────────────────────続 き Continued on the front page (51) Int.Cl. 7 Identification symbol FI // C12P 21/02 C12P 21/02 A (C12P 21/02 C12R 1:91) (72) Inventor Shuji Nakamura Suita-shi, Osaka 4-2 Senrioka Naka (72) Inventor Yasushi Kobe 20-16 Midorigaoka, Ashiya-shi, Hyogo (58) Field surveyed (Int. Cl. 7 , DB name) C07K 14/47 C12P 21/00-21/02 BIOSIS ( DIALOG) WPI (DIALOG)
Claims (1)
養上清よりイオン交換クロマトグラフィー、ヘパリンを
リガンドとするアフィニティクロマトグラフィー、ゲル
濾過クロマトグラフィーおよび逆相クロマトグラフィー
の各精製工程を順次経て得られたポリペプチドであっ
て、 分子量が2万〜3万5千の範囲にあり、N末端から20
残基が下記(1)(2)(3)のいずれかのアミノ酸配列で構成
され、 配列(1) Ser Asn Asn Gln Lys Glu Tyr Lys Cys Gly Asp Leu Val Phe Ala Lys Met Lys Gly Tyr 配列(2) Ser Asn Asn Gln Lys Glu Tyr Lys Ser Gly Asp Leu Val Phe Ala Lys Met Lys Gly Tyr 配列(3) Ser Asn Asn Gln Lys Glu Tyr Lys Thr Gly Asp Leu Val Phe Ala Lys Met Lys Gly Tyrスイス3T3細胞に対し細胞増殖活性を有し、該活性が (a) 熱処理 (b) 還元試薬処理 (c) 酸溶液処理 (d) トリプシン水溶液処理 のいずれかの処理で失活する、ポリペプチド。 1. Culture of human hepatoma cultured HuH-7 cell line
Ion exchange chromatography and heparin from the culture supernatant
Affinity chromatography as a ligand, gel
Filtration chromatography and reverse phase chromatography
Polypeptide obtained through each of the purification steps
Has a molecular weight in the range of 20,000 to 35,000, and 20
The residue is composed of any one of the following amino acid sequences (1), (2) and (3), and the sequence (1) Ser Asn Asn Gln Lys Glu Tyr Lys Cys Gly Asp Leu Val Phe Ala Lys Met Lys Gly Tyr sequence (2 Ser Asn Asn Gln Lys Glu Tyr Lys Ser Gly Asp Leu Val Phe Ala Lys Met Lys Gly Tyr Sequence (3) Ser Asn Asn Gln Lys Glu Tyr Lys Thr Gly Asp Leu Val Phe Ala Lys Met Lys Gly Tyr Swiss 3T3 cells A polypeptide which has a cell growth activity and is inactivated by any of the following treatments: (a) heat treatment (b ) treatment with a reducing reagent (c) treatment with an acid solution (d) treatment with an aqueous trypsin solution .
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| JP22315891A JP3062841B2 (en) | 1991-09-03 | 1991-09-03 | Polypeptide |
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|---|---|
| JPH06220094A JPH06220094A (en) | 1994-08-09 |
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| JP (1) | JP3062841B2 (en) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP3455785B2 (en) | 1993-06-04 | 2003-10-14 | 積水化学工業株式会社 | Human hepatoma cell-derived growth factor gene |
-
1991
- 1991-09-03 JP JP22315891A patent/JP3062841B2/en not_active Expired - Fee Related
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|---|---|---|---|---|
| JP3455785B2 (en) | 1993-06-04 | 2003-10-14 | 積水化学工業株式会社 | Human hepatoma cell-derived growth factor gene |
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|---|---|
| JPH06220094A (en) | 1994-08-09 |
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