JP4283469B2 - Compatibility-Liquid Phase Peptide Synthesis Method with Sequential Addition of Amino Acids by Multiphase Organic Solvent System - Google Patents
Compatibility-Liquid Phase Peptide Synthesis Method with Sequential Addition of Amino Acids by Multiphase Organic Solvent System Download PDFInfo
- Publication number
- JP4283469B2 JP4283469B2 JP2001385493A JP2001385493A JP4283469B2 JP 4283469 B2 JP4283469 B2 JP 4283469B2 JP 2001385493 A JP2001385493 A JP 2001385493A JP 2001385493 A JP2001385493 A JP 2001385493A JP 4283469 B2 JP4283469 B2 JP 4283469B2
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- group
- solvent
- liquid phase
- amino acid
- peptide
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Fee Related
Links
Images
Landscapes
- Peptides Or Proteins (AREA)
Description
【0001】
【発明の属する技術分野】
本発明は、ペプチド、蛋白質、DNA、RNA、多糖類などオリゴマーまたはポリマー類、特にペプチドを、これらを構成する一種類または複数種類のユニット分子、特にアミノ酸を制御された順序で結合させて前記オリゴマーまたはポリマー類の合成法、特に液相ペプチド合成法に関する。特に設計されたオリゴマーまたはポリマー類、特にペプチドの合成の制御が容易であり、反応生成物の回収が容易である溶媒システムを用いた液相ペプチド合成法に関する。
【0002】
【従来の技術】
化学反応において、試薬、触媒、反応補助剤、副生成物などと、目的とする生成物を容易に分離することができれば、分離操作を大幅に低減させるだけでなく、工程で使用される薬剤を少なくすることができ、環境に有害な廃棄物を発生させることを極力抑制することができる。ところで、
これまでに、ペプチドやDNAなどのオリゴマーおよびポリマー類は、それを設計に従って複数のユニット化合物を逐次変えながら結合させ伸長して合成されている。該合成には、固体表面に合成すべきオリゴマーおよびポリマー類を形成させる官能基、例えば、ペプチドの場合、不溶性樹脂表面にペプチドのカルボキシ末端のアミノ酸残基を導入したものを溶媒中に分散させた状態でペプチド類を合成する固相合成法が用いられていた。
しかしながら、この反応系においては、固体表面で化学反応を行わなければならないため、試薬が固体表面に接近しにくく、一般に反応性、反応速度が低い。また、目的の反応が進行したことを簡便に確認することができないという問題点があった。また、固相合成では反応スケールを大きくするとは困難であるとともに、固相担体の価格が高いものが多く、経済性の点でも問題があった。
【0003】
【発明が解決しようとする課題】
従って、本発明課題は、前記従来技術の、固相表面反応を液相反応としながら、得られた反応生成物の分離を極めて容易に実現する溶液ペプチド合成法を確立することである。前記問題点を解決すべく鋭意検討する中で、これまで本発明者らが開発した、温度を制御すことにより相溶性の状態と相分離の状態とに可逆的に状態を制御できる溶媒システムを用いてペプチドを合成する方法を確立することを考えた。そのためには従来の固相反応ペプチド合成法におけるペプチドの形成を開始するアミノ酸単位の結合部を有し、アミノ酸単位を順次結合させ伸長させたペプチド鎖を担持する機能と、更に前記ペプチドの合成開始前のアミノ酸単位の結合部を有する化合物および合成中のペプチド鎖の結合した化合物を一方の溶媒または混合溶媒系に溶解させる機能を持つ化合物残基を見出す必要がある。本明細書では該化合物残基に要求される技術的特性から、担体と称する。
そして、一方の溶媒または混合溶媒Aとして非極性有機溶媒からなるものを用い、前記Aと組み合わせる他方の溶媒または混合溶媒Bとして極性有機溶媒からなる溶媒システムと組み合わせて使用する担体として前記一般式Aの化合物を用いることにより前記固相反応ペプチド合成法に習った液相ペプチド合成法システムを確立し、前記課題を解決することができた。
【0004】
【課題を解決するための手段】
本発明は、温度を制御すことにより相溶性の状態と相分離の状態とに可逆的に状態を制御できる溶媒システムを用いてペプチドを合成する方法において、合成すべきペプチドのカルボキシ末端のアミノ酸残基を導入する残基として、前記状態を制御できる溶媒システムを構成する一方の溶媒または混合溶媒Aに対して溶解度を高める化合物から誘導される担体を用い、該溶媒または混合溶媒Aと該担体との組み合わせにより、該合成すべきペプチドのカルボキシ末端のアミノ酸残基を担体と結合したペプチド開始化合物および前記ペプチド開始化合物に順次アミノ酸を導入してペプチド鎖を伸長した化合物を該溶媒または混合溶媒Aへの溶解度を高め、該溶媒または混合溶媒Aと組み合わせる他方の溶媒または混合溶媒Bとして、前記相溶性の状態を形成する温度以下においては前記ペプチド鎖の伸長に用いる種々のアミノ酸を優先的に溶解し、前記相溶性の状態を形成する温度以上では前記Aと相溶性状態の溶媒を形成して前記ペプチド開始化合物を溶解するものを用いて、種々のα位アミノ基に保護基を結合した保護アミノ酸を溶解した前記Bを、相分離の状態において順次設計されたペプチドを合成するアミノ酸を溶解したものと置換し、置換後相溶性状態を呈する温度に加熱することにより、前記アミノ酸を順次結合させることを特徴とする液相ペプチド合成法である。好ましくは、一方の溶媒または混合溶媒Aが有機溶媒からなり、該溶媒または混合溶媒Aと組み合わせる他方の溶媒または混合溶媒Bも有機溶媒からなることを特徴とする前記液相ペプチド合成法であり、より好ましくは、一方の溶媒または混合溶媒Aを構成する有機溶媒がシクロアルカン系の化合物からなり、該溶媒または混合溶媒Aを構成する有機溶媒と組み合わせる他方の溶媒または混合溶媒Bを構成する有機溶媒がニトロアルカン、ニトリル、アルコール、ハロゲン化アルキル、アミド化合物およびスルフスルフォキサイドからなる群から選択される少なくとも一種から構成されたものであることを特徴とする前記液相ペプチド合成法であり、一層好ましくは、ニトロアルカンのアルキル基は炭素数が1、2または3であり、ニトリルのアルキル基の炭素数が1、2または3であり、アミド化合物はN−ジアルキルまたはN−モノアルキルアミドのアルキル基およびアシル基またはホルミル基の炭素数の合計は6以下であり、アルコールは炭素数が8以下であり、スルフォキサイドのアルキル基は炭素数が1、2または3であり、またハハロゲン化アルキルのアルキル基は炭素数が6以下であることを特徴とする前記液相ペプチド合成法であり、より一層好ましくは、ペプチド開始化合物を形成する担体は、親シクロアルカン系溶媒部分とアミノ酸と結合する官能基を有するものであることを特徴とする前記一般式Aで表される芳香族炭化水素環または炭素数10以上の炭化水素基の基本骨格化合物からの残基からなることを特徴とする前記の各液相ペプチド合成法であり、好ましくは前記化合物群Bで表されるものであることを特徴とする前記液相ペプチド合成法である。
【0005】
従来の固相反応ペプチド合成法では、固相にアミノ酸結合基が存在するためアミノ酸との反応性悪く、大過剰量のアミノ酸を反応系に供給することにより、固体表面における反応を完結しなければならないという問題があった。しかし、本発明の液相ペプチド合成法では、ペプチド合成の反応は、相溶状態の均一溶液系で進行するため、反応効率が極めて高く、担体に結合したアミノ酸結合基に対して、外部から添加して反応させるためのアミノ酸分子の量は過剰量必要としない。
【0006】
【本発明の実施の態様】
本発明をより詳細に説明する。
A.本発明の溶媒システムは、少なくとも、わずかな温度変化により、可逆的に均一相溶混合溶媒系の状態と複数相に分離した分離溶媒系の状態とを取り得る二種以上の単一有機溶媒または混合有機溶媒から成り、かつ、一方の有機溶媒または混合有機溶媒は、分離溶媒系の状態においてペプチド開始化合物およびこれに順次アミノ酸を結合させ伸長したペプチド鎖を結合した化合物を溶解するが、前記結合させるアミノ酸を溶解せず、他方の有機溶媒または混合有機溶媒は、分離溶媒系の状態において前記結合させるアミノ酸を溶解するが、前記ペプチド開始化合物およびこれに順次アミノ酸を結合させ伸長したペプチド鎖を結合した化合物を溶解しない特性を持つことが基本である。
【0007】
1,一方の単一有機溶媒または混合有機溶媒は、前記基本特性に基づいて選択されるが、基本的には低極性有機溶媒であり、該溶媒を構成する化合物群としては、アルカン、シクロアルカン、アルケン、アルキン、芳香族化合物などを挙げることができ、好ましいものとしては、シクロアルカン系の化合物を挙げることができ、特に好ましいものとしてシクロヘキサンを好ましいものとして挙げることができる。シクロヘキサンのイス型−舟形配座異性体の変換が他の溶媒との関連で温度的に比較的穏やかな条件で起こることに関連して、前記本発明の溶媒システムが実現されていることと推測することができる。シクロヘキサンは融点が6.5℃と比較的高く、反応後の生成物などを固化して分離できるという利点があり、この面からも好ましい溶媒と言うことができる。
【0008】
2、前記1、と組み合わされる単一有機溶媒または混合有機溶媒としては、1、と同様に前記基本特性に基づいて選択されるが、基本的には、高極性有機溶媒である。好ましくは、ニトロアルカン、ニトリル、アルコール、ハロゲン化アルキル、アミド化合物およびスルフォキサイドからなる群から選択される。
【0009】
3、前記溶媒システムと組み合わせて本発明の液相ペプチド合成法を確立するのはペプチド開始化合物に、分離溶媒系の状態において一方の単一の有機溶媒または混合有機溶媒に溶解性を高め、前記一方の単一の有機溶媒または混合有機溶媒と組み合わせる他方の単一の有機溶媒または混合有機溶媒に溶解しないものを選択することが重要であり、このようなものとして下記一般式Aで表される残基および炭素数10以上の炭化水素基の基本骨格化合物からの残基から選択される。
【0010】
【化4】
【0011】
一般式Aにおいて、L1は、アミノ酸と結合する水酸基、チオール基、アミノ基、またはカルボニル基と結合する単結合、該水酸基、チオール基、アミノ基、またはカルボニル基と結合する原子団、または点線と結合して2環の縮合芳香族環を形成する原子団であり、点線はHとの結合または前記L1と結合して前記縮合芳香族環を形成する原子団であり、XはO、S、N、エステル基、スルフィド基またはイミノ基であり、Rは、シクロアルカン系の溶剤への溶解性を高めるO、S、またはNを結合原子として含んでいても良い炭素数10以上の炭化水素基である。nは1〜5の整数である。
【0012】
前記一般式Aの具体例としては、下記の一般式群Bの化合物を挙げることができる。
【0013】
【化5】
【0014】
各一般式において、X、Rおよびnは一般式Aと同じ。Qは、単結合または炭化水素基であり、R2はアミノ酸と結合する水酸基、チオール基、アミノ基、またはカルボニル基であり、R3およびR4は、下記の一般式Cの基である。
【0015】
【化6】
【0016】
R5は、アミノ酸と結合する水酸基、チオール基、アミノ基、またはカルボニル基である。
【0017】
4、本発明の液相ペプチド合成法に用いられるアミノ酸は、従来の固相反応ペプチド合成法に用いられる保護アミノ酸、例えば、Fmoc(9−フルオレニルメトキシカルボニル)−アミノ酸、Boc(t−ブトキシカルボニル)−アミノ酸、Cbz(ベンジルオキシカルボニル)−アミノ酸などを用いることができる。
【0018】
ここでは、更に具体的な例を実施例として示すが、これは本発明をより理解し易くするためのものであり、本発明を限定するものではない。
【0019】
実施例1
可溶性担体〔SC〕−バリン(Val)−グリシン(Gly)−フェニルアラニン(Phe)−Fmoc 〔(SC)−Val−Gly−Phe−Fmoc) 〕の液相合成。
可溶性担体〔SC〕として、一般式群Bにおいて、RがC18H37−であり、XがOであり、nが3であり、QがCH2であり、R2がOHである、
(3,4,5−トリオクタデシルオキシフェニル)メタン−1−オール、〔(3,4,5-trioctadecyloxyphenyl)methan-1-ol 〕を用いる。
【0020】
工程1)Fmoc−Val(170mg)をジクロロメタン3mLに溶解し、さらにジシクロヘキシルカルボジイミド(DCC)125mgを添加する。本溶液を室温にて15分間撹拌した後、ろ過。ろ液をロータリーエバポレーターで濃縮乾固した後、得られた残渣をジメチルホルムアミド(DMF)3mL に溶解する。続いて可溶性担体〔SC〕を溶解したシクロヘキサン溶液(可溶性担体50mg/3mL)3mLをDMF溶液に添加する。されに4−ジメチルアミノピリジン(DMAP)6.5mgを添加し、反応溶液を50℃に加温し、30分反応を行う。このときシクロヘキサン層とDMF層に分離していた溶液系は均一溶液系になる。反応終了後、反応溶液を室温に戻し、反応溶液を再び二相に分離させる。下層のDMF相を分離、除去し、10%ジエチルアミン/DMF溶液を3mL添加し、50℃で20分間攪拌する。反応液を冷却し、シクロヘキサン層を分離する。このシクロヘキサン層には可溶性担体結合バリン−NH2(〔SC〕−Val−NH2) が回収される。(収率95%)
【0021】
工程2)Fmoc−Gly57mg、HOBt55mg、ジイソプロピルカルボジイミド(DIPCD)25mgをDMF2mLに溶解し、150分間室温で攪拌する。この溶液を活性化したFmoc−グリシン−OH/DMF溶液として用いる。すなわち、この溶液2mLを5℃に冷却後、工程1)で得た〔SC〕−Val−NH2/シクロヘキサン溶液(2mL)を添加する。反応液は5℃から50℃まで一時間かけて穏やかに上昇させ、さらに50℃で30分放置する。最後に、反応液を室温まで冷却すると、再び2層に分離するので、上層(シクロヘキサン層)から目的の生成物〔SC〕−Val−Gly−Fmoc)を分離する。Fmoc基は同溶液にジエチルアミンを添加することにより、脱離し〔SC〕−Val−Gly−NH2 を得る。
図1に、この合成反応の概略を示す。
【0022】
工程3)つぎに、Fmoc−Phe57mg、HOBt55mg、ジイソプロピルカルボジイミド(DIPCD)25mgをDMF 2mLに溶解し、150分間室温で攪拌する。この溶液を活性化したFmoc−フェニルアラニ(Phe)−OH/DMF溶液として用いる。すなわち、この溶液2 mlを5℃に冷却後工程2)で得た〔SC〕−Val−Gly−NH2/シクロヘキサン溶液(2mL)を添加する。反応液は5℃から50℃まで一時間かけて穏やかに上昇させ、さらに50℃で30分放置する。最後に、反応液を室温まで冷却すると、再び2層に分離するので、上層(シクロヘキサン層)から目的の生成物〔SC〕−Val−Gly−Phe−Fmoc)を分離する。
以上の操作を繰り返すことにより、可溶性担体に逐次アミノ酸を結合させ、目的とするオリゴペプチドが合成される。
【0023】
構造確認
〔SC〕シクロヘキサン可溶性担体;(3,4,5−トリオクタデシルオキシフェニル)メタン−1−オール〔(3,4,5-trioctadecyloxyphenyl)methan-1-ol 〕。
1H−NMR(400MHz)δ;5.54(2H、s)、4.58(2H、d、J=5.1Hz)、3.96(4H、t、J=6.6Hz)、3.96(3H、s)、1.82−1.70(6H、m)、1.50−1.41(6H、m)、1.38−1.20(84H、br)、0.88(9H,6,8Hz)、13C−NMR(100Hz);(100MHz δ:153.2,137.4,136.0,105.2、73.4、69.1、65.7、32.0、30.4、29.8、29.7、29.5、26.2、22.8、14.2、;MALDI TOF−MS(pos)、C61H116O4に対する計算値 〔M+Na〕+935、実験値935.
【0024】
〔SC〕−Val−Fmoc
;1H−NMR(CDCl3)δ7.76(2H、d、J=7.7Hz)、7.60(2H、d、J=7.7Hz)、7.40(2H、dt、J=2.6、7.3Hz)、7.31(2H、t、J=7.3Hz)、6.53(2H、s)、5.31(1H、d、J=9.2Hz)、5.11(1H、d、J=12.1Hz)、5.05(1H、d、J=12.1Hz)、4.38(2H、m)、4.23(1H、t、J=7.3Hz)、3.94(6H、m)、2.19(1H、m)、1.78(4H、m)、1.73(2H、m)、1.45(6H、m)、1.35−1.23(84H、br.)、0.95(3H、d、J=7.0Hz)、0.88(12H、m)、;13C−NMR(CDCl3)δ172.0、156.2、153.2、143.9、143.8、141.3、138.4、130.2、128、3、127.7、127.1、125.1、120.0、107.1、73.4、69.2、67.4、67.1、59.0、47.2、32.0、31.4、30.3、29.8、29.7、29.5、29.4、26.1、22.7、14.1;TOF−MS(pos)MF、C81H135NO7〔M+Na〕+に対する計算値1257、実験値1257
【0025】
〔SC〕−Val−NH2
1H−NMR(400 MHz)δ: 6.54(2H、s)、5.07(1H、d、J=12.1Hz)、503(1H、d、J=12.1 Hz)、3.95(4H、t、J=6.6 Hz)、3.94(2H、t、J=6.6 Hz)、3.33(2H、d、J=5.1 Hz)、2.07−2.01(1H、m)、1.81−1.77(4H、m)、1.76−1.71(2H、m)、1.49−1.43(6H、m)、1.37−1.23(84H、br)、0.96(3H、d、J=7.0 Hz)、0.89−0.86(12H、m)、;13C−NMR(150 MHz)δ、175.4、153.2、138.3、130.7、107.1、73.4、69.2、66.8、59.9、32.2、32.0、30.3、29.8、29.7、29.6、29.4、26.1、22.7、19.3、17.1、14.1;TOF−MS(pos)C66H125NO5〔M+Na〕+に対する計算値1034、実験値1034
【0026】
〔SC〕−Val−Gly−Fmoc
1H−NMR(400 MHz)δ:7.77(2H、d、J=7.3 Hz)、7.59(2H、d、J=7.3Hz)、7.40(2H、t、J=7.3Hz)、
7.31(2H、dt、J=0.7、7.3Hz)、6.52(2H、s)、6.38(1H、d、J=8.4 Hz)、5.44−5.37(1H、br)、5.10(1H、d、J=12.1 Hz)、5.02(1H、d、J=12.1 Hz)、4.62(2H、dd、J=8.4、4.8 Hz)、4.42(2H、d、J=7.0 Hz)、4.24(1H、t、J=7.0 Hz)、3.96−3.92(8H、m)、2.21−2.16(1H、m)、1.81−1.76(4H、m)、1.75−1.70(2H、m)、1.48−1.43(6H、m)、1.37−1.21(84H、br)、0.91(3H、d、J=7.0 Hz)、0.88(9H、t、J=7.0 Hz)、0.86(3H、d、J=7.0 Hz)、;13C−NMR(150 MHz)δ:171.5、168.7、156.5、153.1、143.6、141.2、138.3、130.0、127.7、127.0、125.0、120.0、107.0、73.4、69.2、67.5、67.4、57.1、47.1、32.0、31.4、30.4、29.8、29.7、29.5、29.4、26.1、22.8、19.0、17.7、14.2、;MALDI TOF−MS(pos)C83H138N2O8〔M+Na〕+に対する計算値1314、実験値1314
【0027】
〔SC〕−Val−Gly−NH2
1H−NMR(600 MHz)δ:7.74(1H、d、J=9.2 Hz)、6.53(2H、s)、5.11(1H、d、J=12.1 Hz)、5.02(1H、d、J=12.1 Hz)、4.61(1H、dd、J=9.2、5.1 Hz)、3.95(4H、t、J=6.6 Hz)、3.94(2H、t、J=6.6 Hz)、3.39(2H、s)、2.24−2.18(1H、m)、1.81−1.76(4H、m)、1.75−1.71(2H、m)、1.49−1.44(6H、m)、1.37−1.20(84H、br)、0.93(3H、d、J=7.0 Hz)、0.90−0.86(12H、m)、;13C−NMR(150 MHz)δ:172.6、171.8、153.1、130.3、125.5、106.9、73.4、69.2、67.2、56.6、44.8、32.0、31.3、30.4、30.3、29.8、29.7、29.5、29.4、26.2、22.8、19.1、17.8、14.2;MALDITOF−MS(pos)C68H128N2O6〔M+Na〕+に対する計算値1091、実験値1091
【0028】
〔SC〕−Val−Gly−Phe−Fmoc
1H−NMR(600 MHz)δ:7.75(2H、d、J=7.7 Hz)、7.53−7.49(2H、m)、7.39(2H、dd、J=7.3、2.2Hz)、7.30−7.27(4H、m)、7.25−7.21(1H、m)、7.20−7.15(2H、br)、6.76−6.69(1H、br)、6.60−6.55(1H、br)、6.50(2H、s)、5.40−5.34(1H、br)、5.07(1H、d、J=12.1 Hz)、4.99(1H、d、J=12.1 Hz)、4.56(1H、dd、J=8.8、4.8 Hz)、4.46−4.30(2H、m)、4.17(1H、t、J=7.0 Hz)、4.10−4.03(1H、m)、3.92(6H、t、J=6.6 Hz)、3.83−3.76(2H、m)、3.18−3.11(1H、m)、3.10−3.02(1H、m)、2.20−2.13(1H、m)、1.79−1.69(6H、m)、1.48−1.41(6H、m)、1.35−1.23(84H、br.m)、0.91−0.85(15H、m);13C−NMR(150 MHz)δ:171.5、171.3、168.3、156.0、153,1、143.6、141.2、138.2、136.2、130.1、129.1、128.8、127.7、127.1、127.0、125.0、124.9、120.0、107.0、73.4、69.2、67.5、67.1、57.3、47.2、32.0、31.3、30.4、29.8、29.7、29.5、29.4、26.2、22.8、19.0、17.8、14.2;MALDI TOF−MS(pos)C92H147N3O9〔M+Na〕+に対する計算値1461、実験値1461
【0029】
〔SC〕−Val−Gly−Phe−NH2
1H−NMR(400 MHz)δ:7.99−7.93(1H、m)、7.35−7.30(2H、m)、7.27−7.21(3H、m)、6.66(1H、d、J=8.8 Hz)、6.52(2H、s)、5.11(1H、d、J=12.1)、5.02(1H、d、J=12.1Hz)、4.58(1H、dd、J=8.8、4.8 Hz)、4.05(1H、d、J=5.9 Hz、minor)、4.01(1H、d、J=5.9 Hz、major)、3.98−3.91(7H、m)、3.66(1H、d、J=10.0 Hz)、3.32(1H、dd、J=13.6、3.9 Hz)、2.67(1H、dd、J=13.6、10.0 Hz)、2.24−2.15(1H、m)、1.82−1.69(6H、m)、1.50−1.39(6H、m)、1.37−1.21(84H、br)、0.92(3H、d、J=6.8 Hz)、0.90−0.85(12H、m);13C−NMR(150 MHz)δ:175.2、171.5、168.9、153.1、151.4、137.7、129.2、128.8、126.9、125.5、107.0、73.5、69.2、67.5、57.2、56.5、43.4、40.9、32.0、31.3、30.4、29.8、29.7、29.5、29.4、26.2、22.8、19.1、17.7、14.2;MALDI TOF−MS(pos)C77H137N3O7〔M+Na〕+に対する計算値1239、実験値1239
【0030】
実施例2
〔SC〕−バリン−フェニルアラニン−Fmoc(〔SC〕―Val―Phe―Fmoc)の液相合成
Fmoc−Phe 63mg、HOBt 63mg、ジイソプロピルカルボジイミド(DIPCD)25mgをDMF2mLに溶解し、150分間室温で攪拌する。この溶液を活性化したFmoc−Phe/DMF溶液として用いる。すなわち、この溶液2mLを5℃に冷却後、実施例1の工程1)で得た〔SC〕−Val−NH2/シクロヘキサン溶液(2mL)を添加する。反応液は5℃から50℃まで一時間かけて穏やかに上昇させ、さらに50℃で30分放置する。最後に、反応液を室温まで冷却すると、再び2層に分離するので、上層(シクロヘキサン層)から目的の生成物〔SC〕−Val−Phe−Fmoc)を分離する。
以上の操作を繰り返すことにより、可溶性担体に逐次アミノ酸を結合させ、目的とするペプチドが合成される。
【0031】
実施例3
〔SC〕−バリン−プロリン−Fmoc(〔SC〕―Val―Pro―Fmoc)
の液相合成
Fmoc−Pro53mg、HOBt 57mg、ジイソプロピルカルボジイミド(DIPCD)25mgをDMF2mLに溶解し、150分間室温で攪拌する。この溶液を活性化したFmoc−Pro−OH/DMF溶液として用いる。すなわち、この溶液2 mlを5℃に冷却後、実施例1の1)で得た〔SC〕−Val−NH2/シクロヘキサン溶液(2ml)を添加する。反応液は5℃から50℃まで一時間かけて穏やかに上昇させ、さらに50℃で30分放置する。最後に、反応液を室温まで冷却すると、再び2層に分離するので、上層(シクロヘキサン層)から目的の生成物〔SC〕−Val−Pro−Fmoc)を分離する。
以上の操作を繰り返すことにより、可溶性担体に逐次アミノ酸を結合させ、目的とするペプチドが合成される。
【0032】
実施例4
可溶性担体−バリン−アラニン−Fmoc(〔SC〕−Val−Ala−Fmoc)
の液相合成
Fmoc−Ala 50mg、HOBt53mg、ジイソプロピルカルボジイミド(DIPCD)25mgをDMF2mLに溶解し、150分間室温で攪拌する。この溶液を活性化したFmoc−Ala−OH/DMF溶液として用いる。すなわち、この溶液2mLを5℃に冷却後、実施例1の工程1)で得た〔SC〕−Val−NH2/シクロヘキサン溶液(2 ml)を添加する。反応液は5℃から50℃まで一時間かけて穏やかに上昇させ、さらに50℃で30分放置する。最後に、反応液を室温まで冷却すると、再び2層に分離するので、上層(シクロヘキサン層)から目的の生成物〔SC〕−Val−Ala−Fmoc)を分離する。
以上の操作を繰り返すことにより、可溶性担体に逐次アミノ酸を結合させ、目的とするペプチドが合成される。
【0033】
【発明の効果】
以上述べたように、本発明の方法により、合成すべきペプチドのカルボキシ末端のアミノ酸残基を導入した化合物として、それ自身およびペプチドを結合した化合物を反応溶媒システムを構成する一方の溶媒に可溶にする担体と組み合わせることにより、固相反応ペプチド合成に比べて、制御が容易であり、かつ、反応生成物の回収が容易である液相ペプチド合成法が提供されるという、優れた効果がもたらされる。
【図面の簡単な説明】
【図1】 本発明の液相ペプチド合成法の一態様の概略[0001]
BACKGROUND OF THE INVENTION
The present invention relates to oligomers or polymers such as peptides, proteins, DNA, RNA, polysaccharides, in particular peptides, by combining one or more types of unit molecules constituting these, particularly amino acids in a controlled order. Alternatively, the present invention relates to a method for synthesizing polymers, particularly a liquid phase peptide synthesis method. In particular, the present invention relates to a liquid phase peptide synthesis method using a solvent system in which synthesis of synthesized oligomers or polymers, particularly peptides, is easily controlled and reaction products can be easily recovered.
[0002]
[Prior art]
In chemical reactions, if the target product can be easily separated from reagents, catalysts, reaction aids, by-products, etc., not only the separation operation is greatly reduced, but also the chemicals used in the process. This can reduce the amount of waste that is harmful to the environment as much as possible. by the way,
So far, oligomers and polymers such as peptides and DNA have been synthesized by combining and extending a plurality of unit compounds while sequentially changing them according to the design. In the synthesis, functional groups that form oligomers and polymers to be synthesized on a solid surface, for example, in the case of a peptide, an amino acid residue at the carboxy terminus of a peptide introduced into the surface of an insoluble resin was dispersed in a solvent. A solid phase synthesis method for synthesizing peptides in a state has been used.
However, in this reaction system, since a chemical reaction must be performed on the solid surface, the reagent is unlikely to approach the solid surface and generally has low reactivity and reaction rate. In addition, there is a problem that it is not possible to easily confirm that the target reaction has progressed. In addition, it is difficult to increase the reaction scale in solid-phase synthesis, and many solid-phase carriers are expensive, and there are problems in terms of economy.
[0003]
[Problems to be solved by the invention]
Accordingly, an object of the present invention is to establish a solution peptide synthesis method of the above prior art that realizes separation of the obtained reaction product very easily while making the solid phase surface reaction a liquid phase reaction. In earnest study to solve the above problems, a solvent system that has been developed by the present inventors so far and that can reversibly control the state between the compatible state and the phase separated state by controlling the temperature. The idea was to establish a method for synthesizing peptides. For this purpose, the conventional solid phase reaction peptide synthesis method has a binding part of an amino acid unit that starts peptide formation, a function of supporting a peptide chain in which amino acid units are sequentially bonded and extended, and further, the synthesis of the peptide is started. It is necessary to find a compound residue having a function of dissolving a compound having a bonding part of the previous amino acid unit and a compound having a peptide chain being synthesized in one solvent or a mixed solvent system. In the present specification, it is referred to as a carrier because of the technical characteristics required for the compound residue.
As a carrier used in combination with a solvent system comprising a non-polar organic solvent as one solvent or mixed solvent A, and a solvent system comprising a polar organic solvent as the other solvent or mixed solvent B combined with A, the general formula A By using this compound, a liquid phase peptide synthesis system learned from the solid phase reaction peptide synthesis method was established, and the above problems could be solved.
[0004]
[Means for Solving the Problems]
The present invention relates to a method for synthesizing a peptide using a solvent system capable of reversibly controlling a compatible state and a phase-separated state by controlling the temperature. A carrier derived from a compound that increases the solubility in one solvent or mixed solvent A constituting the solvent system capable of controlling the state as a residue for introducing a group, and using the solvent or mixed solvent A and the carrier The peptide starting compound in which the carboxy terminal amino acid residue of the peptide to be synthesized is bound to the carrier and the compound in which the peptide chain is extended by sequentially introducing the amino acid into the peptide starting compound are transferred to the solvent or mixed solvent A. As the other solvent or mixed solvent B to be combined with the solvent or mixed solvent A, the compatibility is improved. Below the temperature at which the state is formed, various amino acids used for elongation of the peptide chain are preferentially dissolved, and above the temperature at which the compatible state is formed, a solvent in a compatible state with A is formed to form the peptide Using the compound that dissolves the starting compound, the above-mentioned B in which the protected amino acid having a protective group bonded to the various α-position amino groups is dissolved, and the amino acid that synthesizes the sequentially designed peptides in the phase-separated state, It is a liquid phase peptide synthesis method characterized in that the amino acids are sequentially bound by substitution and heating to a temperature exhibiting a compatible state after substitution. Preferably, in the liquid phase peptide synthesis method, one solvent or mixed solvent A is composed of an organic solvent, and the other solvent or mixed solvent B combined with the solvent or mixed solvent A is also composed of an organic solvent. More preferably, the organic solvent constituting the one solvent or mixed solvent A is a cycloalkane compound, and the other solvent or mixed solvent B combined with the organic solvent constituting the solvent or mixed solvent A is combined. Is a liquid phase peptide synthesis method, characterized in that it is composed of at least one selected from the group consisting of nitroalkanes, nitriles, alcohols, alkyl halides, amide compounds and sulfsulfoxides, More preferably, the alkyl group of the nitroalkane has 1, 2 or 3 carbon atoms, The alkyl group has a carbon number of 1, 2 or 3, the amide compound has a total number of carbon atoms of N-dialkyl or N-monoalkylamide of alkyl group and acyl group or formyl group of 6 or less, and alcohol has carbon In the liquid phase peptide synthesis method, the number of the alkyl group of the sulfoxide is 1, 2 or 3, and the alkyl group of the halogenated alkyl has 6 or less carbon atoms. And more preferably, the carrier for forming the peptide-initiating compound has a functional group that binds to the parent cycloalkane-based solvent moiety and an amino acid, and the aromatic carbonization represented by the above general formula A Each of the liquid phase peptide synthesis methods described above, comprising a residue from a basic skeleton compound of a hydrogen ring or a hydrocarbon group having 10 or more carbon atoms, Properly is the liquid phase peptide synthesis method, wherein the one represented by the compound group B.
[0005]
In the conventional solid phase reaction peptide synthesis method, since the amino acid bonding group exists in the solid phase, the reactivity with the amino acid is poor, and the reaction on the solid surface must be completed by supplying a large excess amount of amino acid to the reaction system. There was a problem of not becoming. However, in the liquid phase peptide synthesis method of the present invention, since the peptide synthesis reaction proceeds in a homogeneous solution system in a compatible state, the reaction efficiency is extremely high, and it is added from the outside to the amino acid binding group bound to the carrier. The amount of amino acid molecules to be reacted is not required to be excessive.
[0006]
[Embodiments of the present invention]
The present invention will be described in more detail.
A. The solvent system of the present invention includes at least two kinds of single organic solvents or a single organic solvent capable of reversibly taking a homogeneous solvent mixture solvent state and a separated solvent system state separated into a plurality of phases by a slight temperature change. It consists of a mixed organic solvent, and one organic solvent or mixed organic solvent dissolves the peptide starting compound in the state of the separation solvent system and the compound in which the amino acid is sequentially bound thereto and bound to the extended peptide chain. The other organic solvent or mixed organic solvent dissolves the amino acid to be bound in the state of the separation solvent system, but binds the peptide starting compound and the peptide chain that has been elongated by sequentially binding the amino acid to the peptide starting compound. It is fundamental to have the property of not dissolving the prepared compound.
[0007]
1, one single organic solvent or mixed organic solvent is selected on the basis of the basic characteristics, and is basically a low polarity organic solvent. Examples of the compounds constituting the solvent include alkanes, cycloalkanes. , Alkenes, alkynes, aromatic compounds and the like, and preferable examples include cycloalkane compounds, and particularly preferable examples include cyclohexane. It is speculated that the solvent system of the present invention has been realized in connection with the conversion of the chair-boat conformer of cyclohexane under relatively mild temperature conditions in relation to other solvents. can do. Cyclohexane has a relatively high melting point of 6.5 ° C., and has an advantage that the product after the reaction can be solidified and separated. From this aspect, it can be said that it is a preferable solvent.
[0008]
2. The single organic solvent or mixed organic solvent combined with 1 is selected based on the basic characteristics in the same manner as 1, but is basically a highly polar organic solvent. Preferably, it is selected from the group consisting of nitroalkane, nitrile, alcohol, alkyl halide, amide compound and sulfoxide.
[0009]
3. In combination with the solvent system, the liquid phase peptide synthesis method of the present invention establishes the peptide-initiating compound, enhances the solubility in one single organic solvent or mixed organic solvent in the state of the separation solvent system, It is important to select one that does not dissolve in one single organic solvent or mixed organic solvent and the other single organic solvent or mixed organic solvent, and is represented by the following general formula A as such It is selected from a residue and a residue from a basic skeleton compound of a hydrocarbon group having 10 or more carbon atoms.
[0010]
[Formula 4]
[0011]
In general formula A, L1Is bonded to a hydroxyl group, a thiol group, an amino group, or a carbonyl group that binds to an amino acid, an atomic group that binds to the hydroxyl group, a thiol group, an amino group, or a carbonyl group, An atomic group forming a condensed aromatic ring, and the dotted line is a bond with H or the L1And X is O, S, N, an ester group, a sulfide group, or an imino group, and R increases solubility in a cycloalkane-based solvent. A hydrocarbon group having 10 or more carbon atoms, which may contain O, S, or N as a bonding atom. n is an integer of 1-5.
[0012]
Specific examples of the general formula A include compounds of the following general formula group B.
[0013]
[Chemical formula 5]
[0014]
In each general formula, X, R and n are the same as in the general formula A. Q is a single bond or a hydrocarbon group, and R2Is a hydroxyl group, thiol group, amino group, or carbonyl group that binds to an amino acid, and RThreeAnd RFourIs a group of general formula C below.
[0015]
[Chemical 6]
[0016]
RFiveIs a hydroxyl group, thiol group, amino group, or carbonyl group that binds to an amino acid.
[0017]
4. The amino acid used in the liquid phase peptide synthesis method of the present invention is a protected amino acid used in the conventional solid phase reaction peptide synthesis method, such as Fmoc (9-fluorenylmethoxycarbonyl) -amino acid, Boc (t-butoxy). Carbonyl) -amino acid, Cbz (benzyloxycarbonyl) -amino acid and the like can be used.
[0018]
Here, more specific examples will be shown as examples, but this is intended to make the present invention easier to understand, and does not limit the present invention.
[0019]
Example 1
Liquid phase synthesis of soluble carrier [SC] -valine (Val) -glycine (Gly) -phenylalanine (Phe) -Fmoc [(SC) -Val-Gly-Phe-Fmoc)].
As a soluble carrier [SC], in general formula group B, R is C18H37-, X is O, n is 3, and Q is CH2And R2Is OH,
(3,4,5-trioctadecyloxyphenyl) methane-1-ol, [(3,4,5-trioctadecyloxyphenyl) methan-1-ol] is used.
[0020]
Step 1) Fmoc-Val (170 mg) is dissolved in 3 mL of dichloromethane, and 125 mg of dicyclohexylcarbodiimide (DCC) is further added. The solution was stirred at room temperature for 15 minutes and then filtered. The filtrate is concentrated to dryness on a rotary evaporator, and the resulting residue is dissolved in 3 mL of dimethylformamide (DMF). Subsequently, 3 mL of a cyclohexane solution (soluble carrier 50 mg / 3 mL) in which the soluble carrier [SC] is dissolved is added to the DMF solution. Then, 6.5 mg of 4-dimethylaminopyridine (DMAP) is added, and the reaction solution is heated to 50 ° C. and reacted for 30 minutes. At this time, the solution system separated into the cyclohexane layer and the DMF layer becomes a homogeneous solution system. After completion of the reaction, the reaction solution is returned to room temperature, and the reaction solution is again separated into two phases. The lower DMF phase is separated and removed, 3 mL of 10% diethylamine / DMF solution is added and stirred at 50 ° C. for 20 minutes. Cool the reaction and separate the cyclohexane layer. This cyclohexane layer contains soluble carrier bound valine-NH2([SC] -Val-NH2) Is recovered. (Yield 95%)
[0021]
Step 2) 57 mg of Fmoc-Gly, 55 mg of HOBt, and 25 mg of diisopropylcarbodiimide (DIPCD) are dissolved in 2 mL of DMF and stirred at room temperature for 150 minutes. This solution is used as an activated Fmoc-glycine-OH / DMF solution. That is, 2 mL of this solution was cooled to 5 ° C., and then [SC] -Val-NH obtained in step 1).2/ Add cyclohexane solution (2 mL). The reaction solution is gently raised from 5 ° C. to 50 ° C. over 1 hour, and further left at 50 ° C. for 30 minutes. Finally, when the reaction solution is cooled to room temperature, it separates into two layers again, so that the desired product [SC] -Val-Gly-Fmoc) is separated from the upper layer (cyclohexane layer). The Fmoc group was eliminated by adding diethylamine to the same solution [SC] -Val-Gly-NH.2 Get.
FIG. 1 shows an outline of this synthesis reaction.
[0022]
Step 3) Next, 57 mg of Fmoc-Phe, 55 mg of HOBt, and 25 mg of diisopropylcarbodiimide (DIPCD) are dissolved in 2 mL of DMF and stirred at room temperature for 150 minutes. This solution is used as an activated Fmoc-phenylalani (Phe) -OH / DMF solution. That is, 2 ml of this solution was cooled to 5 ° C. and then obtained in step 2) [SC] -Val-Gly-NH.2/ Add cyclohexane solution (2 mL). The reaction solution is gently raised from 5 ° C. to 50 ° C. over 1 hour, and further left at 50 ° C. for 30 minutes. Finally, when the reaction solution is cooled to room temperature, it separates into two layers again, so that the desired product [SC] -Val-Gly-Phe-Fmoc) is separated from the upper layer (cyclohexane layer).
By repeating the above operation, amino acids are sequentially bound to the soluble carrier, and the desired oligopeptide is synthesized.
[0023]
Structure confirmation
[SC] cyclohexane-soluble carrier; (3,4,5-trioctadecyloxyphenyl) methane-1-ol [(3,4,5-trioctadecyloxyphenyl) methan-1-ol].
1H-NMR (400 MHz) δ; 5.54 (2H, s), 4.58 (2H, d, J = 5.1 Hz), 3.96 (4H, t, J = 6.6 Hz), 3.96 (3H, s), 1.82-1.70 (6H, m), 1.50-1.41 (6H, m), 1.38-1.20 (84H, br), 0.88 (9H) , 6, 8 Hz),13C-NMR (100 Hz); (100 MHz δ: 153.2, 137.4, 136.0, 105.2, 73.4, 69.1, 65.7, 32.0, 30.4, 29.8 29.7, 29.5, 26.2, 22.8, 14.2, MALDI TOF-MS (pos), C61H116OFourCalculated value for [M + Na]+935, experimental value 935.
[0024]
[SC] -Val-Fmoc
;1H-NMR (CDClThree) Δ 7.76 (2H, d, J = 7.7 Hz), 7.60 (2H, d, J = 7.7 Hz), 7.40 (2H, dt, J = 2.6, 7.3 Hz), 7.31 (2H, t, J = 7.3 Hz), 6.53 (2H, s), 5.31 (1H, d, J = 9.2 Hz), 5.11 (1H, d, J = 12) .1 Hz), 5.05 (1 H, d, J = 12.1 Hz), 4.38 (2 H, m), 4.23 (1 H, t, J = 7.3 Hz), 3.94 (6 H, m ), 2.19 (1H, m), 1.78 (4H, m), 1.73 (2H, m), 1.45 (6H, m), 1.35-1.23 (84H, br. ), 0.95 (3H, d, J = 7.0 Hz), 0.88 (12H, m);13C-NMR (CDClThree) 172.0, 156.2, 153.2, 143.9, 143.8, 141.3, 138.4, 130.2, 128, 3,127.7, 127.1, 125.1, 120 0.0, 107.1, 73.4, 69.2, 67.4, 67.1, 59.0, 47.2, 32.0, 31.4, 30.3, 29.8, 29.7 29.5, 29.4, 26.1, 22.7, 14.1; TOF-MS (pos) MF, C81H135NO7[M + Na]+Calculated value 1257, experimental value 1257
[0025]
[SC] -Val-NH2
1H-NMR (400 MHz) δ: 6.54 (2H, s), 5.07 (1H, d, J = 12.1 Hz), 503 (1H, d, J = 12.1 Hz), 3.95 (4H, t, J = 6.6 Hz), 3.94 (2H, t, J = 6.6 Hz), 3.33 (2H, d, J = 5.1 Hz), 2.07-2 .01 (1H, m), 1.81-1.77 (4H, m), 1.76-1.71 (2H, m), 1.49-1.43 (6H, m), 1.37 -1.23 (84H, br), 0.96 (3H, d, J = 7.0 Hz), 0.89-0.86 (12H, m);13C-NMR (150 MHz) δ, 175.4, 153.2, 138.3, 130.7, 107.1, 73.4, 69.2, 66.8, 59.9, 32.2, 32 0.0, 30.3, 29.8, 29.7, 29.6, 29.4, 26.1, 22.7, 19.3, 17.1, 14.1; TOF-MS (pos) C66H125NOFive[M + Na]+Calculated value 1034, experimental value 1034
[0026]
[SC] -Val-Gly-Fmoc
1H-NMR (400 MHz) δ: 7.77 (2H, d, J = 7.3 Hz), 7.59 (2H, d, J = 7.3 Hz), 7.40 (2H, t, J = 7.3 Hz),
7.31 (2H, dt, J = 0.7, 7.3 Hz), 6.52 (2H, s), 6.38 (1H, d, J = 8.4 Hz), 5.44-5. 37 (1H, br), 5.10 (1H, d, J = 12.1 Hz), 5.02 (1H, d, J = 12.1 Hz), 4.62 (2H, dd, J = 8) .4, 4.8 Hz), 4.42 (2H, d, J = 7.0 Hz), 4.24 (1H, t, J = 7.0 Hz), 3.96-3.92 (8H M), 2.21-2.16 (1H, m), 1.81-1.76 (4H, m), 1.75-1.70 (2H, m), 1.48-1.43. (6H, m), 1.37-1.21 (84H, br), 0.91 (3H, d, J = 7.0 Hz), 0.88 (9H, t, J = 7.0 Hz) , 0.86 (3H, d, J = 7.0 Hz);13C-NMR (150 MHz) δ: 171.5, 168.7, 156.5, 153.1, 143.6, 141.2, 138.3, 130.0, 127.7, 127.0, 125 0.0, 120.0, 107.0, 73.4, 69.2, 67.5, 67.4, 57.1, 47.1, 32.0, 31.4, 30.4, 29.8 29.7, 29.5, 29.4, 26.1, 22.8, 19.0, 17.7, 14.2, MALDI TOF-MS (pos) C83H138N2O8[M + Na]+Calculated value 1314, experimental value 1314 for
[0027]
[SC] -Val-Gly-NH2
1H-NMR (600 MHz) δ: 7.74 (1H, d, J = 9.2 Hz), 6.53 (2H, s), 5.11 (1H, d, J = 12.1 Hz), 5.02 (1H, d, J = 12.1 Hz), 4.61 (1H, dd, J = 9.2, 5.1 Hz), 3.95 (4H, t, J = 6.6 Hz) ), 3.94 (2H, t, J = 6.6 Hz), 3.39 (2H, s), 2.24-2.18 (1H, m), 1.81-1.76 (4H, m) 1.75-1.71 (2H, m), 1.49-1.44 (6H, m), 1.37-1.20 (84H, br), 0.93 (3H, d, J = 7.0 Hz), 0.90-0.86 (12H, m);13C-NMR (150 MHz) δ: 172.6, 171.8, 153.1, 130.3, 125.5, 106.9, 73.4, 69.2, 67.2, 56.6, 44 .8, 32.0, 31.3, 30.4, 30.3, 29.8, 29.7, 29.5, 29.4, 26.2, 22.8, 19.1, 17.8 14.2; MALDITF-MS (pos) C68H128N2O6[M + Na]+Calculated value 1091 and experimental value 1091
[0028]
[SC] -Val-Gly-Phe-Fmoc
1H-NMR (600 MHz) δ: 7.75 (2H, d, J = 7.7 Hz), 7.53-7.49 (2H, m), 7.39 (2H, dd, J = 7. 3, 2.2 Hz), 7.30-7.27 (4H, m), 7.25-7.21 (1H, m), 7.20-7.15 (2H, br), 6.76- 6.69 (1H, br), 6.60-6.55 (1H, br), 6.50 (2H, s), 5.40-5.34 (1H, br), 5.07 (1H, d, J = 12.1 Hz), 4.99 (1H, d, J = 12.1 Hz), 4.56 (1H, dd, J = 8.8, 4.8 Hz), 4.46- 4.30 (2H, m), 4.17 (1H, t, J = 7.0 Hz), 4.10-4.03 (1H, m), 3.92 (6H, t, J = 6. 6 Hz), 3.83-3.76 (2H m), 3.18-3.11 (1H, m), 3.10-3.02 (1H, m), 2.20-2.13 (1H, m), 1.79-1.69 ( 6H, m), 1.48-1.41 (6H, m), 1.35-1.23 (84H, br.m), 0.91-0.85 (15H, m);13C-NMR (150 MHz) δ: 171.5, 171.3, 168.3, 156.0, 153, 1, 143.6, 141.2, 138.2, 136.2, 130.1, 129 .1, 128.8, 127.7, 127.1, 127.0, 125.0, 124.9, 120.0, 107.0, 73.4, 69.2, 67.5, 67.1 57.3, 47.2, 32.0, 31.3, 30.4, 29.8, 29.7, 29.5, 29.4, 26.2, 22.8, 19.0, 17 .8, 14.2; MALDI TOF-MS (pos) C92H147NThreeO9[M + Na]+Calculated value 1461, experimental value 1461
[0029]
[SC] -Val-Gly-Phe-NH2
1H-NMR (400 MHz) δ: 7.9-7.93 (1H, m), 7.35-7.30 (2H, m), 7.27-7.21 (3H, m), 6. 66 (1H, d, J = 8.8 Hz), 6.52 (2H, s), 5.11 (1H, d, J = 12.1), 5.02 (1H, d, J = 12. 1 Hz), 4.58 (1H, dd, J = 8.8, 4.8 Hz), 4.05 (1H, d, J = 5.9 Hz, minor), 4.01 (1H, d, J = 5.9 Hz, major), 3.98-3.91 (7 H, m), 3.66 (1 H, d, J = 10.0 Hz), 3.32 (1 H, dd, J = 13. 6, 3.9 Hz), 2.67 (1H, dd, J = 13.6, 10.0 Hz), 2.24-2.15 (1H, m), 1.82-1.69 (6H) M), 1.50-1.39 (6H, ), 1.37-1.21 (84H, br), 0.92 (3H, d, J = 6.8 Hz), 0.90-0.85 (12H, m);13C-NMR (150 MHz) δ: 175.2, 171.5, 168.9, 153.1, 151.4, 137.7, 129.2, 128.8, 126.9, 125.5, 107 0.0, 73.5, 69.2, 67.5, 57.2, 56.5, 43.4, 40.9, 32.0, 31.3, 30.4, 29.8, 29.7 29.5, 29.4, 26.2, 22.8, 19.1, 17.7, 14.2; MALDI TOF-MS (pos) C77H137NThreeO7[M + Na]+Calculated value 1239, experimental value 1239
[0030]
Example 2
Liquid phase synthesis of [SC] -valine-phenylalanine-Fmoc ([SC] -Val-Phe-Fmoc)
Fmoc-Phe 63 mg, HOBt 63 mg, and diisopropylcarbodiimide (DIPCD) 25 mg are dissolved in 2 mL of DMF and stirred at room temperature for 150 minutes. This solution is used as an activated Fmoc-Phe / DMF solution. That is, after 2 mL of this solution was cooled to 5 ° C., [SC] -Val-NH obtained in Step 1) of Example 12/ Add cyclohexane solution (2 mL). The reaction solution is gently raised from 5 ° C. to 50 ° C. over 1 hour, and further left at 50 ° C. for 30 minutes. Finally, when the reaction solution is cooled to room temperature, it separates into two layers again, so that the desired product [SC] -Val-Phe-Fmoc) is separated from the upper layer (cyclohexane layer).
By repeating the above operation, amino acids are sequentially bound to the soluble carrier, and the target peptide is synthesized.
[0031]
Example 3
[SC] -Valine-Proline-Fmoc ([SC] -Val-Pro-Fmoc)
Liquid phase synthesis
Fmoc-Pro 53 mg, HOBt 57 mg and diisopropylcarbodiimide (DIPCD) 25 mg are dissolved in 2 mL of DMF and stirred at room temperature for 150 minutes. This solution is used as an activated Fmoc-Pro-OH / DMF solution. That is, 2 ml of this solution was cooled to 5 ° C., and then [SC] -Val-NH obtained in 1) of Example 12/ Add cyclohexane solution (2 ml). The reaction solution is gently raised from 5 ° C. to 50 ° C. over 1 hour, and further left at 50 ° C. for 30 minutes. Finally, when the reaction solution is cooled to room temperature, it separates into two layers again, so that the desired product [SC] -Val-Pro-Fmoc) is separated from the upper layer (cyclohexane layer).
By repeating the above operation, amino acids are sequentially bound to the soluble carrier, and the target peptide is synthesized.
[0032]
Example 4
Soluble carrier-valine-alanine-Fmoc ([SC] -Val-Ala-Fmoc)
Liquid phase synthesis
Fmoc-Ala 50 mg, HOBt 53 mg, and diisopropylcarbodiimide (DIPCD) 25 mg are dissolved in 2 mL of DMF and stirred at room temperature for 150 minutes. This solution is used as an activated Fmoc-Ala-OH / DMF solution. That is, after 2 mL of this solution was cooled to 5 ° C., [SC] -Val-NH obtained in Step 1) of Example 12/ Add cyclohexane solution (2 ml). The reaction solution is gently raised from 5 ° C. to 50 ° C. over 1 hour, and further left at 50 ° C. for 30 minutes. Finally, when the reaction solution is cooled to room temperature, it separates into two layers again, so that the desired product [SC] -Val-Ala-Fmoc) is separated from the upper layer (cyclohexane layer).
By repeating the above operation, amino acids are sequentially bound to the soluble carrier, and the target peptide is synthesized.
[0033]
【The invention's effect】
As described above, according to the method of the present invention, as the compound into which the amino acid residue at the carboxy terminus of the peptide to be synthesized is introduced, the compound bound to itself and the peptide is soluble in one solvent constituting the reaction solvent system. In combination with the carrier, a liquid phase peptide synthesis method that is easier to control and easier to recover the reaction product than the solid phase reaction peptide synthesis is provided. It is.
[Brief description of the drawings]
FIG. 1 is an outline of one embodiment of the liquid phase peptide synthesis method of the present invention.
Claims (6)
Priority Applications (7)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2001385493A JP4283469B2 (en) | 2001-12-19 | 2001-12-19 | Compatibility-Liquid Phase Peptide Synthesis Method with Sequential Addition of Amino Acids by Multiphase Organic Solvent System |
| PCT/JP2002/008501 WO2003018188A1 (en) | 2001-08-24 | 2002-08-23 | Compatible-multiphase organic solvent system |
| US10/486,383 US20040214989A1 (en) | 2001-08-24 | 2002-08-23 | Compatible-multiphase organic solvent system |
| DE60238846T DE60238846D1 (en) | 2001-08-24 | 2002-08-23 | COMPATIBLE MULTIPHASE ORGANIC SOLVENT SYSTEM |
| EP02767852A EP1426101B1 (en) | 2001-08-24 | 2002-08-23 | Compatible-multiphase organic solvent system |
| CNB02820915XA CN1289182C (en) | 2001-08-24 | 2002-08-23 | Compatible-multiphase organic solvent system |
| US11/556,492 US8344103B2 (en) | 2001-08-24 | 2006-11-03 | Compatible-multiphase organic solvent system |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2001385493A JP4283469B2 (en) | 2001-12-19 | 2001-12-19 | Compatibility-Liquid Phase Peptide Synthesis Method with Sequential Addition of Amino Acids by Multiphase Organic Solvent System |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JP2003183298A JP2003183298A (en) | 2003-07-03 |
| JP4283469B2 true JP4283469B2 (en) | 2009-06-24 |
Family
ID=27594894
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2001385493A Expired - Fee Related JP4283469B2 (en) | 2001-08-24 | 2001-12-19 | Compatibility-Liquid Phase Peptide Synthesis Method with Sequential Addition of Amino Acids by Multiphase Organic Solvent System |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP4283469B2 (en) |
Families Citing this family (13)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN1753725A (en) * | 2003-02-24 | 2006-03-29 | 东京农工大学Tlo株式会社 | Chemical processes by the use of combinations of solvents capable of taking reversibly homogeneously mixed state and separated state dependently on temperature |
| JP4124361B2 (en) * | 2004-02-16 | 2008-07-23 | 農工大ティー・エル・オー株式会社 | Methods for separating chemical substances |
| JP4534024B2 (en) * | 2004-07-02 | 2010-09-01 | 農工大ティー・エル・オー株式会社 | Compound separation carrier and compound separation method |
| ES2615083T3 (en) | 2005-09-20 | 2017-06-05 | Jitsubo Co., Ltd. | Separation vehicle, compound separation method, and peptide synthesis method using the vehicle |
| ES2546808T3 (en) * | 2006-03-24 | 2015-09-28 | Jitsubo Co., Ltd. | Reagent for organic synthesis and reaction method of organic synthesis with said reagent |
| JP2007332137A (en) * | 2006-05-19 | 2007-12-27 | Jitsubo Co Ltd | Nanomicelle-containing composite solvent and organic synthesis reaction method using the same |
| GB0814519D0 (en) * | 2008-08-08 | 2008-09-17 | Imp Innovations Ltd | Process |
| JP4490498B2 (en) | 2008-09-30 | 2010-06-23 | 新田ゼラチン株式会社 | Disease inhibitor |
| CN107406480B (en) * | 2015-03-04 | 2022-06-24 | Jitsubo株式会社 | Peptide synthesis method |
| CN108697770B (en) * | 2015-12-21 | 2023-08-01 | 得克萨斯技术大学联合体 | System and method for solution phase GAP peptide synthesis |
| JP6703668B2 (en) | 2018-04-13 | 2020-06-03 | Jitsubo株式会社 | Peptide synthesis method |
| US12024537B2 (en) | 2018-05-31 | 2024-07-02 | Sederma | Compositions and methods for chemical synthesis |
| WO2020159837A1 (en) | 2019-02-01 | 2020-08-06 | Gap Peptides Llc | Synthesis strategy for gap protecting group |
-
2001
- 2001-12-19 JP JP2001385493A patent/JP4283469B2/en not_active Expired - Fee Related
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JP2003183298A (en) | 2003-07-03 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| JP4283469B2 (en) | Compatibility-Liquid Phase Peptide Synthesis Method with Sequential Addition of Amino Acids by Multiphase Organic Solvent System | |
| US9284348B2 (en) | Method for synthesis of peptide using a carrier | |
| KR102479601B1 (en) | System and method for solution phase gap peptide synthesis | |
| JP2003055396A (en) | Method for rapid solution synthesis of peptides | |
| EP1426101B1 (en) | Compatible-multiphase organic solvent system | |
| IL278412B1 (en) | Method for solution-phase peptide synthesis and protecting strategies therefore | |
| WO2022115825A1 (en) | Compositions and methods for chemical synthesis | |
| CN114901673B (en) | Preparation method of solution phase peptide nucleic acid oligomer | |
| JP4082451B2 (en) | Liquid phase peptide synthesizer | |
| JP5068960B2 (en) | Optically active ligand | |
| JP4950436B2 (en) | Highly fluorinated alcohol derivatives and easy to reuse | |
| CN105949279A (en) | Method for preparing proteasome inhibitor Oprozomib and analogs thereof | |
| JP2011173822A (en) | Metal complex array, method for producing the same and material | |
| JP7625769B1 (en) | Method for producing peptide compounds using novel silyl tags | |
| WO2020228097A1 (en) | Cyclic peptide compound simulating natural product structure, and method for preparation thereof | |
| WO2023136301A1 (en) | Peptide compound production method | |
| CN121990981A (en) | A soluble liquid carrier for polypeptide liquid-phase synthesis and its application | |
| WO2026006411A1 (en) | Selectively soluble citric acid-derived supports for liquid-phase peptide and oligonucleotide synthesis | |
| CN101389599A (en) | modified amino acid | |
| JP3576044B2 (en) | Polyamine solid phase synthesis reaction method and solid phase reaction support | |
| JPH0967341A (en) | New tryptophan derivative and its production | |
| JP2004131452A (en) | Highly fluorinated derivative capable of binding carboxyl group and method for producing peptide using the same |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| RD03 | Notification of appointment of power of attorney |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A7423 Effective date: 20031210 |
|
| A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20070612 |
|
| A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20090120 |
|
| TRDD | Decision of grant or rejection written | ||
| A01 | Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01 Effective date: 20090317 |
|
| A01 | Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01 |
|
| A61 | First payment of annual fees (during grant procedure) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61 Effective date: 20090319 |
|
| R150 | Certificate of patent or registration of utility model |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20120327 Year of fee payment: 3 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20120327 Year of fee payment: 3 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20130327 Year of fee payment: 4 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20130327 Year of fee payment: 4 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20140327 Year of fee payment: 5 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| S533 | Written request for registration of change of name |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R313533 |
|
| R350 | Written notification of registration of transfer |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R350 |
|
| LAPS | Cancellation because of no payment of annual fees |