JP4257969B2

JP4257969B2 - Polypeptide having growth inhibitory or insecticidal activity of Scarabaeidae insects and polynucleotide encoding the same

Info

Publication number: JP4257969B2
Application number: JP2002195583A
Authority: JP
Inventors: 正男田中; とも子横山; 森一青柳; 誠長谷川; 岳江原; 雅敏木村; 秀治西橋
Original assignee: Chiba Prefectural Government; DIC Corp
Current assignee: Chiba Prefectural Government; DIC Corp
Priority date: 2001-07-04
Filing date: 2002-07-04
Publication date: 2009-04-30
Anticipated expiration: 2022-07-04
Also published as: JP2003125765A

Description

【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、コガネムシ科昆虫に対し生育抑制あるいは殺虫活性を有するポリペプチド、それをコードするポリヌクレオチド、該ポリペプチドを有効成分とするコガネムシ科昆虫の防除剤、及び該ポリペプチドを用いるコガネムシ科昆虫の防除方法に関する。
【０００２】
【従来の技術】
コガネムシ科昆虫の幼虫は、芝や農作物や園芸作物及び樹木等の広範な植物の根を食餌し、これらに深刻な被害をもたらす。中でもドウガネブイブイ、セマダラコガネ、マメコガネによる被害はゴルフ場の芝やサツマイモ畑及び落花生畑において数多く報告されており、とりわけ大型なドウガネブイブイはその旺盛な食欲ゆえ甚大な被害を及ぼしている。
【０００３】
しかし、従来の化学農薬による地上散布では、これらの幼虫が地中に棲息していることから存在位置が特定しにくいため防除効果を得にくく、地表に広範囲に多量の化学農薬を散布し、地中に農薬を浸透させる必要があった。そのため、自然環境や人体に対し悪影響を及ぼす懸念があり、化学農薬を代替しうる生物的防除方法が切望されていた。
【０００４】
生物的防除方法の一つとして、コガネムシ科昆虫の駆除にバチルス・ポピリエ（Bacillus popilliae）に属する菌を利用しようとする試みが古くから行われてきた。該菌はコガネムシ科昆虫の幼虫を寄生宿主とし、通常胞子嚢の形態で経口的に感染し、血リンパ中で大量に増殖、乳化病を引き起こして最終的に幼虫を死に至らしめる。
【０００５】
最近、バチルス・ポピリエに属する菌株、バチルス・ポピリエ・メロロンサＨ１(Bacillus popilliae subsp. melolonthae H1)のパラスポラルボディを構成するポリペプチドのアミノ酸配列及びそれをコードするポリヌクレオチド塩基配列が一部明らかにされ（J. Bacteriol. vol.179 p.4336-4341(1997)）、バチルス・ポピリエ・メロロンサＨ１のパラスポラルボディを構成するポリペプチドは、コフキコガネ(Melolontha melolontha)に対して防除効果を示すことが報告されている（WO97／14798号公報）。しかし、該菌株及びそのポリペプチドが、種の異なるドウガネブイブイ（Anomala cuprea）、セマダラコガネ（Blitopertha orientalis）及びマメコガネ（Popillia japonica）に対して防除効果を呈するか明らかにされていない。
【０００６】
【発明が解決しようとする課題】
本発明が解決しようとする課題は、コガネムシ科昆虫、特にドウガネブイブイ、セマダラコガネ及びマメコガネの生育抑制又は殺虫活性を有するポリペプチド、該ポリペプチドをコードするポリヌクレオチド、該ポリヌクレオチドを導入した形質転換体、該ポリペプチドを有効成分とするコガネムシ科昆虫の防除剤、該ポリペプチドとバチルス・ポピリエの胞子嚢とを用いるコガネムシ科昆虫の防除剤、及び該防除剤を用いるコガネムシ科昆虫の防除方法を提供することにある。
【０００７】
【課題を解決するための手段】
本発明者らは、バチルス・ポピリエに属する特定の菌株の胞子嚢がコガネムシ科昆虫の生育抑制又は殺虫活性を有することを見出し、次いで、胞子とパラスポラルボディとを含むバチルス・ポピリエの胞子嚢（図１）からパラスポラルボディを取り出し、さらにパラスポラルボディを構成するポリペプチドに対する抗体を用いたスクリーニングにより該ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを単離し、その塩基配列とアミノ酸配列を決定するに至った。ベクターを利用して該ポリヌクレオチドを導入した形質転換体により前記ポリペプチドの大量生産を可能にした。更に、形質転換体で生産した該ポリペプチドに、ドウガネブイブイの防除効果があることを明らかにし、更に胞子嚢と併用することにより防除効果が増強されることを見出し本発明を完成するに至った。
【０００８】
即ち本発明は、配列番号２又は４で示されるアミノ酸配列を有することを特徴とするポリペプチドを提供するものである。
また本発明は、配列番号２又は４で示されるアミノ酸配列において１又は数個のアミノ酸残基の置換、欠失、もしくは挿入を含むアミノ酸配列を有し、かつ、コガネムシ科昆虫の生育抑制又は殺虫活性を有することを特徴とするポリペプチドを提供するものである。
【０００９】
また本発明は、前記ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを提供するものである。
また本発明は、前記ポリヌクレオチド、又は該ポリヌクレオチドを含むベクターが導入された形質転換体を提供するものである。
【００１０】
また本発明は、前記ポリペプチドを有効成分として含むコガネムシ科昆虫防除剤を提供するものである。
また本発明は、前記ポリペプチドとバチルス・ポピリエに属する菌の胞子嚢とを有効成分とするコガネムシ科昆虫防除剤を提供するものである。
また本発明は、前記コガネムシ科昆虫防除剤をコガネムシ科昆虫に作用させるコガネムシ科昆虫の防除方法を提供するものである。
【００１１】
本発明において「ポリペプチド」とは、複数のアミノ酸がペプチド結合により連結したペプチド、並びに糖タンパク質等、他の分子が結合したポリペプチド、及び多量体構造をとるタンパク質等を含む。
【００１２】
【発明の実施の形態】
バチルス・ポピリエに属する菌の胞子嚢に含まれるパラスポラルボディ（図１）はタンパク質性の凝集体であり（福原俊彦著、昆虫病理学、５７頁、１９７９年）、該凝集体は１種類あるいは複数種のポリペプチドによって構成されている。本発明のポリペプチドは後述するバチルス・ポピリエ・セマダラ等の胞子嚢中のパラスポラルボディを構成するポリペプチドの１つ又はそれ以上であるが、ＷＯ９７／１４７９８号公報に記載されたパラスポラルボディを構成するポリペプチドとはアミノ酸配列が異なっており、本発明のポリペプチド及びポリヌクレオチドは新規であると判断される。
【００１３】
本発明のポリペプチドは、配列番号２又は４で示されるアミノ酸配列を有し、かつ、コガネムシ科昆虫に対し生育抑制又は殺虫活性を有するポリペプチドである。
【００１４】
上記の本発明のポリペプチドは、コガネムシ科昆虫に対し生育抑制又は殺虫活性を有する限り、１又は数個のアミノ酸残基の置換、欠失、もしくは挿入を含むポリペプチドであってもよい。ここで、「数個」とは、アミノ酸残基のポリペプチドの立体構造における位置や種類によっても異なるが、具体的には２から１００個、好ましくは２から５０個、より好ましくは２から９個である。これらの１又は数個のアミノ酸残基の置換、欠失、もしくは挿入を含むポリペプチドは、例えば該ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドに部位特異的変異によって変異を導入し、転写、翻訳することによって得ることができる。また、これらの本発明のポリペプチドは、他のポリペプチドとの融合ポリペプチドであってもよい。また、本発明のポリペプチドは、コガネムシ科昆虫に対し生育抑制又は殺虫活性を有する限り、上記アミノ酸配列と５０％以上、好ましくは７０％以上、より好ましくは９０％以上の相同性を示すアミノ酸配列を有するポリペプチドであってもよい。更に、本発明のポリペプチドは、コガネムシ科昆虫に対し生育抑制又は殺虫活性を有する限り、配列番号２又は４で示されるアミノ酸配列の一部を有するポリペプチドであってもよい。
【００１５】
本発明のポリヌクレオチドは、上記本発明のポリペプチドをコードするポリヌクレオチドである。コードされるアミノ酸配列が同一であれば、それぞれのアミン酸残基のコドンは特に制限されない。本発明のポリヌクレオチドとして具体的には、配列番号１又は３で示される塩基配列のうちそれぞれのコード領域の塩基配列を含むポリヌクレオチドが挙げられる。配列番号１で示される塩基配列におけるコード領域は、塩基番号２５０〜４２４５であり、配列番号３で示される塩基配列におけるコード領域は、塩基番号２２４〜４２５５である（但し、終止コドンを除く）。
【００１６】
本発明のポリヌクレオチドは、コガネムシ科昆虫に対し生育抑制又は殺虫活性を有するポリペプチドをコードする限り、前記の各ポリヌクレオチドとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドであってもよい。
【００１７】
本発明のポリヌクレオチドは、例えばバチルス・ポピリエに属する菌、更に具体的にはバチルス・ポピリエ・セマダラ(Bacillus popilliae semadara, FERM BP-8068)、バチルス・ポピリエ・マメ(Bacillus popilliae var. popilliae Mame, FERM BP-8069)、バチルス・ポピリエ・ヒメ(Bacillus popilliae var. popilliae Hime, FERM P-17660)、バチルス・ポピリエ・サクラ(Bacillus popilliae var. popilliae Sakura, FERM P-17662)、バチルス・ポピリエ・デュトキ(Bacillus popilliae Dutky, American Type Culture Collection No.14706)から以下の方法により取得できる。
前記バチルス・ポピリエ・セマダラ（FERM BP-8068）は、平成１０年５月２１日に、工業技術院生命工学工業技術研究所（現独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センター）に受託番号FERM P-16818で寄託され、平成１４年５月２１日にブダペスト条約に基づく国際寄託に移管され、受託番号FERM BP-8068が付与されている。また、バチルス・ポピリエ・マメ（FERM BP-8069）は、平成１１年１１月２５日に、工業技術院生命工学工業技術研究所（現独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センター）に受託番号FERM P-17661で寄託され、平成１４年６月１０日にブダペスト条約に基づく国際寄託に移管され、受託番号FERM BP-8069が付与されている。
【００１８】
取得方法の一つとして、抗体を利用したスクリーニング法が挙げられる。予め精製したパラスポラルボディに対する抗体を作製しておく。一方で前記菌株の染色体DNAを採取し、適当な制限酵素で切断した後、発現ベクターに挿入して染色体DNAライブラリーを作製する。次に大腸菌等で該ライブラリーを展開し、これと上記抗体とを利用したウェスタンブロッティングによりスクリーニングを行う。
【００１９】
別の取得方法として、PCR法が挙げられる。配列番号７、８の塩基配列もしくはそれらに修飾を加えた塩基配列、又は配列番号１、３の一部の塩基配列、の中から適当なものを選択し、互いに逆方向のポリヌクレオチドを２種類用意する。該ポリヌクレオチドをプライマーとし、染色体DNAを鋳型としたPCRを行う。増幅したDNA断片をクローニングすることで本発明のポリヌクレオチドを取得することができる。
【００２０】
尚、上記配列番号７、８のそれぞれの塩基配列を有するオリゴヌクレオチドをプライマーとし、バチルス・ポピリエ・セマダラ（Bacillus popilliae semadara）の染色体ＤＮＡを鋳型とするPCRによって、配列番号１に示す塩基配列を有する約4.2kbのポリヌクレオチド増幅断片が得られる。これらポリヌクレオチドの塩基配列はバチルス・ポピリエ・セマダラの染色体ＤＮＡ上に隣接して存在していること、及び、該ポリヌクレオチドによってコードされるポリペプチドのアミノ酸配列（配列番号２及び４）は互いに約７３％の相同性を有していることから、両者は類似の機能を有していることが強く示唆される。
【００２１】
更に別の取得方法として、ハイブリダイゼーション法が挙げられる。染色体DNAを適当な制限酵素などで切断後、プラスミドベクターやファージベクターなどを利用してゲノムライブラリーを作製する。一方では配列番号７、８の塩基配列もしくはそれらに修飾を加えた塩基配列、又は配列番号１、３の一部の塩基配列を有する適当なポリヌクレオチドプローブを用意する。ベクターを用いて大腸菌等で作製したライブラリーから、標識したプローブでスクリーニングするコロニーハイブリダイゼーションあるいはプラークハイブリダイゼーションにより本発明のポリヌクレオチドを取得することができる。
【００２２】
本発明で使用されるベクターとしては、プラスミドベクター、Tiプラスミドベクター、ファージベクター、ファージミドベクター、YACベクター、ウイルスベクター等が挙げられる。これらベクターには本発明のポリヌクレオチドの他に、ポリペプチドの発現を調節・補助する配列（例えば、プロモーター、オペレーター、ターミネーター、エンハンサー、SD配列）や形質転換宿主を選抜するための遺伝子マーカー（例えば、アンピシリン耐性遺伝子、テトラサイクリン耐性遺伝子、カナマイシン耐性遺伝子、ネオマイシン耐性遺伝子）などを含んでいても良い。また、このベクターは本発明のポリヌクレオチドを複数種類、あるいは同一種を複数個含んでいても良い。
【００２３】
本発明で使用される宿主としては、微生物（例えば、大腸菌やシュードモナスやバチルスのような細菌類、ストレプトマイセスのような放線菌類、カビや酵母のような真菌類）、植物（例えば、シバ、サツマイモ、タバコ、イネ、トウモロコシ）、培養細胞（例えば、タバコ培養細胞のような植物培養細胞、カイコガ培養細胞のような昆虫培養細胞、マウス培養細胞のような動物培養細胞）などが挙げられる。
【００２４】
本発明におけるベクターの構築手順、及び該ベクターによる宿主の形質転換操作は、遺伝子工学の分野で慣用されている方法が使用できる。例えば形質転換の方法としては、微生物宿主に対しては塩化カルシウム法、エレクトロポレーション法、ＰＥＧ法などが挙げられ、培養細胞及び植物宿主に対してはエレクトロポレーション法、パーティクルガン法、アグロバクテリウム法などが挙げられる。
【００２５】
本発明のポリペプチドの製造方法として、例えば宿主が微生物や培養細胞などの場合、これを適当な培地で培養し、その培養物から回収することが可能である。形質転換された宿主の培養方法は、使用される宿主の培養方法と本質的に同様であってよい。培養物からポリペプチドを抽出、精製する必要がある場合は通常用いられる方法によって行うことができる。一方、宿主が植物の場合、形質転換植物を通常と同様の方法にて栽培し、植物体からポリペプチドを抽出することができる。また、別の視点から捉えれば形質転換植物及びその種子はそのまま耐虫性の栽培種として提供することが可能である。その他、形質転換体を使わない製造方法もある。例えば、小麦胚芽抽出物や大腸菌抽出物などを利用したin vitro無細胞転写・翻訳系である。本発明のポリヌクレオチドを含むDNA断片あるいはRNA断片あるいはベクターを転写・翻訳系に添加し、常法に従ってポリペプチドを生産することができる。
【００２６】
本発明のポリペプチドはコガネムシ科昆虫、特に幼虫に対する生育抑制あるいは殺虫活性を有し防除効果を示す。このため該ポリペプチドはコガネムシ科昆虫を防除する目的で防除剤あるいはその有効成分として、芝、農園芸用作物又は樹木等に施用することができる。また、本発明のポリペプチドをバチルス・ポピリエに属する菌の胞子または胞子とパラスポラルボディとを含む胞子嚢と併用することで、さらにコガネムシ科昆虫に対する生育抑制または殺虫活性を増大させることができる。
【００２７】
本発明のポリペプチドの防除対象コガネムシ科昆虫としては、ドウガネブイブイ（Anomala cuprea）、セマダラコガネ（Blitopertha orientalis）、マメコガネ（Popillia japonica）、ウスチャコガネ（Phyllopertha diversa）、チャイロコガネ（Adoretus tenuimaculatus）、ヒメコガネ（Anomala rufocuprea）等が挙げられ、これらのうち本発明のポリペプチドは特にドウガネブイブイ（Anomala cuprea）、セマダラコガネ（Blitopertha orientalis）の防除に有効である。
【００２８】
本発明の防除剤は、上記製造方法にて生産したポリペプチドを形質転換体のまま、あるいは単離して精製物として使用してもよいし、これらと培養・反応系の物質との混合物として用いてもよい。また、農薬に用いられる公知慣用の賦形剤、担体、栄養剤、安定化剤などを添加し、粉剤、水和剤、フロアブル剤など任意の剤型にして使用してもよい。
【００２９】
上記任意成分としては、固体担体として、カオリンクレー、ベントナイト、モンモリロナイト、珪藻土、酸性白土、タルク類、パーライト、バーミキュライト等の鉱物質微粉末、硫酸アンモニウム、尿素、塩化アンモニウム、硝酸アンモニウム等の無機塩、フスマ、キチン、多糖類、米糠、小麦粉等の有機物微粉末等を、また、補助剤として、カゼイン、ゼラチン、アラビアガム、アルギン酸、糖類、合成高分子（ポリビニルアルコール、ポリアクリル酸類等）、ベントナイト等の固着剤や分散剤、その他の成分としてプロピレングリコール、エチレングリコール等の凍結防止剤、キサンタンガム等の天然多糖類、ポリアクリル酸類等の増粘剤を挙げることができる。
【００３０】
防除剤に含まれる本発明のポリペプチドの含有割合は、コガネムシ科昆虫に対して防除効果を呈する範囲であれば特に限定されないが、０．０００１〜１００質量％が好ましい。
【００３１】
施用の方法としては、剤型等の使用形態、作物等によって適宜選択され、例えば、地上液剤散布、地上固形散布、空中液剤散布、空中固形散布、施設内施用、土壌混和施用、土壌潅注施用等の方法を挙げることができる。
【００３２】
また、他の薬剤、すなわち殺虫剤、殺線虫剤、殺ダニ剤、除草剤、殺菌剤、植物生長調節剤、肥料、又は土壌改良資材（泥炭、腐植酸資材、ポリビニルアルコール系資材等）等と混合して施用、あるいは混合せずに交互施用、または同時施用することも可能である。
【００３３】
本発明の防除剤の施用量は、コガネムシ科昆虫の種類、適用植物の種類、剤型等によって異なるため一概には規定できないが、例えば、地上散布する場合、ポリペプチドペプチドの施用量が、０．０１〜１００ｇ／ｍ²、好ましくは０．１〜５０ｇ／ｍ²程度となるようにすればよい。
【００３４】
更に、本発明の防除剤と他の生物農薬や微生物由来ポリペプチド（例えばバチルス・ポピリエの別菌株のパラスポラルボディやバチルス・チューリンゲンシスのパラスポラルボディ）や微生物胞子（例えばバチルス・ポピリエやバチルス・チューリンゲンシスやバチルス・ズブチリスの胞子）を混合して用いることも可能である。
【００３５】
【実施例】
以下、実施例により本発明を更に具体的に説明するが、本発明の範囲はこれらに限定されるものではない。
【００３６】
（実施例１）
ドウガネブイブイの乳化病感染幼虫より調製したバチルス・ポピリエの胞子嚢懸濁液をフレンチプレス処理し、胞子嚢から胞子とパラスポラルボディとを取り出した。デキストラン硫酸ナトリウム（Sodium Dextran Sulfate、SIGMA社製）、ポリエチレングリコール6000（Polyethylene Glycol 6000、和光純薬社製）及びNaClを用いた二層分配法によりパラスポラルボディのみを回収し、これを0.1M NaOHで可溶化した後、SDS-PAGEに供した。約135kDのバンドを切り出し、細かく砕いた後、アジュバントと混合して皮内注射することによりウサギを免疫した。
【００３７】
抗体を用いてパラスポラルボディを構成するポリペプチド遺伝子クローンをスクリーニングする際のバックグラウンドを低減するため、得られた抗血清に対して、大腸菌破砕物を用いた吸収操作を３回繰り返し行い、大腸菌自体に吸着する抗体を除去して、目的とするパラスポラルボディを構成するポリペプチドに吸着する抗体のみを採取した。
【００３８】
（実施例２）
バチルス・ポピリエ・セマダラ（Bacillus popilliae semadara）の菌体から常法により染色体DNAを採取し、制限酵素EcoRIで切断した。これをフォスファターゼ処理したpBluescript SK(+)とライゲーションし、大腸菌DH5αを形質転換した。LB寒天培地上にコロニーが2000〜3000個出るように塗布した。
【００３９】
ニトロセルロースメンブレンを寒天培地に密着させ、コロニーを写し取り、メンブレンのコロニー面を上にして新たな寒天培地に乗せて37℃で2時間インキュベートした。メンブレン上の菌体を溶菌させる目的で以下の操作を行った。10% SDSを染み込ませた濾紙上にメンブレンを移し5分間放置、次に0.2M NaOH, 0.15M NaCl, 1% β-メルカプトエタノールを染み込ませた濾紙上に5分間放置、最後に0.15M NaCl, 0.5M Tris-HCl pH7.5を染み込ませた濾紙上に10分間放置した。メンブレンを除菌緩衝液（0.1M Tris-HCl pH7.8, 0.15M NaCl, 5mM MgCl₂, 40μg/ml リゾチーム, 5% スキムミルク）に移し、2時間振盪して菌体を除去した。
【００４０】
メンブレンをTBST（0.02M Tris-HCl pH7.2, 0.5M NaCl, 0.05% Tween20）で5分間洗浄した後、抗体希釈液（5% スキムミルクを含むTBST）で8000倍に希釈した抗パラスポラルボディ抗血清液中で1.5時間振盪した。TBSTで10分間、3回洗浄後、2000倍に希釈したAnti-Rabbit IgG（H&L）、HRP-Linked（New England Biolabs, Inc.製）液中に移した後、HRP用発色基質（4CN, NEN Life Science Products社製）中で発色が見られるまでインキュベートした。
【００４１】
強い発色、即ち抗パラスポラルボディ抗血清が吸着した箇所付近のコロニーを一つ一つマスタープレートから採取し、これらについて前述と同様操作の二次スクリーニングを行い陽性クローンを取得した。
【００４２】
得られた陽性クローンからプラスミドを採取し、常法に従いインサート部分の塩基配列を決定したところ、バチルス・ポピリエのパラスポラルボディを構成するポリペプチド遺伝子２つ（配列番号１及び３、各々翻訳したものが配列番号２及び４）を単一のクローン化断片中に含んでいることが判明した。配列番号２に示すアミノ酸配列及び配列番号４に示すアミノ酸配列は、互いに約７３％の相同性を有していた。但し、相同性検索には、遺伝情報処理ソフトウェアGENETYX-WIN(Software Development Co.,Ltd.)を使用した。
【００４３】
（実施例３）
前記陽性クローンのプラスミドをテンプレートとし、配列番号３及びその相補鎖の一部に相当する塩基配列を含むポリヌクレオチド（配列番号５及び６）をプライマーとしたPCRを行った。反応液を電気泳動後、増幅した約4kbの断片を回収・精製し、制限酵素EcoRI及びPstIで切断した。これを、予めEcoRI及びPstIで切断しておいたベクターpTrc99A（Amersham Pharmacia Biotech社製）とライゲーションし、その反応液で大腸菌BL21(DE3)を形質転換した。得られた形質転換体を50mg/L アンピシリンを含む２×YT液体培地で一晩振盪培養した後、最終濃度1mMとなるようにIPTG（イソプロピルβ−Ｄ−チオガラクトピラノシド）を添加して更に2時間培養したところ、顕微鏡観察で菌体内にインクルージョンボディ（封入体）の形成が認められた。よって、該クローンを発現クローンとした。
【００４４】
（実施例４）
２Ｌのバッフル付き三角フラスコに50mg/Lのアンピシリンを含む７５０ｍｌの２×YT液体培地を入れ、実施例３で得られた発現クローンを植菌して３７℃で振盪培養した。１６時間後、最終濃度1mMとなるようにIPTGを添加し、更に２時間培養した。遠心分離により培養液から菌体を回収し、10mMリン酸カリウム緩衝液pH7.0でこれを洗浄した。再び遠心分離で集菌し、最終的に１２０ｍｌとなるように前記緩衝液に懸濁した。
【００４５】
直径６ｃｍのプラスチック製フードカップ４０個に腐葉土１０ｇを量り取り、その内の２０個には発現クローンの懸濁液を、残りの２０個にはブランクとして水をそれぞれ１ｍｌ散布し、よく混和した。各フードカップにドウガネブイブイ１令幼虫を１頭ずつ放虫し、２５℃の条件下で飼育した。経時的に幼虫の死亡率及び生存幼虫の平均体重を測定し、発現クローンの殺虫活性及び生育抑制活性を検証した。
【００４６】
結果を表１と図２に示す。ブランクテストに対し、発現クローンを散布した区においては死亡率の上昇が見られ、５週目では実に９５％の死亡率が得られた。また、発現クローン散布区の生存幼虫の平均体重はほとんど増加しておらず、ブランクに比べ低い水準を維持していた。以上の結果から、発現クローン、即ち本発明のポリペプチドは生育抑制又は殺虫活性を有していることが確認された。
【００４７】
【表１】

【００４８】
（実施例５）
２Lのバッフル付き三角フラスコに50mg/Lのアンピシリンを含む７５０ｍｌの２×YT液体培地を入れ、実施例３で得られた発現クローンを植菌して３７℃で振盪培養した。１６時間後、最終濃度1mMとなるようにIPTGを添加し、更に２時間培養した。遠心分離により培養液から菌体を回収し、10mMリン酸カリウム緩衝液pH7.0でこれを洗浄した。再び遠心分離で集菌し、最終的に７５ｍｌとなるように前記緩衝液に懸濁してこれを発現クローン懸濁液とした。
【００４９】
一方、ドウガネブイブイの乳化病感染幼虫からバチルス・ポピリエ・セマダラの胞子嚢を採取し、水で洗浄した。再び水に１ｍｌ当たり８×１０⁷個となるよう懸濁して、これを胞子嚢懸濁液とした。
【００５０】
腐葉土２５ｇを量り入れた直径６ｃｍのプラスチック製フードカップ８０個を用意した。その内の２０個には発現クローン懸濁液１ｍｌを、別の２０個には胞子嚢懸濁液を０．５ｍｌ、更に別の２０個には発現クローン懸濁液１ｍｌと共に胞子嚢懸濁液を０．５ｍｌを、残りの２０個には水１ｍｌをそれぞれ散布し、よく混和した。各フードカップにドウガネブイブイ２令幼虫を１頭ずつ放虫し、２５℃の条件下で２１日間飼育した。経時的に幼虫の死亡率及び生存幼虫の平均体重を測定し、発現クローンと胞子嚢を併用した際の殺虫活性及び生育抑制活性相乗効果を検証した。なお、胞子嚢との併用の有無よる殺虫活性及び生育抑制活性の差を明確にするため、本実施例では、フードカップに腐葉土を実施例４で用いた量の２．５倍量の２５ｇを入れ、さらに、１令幼虫が成長して一度脱皮したドウガネブイブイ２令幼虫を用い、より効果が効きにくい条件で実験を行った。
【００５１】
結果を図３と図４に示す。発現クローンあるいは胞子嚢のみの懸濁液散布では生育抑制効果は発揮するものの、十分な殺虫活性が得られなかった。これに対し、発現クローンと胞子嚢を併用散布した場合には殺虫活性及び生育抑制効果に顕著な死亡率の増加が見られ、発現クローンと胞子嚢とを併用する相乗効果が認められた。
【００５２】
（実施例６）
配列番号１及び３の相補鎖の一部に相当する配列番号８記載の塩基配列及び配列番号７記載の塩基配列を有するポリヌクレオチドを化学合成により用意した。該ポリヌクレオチドをプライマーとし、Bacillus popilliae semadaraの染色体DNAをテンプレートとしたPCRを試みたところ、約4.2kbの断片の増幅が認められた。この断片をTAクローニングし、多数のクローンを得、その内のいくつかについてシークエンシングによるインサート部分の塩基配列の決定を行った結果、配列番号１及び３に記載の塩基配列を有するポリヌクレオチドを得た。よって、配列番号７及び８の塩基配列を有するポリヌクレオチドを用いたPCRによっても、本発明のポリヌクレオチドが取得可能であることがわかった。
【００５３】
【発明の効果】
本発明により、コガネムシ科昆虫、特にドウガネブイブイ、セマダラコガネ及びマメコガネの生育抑制又は殺虫活性を有するポリペプチド、該ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを導入した形質転換体、該ポリペプチドを有効成分とするコガネムシ科昆虫の防除剤及び該ポリペプチドとバチルス・ポピリエの胞子嚢とを用いるコガネムシ科昆虫の防除方法を提供することができる。
【００５４】
【配列表】

【００５５】

【００５６】

【００５７】

【００５８】

【００５９】

【００６０】

【００６１】

【００６２】

【図面の簡単な説明】
【図１】胞子とパラスポラルボディとを含む胞子嚢の模式図である。
【図２】実施例４の本発明のポリヌクレオチドから生産されたポリペプチドによるコガネムシ科昆虫（ドウガネブイブイ幼虫）の生育抑制効果を示す図である。
【図３】実施例５で行った生物試験の殺虫活性を示す図である。
【図４】実施例５で行った生物試験の生育抑制効果を示す図である。[0001]
BACKGROUND OF THE INVENTION
The present invention relates to a polypeptide having growth-inhibiting or insecticidal activity against Scarabaeidae insects, a polynucleotide encoding the same, a control agent for Scarabaeidae insects containing the polypeptide as an active ingredient, and a Scarabaeidae insect using the polypeptide It relates to the control method.
[0002]
[Prior art]
Scarabaeidae larvae feed on and cause serious damage to the roots of a wide range of plants such as turf, crops, horticultural crops and trees. Among them, many damages caused by Douganebububu, Sedara-kobane, and Japanese beetle have been reported in the turf, sweet potato field, and peanut field of golf courses, and especially large-sized Doeganbubui are devastating due to their strong appetite.
[0003]
However, with conventional spraying with chemical pesticides, these larvae inhabit the ground, making it difficult to determine their location, so it is difficult to obtain a control effect. It was necessary to infiltrate the pesticide. For this reason, there are concerns about adverse effects on the natural environment and the human body, and biological control methods that can substitute for chemical pesticides have been desired.
[0004]
As one of the biological control methods, attempts have been made for a long time to use bacteria belonging to Bacillus popilliae for the control of Scarabaeidae insects. The bacterium is a parasitic host of the larvae of Scarabaeidae, usually orally in the form of sporangia, and proliferates in large quantities in the hemolymph, causing emulsification disease and finally causing the larvae to die.
[0005]
Recently, a part of the amino acid sequence of the polypeptide constituting the parasporal body of the strain belonging to Bacillus popilie, Bacillus popilliae subsp. Melolonthae H1, and the polynucleotide base sequence encoding the same have been revealed. (J. Bacteriol. Vol.179 p.4336-4341 (1997)), the polypeptide that constitutes the parasporal body of Bacillus popilie merolonsa H1 has a controlling effect against Melonthatha melolontha. Has been reported (WO97 / 14798). However, it has not been clarified whether the strain and its polypeptide exhibit a controlling effect on different species of Anomala cuprea, Blitopertha orientalis, and Populus japonica.
[0006]
[Problems to be solved by the invention]
The problem to be solved by the present invention is a polypeptide having growth-inhibiting or insecticidal activity of Scarabaeidae insects, in particular, Douganebububu, Sedarae, and Japanese beetle, a polynucleotide encoding the polypeptide, a transformant introduced with the polynucleotide, Provided are control agents for Scarabaeidae insects comprising the polypeptide as an active ingredient, control agents for Scarabaeidae insects using the polypeptide and Bacillus popilie spores, and a method for controlling Scarabaeidae insects using the control agent There is.
[0007]
[Means for Solving the Problems]
The present inventors have found that a spore sac of a specific strain belonging to Bacillus popilie has growth-inhibiting or insecticidal activity of Scarabaeidae insects, and then a spore sac of Bacillus popilie comprising a spore and a parasporal body A parasporal body is taken out from FIG. 1, and a polynucleotide encoding the polypeptide is isolated by screening using an antibody against the polypeptide constituting the parasporal body, and its base sequence and amino acid sequence are determined. It came to. The transformant into which the polynucleotide was introduced using a vector enabled mass production of the polypeptide. Furthermore, it has been clarified that the polypeptide produced by the transformant has a control effect on the scab, and it has been found that the control effect can be enhanced by using it together with a spore sac, thus completing the present invention.
[0008]
That is, the present invention provides a polypeptide having the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2 or 4.
In addition, the present invention has an amino acid sequence containing substitution, deletion, or insertion of one or several amino acid residues in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2 or 4, and suppresses the growth or insecticidal action of Scarabaeidae insects A polypeptide characterized by having activity is provided.
[0009]
The present invention also provides a polynucleotide encoding the polypeptide.
The present invention also provides a transformant into which the polynucleotide or a vector containing the polynucleotide is introduced.
[0010]
The present invention also provides a scarab beetle insect control agent comprising the polypeptide as an active ingredient.
The present invention also provides a scarab beetle insect control agent comprising the polypeptide and a spore sac of a bacterium belonging to Bacillus popilie as active ingredients.
The present invention also provides a method for controlling Scarabaeidae insects, which causes the Scarabaeidae insect control agent to act on Scarabaeidae insects.
[0011]
In the present invention, the “polypeptide” includes a peptide in which a plurality of amino acids are linked by peptide bonds, a polypeptide in which other molecules such as a glycoprotein are bound, a protein having a multimeric structure, and the like.
[0012]
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION
The parasporal body (Fig. 1) contained in the spore sac of a bacterium belonging to Bacillus popilie is a proteinaceous aggregate (written by Toshihiko Fukuhara, Insect Pathology, page 57, 1979). Or it is comprised by multiple types of polypeptide. The polypeptide of the present invention is one or more of the polypeptides constituting the parasporal body in sporangia such as Bacillus popilie sedara, which will be described later. Parasporal described in WO97 / 14798 Since the amino acid sequence is different from the polypeptide constituting the body, it is judged that the polypeptide and polynucleotide of the present invention are novel.
[0013]
The polypeptide of the present invention is a polypeptide having the amino acid sequence shown by SEQ ID NO: 2 or 4 and having growth inhibitory or insecticidal activity against Scarabaeidae insects.
[0014]
The polypeptide of the present invention described above may be a polypeptide containing substitution, deletion, or insertion of one or several amino acid residues as long as it has growth inhibition or insecticidal activity against Scarabaeidae insects. Here, “several” differs depending on the position and type of the three-dimensional structure of the polypeptide of amino acid residues, but specifically 2 to 100, preferably 2 to 50, more preferably 2 to 9 It is a piece. A polypeptide containing substitution, deletion, or insertion of one or several amino acid residues is introduced into a polynucleotide encoding the polypeptide by site-directed mutation, and is transcribed and translated. Obtainable. Further, these polypeptides of the present invention may be fusion polypeptides with other polypeptides. In addition, the polypeptide of the present invention has 50% or more, preferably 70% or more, more preferably 90% or more homology with the above amino acid sequence as long as it has growth inhibition or insecticidal activity against Scarabaeidae insects. It may be a polypeptide having Furthermore, the polypeptide of the present invention may be a polypeptide having a part of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2 or 4 as long as it has growth inhibitory or insecticidal activity against Scarabaeidae insects.
[0015]
The polynucleotide of the present invention is a polynucleotide encoding the polypeptide of the present invention. As long as the encoded amino acid sequence is the same, the codons for each amino acid residue are not particularly limited. Specific examples of the polynucleotide of the present invention include a polynucleotide containing the base sequence of each coding region in the base sequence represented by SEQ ID NO: 1 or 3. The coding region in the base sequence shown in SEQ ID NO: 1 is base numbers 250 to 4245, and the coding region in the base sequence shown in SEQ ID NO: 3 is base numbers 224 to 4255 (except for the stop codon).
[0016]
As long as the polynucleotide of the present invention encodes a polypeptide having growth-inhibiting or insecticidal activity against Scarabaeidae insects, each of the aforementioned polynucleotidesAndIt may be a polynucleotide that hybridizes under stringent conditions.Yes.
[0017]
The polynucleotide of the present invention is, for example, a bacterium belonging to Bacillus popillie, more specifically Bacillus popilliae semadara (FERM BP-8068), Bacillus popilliae var. Popilliae Mame, FERM BP-8069), Bacillus popilliae var.popilliae Hime, FERM P-17660, Bacillus popilliae var. Popilliae Sakura, FERM P-17662) popilliae Dutky, American Type Culture Collection No. 14706).
The aforementioned Bacillus popilie sedara (FERM BP-8068) was deposited on May 21, 1998 with the Biotechnology Institute of Industrial Technology (currently the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology, Patent Biological Deposit Center). Deposited at FERM P-16818, transferred to an international deposit based on the Budapest Treaty on May 21, 2002, and assigned the deposit number FERM BP-8068. Bacillus Popilie Mame (FERM BP-8069) was commissioned on November 25, 1999 to the Institute of Biotechnology, National Institute of Advanced Industrial Science and Technology (currently the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology, Patent Biological Depositary Center). Deposited under the number FERM P-17661, transferred to an international deposit under the Budapest Treaty on June 10, 2002 and given the deposit number FERM BP-8069.
[0018]
One of the acquisition methods is a screening method using an antibody. An antibody against a previously purified parasporal body is prepared. On the other hand, chromosomal DNA of the strain is collected, cut with an appropriate restriction enzyme, and inserted into an expression vector to prepare a chromosomal DNA library. Next, the library is developed with Escherichia coli or the like, and screening is performed by Western blotting using this and the above antibody.
[0019]
Another acquisition method is the PCR method. Select an appropriate sequence from the nucleotide sequences of SEQ ID NOs: 7 and 8, or modified nucleotide sequences thereof, or partial nucleotide sequences of SEQ ID NOs: 1 and 3, and use two types of polynucleotides in opposite directions. prepare. PCR is performed using the polynucleotide as a primer and chromosomal DNA as a template. The polynucleotide of the present invention can be obtained by cloning the amplified DNA fragment.
[0020]
The nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 1 is obtained by PCR using the oligonucleotides having the respective nucleotide sequences of SEQ ID NOS: 7 and 8 as primers and the chromosomal DNA of Bacillus popilliae semadara as a template. An amplified polynucleotide fragment of about 4.2 kb is obtained. The base sequences of these polynucleotides are adjacent to each other on the chromosomal DNA of Bacillus popilie sedara, and the amino acid sequences (SEQ ID NOs: 2 and 4) of the polypeptides encoded by the polynucleotides are approximately equal to each other. The 73% homology strongly suggests that they have similar functions.
[0021]
Yet another acquisition method is a hybridization method. A chromosomal DNA is cleaved with an appropriate restriction enzyme or the like, and then a genomic library is prepared using a plasmid vector or a phage vector. On the other hand, an appropriate polynucleotide probe having the nucleotide sequences of SEQ ID NOs: 7 and 8 or a modified nucleotide sequence thereof, or a partial nucleotide sequence of SEQ ID NOs: 1 and 3 is prepared. The polynucleotide of the present invention can be obtained from a library prepared in Escherichia coli or the like using a vector by colony hybridization or plaque hybridization screening with a labeled probe.
[0022]
Examples of vectors used in the present invention include plasmid vectors, Ti plasmid vectors, phage vectors, phagemid vectors, YAC vectors, virus vectors, and the like. These vectors include, in addition to the polynucleotide of the present invention, sequences (for example, promoter, operator, terminator, enhancer, SD sequence) that regulate and assist the expression of the polypeptide, and genetic markers for selecting a transformed host (for example, , Ampicillin resistance gene, tetracycline resistance gene, kanamycin resistance gene, neomycin resistance gene) and the like. In addition, this vector may contain a plurality of the polynucleotides of the present invention or a plurality of the same species.
[0023]
Examples of the host used in the present invention include microorganisms (for example, bacteria such as Escherichia coli, Pseudomonas and Bacillus, actinomycetes such as Streptomyces, fungi such as mold and yeast), plants (for example, shiba, Sweet potato, tobacco, rice, corn), cultured cells (for example, plant cultured cells such as tobacco cultured cells, insect cultured cells such as silkworm cultured cells, animal cultured cells such as mouse cultured cells) and the like.
[0024]
A method commonly used in the field of genetic engineering can be used for the construction procedure of the vector and the host transformation operation using the vector in the present invention. For example, transformation methods include calcium chloride method, electroporation method, PEG method and the like for microbial hosts, and electroporation method, particle gun method, Agrobacterium for cultured cells and plant hosts. And the Um method.
[0025]
As a method for producing the polypeptide of the present invention, for example, when the host is a microorganism or cultured cell, it can be cultured in an appropriate medium and recovered from the culture. The culture method of the transformed host may be essentially the same as the culture method of the host used. When it is necessary to extract and purify the polypeptide from the culture, it can be carried out by a commonly used method. On the other hand, when the host is a plant, the transformed plant can be cultivated in the same manner as usual, and the polypeptide can be extracted from the plant body. Moreover, if it sees from another viewpoint, it is possible to provide a transformed plant and its seed as it is as an insect-resistant cultivar. There are other production methods that do not use transformants. For example, an in vitro cell-free transcription / translation system using wheat germ extract or E. coli extract. A polypeptide can be produced according to a conventional method by adding a DNA fragment, RNA fragment or vector containing the polynucleotide of the present invention to a transcription / translation system.
[0026]
The polypeptide of the present invention exhibits growth control or insecticidal activity against Scarabaeidae insects, particularly larvae, and exhibits a controlling effect. Therefore, the polypeptide can be applied to turf, agricultural or horticultural crops or trees as a control agent or its active ingredient for the purpose of controlling Scarabaeidae insects. Further, by using the polypeptide of the present invention in combination with a spore of a bacterium belonging to Bacillus popilli or a spore containing a spore and a parasporal body, growth inhibition or insecticidal activity against a scarab beetle can be further increased. .
[0027]
Examples of the insects of the family Scarabaeidae to be controlled by the polypeptide of the present invention include Anomala cuprea, Blitopertha orientalis, Popillia japonica, Phyllopertha diversa, Adoretus tennomala Among these, the polypeptide of the present invention is particularly effective for controlling Anomala cuprea and Blitopertha orientalis.
[0028]
The control agent of the present invention may be used as a purified product obtained by isolating the polypeptide produced by the above production method as a transformant, or as a mixture of these and substances in the culture / reaction system. May be. Moreover, you may use it for arbitrary dosage forms, such as a powder agent, a wettable powder, and a flowable agent, by adding the well-known usual excipient | filler used for agrochemicals, a support | carrier, a nutrient, a stabilizer, etc.
[0029]
As the optional component, as a solid carrier, kaolin clay, bentonite, montmorillonite, diatomaceous earth, acid clay, talc, perlite, vermiculite and other mineral fine powders, ammonium sulfate, urea, ammonium chloride, ammonium nitrate and other inorganic salts, fuma, Organic fine powders such as chitin, polysaccharides, rice bran, wheat flour, etc., and adjuncts such as casein, gelatin, gum arabic, alginic acid, saccharides, synthetic polymers (polyvinyl alcohol, polyacrylic acids, etc.), bentonite, etc. Examples of agents, dispersants, and other components include antifreezing agents such as propylene glycol and ethylene glycol, natural polysaccharides such as xanthan gum, and thickeners such as polyacrylic acids.
[0030]
Although the content rate of the polypeptide of this invention contained in a control agent will not be specifically limited if it is a range which exhibits a control effect with respect to the Scarabaeidae insect, 0.0001-100 mass% is preferable.
[0031]
The method of application is appropriately selected according to the form of use such as dosage form, crops, etc., for example, surface liquid spray, ground solid spray, air liquid spray, air solid spray, in-facility application, soil admix application, soil irrigation application, etc. Can be mentioned.
[0032]
In addition, other drugs such as insecticides, nematicides, acaricides, herbicides, fungicides, plant growth regulators, fertilizers, or soil improvement materials (peat, humic acid materials, polyvinyl alcohol materials, etc.), etc. It is also possible to apply them by mixing them, or to apply them alternately without mixing, or to apply them simultaneously.
[0033]
The application rate of the control agent of the present invention varies depending on the species of the Scarabaeidae insect, the type of applied plant, the dosage form, etc., and thus cannot be defined unconditionally. .01-100g / m², Preferably 0.1 to 50 g / m²What is necessary is just to become a grade.
[0034]
Furthermore, the control agent of the present invention and other biological pesticides and microorganism-derived polypeptides (for example, a parasporal body of a different strain of Bacillus popilie or a parasporal body of Bacillus thuringiensis) or a microbial spore (for example, Bacillus popilie or It is also possible to use a mixture of Bacillus thuringiensis or Bacillus subtilis spores.
[0035]
【Example】
EXAMPLES Hereinafter, the present invention will be described more specifically with reference to examples, but the scope of the present invention is not limited thereto.
[0036]
Example 1
A spore capsule suspension of Bacillus popirie prepared from the larvae infected with emulsifying disease of Douganebububu was treated with French press, and spores and parasporal bodies were taken out from the spore capsule. Only parasporal body is recovered by a two-layer distribution method using sodium dextran sulfate (Sodium Dextran Sulfate, manufactured by SIGMA), polyethylene glycol 6000 (Polyethylene Glycol 6000, manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) and NaCl, and 0.1M After solubilization with NaOH, it was subjected to SDS-PAGE. A band of about 135 kD was excised, finely crushed, mixed with an adjuvant, and injected into the skin to immunize rabbits.
[0037]
In order to reduce the background when screening a polypeptide gene clone constituting a parasporal body using an antibody, the obtained antiserum is subjected to absorption operation using E. coli disruption three times, The antibody adsorbed on E. coli itself was removed, and only the antibody adsorbed on the polypeptide constituting the target parasporal body was collected.
[0038]
(Example 2)
Chromosomal DNA was collected from cells of Bacillus popilliae semadara by a conventional method and cleaved with restriction enzyme EcoRI. This was ligated with phosphatase-treated pBluescript SK (+) to transform E. coli DH5α. It spread | coated so that 2000-3000 colonies might appear on LB agar medium.
[0039]
The nitrocellulose membrane was brought into close contact with the agar medium, the colonies were copied, placed on a new agar medium with the colony surface of the membrane facing up, and incubated at 37 ° C. for 2 hours. The following operation was performed for the purpose of lysing the cells on the membrane. Transfer the membrane onto the filter paper soaked with 10% SDS and leave it for 5 minutes, then leave it on the filter paper soaked with 0.2M NaOH, 0.15M NaCl, 1% β-mercaptoethanol for 5 minutes, and finally 0.15M NaCl, It was left on a filter paper soaked with 0.5 M Tris-HCl pH 7.5 for 10 minutes. Disinfect the membrane with 0.1M Tris-HCl pH7.8, 0.15M NaCl, 5mM MgCl₂, 40 μg / ml lysozyme, 5% skim milk) and shaken for 2 hours to remove the cells.
[0040]
Anti-parasporal body diluted 8000 times with antibody diluent (TBST containing 5% skim milk) after washing the membrane with TBST (0.02M Tris-HCl pH7.2, 0.5M NaCl, 0.05% Tween20) for 5 minutes Shake in antiserum for 1.5 hours. After washing with TBST for 10 minutes 3 times, transferred to Anti-Rabbit IgG (H & L), HRP-Linked (New England Biolabs, Inc.) diluted 2000-fold, then HRP chromogenic substrate (4CN, NEN Incubated until color development was observed in Life Science Products).
[0041]
Colonies near the site where strong color development, ie, anti-parasporal body antiserum was adsorbed, were picked one by one from the master plate and subjected to secondary screening in the same manner as described above to obtain positive clones.
[0042]
A plasmid was collected from the obtained positive clone, and the base sequence of the insert was determined according to a conventional method. As a result, two polypeptide genes constituting the parasporal body of Bacillus popilie (SEQ ID NOS: 1 and 3, respectively) were translated. Were found to contain SEQ ID NOs: 2 and 4) in a single cloned fragment. The amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2 and the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 4 had about 73% homology with each other. However, genetic information processing software GENETYX-WIN (Software Development Co., Ltd.) was used for homology search.
[0043]
(Example 3)
PCR was performed using the positive clone plasmid as a template and polynucleotides (SEQ ID NOs: 5 and 6) containing nucleotide sequences corresponding to SEQ ID NO: 3 and a part of its complementary strand as primers. After electrophoresis of the reaction solution, the amplified fragment of about 4 kb was recovered and purified, and cleaved with restriction enzymes EcoRI and PstI. This was ligated with a vector pTrc99A (Amersham Pharmacia Biotech) previously cut with EcoRI and PstI, and Escherichia coli BL21 (DE3) was transformed with the reaction solution. The obtained transformant was shaken overnight in a 2 × YT liquid medium containing 50 mg / L ampicillin, and IPTG (isopropyl β-D-thiogalactopyranoside) was added to a final concentration of 1 mM. When the cells were further cultured for 2 hours, the formation of inclusion bodies (inclusion bodies) was observed in the cells by microscopic observation. Therefore, this clone was used as an expression clone.
[0044]
(Example 4)
750 ml of 2 × YT liquid medium containing 50 mg / L ampicillin was placed in a 2 L baffled Erlenmeyer flask, and the expression clone obtained in Example 3 was inoculated and cultured at 37 ° C. with shaking. After 16 hours, IPTG was added to a final concentration of 1 mM, and further cultured for 2 hours. The cells were collected from the culture solution by centrifugation and washed with 10 mM potassium phosphate buffer pH 7.0. The cells were collected again by centrifugation and suspended in the buffer so that the final volume was 120 ml.
[0045]
10 g of mulch was weighed out into 40 plastic food cups with a diameter of 6 cm, and 20 ml of the suspension was sprayed with 1 mL of the suspension of the expression clone, and the remaining 20 were sprayed with 1 ml of water as a blank. One larvae of the first larvae was released into each food cup and reared at 25 ° C. The mortality of larvae and the average body weight of surviving larvae were measured over time, and the insecticidal activity and growth inhibitory activity of the expression clones were verified.
[0046]
The results are shown in Table 1 and FIG. In contrast to the blank test, an increase in mortality was observed in the area where the expression clones were sprayed, and a 95% mortality rate was obtained in the fifth week. Moreover, the average body weight of surviving larvae in the expression clone spraying area was hardly increased and maintained a lower level than that of the blank. From the above results, it was confirmed that the expression clone, that is, the polypeptide of the present invention has growth inhibition or insecticidal activity.
[0047]
[Table 1]

[0048]
(Example 5)
750 ml of 2 × YT liquid medium containing 50 mg / L ampicillin was placed in a 2 L baffled Erlenmeyer flask, and the expression clone obtained in Example 3 was inoculated and cultured at 37 ° C. with shaking. After 16 hours, IPTG was added to a final concentration of 1 mM and further cultured for 2 hours. The cells were collected from the culture solution by centrifugation and washed with 10 mM potassium phosphate buffer pH 7.0. The cells were collected again by centrifugation and suspended in the buffer so that the final volume was 75 ml, which was used as an expression clone suspension.
[0049]
On the other hand, spores of Bacillus popilie sedara were collected from larvae infected with emulsifying disease of Douganebububu and washed with water. Again 8x10 per ml in water⁷It was suspended so that it became individual, and this was used as a spore suspension.
[0050]
Eighty plastic food cups having a diameter of 6 cm and weighing 25 g of humus were prepared. 20 of them were 1 ml of expression clone suspension, another 20 were 0.5 ml of spore suspension, and another 20 were spore suspension along with 1 ml of expression clone suspension. Was sprayed with 0.5 ml, and the remaining 20 were sprayed with 1 ml of water and mixed well. Each of the food cups was released one by one larvae of the second larvae and bred for 21 days at 25 ° C. The mortality of larvae and the average body weight of surviving larvae were measured over time, and the synergistic effect of insecticidal activity and growth inhibitory activity when the expression clone and spore capsule were used in combination was verified. In addition, in order to clarify the difference between the insecticidal activity and the growth inhibitory activity depending on the presence or absence of combined use with the spore sac, in this example, 25 g of 2.5 times the amount used in Example 4 was used in the food cup. In addition, experiments were conducted under the conditions where the effect was less effective using the second-stage larvae of the first-stage larvae that had grown off and moulted once.
[0051]
The results are shown in FIGS. Suspension spraying with only expression clones or sporangia showed a growth inhibitory effect, but did not provide sufficient insecticidal activity. In contrast, when the expression clone and spore sac were sprayed together, a significant increase in mortality was observed in the insecticidal activity and growth inhibitory effect, and a synergistic effect of using the expression clone and spore sac together was observed.
[0052]
(Example 6)
A polynucleotide having the base sequence described in SEQ ID NO: 8 and the base sequence described in SEQ ID NO: 7 corresponding to a part of the complementary strands of SEQ ID NOS: 1 and 3 was prepared by chemical synthesis. When PCR using the polynucleotide as a primer and Bacillus popilliae semadara chromosomal DNA as a template was attempted, amplification of a fragment of about 4.2 kb was observed. This fragment was TA-cloned to obtain a large number of clones, and for some of them, the nucleotide sequence of the insert part was determined by sequencing. As a result, a polynucleotide having the nucleotide sequences described in SEQ ID NOs: 1 and 3 was obtained. It was. Therefore, it was found that the polynucleotide of the present invention can also be obtained by PCR using polynucleotides having the nucleotide sequences of SEQ ID NOs: 7 and 8.
[0053]
【The invention's effect】
According to the present invention, a polypeptide having the growth-inhibiting or insecticidal activity of scarab beetle insects, in particular, stag beetle, scallop and beetle, a transformant into which a polynucleotide encoding the polypeptide is introduced, and a scarab beetle that contains the polypeptide as an active ingredient An insect control agent and a method for controlling a scarab beetle using the polypeptide and a spore of Bacillus popilie can be provided.
[0054]
[Sequence Listing]

[0055]

[0056]

[0057]

[0058]

[0059]

[0060]

[0061]

[0062]

[Brief description of the drawings]
FIG. 1 is a schematic view of a spore sac including spores and a parasporal body.
FIG. 2 is a graph showing the effect of inhibiting the growth of Scarabaeidae insects (Polypodidae larvae) by the polypeptide produced from the polynucleotide of the present invention in Example 4.
3 is a graph showing the insecticidal activity of a biological test conducted in Example 5. FIG.
4 is a graph showing the growth inhibitory effect of the biological test conducted in Example 5. FIG.

Claims

A polypeptide having the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2 or 4.

It has an amino acid sequence including substitution, deletion, or insertion of one or several amino acid residues in the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2 or 4, and has growth inhibitory or insecticidal activity of Scarabaeidae insects Characteristic polypeptide.

A polynucleotide encoding the polypeptide according to claim 1.

The polynucleotide according to claim 3, which is a polynucleotide having a base sequence of each coding region in the base sequence represented by SEQ ID NO: 1 or 3.

A polynucleotide that hybridizes under stringent conditions with a complementary strand of a polynucleotide having the nucleotide sequence of each coding region of the nucleotide sequences represented by SEQ ID NO: 1 or 3, wherein the stringent conditions are 90 The polynucleotide according to claim 3, wherein DNAs having a homology of at least% are hybridized and DNAs having lower homology are not hybridized.

A vector comprising the polynucleotide according to any one of claims 3 to 5.

A transformant into which the polynucleotide according to any one of claims 3 to 5 or the vector according to claim 6 has been introduced.

The transformant according to claim 7, wherein the host is a microorganism, a plant, or a cultured cell.

3. A scarab beetle insect control agent comprising the polypeptide according to claim 1 or 2 as an active ingredient.

3. A scarab beetle insect control agent comprising the polypeptide according to claim 1 or 2 and a spore sac of a bacterium belonging to Bacillus popilie as active ingredients.

A method for controlling a scarab beetle, which comprises causing the insecticide according to claim 9 or 10 to act on a scarab beetle.