JP3914970B2 - 微生物または細胞の収集方法およびそれに用いる微生物または細胞の収集用具 - Google Patents
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Description
本発明は、液状試料からの微生物または細胞の収集方法およびそれを用いた遺伝子の増幅若しくは検出方法に関する。
結核は、今なお、世界的に重要な細菌性疾患であり、その治療方法のみならず診断方法は極めて重要である。結核の最終的確認は、培養法により行われるが、結核菌の増殖速度は極めて遅いため、培養法の前段階で実施される予備的診断方法の確立が望まれている。このような予備的診断方法として、注目されているのは、ポリメラーゼ チェーン リアクション（ＰＣＲ法）を適用した遺伝子検査法である。この方法は、結核菌の遺伝子に特異的なプライマーを用い、結核菌の遺伝子を増幅して検出することにより、結核菌の有無を判定する方法である。
前記ＰＣＲ法を適用した予備的診断方法では、その前処理として結核菌を喀痰等の液状試料から菌を集菌する必要がある。従来の集菌方法は、例えば、つぎのようにして実施されていた（新 結核菌検査指針 ２０００、ｐ．２８−２９、財団法人結核予防会発行）。まず、Ｎ−アセチル−Ｌ−システイン（ＮＡＬＣ）と水酸化ナトリウム（ＮａＯＨ）の溶液（ＮＡＬＣ−ＮａＯＨ溶液）を加えて粘性を除去した試料液を調製する。この試料液に対し、１３０００ｇで１０分間の遠心分離をすることにより、菌を沈殿させて集菌する。しかしながら、この従来法での遠心分離による集菌では、その遠心条件が厳しく、煩雑な操作であり、しかも時間もかかり、高価な遠心分離機が必要である。また、この集菌に続く溶菌処理から遺伝子の増幅もしくは検出処理においても、従来の方法には、問題がある。従来の溶菌方法としては、例えば、有機溶媒等を用いた化学的方法、超音波や凍結・融解を繰り返す物理的方法等がある。しかし、結核菌は、その細胞壁の脂質含量が高く、従来の溶菌法では、遺伝子の抽出を十分に行うことができなかった。また、十分な抽出を行うためには、処理条件を過酷なものにする必要があり、それに伴い、特殊な装置や試薬を使用する必要があり、これに加え、処理時間の長期化や操作の煩雑化等の問題があった。このような集菌、溶菌および遺伝子の増幅等における問題は、結核菌を含む抗酸菌全体の問題でもあり、その他の菌およびウイルスにおいても起こり得る問題でもあり、白血球等の細胞においても同様の問題がある。
一方、最近問題になっている浴槽やプール等のレジオネラ菌や、河川、湖水若しくは海水などの大腸菌などの濃度を測定するためには、数リットル乃至数トン単位で検体試料を採取する必要があり、この中から微生物等を採取する必要がある。しかしながら、従来の手法では、効率良く採取することは困難であり、大量の検体から菌等を効率良く採取する技術の開発が求められていた。
前記ＰＣＲ法を適用した予備的診断方法では、その前処理として結核菌を喀痰等の液状試料から菌を集菌する必要がある。従来の集菌方法は、例えば、つぎのようにして実施されていた（新 結核菌検査指針 ２０００、ｐ．２８−２９、財団法人結核予防会発行）。まず、Ｎ−アセチル−Ｌ−システイン（ＮＡＬＣ）と水酸化ナトリウム（ＮａＯＨ）の溶液（ＮＡＬＣ−ＮａＯＨ溶液）を加えて粘性を除去した試料液を調製する。この試料液に対し、１３０００ｇで１０分間の遠心分離をすることにより、菌を沈殿させて集菌する。しかしながら、この従来法での遠心分離による集菌では、その遠心条件が厳しく、煩雑な操作であり、しかも時間もかかり、高価な遠心分離機が必要である。また、この集菌に続く溶菌処理から遺伝子の増幅もしくは検出処理においても、従来の方法には、問題がある。従来の溶菌方法としては、例えば、有機溶媒等を用いた化学的方法、超音波や凍結・融解を繰り返す物理的方法等がある。しかし、結核菌は、その細胞壁の脂質含量が高く、従来の溶菌法では、遺伝子の抽出を十分に行うことができなかった。また、十分な抽出を行うためには、処理条件を過酷なものにする必要があり、それに伴い、特殊な装置や試薬を使用する必要があり、これに加え、処理時間の長期化や操作の煩雑化等の問題があった。このような集菌、溶菌および遺伝子の増幅等における問題は、結核菌を含む抗酸菌全体の問題でもあり、その他の菌およびウイルスにおいても起こり得る問題でもあり、白血球等の細胞においても同様の問題がある。
一方、最近問題になっている浴槽やプール等のレジオネラ菌や、河川、湖水若しくは海水などの大腸菌などの濃度を測定するためには、数リットル乃至数トン単位で検体試料を採取する必要があり、この中から微生物等を採取する必要がある。しかしながら、従来の手法では、効率良く採取することは困難であり、大量の検体から菌等を効率良く採取する技術の開発が求められていた。
本発明は、このような事情に鑑みなされたもので、特殊な装置を用いることなく簡単かつ短時間に微生物または細胞を収集できる方法の提供を第１の目的とし、特殊な装置や試薬を用いることなく簡単かつ短時間に微生物または細胞を検出できる遺伝子の特異的な増幅若しくは検出方法の提供を第２の目的とする。
前記第１の目的を達成するために、本発明の微生物または細胞の収集方法は、液状試料から微生物または細胞を収集する方法であって、前記液状試料を吸水性樹脂に接触させることにより、前記吸水性樹脂に前記液状試料の液相部を吸収させ、かつ前記吸水性樹脂表面部で微生物または細胞を捕獲して微生物または細胞を収集する方法である。
この方法によれば、前記吸水性樹脂により簡単かつ短時間に微生物または細胞を捕捉できるため、厳しい条件の遠心分離をする必要がない。また、検体試料の量に合せて前記吸水性樹脂の必要な大きさ若しくは量等を設定することができ、その結果、数リットル乃至数トンレベルの検体試料であっても、これを前記吸水性樹脂に接触させるだけで、目的とする菌等（例えば、レジオネラ菌、大腸菌など）を採取することができる。
つぎに、前記第２の目的を達成するために、本発明の遺伝子の検出若しくは増幅方法は、微生物または細胞の遺伝子を特異的に増幅若しくは検出する方法であって、前記本発明の収集方法により微生物または細胞を収集し、これに非イオン性界面活性剤を含む抽出試薬液を添加して加熱することにより微生物または細胞から遺伝子を抽出し、この遺伝子を特異的に増幅もしくは検出する方法である。
この方法は、前記本発明の収集方法と組み合わせた方法であり、非イオン界面活性剤を含む抽出試薬液を添加して加熱するだけで遺伝子の抽出を行うことができ、その後の増幅等の操作に速やかに移ることができる。
前記第１の目的を達成するために、本発明の微生物または細胞の収集方法は、液状試料から微生物または細胞を収集する方法であって、前記液状試料を吸水性樹脂に接触させることにより、前記吸水性樹脂に前記液状試料の液相部を吸収させ、かつ前記吸水性樹脂表面部で微生物または細胞を捕獲して微生物または細胞を収集する方法である。
この方法によれば、前記吸水性樹脂により簡単かつ短時間に微生物または細胞を捕捉できるため、厳しい条件の遠心分離をする必要がない。また、検体試料の量に合せて前記吸水性樹脂の必要な大きさ若しくは量等を設定することができ、その結果、数リットル乃至数トンレベルの検体試料であっても、これを前記吸水性樹脂に接触させるだけで、目的とする菌等（例えば、レジオネラ菌、大腸菌など）を採取することができる。
つぎに、前記第２の目的を達成するために、本発明の遺伝子の検出若しくは増幅方法は、微生物または細胞の遺伝子を特異的に増幅若しくは検出する方法であって、前記本発明の収集方法により微生物または細胞を収集し、これに非イオン性界面活性剤を含む抽出試薬液を添加して加熱することにより微生物または細胞から遺伝子を抽出し、この遺伝子を特異的に増幅もしくは検出する方法である。
この方法は、前記本発明の収集方法と組み合わせた方法であり、非イオン界面活性剤を含む抽出試薬液を添加して加熱するだけで遺伝子の抽出を行うことができ、その後の増幅等の操作に速やかに移ることができる。
図１は、本発明の収集方法に使用する遠心チューブの構造の一例を示す断面図である。
図２の（ａ）〜（ｄ）は、本発明の収集方法の一例を示す工程図である。
図２の（ａ）〜（ｄ）は、本発明の収集方法の一例を示す工程図である。
以下、本発明をさらに詳しく説明する。
本発明の微生物または細胞の収集方法において、前記吸水性樹脂に前記液状試料を接触させた後、さらに、前記吸水性樹脂に回収液を接触させることにより、前記吸水性樹脂表面に捕獲された微生物または細胞を前記回収液中に回収することが好ましい。また、前記回収操作を複数回繰り返し行い、回収液の添加量を減少させることで、回収液中の微生物または細胞の濃度を高め、その結果、遠心分離等の後の工程をより効率よく行うことができる。前記回収液は、特に制限されず、例えば、水、蒸留水、イオン交換水、超純水、緩衝液等が使用できるが、好ましくは、後述のように、微生物または細胞の抽出液を回収液として使用することである。
前記液状試料の添加量は、前記吸水性樹脂の吸水容量以下であることが好ましく、また、前記液状試料の添加量に応じて、前記吸水性樹脂の添加量を変化させ、前記液状試料の添加量が前記吸水性樹脂の吸水容量以下となるように調整してもよい。また、前記回収液の添加量は、前記液状試料の液相部の吸収後における前記吸水性樹脂の吸水可能容量を超えた量であることが好ましい。前記吸水性樹脂は、例えば、自重の２〜１００００倍の吸水量、好ましくは、自重の５〜５０００倍の吸水量、より好ましくは、自重の１０〜１０００倍の吸水量を持つことが好ましい。大量の検体試料を処理する場合は、特に、吸水可能容量が大きい吸水性樹脂、例えば、自重の１００００倍の吸水量を持つ吸水性樹脂を使用して処理を行うことが好ましい。前記吸水性樹脂は、特に制限されず、例えば、親水性官能基を有する親水性架橋重合体があげられる。前記親水性官能基としては、アニオン性、ノニオン性、カチオン性等の親水性官能基があげられ、例えば、カルボキシル基、スルフォニル基、アミノ基等があげられる。吸水性樹脂の具体例としては、例えば、カルボキシメチルセルロースの架橋物、澱粉−アクリルニトリルグラフト重合体の加水分解物、澱粉−アクリル酸グラフト重合体の中和物、ポリアクリル酸塩重合体の架橋物、ポリメタクリル酸塩重合体の架橋物、酢酸ビニル−アクリル酸エステル共重合体の鹸化物、アクリロニトリル重合体もしくはアクリルアミド共重合体の加水分解物またはこれらの架橋物、スルホン基含有重合体の架橋物、ポリエチレンオキサイドもしくはポリエチレンイミンの架橋物等があげられる。これらは、単独で使用してもよく、２種類以上で併用してもよい。この中で、好ましいのは、ポリアクリル酸塩、ポリアクリル酸の部分中和物の架橋物であり、より好ましいのはポリアクリル酸塩であり、その具体例としては、ポリアクリル酸ナトリウムがある。吸水性樹脂の形態は、特に制限されないが、下記のように、粒子形状が好ましい。
本発明の微生物または細胞の収集方法において、フィルターで内部が上下に分けられ、かつ前記フィルター上に吸水性樹脂粒子が配置されている遠心チューブを準備し、この遠心チューブに前記液状試料を入れて前記吸水性樹脂粒子に接触させ、ついで前記回収液を前記遠心チューブに入れて前記吸水性樹脂粒子に接触させ、遠心分離により前記回収液を、前記フィルターを通過させて前記遠心チューブの底部に移動させることが好ましい。
前記方法に使用する遠心チューブは、フィルターで内部が上下に分けられ、かつ前記フィルター上に吸水性樹脂粒子が配置されている遠心チューブである。この一例を図１に示す。図示のように、この遠心チューブ１は、チューブ本体１１と、キャップ１２とを主要構成部材とする。チューブ本体１１の外壁上部には、ネジ山１６が形成され、キャップ１２の内壁にはネジ溝１７が形成され、これらにより、チューブ本体１１とキャップ１２とは螺合可能となっている。チューブ本体１１の内部には、有底円筒状の支持体１３が嵌め込まれており、前記支持体１３の底にはフィルター１４が配置され、この上に、吸水性樹脂粒子１５が配置されている。前記フィルターは、特に制限されず、その孔径は、例えば、１０ｎｍ〜１００μｍの範囲であり、好ましくは０．１〜２０μｍの範囲であり、より好ましくは０．１〜１０μｍの範囲である。前記フィルターの材質は、特に制限されず、例えば、ポリフッ化ビニリデン、ニトロセルロース、親水性ポリエーテルスルホン、ポリテトラフルオロエチレン、ポリカーボネート、ポリアミド、ポリスルホン、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリマーアロイ、アセチルセルロース等があり、このなかで、ポリフッ化ビニリデン、ポリカーボネートが好ましく、より好ましくはポリカーボネートである。
この遠心チューブ１を使用した微生物または細胞の収集方法の一例を図２に示す。なお、図２において、図１と同一部分には同一符号を付している。すなわち、まず、図２（ａ）に示すように、チューブ本体１１に、液状試料２を滴下する。すると、図２（ｂ）に示すように、吸水性樹脂粒子１５が前記液状試料２の液相部を吸水して膨張する。この時の液状試料２の滴下量は、吸水性樹脂粒子１５全体の吸水量以下であり、微生物または細胞は、吸水性樹脂粒子１５表面に付着している。そして、図２（ｂ）に示すように、この吸水性樹脂粒子１５に、さらに、回収液３を滴下する。上述のように、回収液として、抽出試薬液を使用することが好ましい。回収液３の滴下量は、前記液状試料２の液相部吸収後における吸水性樹脂粒子１５全体の吸水可能容量を超えた量であるから、図２（ｃ）に示すように、支持体１３内部に、吸水されなかった回収液３が溜まり、ここに微生物または細胞が回収される。このとき、微生物または細胞の回収効率を向上させるために、回収液３中で吸水性樹脂粒子１５を、ピペッティングを繰り返すこと等により、よく振とうさせることが好ましい。その後、キャップ１２（図示せず）でチューブ本体１１をキャップして、遠心分離する。本発明において、前記遠心分離の条件は、特に制限されず、例えば、５００〜１３０００Ｇで３秒〜６０分間、好ましくは１０００〜１００００Ｇで１０秒〜１０分間、より好ましくは５０００Ｇで１分間である。遠心分離器も特に制限されず、例えば、卓上遠心分離器を使用してもよい。遠心分離後、図２（ｄ）に示すように、遠心チューブの下部に回収液が溜まるので、これを回収して、後述の遺伝子検査の試料とする。
つぎに、本発明の遺伝子の増幅若しくは検出方法において、前記抽出試薬液は、前記微生物または細胞の収集方法における回収液として使用することが好ましい。前記回収液が前記抽出試薬液であれば、これをそのまま加熱すれば遺伝子を抽出でき、前記抽出試薬液添加操作が省略できる。前記抽出試薬液の加熱温度は、特に制限されないが、７０℃以上１００℃未満が好ましい。加熱温度が、１００℃未満であれば、突沸して試料が飛び散ることが無く、また温度コントロールが容易になって、特別の加熱器を必要としない等の利点がある。前記加熱温度は、より好ましくは８０℃以上１００℃未満であり、最適には９６℃である。また、加熱時間は、例えば、１〜３０分間であり、好ましくは１０分間である。前記液体のｐＨは、例えば、ｐＨ７．０〜１２．０の範囲であり、好ましくはｐＨ８．０である。前記抽出試薬液中の前記非イオン界面活性剤の濃度は、例えば、０．０１〜１０重量％であり、好ましくは０．５〜２．０重量％であり、より好ましくは１．０重量％である。
前記非イオン界面活性剤としては、例えば、Ｓｐａｎ２０、Ｓｐａｎ４０、Ｓｐａｎ６０、Ｓｐａｎ６５、Ｓｐａｎ８０、Ｓｐａｎ８５等（以上、ナカライテスク社製等）のｄ−ソルビトールの脂肪酸エステル、Ｔｗｅｅｎ２０、Ｔｗｅｅｎ２１、Ｔｗｅｅｎ４０、Ｔｗｅｅｎ６０、Ｔｗｅｅｎ６５、Ｔｗｅｅｎ８０、Ｔｗｅｅｎ８１、Ｔｗｅｅｎ８５等（以上、ナカライテスク社製等）のポリオキシエチレングリコールソルビタンアルキルエステル、ＴｒｉｔｏｎＸ−１００等（以上、ナカライテスク社製等）のポリオキシエチレングリコールｐ−ｔ−オクチルフェニルエーテル等がある。これらは、単独で使用してもよいし、２種類以上で併用してもよい。このなかで、ＴｒｉｔｏｎＸ−１００、Ｔｗｅｅｎ２０、Ｔｗｅｅｎ２１が好ましく、より好ましいのはＴｒｉｔｏｎＸ−１００である。
本発明の遺伝子の増幅若しくは検出方法において、さらに、前記抽出試薬液は、金属キレート剤を含むことが好ましい。試料中には、ＤＮａｓｅ等の遺伝子分解酵素が含まれており、金属キレート剤は、これによる遺伝子の分解を防止する作用等を発揮する。前記抽出試薬液中の前記金属キレート剤の濃度は、例えば、０．１〜１００ｍＭであり、好ましくは１．０ｍＭである。前記金属キレート剤としては、例えば、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）、エチレングリコール−ビス（β−アミノエチルエーテル）−Ｎ，Ｎ，Ｎ’，Ｎ’−四酢酸（ＥＧＴＡ）、ジアミノシクロヘキサン四酢酸、ｏ−フェナンスロリン、サリチル酸等がある。これらは、単独で使用してもよいし、２種類以上で併用してもよい。このなかで、好ましいのは、ＥＤＴＡ、ＥＧＴＡであり、より好ましいのは、ＥＤＴＡである。
本発明の対象となる微生物は、特に制限されず、例えば、抗酸菌、非定型抗酸菌、淋菌、レジオネラ、マイコプラズマ、スピロヘータ、梅毒スピロヘーター、クラミジア、リケッチア、らい菌、鼠咬症スピリルム、ブドウ球菌、連鎖球菌、大腸菌、緑膿菌、ペスト菌、ウイルス、日本脳炎ウイルス、Ｂ型肝炎ウイルス、Ｃ型肝炎ウイルス、ＡＴＬＶ、ＨＩＶおよびエボラ出血熱ウイルス等がある。抗酸菌としては、例えば、鳥型結核菌（Ｍ．ａｖｉｕｍ）、エム・イントラセルラレエ（Ｍ．ｉｎｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒａｅ）、エム・ゴルドネエ（Ｍ．ｇｏｒｄｏｎａｅ）、ヒト型結核菌（Ｍ．ｔｕｂｅｒｃｕｌｏｓｉｓ）、エム・カンサシイ（Ｍ．ｋａｎｓａｓｉｉ）、エム・フォルツイツム（Ｍ．ｆｏｒｔｕｉｔｕｍ）、エム・ケロネエ（Ｍ．ｃｈｅｌｏｎａｅ）、ウシ型結核菌（Ｍ．ｂｏｖｉｓ）、エム・スクロフラセウム（Ｍ．ｓｃｒｏｆｕｌａｃｅｕｍ）、パラ結核菌（Ｍ．ｐａｒａｔｕｂｅｒｃｕｌｏｓｉｓ）、チモテ菌（Ｍ．ｐｈｌｅｉ）、エム・マリヌム（Ｍ．ｍａｒｉｎｕｍ）、エム・シミエー（Ｍ．ｓｉｍｉａｅ）、エム・スクロフラセウム（Ｍ．ｓｃｒｏｆｕｌａｃｅｕｍ）、エム・スズルガイ（Ｍ．ｓｚｕｌｇａｉ）、らい菌（Ｍ．ｌｅｐｒａｅ）、エム・キセノピ（Ｍ．ｘｅｎｏｐｉ）、エム・ウルセランス（Ｍ．ｕｌｃｅｒａｎｓ）、鼠らい菌（Ｍ．ｌｅｐｒａｅｍｕｒｉｕｍ）、エム・フラベセンス（Ｍ．ｆｌａｖｅｓｃｅｎｓ）、エム・テレエ（Ｍ、ｔｅｒｒａｅ）、エム・ノンクロモジェニクム（Ｍ．ｎｏｎｃｈｒｏｍｏｇｅｎｉｃｕｍ）、エム・マルメンス（Ｍ．ｍａｌｍｏｅｎｓｅ）、エム・アシアティクム（Ｍ．ａｓｉａｔｉｃｕｍ）、エム・ヴァケエ（Ｍ．ｖａｃｃａｅ）、エム・ガストリ（Ｍ．ｇａｓｔｒｉ）、エム・トリビアル（Ｍ．ｔｒｉｖｉａｌｅ）、エム・ヘモフィラム（Ｍ．ｈａｅｍｏｐｈｉｌｕｍ）、エム・アフリカヌム（Ｍ．ａｆｒｉｃａｎｕｍ）、エム・サーモレジスタブル（Ｍ．ｔｈｅｒｍｏｒｅｓｉｓｔａｂｌｅ）およびスメグマ菌（Ｍ．ｓｍｅｇｍａｔｉｓ）等がある。また、本発明の対象となる細胞は、特に制限されず、例えば、ヒト白血球、ヒト体細胞、その他動植物の細胞等の遺伝物質を含む細胞組織系等がある。
本発明において、前記液状試料としては、例えば、痰、髄液、糞、唾液、血液、組織、尿、これらの生体試料を前処理した試料等がある。前記前処理試料としては、例えば、喀痰をＮ−アセチル−Ｌ−システイン（ＮＡＬＣ）と水酸化ナトリウム（ＮａＯＨ）で処理した試料がある。この他に、本発明のおける前記液状試料としては、浴槽の水、プールの水、養魚場の水、河川の水、湖水、海水などがある。
本発明の前記液状試料の量は、特に制限されないが、臨床検査のような比較的少ない量で良い場合は、例えば、５μＬ〜１０ｍＬの範囲、好ましくは１０μＬ〜１ｍＬ、より好ましくは５０μＬ〜５００μＬであり、浴槽の水や河川の水などの水質検査の一環として微生物等の濃度を検査するような比較的大量の試料の場合、例えば、各省庁の省令で定められた試料の量の範囲であり、具体的には、１ｍＬ〜１０Ｌの範囲、好ましくは１０ｍＬ〜１Ｌ、より好ましくは５０ｍＬ〜２００ｍＬである。前記省令としては、例えば、「循環式浴槽におけるレジオネラ症防止対策マニュアル」（平成１３年９月１１日付け健衛発第９５号厚生労働省健康局生活衛生課長通知）があげられる。その中で、例えば、浴槽中のレジオネラ属菌は１０ＣＦＵ／１００ｍＬ未満を基準とすると定められており、浴槽中のレジオネラ属菌を検出する場合は、少なくとも１００ｍＬの試料を用いる必要がある。なお、これらの前記液状試料の量は、前述のように、前記吸水性樹脂の吸水量を超えないことが好ましい。
つぎに、本発明の遺伝子の増幅若しくは検出方法は、例えば、以下のようにして実施できる。すなわち、まず、前記所定ｐＨの緩衝液に、必要に応じてＥＤＴＡ等の金属キレート剤を添加し、さらに非イオン界面活性剤を添加して抽出試薬液を調製する。前記緩衝液としては、例えば、Ｔｒｉｓ−ＨＣｌバッファー、ＨＥＰＥＳバッファー、ＭＯＰＳバッファー、ＨＥＰＰＳバッファー、ＴＡＰＳバッファー、リン酸バッファー等がある。この抽出試薬液は、オートクレイブにより高圧蒸気滅菌することが好ましい。他方、試料液を調製する。例えば、喀痰検体を、Ｎ−アセチル−Ｌ−システイン−ＮａＯＨ法（ＮＡＬＣ−ＮａＯＨ法）等により、均質化および雑菌処理する。前記処理をした検体（液状試料）を、その内部に収集フィルターが配置され、この上に吸水性樹脂粒子が配置された遠心チューブ（例えば、図１に記載のもの）に添加し、さらに、前記抽出試薬液（回収液）を添加し、これを遠心分離（例えば、５０００Ｇ、１分間）して、遠心チューブ下部に、前記抽出試薬液を溜める。この抽出試薬液を、そのまま、若しくは別のチューブに移して、ヒートブロック等を用い、前記所定の温度で加熱することにより、抽出処理を行う。なお、加熱方法としては、前記ヒートブロックの他に、例えば、ウォーターバス、マイクロウェーブオーブン、エアーバス等がある。このようにして抽出処理した検体は、そのまま、若しくは前処理を施して遺伝子増幅若しくは検出処理を行うことができる。前記遺伝子増幅若しくは検出方法としては、例えば、ＰＣＲ法、ＲＴ−ＰＣＲ等のＰＣＲの変法等がある。また、分析対象となる遺伝子としては、ＤＮＡ、ＲＮＡがある。なお、回収液と抽出試薬液が別の場合は、回収液に抽出試薬液を加えて抽出処理をする。
本発明の微生物または細胞の収集方法において、前記吸水性樹脂に前記液状試料を接触させた後、さらに、前記吸水性樹脂に回収液を接触させることにより、前記吸水性樹脂表面に捕獲された微生物または細胞を前記回収液中に回収することが好ましい。また、前記回収操作を複数回繰り返し行い、回収液の添加量を減少させることで、回収液中の微生物または細胞の濃度を高め、その結果、遠心分離等の後の工程をより効率よく行うことができる。前記回収液は、特に制限されず、例えば、水、蒸留水、イオン交換水、超純水、緩衝液等が使用できるが、好ましくは、後述のように、微生物または細胞の抽出液を回収液として使用することである。
前記液状試料の添加量は、前記吸水性樹脂の吸水容量以下であることが好ましく、また、前記液状試料の添加量に応じて、前記吸水性樹脂の添加量を変化させ、前記液状試料の添加量が前記吸水性樹脂の吸水容量以下となるように調整してもよい。また、前記回収液の添加量は、前記液状試料の液相部の吸収後における前記吸水性樹脂の吸水可能容量を超えた量であることが好ましい。前記吸水性樹脂は、例えば、自重の２〜１００００倍の吸水量、好ましくは、自重の５〜５０００倍の吸水量、より好ましくは、自重の１０〜１０００倍の吸水量を持つことが好ましい。大量の検体試料を処理する場合は、特に、吸水可能容量が大きい吸水性樹脂、例えば、自重の１００００倍の吸水量を持つ吸水性樹脂を使用して処理を行うことが好ましい。前記吸水性樹脂は、特に制限されず、例えば、親水性官能基を有する親水性架橋重合体があげられる。前記親水性官能基としては、アニオン性、ノニオン性、カチオン性等の親水性官能基があげられ、例えば、カルボキシル基、スルフォニル基、アミノ基等があげられる。吸水性樹脂の具体例としては、例えば、カルボキシメチルセルロースの架橋物、澱粉−アクリルニトリルグラフト重合体の加水分解物、澱粉−アクリル酸グラフト重合体の中和物、ポリアクリル酸塩重合体の架橋物、ポリメタクリル酸塩重合体の架橋物、酢酸ビニル−アクリル酸エステル共重合体の鹸化物、アクリロニトリル重合体もしくはアクリルアミド共重合体の加水分解物またはこれらの架橋物、スルホン基含有重合体の架橋物、ポリエチレンオキサイドもしくはポリエチレンイミンの架橋物等があげられる。これらは、単独で使用してもよく、２種類以上で併用してもよい。この中で、好ましいのは、ポリアクリル酸塩、ポリアクリル酸の部分中和物の架橋物であり、より好ましいのはポリアクリル酸塩であり、その具体例としては、ポリアクリル酸ナトリウムがある。吸水性樹脂の形態は、特に制限されないが、下記のように、粒子形状が好ましい。
本発明の微生物または細胞の収集方法において、フィルターで内部が上下に分けられ、かつ前記フィルター上に吸水性樹脂粒子が配置されている遠心チューブを準備し、この遠心チューブに前記液状試料を入れて前記吸水性樹脂粒子に接触させ、ついで前記回収液を前記遠心チューブに入れて前記吸水性樹脂粒子に接触させ、遠心分離により前記回収液を、前記フィルターを通過させて前記遠心チューブの底部に移動させることが好ましい。
前記方法に使用する遠心チューブは、フィルターで内部が上下に分けられ、かつ前記フィルター上に吸水性樹脂粒子が配置されている遠心チューブである。この一例を図１に示す。図示のように、この遠心チューブ１は、チューブ本体１１と、キャップ１２とを主要構成部材とする。チューブ本体１１の外壁上部には、ネジ山１６が形成され、キャップ１２の内壁にはネジ溝１７が形成され、これらにより、チューブ本体１１とキャップ１２とは螺合可能となっている。チューブ本体１１の内部には、有底円筒状の支持体１３が嵌め込まれており、前記支持体１３の底にはフィルター１４が配置され、この上に、吸水性樹脂粒子１５が配置されている。前記フィルターは、特に制限されず、その孔径は、例えば、１０ｎｍ〜１００μｍの範囲であり、好ましくは０．１〜２０μｍの範囲であり、より好ましくは０．１〜１０μｍの範囲である。前記フィルターの材質は、特に制限されず、例えば、ポリフッ化ビニリデン、ニトロセルロース、親水性ポリエーテルスルホン、ポリテトラフルオロエチレン、ポリカーボネート、ポリアミド、ポリスルホン、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリマーアロイ、アセチルセルロース等があり、このなかで、ポリフッ化ビニリデン、ポリカーボネートが好ましく、より好ましくはポリカーボネートである。
この遠心チューブ１を使用した微生物または細胞の収集方法の一例を図２に示す。なお、図２において、図１と同一部分には同一符号を付している。すなわち、まず、図２（ａ）に示すように、チューブ本体１１に、液状試料２を滴下する。すると、図２（ｂ）に示すように、吸水性樹脂粒子１５が前記液状試料２の液相部を吸水して膨張する。この時の液状試料２の滴下量は、吸水性樹脂粒子１５全体の吸水量以下であり、微生物または細胞は、吸水性樹脂粒子１５表面に付着している。そして、図２（ｂ）に示すように、この吸水性樹脂粒子１５に、さらに、回収液３を滴下する。上述のように、回収液として、抽出試薬液を使用することが好ましい。回収液３の滴下量は、前記液状試料２の液相部吸収後における吸水性樹脂粒子１５全体の吸水可能容量を超えた量であるから、図２（ｃ）に示すように、支持体１３内部に、吸水されなかった回収液３が溜まり、ここに微生物または細胞が回収される。このとき、微生物または細胞の回収効率を向上させるために、回収液３中で吸水性樹脂粒子１５を、ピペッティングを繰り返すこと等により、よく振とうさせることが好ましい。その後、キャップ１２（図示せず）でチューブ本体１１をキャップして、遠心分離する。本発明において、前記遠心分離の条件は、特に制限されず、例えば、５００〜１３０００Ｇで３秒〜６０分間、好ましくは１０００〜１００００Ｇで１０秒〜１０分間、より好ましくは５０００Ｇで１分間である。遠心分離器も特に制限されず、例えば、卓上遠心分離器を使用してもよい。遠心分離後、図２（ｄ）に示すように、遠心チューブの下部に回収液が溜まるので、これを回収して、後述の遺伝子検査の試料とする。
つぎに、本発明の遺伝子の増幅若しくは検出方法において、前記抽出試薬液は、前記微生物または細胞の収集方法における回収液として使用することが好ましい。前記回収液が前記抽出試薬液であれば、これをそのまま加熱すれば遺伝子を抽出でき、前記抽出試薬液添加操作が省略できる。前記抽出試薬液の加熱温度は、特に制限されないが、７０℃以上１００℃未満が好ましい。加熱温度が、１００℃未満であれば、突沸して試料が飛び散ることが無く、また温度コントロールが容易になって、特別の加熱器を必要としない等の利点がある。前記加熱温度は、より好ましくは８０℃以上１００℃未満であり、最適には９６℃である。また、加熱時間は、例えば、１〜３０分間であり、好ましくは１０分間である。前記液体のｐＨは、例えば、ｐＨ７．０〜１２．０の範囲であり、好ましくはｐＨ８．０である。前記抽出試薬液中の前記非イオン界面活性剤の濃度は、例えば、０．０１〜１０重量％であり、好ましくは０．５〜２．０重量％であり、より好ましくは１．０重量％である。
前記非イオン界面活性剤としては、例えば、Ｓｐａｎ２０、Ｓｐａｎ４０、Ｓｐａｎ６０、Ｓｐａｎ６５、Ｓｐａｎ８０、Ｓｐａｎ８５等（以上、ナカライテスク社製等）のｄ−ソルビトールの脂肪酸エステル、Ｔｗｅｅｎ２０、Ｔｗｅｅｎ２１、Ｔｗｅｅｎ４０、Ｔｗｅｅｎ６０、Ｔｗｅｅｎ６５、Ｔｗｅｅｎ８０、Ｔｗｅｅｎ８１、Ｔｗｅｅｎ８５等（以上、ナカライテスク社製等）のポリオキシエチレングリコールソルビタンアルキルエステル、ＴｒｉｔｏｎＸ−１００等（以上、ナカライテスク社製等）のポリオキシエチレングリコールｐ−ｔ−オクチルフェニルエーテル等がある。これらは、単独で使用してもよいし、２種類以上で併用してもよい。このなかで、ＴｒｉｔｏｎＸ−１００、Ｔｗｅｅｎ２０、Ｔｗｅｅｎ２１が好ましく、より好ましいのはＴｒｉｔｏｎＸ−１００である。
本発明の遺伝子の増幅若しくは検出方法において、さらに、前記抽出試薬液は、金属キレート剤を含むことが好ましい。試料中には、ＤＮａｓｅ等の遺伝子分解酵素が含まれており、金属キレート剤は、これによる遺伝子の分解を防止する作用等を発揮する。前記抽出試薬液中の前記金属キレート剤の濃度は、例えば、０．１〜１００ｍＭであり、好ましくは１．０ｍＭである。前記金属キレート剤としては、例えば、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）、エチレングリコール−ビス（β−アミノエチルエーテル）−Ｎ，Ｎ，Ｎ’，Ｎ’−四酢酸（ＥＧＴＡ）、ジアミノシクロヘキサン四酢酸、ｏ−フェナンスロリン、サリチル酸等がある。これらは、単独で使用してもよいし、２種類以上で併用してもよい。このなかで、好ましいのは、ＥＤＴＡ、ＥＧＴＡであり、より好ましいのは、ＥＤＴＡである。
本発明の対象となる微生物は、特に制限されず、例えば、抗酸菌、非定型抗酸菌、淋菌、レジオネラ、マイコプラズマ、スピロヘータ、梅毒スピロヘーター、クラミジア、リケッチア、らい菌、鼠咬症スピリルム、ブドウ球菌、連鎖球菌、大腸菌、緑膿菌、ペスト菌、ウイルス、日本脳炎ウイルス、Ｂ型肝炎ウイルス、Ｃ型肝炎ウイルス、ＡＴＬＶ、ＨＩＶおよびエボラ出血熱ウイルス等がある。抗酸菌としては、例えば、鳥型結核菌（Ｍ．ａｖｉｕｍ）、エム・イントラセルラレエ（Ｍ．ｉｎｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒａｅ）、エム・ゴルドネエ（Ｍ．ｇｏｒｄｏｎａｅ）、ヒト型結核菌（Ｍ．ｔｕｂｅｒｃｕｌｏｓｉｓ）、エム・カンサシイ（Ｍ．ｋａｎｓａｓｉｉ）、エム・フォルツイツム（Ｍ．ｆｏｒｔｕｉｔｕｍ）、エム・ケロネエ（Ｍ．ｃｈｅｌｏｎａｅ）、ウシ型結核菌（Ｍ．ｂｏｖｉｓ）、エム・スクロフラセウム（Ｍ．ｓｃｒｏｆｕｌａｃｅｕｍ）、パラ結核菌（Ｍ．ｐａｒａｔｕｂｅｒｃｕｌｏｓｉｓ）、チモテ菌（Ｍ．ｐｈｌｅｉ）、エム・マリヌム（Ｍ．ｍａｒｉｎｕｍ）、エム・シミエー（Ｍ．ｓｉｍｉａｅ）、エム・スクロフラセウム（Ｍ．ｓｃｒｏｆｕｌａｃｅｕｍ）、エム・スズルガイ（Ｍ．ｓｚｕｌｇａｉ）、らい菌（Ｍ．ｌｅｐｒａｅ）、エム・キセノピ（Ｍ．ｘｅｎｏｐｉ）、エム・ウルセランス（Ｍ．ｕｌｃｅｒａｎｓ）、鼠らい菌（Ｍ．ｌｅｐｒａｅｍｕｒｉｕｍ）、エム・フラベセンス（Ｍ．ｆｌａｖｅｓｃｅｎｓ）、エム・テレエ（Ｍ、ｔｅｒｒａｅ）、エム・ノンクロモジェニクム（Ｍ．ｎｏｎｃｈｒｏｍｏｇｅｎｉｃｕｍ）、エム・マルメンス（Ｍ．ｍａｌｍｏｅｎｓｅ）、エム・アシアティクム（Ｍ．ａｓｉａｔｉｃｕｍ）、エム・ヴァケエ（Ｍ．ｖａｃｃａｅ）、エム・ガストリ（Ｍ．ｇａｓｔｒｉ）、エム・トリビアル（Ｍ．ｔｒｉｖｉａｌｅ）、エム・ヘモフィラム（Ｍ．ｈａｅｍｏｐｈｉｌｕｍ）、エム・アフリカヌム（Ｍ．ａｆｒｉｃａｎｕｍ）、エム・サーモレジスタブル（Ｍ．ｔｈｅｒｍｏｒｅｓｉｓｔａｂｌｅ）およびスメグマ菌（Ｍ．ｓｍｅｇｍａｔｉｓ）等がある。また、本発明の対象となる細胞は、特に制限されず、例えば、ヒト白血球、ヒト体細胞、その他動植物の細胞等の遺伝物質を含む細胞組織系等がある。
本発明において、前記液状試料としては、例えば、痰、髄液、糞、唾液、血液、組織、尿、これらの生体試料を前処理した試料等がある。前記前処理試料としては、例えば、喀痰をＮ−アセチル−Ｌ−システイン（ＮＡＬＣ）と水酸化ナトリウム（ＮａＯＨ）で処理した試料がある。この他に、本発明のおける前記液状試料としては、浴槽の水、プールの水、養魚場の水、河川の水、湖水、海水などがある。
本発明の前記液状試料の量は、特に制限されないが、臨床検査のような比較的少ない量で良い場合は、例えば、５μＬ〜１０ｍＬの範囲、好ましくは１０μＬ〜１ｍＬ、より好ましくは５０μＬ〜５００μＬであり、浴槽の水や河川の水などの水質検査の一環として微生物等の濃度を検査するような比較的大量の試料の場合、例えば、各省庁の省令で定められた試料の量の範囲であり、具体的には、１ｍＬ〜１０Ｌの範囲、好ましくは１０ｍＬ〜１Ｌ、より好ましくは５０ｍＬ〜２００ｍＬである。前記省令としては、例えば、「循環式浴槽におけるレジオネラ症防止対策マニュアル」（平成１３年９月１１日付け健衛発第９５号厚生労働省健康局生活衛生課長通知）があげられる。その中で、例えば、浴槽中のレジオネラ属菌は１０ＣＦＵ／１００ｍＬ未満を基準とすると定められており、浴槽中のレジオネラ属菌を検出する場合は、少なくとも１００ｍＬの試料を用いる必要がある。なお、これらの前記液状試料の量は、前述のように、前記吸水性樹脂の吸水量を超えないことが好ましい。
つぎに、本発明の遺伝子の増幅若しくは検出方法は、例えば、以下のようにして実施できる。すなわち、まず、前記所定ｐＨの緩衝液に、必要に応じてＥＤＴＡ等の金属キレート剤を添加し、さらに非イオン界面活性剤を添加して抽出試薬液を調製する。前記緩衝液としては、例えば、Ｔｒｉｓ−ＨＣｌバッファー、ＨＥＰＥＳバッファー、ＭＯＰＳバッファー、ＨＥＰＰＳバッファー、ＴＡＰＳバッファー、リン酸バッファー等がある。この抽出試薬液は、オートクレイブにより高圧蒸気滅菌することが好ましい。他方、試料液を調製する。例えば、喀痰検体を、Ｎ−アセチル−Ｌ−システイン−ＮａＯＨ法（ＮＡＬＣ−ＮａＯＨ法）等により、均質化および雑菌処理する。前記処理をした検体（液状試料）を、その内部に収集フィルターが配置され、この上に吸水性樹脂粒子が配置された遠心チューブ（例えば、図１に記載のもの）に添加し、さらに、前記抽出試薬液（回収液）を添加し、これを遠心分離（例えば、５０００Ｇ、１分間）して、遠心チューブ下部に、前記抽出試薬液を溜める。この抽出試薬液を、そのまま、若しくは別のチューブに移して、ヒートブロック等を用い、前記所定の温度で加熱することにより、抽出処理を行う。なお、加熱方法としては、前記ヒートブロックの他に、例えば、ウォーターバス、マイクロウェーブオーブン、エアーバス等がある。このようにして抽出処理した検体は、そのまま、若しくは前処理を施して遺伝子増幅若しくは検出処理を行うことができる。前記遺伝子増幅若しくは検出方法としては、例えば、ＰＣＲ法、ＲＴ−ＰＣＲ等のＰＣＲの変法等がある。また、分析対象となる遺伝子としては、ＤＮＡ、ＲＮＡがある。なお、回収液と抽出試薬液が別の場合は、回収液に抽出試薬液を加えて抽出処理をする。
以下に示すようにして、培養結核菌株について、遺伝子検査を行った。
（結核菌の調製）
臨床分離結核菌株を商品名マイコブロス（極東製薬工業社製）にて、ＭｃＦａｒｌａｎｄ＃１の濁度になるまで３５℃で培養した。その後、０．０６７Ｍリン酸ｂｕｆｆｅｒ（ｐＨ：６．８）にて１０倍希釈系列（１００〜１０１０倍希釈）を作製し、それを試料とした。
（集菌操作）
商品名アイソポアフィルター（孔径３μｍ，ミリポア社製）を備えたフィルターユニット（図１参照）に、吸水性樹脂粒子（商品名アクアキープ１０ＳＨ Ｐ、住友精化社製）０．００６５ｇを配置した遠心チューブ（図１参照）を準備した。この遠心チューブに、前記結核菌希釈試料１００μＬを添加し、その後、さらに抽出試薬液を５００μＬ添加した。この抽出試薬液は、回収液を兼ねるものであり、ＴＥ緩衝液（１０ｍＭのＥＤＴＡ、２５ｍＭのＴｒｉｓ−ＨＣｌ：ｐＨ８．０）に１％の濃度でＴｒｉｔｏｎＸ−１００（ナカライ社製）を溶解し、オートクレイブしたものである。その後、５０００Ｇで１分間遠心分離し、遠心チューブ底に溜まったろ液（約１００μＬ）を回収した。
（遺伝子抽出）
前記ろ液をヒートブロックにて９６℃、１０分間加熱し、結核菌を溶菌した。
（ＰＣＲによる遺伝子の検出）
前記溶菌液２５μＬに、商品名アンプリコア増幅キット（日本ロシュ社製）のＭａｓｔｅｒ ｍｉｘｔｕｒｅ ５０μＬ及び１５ｍＭ 酢酸マグネシウム２５μＬを添加し、ＰＣＲ反応を行った。反応条件および操作などは、前記キット添付文書どおりに行った。遺伝子の検出は、商品名アンプリコア検出キット（日本ロシュ社製）を用いて行った。この操作は前記キットの添付文書どおりに行った。
（比較例１）
比較例として、前記試料を、商品名アンプリコア前処理キット（日本ロシュ社製）を用いて処理し、これについて、上記と同じＰＣＲによる遺伝子の検出を行った。
（結果）
実施例１および比較例１において、検出感度は双方ともに１０５倍希釈まで陽性であり、それ以上は陰性であった。また、内部標準（ＩＣ）は双方ともすべて陽性であった。このことから、本発明の実施例と従来法である比較例とは、培養結核菌での集菌・溶菌効果は同等であるといえる。さらに、ＩＣもすべて陽性であることから、ＰＣＲ阻害物質の混入も抑えられたことがわかった。さらに、本発明の実施例は、比較例に比べ、集菌および溶菌に費やす時間が約５分の１に短縮された。
（結核菌の調製）
臨床分離結核菌株を商品名マイコブロス（極東製薬工業社製）にて、ＭｃＦａｒｌａｎｄ＃１の濁度になるまで３５℃で培養した。その後、０．０６７Ｍリン酸ｂｕｆｆｅｒ（ｐＨ：６．８）にて１０倍希釈系列（１００〜１０１０倍希釈）を作製し、それを試料とした。
（集菌操作）
商品名アイソポアフィルター（孔径３μｍ，ミリポア社製）を備えたフィルターユニット（図１参照）に、吸水性樹脂粒子（商品名アクアキープ１０ＳＨ Ｐ、住友精化社製）０．００６５ｇを配置した遠心チューブ（図１参照）を準備した。この遠心チューブに、前記結核菌希釈試料１００μＬを添加し、その後、さらに抽出試薬液を５００μＬ添加した。この抽出試薬液は、回収液を兼ねるものであり、ＴＥ緩衝液（１０ｍＭのＥＤＴＡ、２５ｍＭのＴｒｉｓ−ＨＣｌ：ｐＨ８．０）に１％の濃度でＴｒｉｔｏｎＸ−１００（ナカライ社製）を溶解し、オートクレイブしたものである。その後、５０００Ｇで１分間遠心分離し、遠心チューブ底に溜まったろ液（約１００μＬ）を回収した。
（遺伝子抽出）
前記ろ液をヒートブロックにて９６℃、１０分間加熱し、結核菌を溶菌した。
（ＰＣＲによる遺伝子の検出）
前記溶菌液２５μＬに、商品名アンプリコア増幅キット（日本ロシュ社製）のＭａｓｔｅｒ ｍｉｘｔｕｒｅ ５０μＬ及び１５ｍＭ 酢酸マグネシウム２５μＬを添加し、ＰＣＲ反応を行った。反応条件および操作などは、前記キット添付文書どおりに行った。遺伝子の検出は、商品名アンプリコア検出キット（日本ロシュ社製）を用いて行った。この操作は前記キットの添付文書どおりに行った。
（比較例１）
比較例として、前記試料を、商品名アンプリコア前処理キット（日本ロシュ社製）を用いて処理し、これについて、上記と同じＰＣＲによる遺伝子の検出を行った。
（結果）
実施例１および比較例１において、検出感度は双方ともに１０５倍希釈まで陽性であり、それ以上は陰性であった。また、内部標準（ＩＣ）は双方ともすべて陽性であった。このことから、本発明の実施例と従来法である比較例とは、培養結核菌での集菌・溶菌効果は同等であるといえる。さらに、ＩＣもすべて陽性であることから、ＰＣＲ阻害物質の混入も抑えられたことがわかった。さらに、本発明の実施例は、比較例に比べ、集菌および溶菌に費やす時間が約５分の１に短縮された。
結核（ＴＢ）の疑いのある患者からの喀痰検体（７検体）について、ＮＡＬＣ−ＮａＯＨ処理し、これを試料とした。この試料を用い、実施例１と同様にして、集菌、遺伝子の抽出、ＰＣＲによる遺伝子の検出を行った。この結果を、下記表１に示す。
（比較例２）
実施例２と同じ試料について、商品名アンプリコア前処理キット（日本ロシュ社製）を用いて処理し、これについて、実施例１と同じＰＣＲによる遺伝子の検出を行った。この結果を下記の表１に示す。
前記表１に示すように、７検体全てにおいて、実施例２および比較例２とも陽性となり、また内部標準（ＩＣ）も、前記実施例２および比較例２において、陽性であった。このことから、本発明の方法は、従来の方法と同様の性能であるといえる。また、本発明の方法は、従来の方法にくらべ、集菌操作および溶菌操作を簡単かつ迅速に実施可能である。
（比較例２）
実施例２と同じ試料について、商品名アンプリコア前処理キット（日本ロシュ社製）を用いて処理し、これについて、実施例１と同じＰＣＲによる遺伝子の検出を行った。この結果を下記の表１に示す。
以上のように、本発明の収集方法は、特殊な装置を用いることなく、簡単かつ短時間に微生物または細胞を収集できる方法である。したがって、本発明の方法を、遺伝子の増幅・検出法による微生物等の検査の試料の前処理に適用することにより、検査の高効率化を簡単に実現できる。
Claims (23)
- 液状試料から微生物または細胞を収集する方法であって、
フィルターで内部が上下に分けられ、かつ、前記フィルター上に吸水性樹脂粒子が配置されている遠心チューブを準備する工程、
前記遠心チューブに前記液状試料を入れて前記吸水性樹脂粒子に接触させることにより、前記吸水性樹脂粒子に前記液状試料の液相部を吸収させ、かつ、前記吸水性樹脂粒子表面に前記微生物または細胞を捕獲する工程、
前記回収液を前記遠心チューブに入れて前記吸水性樹脂粒子に接触させることにより、前記吸水性樹脂粒子表面に捕獲された微生物または細胞を前記回収液中に回収する工程、及び
前記回収液を遠心分離により前記フィルターを通過させて前記遠心チューブの底部に移動させる工程を含む微生物または細胞の収集方法。 - 前記遠心分離の条件が、５００〜１３０００Ｇで３秒〜６０分である請求項１に記載の微生物または細胞の収集方法。
- 前記液状試料の添加量が、前記吸水性樹脂粒子の吸水容量以下である請求項１または２に記載の微生物または細胞の収集方法。
- 前記回収液の添加量が、前記液状試料の液相部の吸収後における前記吸水性樹脂粒子の吸水可能容量を超えた量である請求項１から３のいずれか一項に記載の微生物または細胞の収集方法。
- 前記吸水性樹脂粒子が、親水性官能基を有する親水性架橋重合体により形成された吸水性樹脂粒子である請求項１から４のいずれか一項に記載の微生物または細胞の収集方法。
- 収集の対象となる微生物が、抗酸菌、非定型抗酸菌、淋菌、レジオネラ、マイコプラズマ、スピロヘータ、梅毒スピロヘータ−、クラミジア、リケッチア、らい菌、鼠咬症スピリルム、ブドウ球菌、連鎖球菌、大腸菌、緑膿菌、ペスト菌、ウイルス、日本脳炎ウイルス、Ｂ型肝炎ウイルス、Ｃ型肝炎ウイルス、ＡＴＬＶ、ＨＩＶおよびエボラ出血熱ウイルスからなる群から選択される少なくとも一つである請求項１から５のいずれか一項に記載の微生物または細胞の収集方法。
- 前記抗酸菌が、鳥型結核菌（M.avium）、エム・イントラセルラレエ（M.intracellularae）、エム・ゴルドネエ（M.gordonae）、ヒト型結核菌（M.tuberculosis）、エム・カンサシイ（M.kansasii）、エム・フォルツイツム（M.fortuitum）、エム・ケロネエ（M.chelonae）、ウシ型結核菌（M.bovis）、エム・スクロフラセウム（M.scrofulaceum）、パラ結核菌（M.paratuberculosis）、チモテ菌（M.phlei）、エム・マリヌム（M.marinum）、エム・シミエー（M.simiae）、エム・スズルガイ（M.szulgai）、らい菌（M.leprae）、エム・キセノピ（M.xenopi）、エム・ウルセランス（M.ulcerans）、鼠らい菌（M.lepraemurium）、エム・フラベセンス（M.flavescens）、エム・テレエ（M.terrae）、エム・ノンクロモジェニクム（M.nonchromogenicum）、エム・マルメンス（M.malmoense）、エム・アシアティクム（M.asiaticum）、エム・ヴァケエ（M.vaccae）、エム・ガストリ（M.gastri）、エム・トリビアル（M.triviale）、エム・ヘモフィラム（M.haemophilum）、エム・アフリカヌム（M.africanum）、エム・サーモレジスタブル（M.thermoresistable）およびスメグマ菌（M.smegmatis）からなる群から選択される少なくとも一つである請求項６記載の微生物または細胞の収集方法。
- 前記液状試料が、痰、髄液、糞、唾液、血液、組織、スワブ、胃洗浄液、尿、これらの生体試料を前処理した試料、浴槽の水、プールの水、養魚場の水、河川の水、湖水および海水からなる群から選択される少なくとも一つである請求項１から７のいずれか一項に記載の微生物または細胞の収集方法。
- 前記液状試料の量が、５０μＬ〜５００μＬの範囲である請求項１から８のいずれか一項に記載の微生物または細胞の収集方法。
- 前記液状試料の量が、５０ｍＬ〜２００ｍＬの範囲である請求項１から８のいずれか一項に記載の微生物または細胞の収集方法。
- 液状試料から微生物または細胞を収集する方法に使用する微生物または細胞の収集用具であって、フィルターで内部が上下に分けられ、かつ、前記フィルター上に吸水性樹脂粒子が配置されている遠心チューブを含む収集用具。
- 微生物または細胞の遺伝子を特異的に増幅若しくは検出する方法であって、
フィルターで内部が上下に分けられ、かつ、前記フィルター上に吸水性樹脂粒子が配置されている遠心チューブを準備する工程、
前記遠心チューブに前記液状試料を入れて前記吸水性樹脂粒子に接触させることにより、前記吸水性樹脂粒子に前記液状試料の液相部を吸収させ、かつ、前記吸水性樹脂粒子表面に前記微生物または細胞を捕獲する工程、
前記回収液を前記遠心チューブに入れて前記吸水性樹脂粒子に接触させることにより、前記吸水性樹脂粒子表面に捕獲された微生物または細胞を前記回収液中に回収する工程、
前記回収液を遠心分離により前記フィルターを通過させて前記遠心チューブの底部に移動させる工程、及び
微生物または細胞を含む回収液に非イオン性界面活性剤を含む抽出試薬液を添加し、加熱することにより微生物または細胞から遺伝子を抽出し、この遺伝子を特異的に増幅または検出する工程を含む増幅または検出方法。 - 前記抽出試薬液が、前記回収液を兼ねる請求項１２記載の遺伝子の増幅または検出方法。
- 前記加熱温度が、７０℃以上１００℃未満である請求項１２または１３に記載の遺伝子の増幅または検出方法。
- 前記加熱時間が、１〜３０分間である請求項１２から１４のいずれか一項に記載の遺伝子の増幅または検出方法。
- 前記加熱条件が、９６℃で１０分間の条件である請求項１２または１３に記載の遺伝子の増幅または検出方法。
- 前記抽出試薬液のｐＨが、ｐＨ７．０〜１２．０の範囲である請求項１２から１６のいずれか一項に記載の遺伝子の増幅または検出方法。
- 前記抽出試薬液中の前記非イオン界面活性剤の濃度が、０．０１〜１０重量％の範囲である請求項１２から１７のいずれか一項に記載の遺伝子の増幅または検出方法。
- 非イオン界面活性剤が、ｄ−ソルビトール脂肪酸エステル、ポリオキシエチレングリコールソルビタンアルキルエステルおよびポリオキシエチレングリコールｐ−ｔ−オクチルフェニルエーテルからなる群から選択される少なくとも一つである請求項１２から１８のいずれか一項に記載の遺伝子の増幅または検出方法。
- さらに、前記抽出試薬液が、金属キレート剤を含む請求項１２から１９のいずれか一項に記載の遺伝子の増幅または検出方法。
- 前記抽出試薬液中の前記金属キレート剤の濃度が、０．１〜１００ｍＭである請求項２０に記載の遺伝子の増幅または検出方法。
- 前記金属キレート剤が、エチレンジアミン四酢酸（EDTA）、エチレングリコール−ビス（β−アミノエチルエーテル）−Ｎ，Ｎ，Ｎ’，Ｎ’−四酢酸（EGTA）、ジアミノシクロヘキサン四酢酸、ｏ−フェナンスロリンおよびサリチル酸からなる群から選択された少なくとも一つである請求項２０または２１に記載の遺伝子の増幅または検出方法。
- 遺伝子の特異的な増幅または検出工程が、ポリメラーゼ チェーン リアクション（ＰＣＲ）法である請求項１２から２２のいずれか一項に記載の遺伝子の増幅または検出方法。
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