JP4870469B2 - ペプチド - Google Patents
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Description
さらに、本発明は、乳タンパク質に由来するアディポネクチン産生促進作用を有するペプチドに関する。さらにまた、本発明は、該ペプチドを有効成分とするアディポネクチン産生促進剤および該ペプチドを配合したアディポネクチン産生促進用飲食品または飼料に関する。
脂肪組織に由来する内分泌因子の一つであるアディポネクチン(Adiponectin)は、244個のアミノ酸よりなる、30kDaのホルモンで、動脈硬化抑制作用などのほかに、肝臓や筋肉における脂肪燃焼を促進する効果があると言われている。また、アディポネクチンには血液中のブドウ糖と脂肪酸が細胞内に取り込まれるのを促進する働きを持っていることが明らかにされている。筋肉や肝臓などに脂肪がたまると、糖分の取り込みが悪くなり糖尿病につながる。しかし、通常、アディポネクチンは、一時的に過剰となった脂肪や糖分を分解することで、体内の栄養バランスを保つとみられ、肥満が進むと、アディポネクチンを分泌する脂肪細胞の働きが弱くなり、体内の栄養バランスが崩れてしまうと言われている。
最近では、合成医薬品による治療よりは、食生活を通じて病状の進展を出来るだけ抑制するような機能を持った食品成分に対する研究も注目されるようになってきている。
アディポネクチンに関しては、アディポネクチンによる肝線維化抑制や正常肝細胞増殖促進効果や抗炎症効果(例えば、特許文献6参照。)が知られており、飲食品由来のアディポネクチン産生促進物としては発酵茶抽出物を有効成分とする組成物(例えば、特許文献7参照。)、アムラーというコミカンソウ属に属する落葉の亜高木抽出物からなる血中脂肪組織特異分泌蛋白増強組成物(例えば、特許文献8参照。)が開示されている。
His-Pro-Ile-Lys-His-Gln-Gly-Leu-Pro-Gln 式(1)
His-Pro-Ile-Lys 式(2)
His-Gln-Gly-Leu-Pro-Gln 式(3)
すなわち、本発明は、上記の式(1)〜(3)のいずれかで表されるアミノ酸配列からなる抗酸化作用を持つペプチドに関する。
また、本発明は、乳タンパク質に由来する式(1)〜(3)のいずれかで表されるアミノ酸配列からなる抗酸化作用を持つペプチドに関する。
さらに、本発明は、式(1)〜(3)のいずれかで表される1以上のペプチドを有効成分とする抗酸化剤に関する。
さらにまた、本発明は、式(1)〜(3)のいずれかで表される1以上のペプチドを配合した抗酸化用飲食品または飼料に関する。
加えるに、本発明者らは、上記の式(1)で表されるアミノ酸配列からなるペプチドはアディポネクチンの産生を促進する効果があり、しかも低用量で効果を有することを見出し、本発明を完成するに至った。
すなわち、本発明は、上記の式(1)で表されるアミノ酸配列からなるアディポネクチン産生促進作用を持つペプチドに関する。
また、本発明は、乳タンパク質に由来する式(1)で表されるアミノ酸配列からなるアディポネクチン産生促進作用を持つペプチドに関する。
さらに、本発明は、式(1)で表されるペプチドを有効成分とするアディポネクチン産生促進剤に関する。
さらにまた、本発明は、式(1)で表されるペプチドを配合したアディポネクチン産生促進用飲食品または飼料に関する。
また、本発明の式(1)で表されるアミノ酸配列からなるアディポネクチン産生促進作用を持つペプチドは、アディポネクチンの産生を促進するのに有効であり、このペプチドを有効成分とするアディポネクチン産生促進剤として、また、このペプチドを配合したアディポネクチン産生促進用飲食品または飼料として有用である。
さらに、このペプチドを含む画分を蒸留水で溶解した後、YMC-Pack ODS-Aカラム(4.6mm×150mm;YMC社)を用いて逆相HPLCに供してペプチドを分画する。クロマトグラフィーは、溶媒(A液:50mM酢酸アンモニウム水溶液;B液:80%アセトニトリル)、濃度勾配(12%B→60%B,60min)、流速0.8ml/min、検出波長215nmの条件で行うことが望ましい。
ゴーダチーズ40gに蒸留水160mlを加え、ワーリングブレンダー(日本精機製作所)で15分間摩砕した後、ポリトロンホモジナイザー(キネマチカ社)で30秒間さらに破砕した。破砕時に生じた乳脂肪を取り除き、得られたチーズスラリーから遠心分離(6,000×g、20min、4℃)で不溶物を除き、上清をろ紙(No.113;ワットマン社)によりろ過した。 得られたろ過液にエタノールを70%濃度になるように加え、4℃で一晩静置した後、遠心分離(9,000×g、20min、4℃)により不溶物を除去し、エバポレーターでエタノールを除いた後、凍結乾燥してゴーダチーズの水溶性ペプチド画分を得た。
この水溶性ペプチド画分を蒸留水で溶解した後、YMC-Pack ODS-Aカラム(YMC社;4.6mm×150mm)を用いて逆相HPLCに供し、水溶性ペプチド精製画分に分画した。クロマトグラフィーは、溶媒(A液:50mM酢酸アンモニウム水溶液;B液:80%アセトニトリル)、濃度勾配(12%B→60%B,60 min)、流速0.8ml/min、検出波長215nmの条件で行った。結果を図1に示す。分画した画分の抗酸化活性を以下に示す試験例1の方法で測定したところ、クロマトグラムの矢印の画分に強い抗酸化活性が確認された。
得られたゴーダチーズのペプチドについて、液体クロマトグラフ質量分析計(サーモエレクトロン社)を用いて分子量を推定し、ペプチドシークエンサー(アプライド・バイオシステムズ社)でアミノ酸配列を解析したところ、図1の矢印で示される6番がHis-Pro-Ile-Lys-His-Gln-Gly-Leu-Pro-Glnなる配列であることが確認された。
このようにして得られたペプチドは、そのまま本発明の抗酸化剤あるいはアディポネクチン産生促進剤として利用可能である。
(ペプチドの抗酸化活性測定)
実施例1で分画したペプチドについて、リノール酸の酸化物がβ-カロテンを退色させる作用を利用する方法で抗酸化活性を測定した。すなわち、β-カロテン溶液(1mg/mlクロロホルム)0.5ml、リノール酸溶液(100mg/mlクロロホルム)0.2ml、ツイーン40溶液(200mg/mlクロロホルム)1.0mlを300 m1の三角フラスコに入れ、窒素ガスでクロロホルムを完全に除去した後、100mlの蒸留水を加えて溶解した。さらに、0.2Mリン酸緩衝液(pH7.0) 9.0 mlを添加して、リノール酸・β-カロテン溶液を調製した。次に、あらかじめペプチド画分0.02 mlを分注した98穴マイクロウェルプレートに、上記のリノール酸・β-カロテン溶液0.18 mlを加え、直ちに490 nmの吸光度(S0)を測定した。なお、リノール酸・β-カロテン溶液の調製に際しては、S0が1.2程度(1.1〜1.3)になるようにβ-カロテン溶液の添加量を適宜増減した。S0測定後、直ちにマイクロウェルプレートを50℃の恒温槽に入れ、30分間インキュベートした。インキュベート終了後、直ちに吸光度(S30)を測定し、30分間における490 nmの吸光度の低下量、ΔS=S0−S30を算出した。ブランクには試料の代わりに70%エタノールを用い、同様の操作を行なった。すなわち、リノール酸・β-カロテン溶液を加えた直後の吸光度(B0)、及び50℃、30分間保持した後の吸光度(B30)を測定し、30分間における490 nmの吸光度の低下量、ΔB=B0−B30を求めた。抗酸化活性は次の式に代入し、抗酸化率(%)として表した。
抗酸化率(%)=〔ΔB−ΔS〕/(ΔB)×100
抗酸化活性(%)
----------------------------------------------------------------------
サンプル濃度 (μg/ml) 0.01 0.1 1
----------------------------------------------------------------------
カルノシン (Ala-His) 32.9 57.8 78.3
His-Pro-Ile-Lys-His-Gln-Gly-Leu-Pro-Gln 13.0 41.0 64.6
----------------------------------------------------------------------
以上、本試験例の結果によりHis-Pro-Ile-Lys-His-Gln-Gly-Leu-Pro-Glnで表されるアミノ酸配列からなるチーズ由来のペプチドには抗酸化活性(ラジカルスカベンジャー活性)が認められ、活性酸素や過酸化脂質による酸化的細胞障害の予防・改善に有用であることがわかった。
上記の式(1)で表されるアミノ酸配列からなるペプチドについて、ペプチドシンセサイザーにて合成を行った。ペプチドシンセサイザー431A(アプライド・バイオシステムズ社)により、パラヒドロキシメチルフェノキシメチルポリスチレン(HMP)樹脂を用い、9−フルオレニルメチルオキシカルボニル(Fmoc)基をアミノ末端の保護基としてC末端側からペプチド鎖を順次延長することにより0.25mmolスケールで直鎖保護ペプチドを合成した。得られたHMP樹脂結合保護ペプチドをフェノール、1,2−エタンジチオール、チオアニソール存在下、トリフルオロ酢酸(TFA)によりペプチドのHMP樹脂からの切り離しと保護基の除去を同時に行った。減圧濃縮によりTFAを除去した後、エチルエーテルで粗ペプチドを結晶化させ、これを5%酢酸に溶解し凍結乾燥を行った。
得られた直鎖粗ペプチドを、YMC-Pack ODS-Aカラム(YMC社;4.6mm×150mm)を用いたHPLCに供した。クロマトグラフィーは、溶媒(A液:50 mmol 酢酸アンモニウム水溶液;B液:80%アセトニトリル)、濃度勾配(12%B→60%B,60 min)、流速0.8ml/min、検出波長215nmの条件で行った。得られた直鎖精製ペプチドの純度は、HPLCによる分析の結果98%であった。結果を図2に示す。
このようにして得られたペプチドは、そのまま本発明の抗酸化剤あるいはアディポネクチン産生促進剤としてとして利用可能である。
(合成ペプチドの抗酸化活性測定)
実施例2で得られたペプチドについて試験例1と同様の方法で抗酸化活性を測定した。ポジティブコントロールとして、筋肉由来抗酸化活性ペプチドであるカルノシン(β-Ala-L-His;ペプチド研究所)及びカテキン(和光純薬工業社)を1μm、10μm、100μm、に調製したものを用いた。合成ペプチドの抗酸化活性を評価した結果を表2及び図3に示す。表2及び図3に示されるように、得られた合成ペプチドに強い抗酸化活性が確認された。
抗酸化活性(%)
---------------------------------------------------------------------
サンプル濃度 (μm) 1 10 100
---------------------------------------------------------------------
カテキン 52.65 84.45 97.17
カルノシン 7.07 21.2 48.41
合成ペプチド 32.86 61.13 63.6
---------------------------------------------------------------------
実施例2で得られたペプチドのトリプシン消化物を調製した。
実施例2で得られたペプチドおよびトリプシン(シグマアルドリッチジャパン社)を、それぞれ1mg/mlになるように酵素反応溶液(50 mM Tris-HCl、20mM CaCl2、pH8.0)に溶解した。ペプチド溶液500μlに、トリプシン溶液を5μl添加して、37℃で2時間反応させた後、さらにトリプシン溶液を5μlを加えて、37℃で18時間反応させてトリプシン消化物を得た。
このトリプシン消化物を蒸留水で溶解した後、YMC-Pack ODS-Aカラム(YMC社;4.6mm×150mm)を用いてHPLCに供した。HPLC分析は実施例2のトリプシン消化前のペプチドと同じ条件で行った。結果を図4に示す。図に示されるように2つのピークに分かれた。
トリプシンで分解された2つのフラグメント(His-Pro-Ile-Lys、ペプチド1)及び(His-Gln-Gly-Leu-Pro-Gln、ペプチド2)に相当する2つのピークを、それぞれ10回分回収し、遠心エバポレーターを用いて乾燥して、トリプシン消化物である2種のペプチドを得た。得られた2種のペプチド及び分画前のトリプシン消化物の抗酸化活性を以下に示す試験例3の方法で測定したところ、図5に示されるように、合成ペプチドに強い抗酸化活性が確認された。
このようにして得られた抗酸化作用を持つペプチドは、そのまま本発明の抗酸化剤として利用可能である。
(ペプチドの抗酸化活性測定)
実施例3で得られたトリプシン消化物である2種のペプチド及び分画前のトリプシン消化物について試験例2と同様にカロテン退色法を用いて抗酸化活性を測定した。ペプチド濃度はそれぞれのペプチドを500μlの純水に溶解して、Micro BCA Protein assay kit(ピアース社)を用いて測定した。ポジティブコントロールとして、試験例2と同様に、カルノシン(β-Ala-L-His;ペプチド研究所)及びカテキン(和光純薬工業社)を用いた。各フラグメントについて1ng/ml、10ng/ml、100ng/mlの希釈系列を調製し、βカロテン退色法を用いて抗酸化活性を評価した。トリプシン消化ペプチドの抗酸化活性を評価した結果を図5に示す。図5に示されるように、得られたトリプシン消化ペプチドに強い抗酸化活性が確認された。
(ペプチドの脂肪細胞投与実験)
実施例1で得られたチーズから分離されたペプチドについて、初代培養内蔵脂肪細胞への投与実験を行った。
ラットの初代培養内臓脂肪細胞(VAC01、セルガレージ社)及び内蔵脂肪細胞分化誘導培地(セルガレージ社)を用いて実験を行った。セルガレージ社のプロトコルに従って凍結保存した細胞を融解し、24穴プレートに播種した日をday0とし、day2、day5、day7に合成ペプチドを溶解した培地(ペプチド濃度:100μM、50μM、10μM、0μM)を加え、8日間培養した。day5、day7、day8に培養上清を回収し、アディポネクチン濃度を測定した。また、day8に細胞を回収し、細胞内のグリセロール 3-リン酸脱水素酵素(GPDH)酵素活性及び各ウエルのDNA量、細胞内蓄積脂肪量を測定した。GPDHはグルコースからトリグリセリドを合成する際に働く酵素で、成熟脂肪細胞が発現する。今回の培養系では、脂肪前駆細胞を分化させると同時に本発明のペプチドを投与してその影響を見た。
DNA量は、セルガレージ社のDNA定量キットを用い、定量を行った。
細胞内のグリセロール 3-リン酸脱水素酵素(GPDH)酵素活性は、セルガレージ社のGPDH活性測定キットを用い、セルガレージ社プロトコルに従って測定を行った。測定結果は各ウエルから抽出したDNA量で標準化した。
アディポネクチン濃度の測定は、大塚製薬社のアディポネクチンELISAキットを用い、培養上清中のアディポネクチン濃度を測定した。測定結果は各ウエルから抽出したDNA量で標準化した。
細胞内蓄積脂肪の定量は、セルガレージ社の脂肪染色キットを用い、オイルレッド0による脂肪染色および吸光度測定による蓄積脂肪定量を行った。
各ウエルの細胞由来DNAを定量した結果、Student`s t-testでは、本発明ペプチド無添加群と添加群の細胞DNA量に有意差は検出されなかった。
GPDH活性(単位DNA量あたり)を測定した結果、各ウエルの細胞DNA量で標準化したGPDH活性において、ペプチド無添加群よりも本発明ペプチド10μMまたは50μM添加群で有意に高い活性が見られた。ペプチド100μM添加群と、無添加群との有意な差は検出されなかった。
培養日数によるアディポネクチン濃度変化の測定結果では、培養7日目でアディポネクチン産生量は最大になるが、8日目では急激に減少することがわかった。培養上清中のアディポネクチン濃度が最も高かったday7で、投与したペプチド濃度の違いによるアディポネクチン産生量の違い(単位DNA量あたり)を図6に示す。
ペプチド無添加で培養した細胞よりもペプチドを添加した細胞のほうが、アディポネクチンを有意に多く産生していた。この傾向は、特にペプチド濃度10μMもしくは50μMで添加したものにおいて顕著に見られた。
培養8日目に、オイルレッド0による脂肪染色および吸光度測定による蓄積脂肪量の定量を行った結果を図7に示す。
脂肪細胞の染色には固定が必要であるため、脂肪定量を行ったウエルの細胞数(細胞DNA量)を定量することはできない。しかし、同じ条件で培養した細胞のDNA定量結果から、ペプチド添加による細胞数への影響が見られなかったことから、各ウエルにはほぼ同数の細胞が存在すると推測される。Student`s t-testでは、ペプチド無添加で培養したものと、ペプチドを加えて培養したものの脂肪蓄積量に有意な差は見られなかったが、ペプチドを100μM添加した細胞では、図7に示されるように脂肪蓄積量がやや減少する傾向が見られた。
脂肪前駆細胞に本発明のペプチドを10〜50μM添加して培養すると
(1)GPDH活性が上がり、
(2)アディポネクチン産生量も増加するが、
(3)脂肪蓄積量には変化がなかった。
この場合、ペプチド添加によって脂肪前駆細胞から脂肪細胞への分化が促進されているか、もしくは分化した熟成脂肪細胞における脂肪合成活性が促進されていると考えられる。しかしながら、ペプチド無添加の細胞と脂肪蓄積量には差がなかったことから、何らかの別の分子メカニズムにより、合成された脂肪は分解されている可能性がある。アディポネクチンは、成熟脂肪細胞から分泌される善玉サイトカインであり、本発明のペプチド添加によってこのアディポネクチン産生促進効果が確認された。以上のことから、本発明のペプチドには、脂肪前駆細胞から脂肪細胞への機能的分化を促し、アディポネクチンの産生量を増加させる作用があることが認められ、また、細胞への脂肪蓄積は抑制する効果がある可能性が示唆された。
アディポネクチンには動脈硬化抑制作用などのほかに、肝臓や筋肉における脂肪燃焼を促進する効果があると言われている。本発明のペプチドには、アディポネクチンを産生しやすい脂肪細胞をつくり、メタボリックシンドロームを予防する働きがあることが考えられる。
一方、脂肪前駆細胞に本発明のペプチドを100μM添加して培養すると
(1)GPDH活性には変化がなく、
(2)アディポネクチン産生量は増加し、
(3)脂肪蓄積量には変化がない(有意な差はないが、減少傾向が見られるようである)。
これらの結果から、脂肪細胞に対する本発明のペプチドの効果には濃度によって違いがあり、至適濃度が存在する可能性が示唆された。いずれにしても、本発明のペプチド添加により、アディポネクチン産生量を促進する作用が確認された。また、脂肪蓄積量抑制効果があることには違いなく、本発明ペプチドにメタボリックシンドローム予防効果がある可能性が示された。
なお、このHis-Pro-Ile-Lys-His-Gln-Gly-Leu-Pro-Glnで表されるアミノ酸配列からなるペプチドのトリプシン分解物であるHis-Pro-Ile-Lys及びHis-Gln-Gly-Leu-Pro-Glnで表されるアミノ酸配列からなるペプチドについても、同様のアディポネクチン産生量を促進する作用が確認された。
実施例1で得られた抗酸化ペプチド(His-Pro-Ile-Lys-His-Gln-Gly-Leu-Pro -Gln)20重量%、乳糖(DMV社)46重量%、結晶セルロース(和光純薬工業社)31重量%、水3重量部を十分混合した後、打錠機(富士薬品機械社製)により打錠し、本発明の抗酸化用錠剤を製造した。
表3に示した組成で各成分を混合し、容器に充填した後、加熱殺菌して、本発明の実施例2で得られた合成抗酸化ペプチド(His-Pro-Ile-Lys-His-Gln-Gly- Leu-Pro-Gln)を配合した本発明の抗酸化用果汁飲料を製造した。
-----------------------------------------------------------
混合異性化糖 15.4 (重量%)
果汁 10.0
クエン酸 0.5
抗酸化ペプチド
(His-Pro-Ile-Lys-His-Gln-Gly-Leu-Pro-Gln) 0.1
香料 0.2
水 73.8
-----------------------------------------------------------
表4に示した組成で各成分を混合し、容器に充填した後、加熱殺菌して、本発明の実施例3で得られたトリプシン消化ペプチド(His-Gln-Gly-Leu-Pro-Gln)を配合した本発明の抗酸化用清涼飲料水を製造した。
---------------------------------------------------------
マルチトール 7.5 (重量%)
50%乳酸溶液 0.12
抗酸化ペプチド(His-Gln-Gly-Leu-Pro-Gln) 0.1
香料 0.2
水 92.08
----------------------------------------------------------
表5に示した組成で各成分を混合し、容器に充填した後、加熱殺菌して、本発明の実施例3で得られたトリプシン消化ペプチド(His-Gln-Gly-Leu-Pro-Gln及びHis-Pro-Ile-Lys)を配合した本発明の抗酸化用清涼飲料水を製造した。
--------------------------------------------------------
マルチトール 7.5 (重量%)
50%乳酸溶液 0.12
抗酸化ペプチド(His-Pro-Ile-Lys) 0.05
抗酸化ペプチド(His-Gln-Gly-Leu-Pro-Gln) 0.05
香料 0.2
水 92.08
---------------------------------------------------------
表6に示す組成のドウを作成し、成形した後、焙焼して本発明の実施例1で得られたペプチド(His-Pro-Ile-Lys-His-Gln-Gly-Leu-Pro-Gln )を配合した本発明の抗酸化用ビスケットを製造した。
[表6]
--------------------------------------------------------
小麦粉 51.0 (重量%)
砂糖 20.0
食塩 0.5
マーガリン 12.5
卵 12.5
水 2.5
ミネラル混合物 0.8
抗酸化ペプチド(実施例1) 0.2
------------------------------------------------------
表7に示す組成で各成分を混合し、本発明の実施例1で得られた抗酸化ペプチド(His-Pro-Ile-Lys-His-Gln-Gly-Leu-Pro-Gln )を配合した本発明のイヌ飼育用飼料を製造した。
----------------------------------------------------
大豆粕 12.0 (重量%)
脱脂粉乳 14.9
大豆油 4.0
コーン油 2.0
パーム油 28.0
とうもろこし澱粉 15.0
小麦粉 8.0
ふすま 2.0
ビタミン混合物 9.0
ミネラル混合物 2.0
セルロース 3.0
抗酸化ペプチド(実施例1) 0.1
----------------------------------------------------
実施例1で得られた抗酸化ペプチド(His-Pro-Ile-Lys-His-Gln-Gly-Leu-Pro -Gln)20重量%、乳糖(DMV社)46重量%、結晶セルロース(和光純薬工業社)31重量%、水3重量部を十分混合した後、打錠機(富士薬品機械社)により打錠し、本発明のアディポネクチン産生促進用錠剤を製造した。
表8に示した組成で各成分を混合し、容器に充填した後、加熱殺菌して、本発明の実施例2で得られた合成ペプチド(His-Pro-Ile-Lys-His-Gln-Gly- Leu-Pro-Gln)を配合した本発明のアディポネクチン産生促進用果汁飲料を製造した。
[表8]
-------------------------------------------------------------
混合異性化糖 15.4 (重量%)
果汁 10.0
クエン酸 0.5
ペプチド
(His-Pro-Ile-Lys-His-Gln-Gly-Leu-Pro-Gln) 0.1
香料 0.2
水 73.8
--------------------------------------------------------------
[図4]図中1は本発明のHis-Pro-Ile-Lysなるアミノ酸配列を、図中2は本発明のHis-Gln-Gly-Leu-Pro-Glnなるアミノ酸配列を示す。
[図5]ペプチド消化物1は本発明のHis-Pro-Ile-Lysなるアミノ酸配列を、ペプチド消化物2は本発明のHis-Gln-Gly-Leu-Pro-Glnなるアミノ酸配列を示す。
Claims (1)
- 次の式(1)から(3)で表されるアミノ酸配列からなるペプチドの1以上のペプチドを有効成分とする抗酸化剤。
His-Pro-Ile-Lys-His-Gln-Gly-Leu-Pro-Gln 式(1)
His-Pro-Ile-Lys 式(2)
His-Gln-Gly-Leu-Pro-Gln 式(3)
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