JP4899147B2 - ペプチド - Google Patents
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Phe-Gln-Ser-Glu-Glu-Gln 式(1)
ただし、セリン(Ser)についてはリン酸化されていても良い。
Phe-Gln-Ser-Glu-Glu 式(2)
ただし、セリン(Ser)についてはリン酸化されていても良い。
Tyr-Leu-Lys-Thr-Val-Tyr-Gln-His-Gln 式(3)
Met-His-Gln-Pro-His-Gln 式(4)
Asp-Lys-Ile-His-Pro 式(5)
Asp-Lys-His-Tyr 式(6)
Ile-His 式(7)
すなわち、本発明は、上記の式(1)〜(7)で表されるアミノ酸配列からなる抗酸化作用を持つペプチドに関する。
また、本発明は、乳タンパク質に由来する式(1)〜(7)で表されるアミノ酸配列からなる抗酸化作用を持つペプチドに関する。
さらに、本発明は、式(1)〜(7)で表されるペプチドを有効成分とする抗酸化剤に関する。
さらにまた、本発明は、式(1)〜(7)で表されるペプチドを配合した抗酸化用飲食品または飼料に関する。
さらに、このペプチドを含む画分を0.05%TFAで溶解した後、YMC-Pack ODS-Aカラム(4.6mm x 150mm)を用いて逆相HPLCに供してペプチドを分画する。クロマトグラフィーは、溶媒(A液:0.05%TFA;B液:100%アセトニトリル)、濃度勾配(0%B⇒45%B,125 min)、流速0.8ml/min、検出波長220nmの条件で行うことが望ましい。
ペプチドをそのまま配合することができるし、透析膜やイオン交換樹脂等によって脱塩を行ったもの、さらに、凍結乾燥や噴霧乾燥等によって乾燥を行い粉末化したものも配合することができる。また、合成して得られたペプチドについても利用可能である。
は、錠剤、カプセル剤、細粒剤、散剤、丸剤、トローチ、舌下剤または液剤等の経口投与用の製剤、あるいは、注射剤、座剤等の非経口投与用の製剤を例示することができる。
ブルーチーズ20gに蒸留水80mlを加え、ストマッカー(オルガノ社)で15分間摩砕した後、水中においてウルトラディスパーサー(ULTRA-TURRAX、T-25;IKAジャパン社)で30秒間さらに破砕した。 破砕時に生じた乳脂肪を取り除き、得られたチーズスラリーを振盪機で30分間振盪した後、遠心分離(6,000rpm、20min、4℃)で不溶物を除き、上清をろ紙(No.113;ワットマン社)によりろ過した。 得られたろ過液にエタノールを70%濃度になるように加え、4℃で4時間静置した後、遠心分離(10,000rpm、20min、4℃)により不溶物を除去し、エバポレーターでエタノールを除いた後、凍結乾燥してブルーチーズの水溶性ペプチド画分を得た。
この水溶性ペプチド画分を0.05%TFAで溶解した後、YMC-Pack ODS-Aカラム(4.6mm x 150mm)を用いて逆相HPLCに供し、水溶性ペプチド精製画分に分画した。クロマトグラフィーは、溶媒(A液:0.05%TFA;B液:100%アセトニトリル)、濃度勾配(0%B⇒45%B,125 min)、流速0.8ml/min、検出波長220nmの条件で行った。結果を図1(Blueと示したクロマトグラム)に示す。これら分画した画分の抗酸化活性を以下に示す試験例1の方法で測定したところ、クロマトグラムの矢印の画分に強い抗酸化活性が確認された。
この強い抗酸化活性が確認された水溶性ペプチド精製画分をCosmosil 5C22-AR-II(4.6mm x 150mm)を用いて逆相HPLCに供し、更に分画しペプチドを得た。クロマトグラフィーは、溶媒(A液:0.1%TFA;B液:80%アセトニトリル)、濃度勾配(0%B⇒15%B,40 min)、流速0.8ml/min、検出波長220nmの条件でおこなった。結果を図2に示す。これら分画したペプチドの抗酸化活性を測定したところ、クロマトグラムの5、6、8、9、10の画分に強い抗酸化活性が確認された。
得られたブルーチーズのペプチドについて、ペプチドシークエンサー(アプライド・バイオシステムズ社)でアミノ酸配列を解析したところ、図2に示される5番がAsp-Lys-His-TyrおよびIle-His、6番がPhe-Gln-Ser-Glu-Glu-GlnおよびPhe-Gln-Ser-Glu-Glu、8番がTyr-Leu-Lys-Thr-Val-Tyr-Gln-His-Gln、9番がAsp-Lys-Ile-His-Pro、 10番がMet-His-Gln-Pro-His-Glnなる配列であることが確認された。
このようにして得られた本発明のペプチドは、そのまま抗酸化剤として利用可能である。
スターターとして乳酸菌を用いたボン・レヴェックチーズ及びミュンスターチーズ、乳酸菌と青カビを用いたブルーチーズ及びダナブルーチーズ、乳酸菌と白カビを用いたブリーチーズ及びカマンベールチーズについて、実施例1と同様にしてペプチドを調製した。
すなわち、前記の各種チーズ20gに蒸留水80mlを加え、ストマッカー(オルガノ社)で15分間摩砕した後、水中においてウルトラディスパーサー(ULTRA-TURRAX、T-25;IKAジャパン社)で30秒間さらに破砕した。 破砕時に生じた乳脂肪を取り除き、得られたチーズスラリーを振盪機で30分間振盪した後、遠心分離(6,000rpm、20min、4℃)で不溶物を除き、上清をろ紙(No.113;ワットマン社)によりろ過した。得られたろ過液にエタノールを70%濃度になるように加え、4℃で4時間静置した後、遠心分離(10,000rpm、20min、4℃)により不溶物を除去し、エバポレーターでエタノールを除いた後、凍結乾燥して各水溶性ペプチド画分を得た。
この各水溶性ペプチド画分を0.05%TFAで溶解した後、YMC-Pack ODS-Aカラム(4.6mm x 150mm)を用いて逆相HPLCに供し、各ペプチド精製画分にさらに分画した。クロマトグラフィーは、溶媒(A液:0.05%TFA;B液:100%アセトニトリル)、濃度勾配(0%B⇒45%B,125 min)、流速0.8ml/min、検出波長220nmの条件で行った。結果を図1に示す。これら分画した画分の抗酸化活性を以下に示す試験例1の方法で測定したところ、クロマトグラムの矢印の画分に強い抗酸化活性が確認された。
この強い抗酸化活性が確認された水溶性ペプチド精製画分を、Cosmosil 5C22-AR-II(4.6mm x 150mm)を用いて逆相HPLCに供し、更に分画しペプチドを得た。クロマトグラフィーは、溶媒(A液:0.1%TFA;B液:80%アセトニトリル)、濃度勾配(0% B⇒15%B,40 min)、流速0.8ml/min、検出波長220nmの条件で行ったところ、図2に示したブルーチーズと同様のクロマトグラムが得られ、抗酸化活性が確認された画分について実施例1と同様にしてアミノ酸配列を確認したところ、ブルーチーズの場合と同じペプチドであった。
このようにして得られた本発明のペプチドは、そのまま抗酸化剤として利用可能である。
実施例1及び実施例2で分画した水溶性ペプチド精製画分及びペプチドについて、リノール酸の酸化物がβ-カロテンを退色させる作用を利用する方法で抗酸化活性を測定した。すなわち、β-カロテン溶液(10mg/10mlクロロホルム) 0.5ml、リノール酸溶液(1g/10mlクロロホルム) 0.2ml、ツイーン40溶液(2g/10mlクロロホルム) 1.0mlを200m1の三角フラスコに入れ、窒素ガスでクロロホルムを完全に除去した後、100mlの蒸留水を加えて溶解した。さらに、0.2Mリン酸緩衝液(pH7.0) 8.9mlを添加して、リノール酸・β-カロテン溶液を調製した。次に、あらかじめ水溶性ペプチド画分0.1mlを分注した分光光度計用試験管セルに、上記のリノール酸・β-カロテン溶液4.9mlを加え、攪拌後直ちに470nmの吸光度(S0)を測定した。なお、リノール酸・β-カロテン溶液の調製に際しては、S0が1.2程度(1.1〜1.3)になるようにβ-カロテン溶液の添加量を適宜増減した。S0測定後、直ちに試験管セルを50℃の恒温槽に入れ、30分間インキュベートした。インキュベート終了後、直ちに吸光度(S30)を測定し、30分間における470nmの吸光度の低下量、ΔS=S0−S30を算出した。ブランクには試料の代わりに70%エタノールを用い、同様の操作を行なった。すなわち、リノール酸・β-カロテン溶液を加えた直後の吸光度(B0)、及び50℃、30分間保持した後の吸光度(B30)を測定し、30分間における470nmの吸光度の低下量、ΔB=B0−B30を求めた。抗酸化活性は次の式に代入し、抗酸化率(%)として表した。
抗酸化率(%)=〔(ΔB−ΔS)/(ΔB)〕×100
上記の式(1)〜(7)で表されるアミノ酸配列からなる7種類のペプチドについて、ペプチドシンセサイザーにて合成を行った。ペプチドシンセサイザー431A(アプライド・バイオシステムズ社)により、パラヒドロキシメチルフェノキシメチルポリスチレン(HMP)樹脂を用い、9−フルオレニルメチルオキシカルボニル(Fmoc)基をアミノ末端の保護基としてC末端側からペプチド鎖を順次延長することにより0.25mmolスケールで直鎖保護ペプチドを合成した。得られたHMP樹脂結合保護ペプチドをフェノール、1,2−エタンジチオール、チオアニソール存在下、トリフルオロ酢酸(TFA)によりペプチドのHMP樹脂からの切り離しと保護基の除去を同時に行った。減圧濃縮によりTFAを除去した後、エチルエーテルで粗ペプチドを結晶化させ、これを5%酢酸に溶解し凍結乾燥を行った。得られた直鎖粗ペプチドを、HPLC〔カラム:オクタデシル4PW(21.5×150mm,東ソー社),溶出:0.1%TFAを含む水−アセトニトリルにてグラジエント溶出〕により精製し、直鎖精製ペプチド(Phe-Gln-Ser-Glu-Glu-Gln)を得た。得られた精製ペプチドの純度は、HPLCによる分析の結果98%であった。
なお、その他の6種類のペプチドについても同様にして合成した。純度は全て98%であった。このようにして得られたペプチドについて以下に示す試験例2の方法で抗酸化活性を測定したところ、全てのペプチドに強い抗酸化活性が確認された。
このようにして得られた抗酸化作用を持つペプチドは、そのまま抗酸化剤として利用可能である。
実施例3で得られた各種ペプチドの抗酸化活性を、大澤らの方法(J. Agric.Food Chem., Vol.35, No.5, p.809-812, 1987) により測定した。すなわち、ウサギ保存血液と等張液(10mMリン酸緩衝液/152mM NaCl, pH7.4)とを等量混和し、4℃、1,500×g(3,500rpm) 、20分間の遠心分離を3回行って洗浄した。洗浄された血球に低張液(10mMリン酸緩衝
液, pH7.4)をよく混和し、4℃、20,000×g(11,000rpm)、40分間の遠心分離を4回行った。得られた緩い沈澱部分 (ゴースト) を用いてペプチドの抗酸化活性を検討した。実施例3で得られた各ペプチドを初濃度で0、0.01、0.1 、1 、10mMとなるように調製し、上記の赤血球膜ゴーストと混合し、酸化剤を加えて酸化反応を行った。対照としては、既知の抗酸化剤であるビタミンEを用いて同様の処理を行った。次いで TBA反応を行い、532nmで吸光度を測定して酸化生成物を定量した。抗酸化活性の評価は、サンプル無添加での吸光度を100%として、各サンプルを添加したときの吸光度から次式で定義されるゴースト酸化率を算出することで行った。なお、このゴースト酸化率が低いものほどゴーストの酸化が抑制されており、抗酸化活性が高いことを示している。また、吸光度測定に当たっては、対照としてゴースト無添加で TBA反応を行って得られた吸光度をブランク値として吸光度から差し引いた。結果を表1に示す。
ゴースト酸化率(%) =(吸光度/サンプル無添加での吸光度)×100
以上、本試験例の結果により、Phe-Gln-Ser-Glu-Glu-Gln(ただし、セリン(Ser)についてはリン酸化されていても良い。)、Phe-Gln-Ser-Glu-Glu(ただし、セリン(Ser)についてはリン酸化されていても良い。)、Tyr-Leu-Lys-Thr-Val-Tyr-Gln-His-Gln、Met-His-Gln-Pro-His-Gln、Asp-Lys-Ile-His-Pro、Asp-Lys-His-Tyr、あるいはIle-Hisで表されるアミノ酸配列からなるペプチドには抗酸化活性(ラジカルスカベンジャー活性)が認められ、活性酸素や過酸化脂質による酸化的細胞障害の予防・改善に有用であることがわかった。
ゴースト酸化率(%)
──────────────────────────────────
サンプル濃度(mM) 0 0.01 0.1 1 10
──────────────────────────────────
ビタミンE 100 93 88 74 59
Phe-Gln-Ser-Glu-Glu-Gln 100 82 67 32 15
Phe-Gln-Ser-Glu-Glu 100 80 68 40 20
Tyr-Leu-Lys-Thr-Val-Tyr-Gln-His-Gln 100 90 81 43 18
Met-His-Gln-Pro-His-Gln 100 89 77 61 15
Asp-Lys-Ile-His-Pro 100 82 57 42 25
Asp-Lys-His-Tyr 100 80 62 40 14
Ile-His 100 80 71 43 12
───────────────────────────────────
──────────────────────────────
混合異性化糖 15.4 (重量%)
果汁 10.0
クエン酸 0.5
Phe-Gln-Ser-Glu-Glu (実施例1) 0.1
香料 0.2
水 73.8
──────────────────────────────
────────────────────────────────
小麦粉 51.0 (重量%)
砂糖 20.0
食塩 0.5
マーガリン 12.5
卵 12.5
水 2.5
ミネラル混合物 0.8
Phe-Gln-Ser-Glu-Glu-Gln (実施例1) 0.2
────────────────────────────────
─────────────────────────────────
大豆粕 12.0 (重量%)
脱脂粉乳 14.9
大豆油 4.0
コーン油 2.0
パーム油 28.0
とうもろこし澱粉 15.0
小麦粉 8.0
ふすま 2.0
ビタミン混合物 9.0
ミネラル混合物 2.0
セルロース 3.0
Met-His-Gln-Pro-His-Gln (実施例1) 0.1
─────────────────────────────────
Claims (4)
- 次の式(1)で表されるアミノ酸配列からなる抗酸化作用を持つペプチド。
Phe-Gln-Ser-Glu-Glu-Gln 式(1)
ただし、セリン(Ser)についてはリン酸化されていても良い。 - 次の式(2)で表されるアミノ酸配列からなる抗酸化作用を持つペプチド。
Phe-Gln-Ser-Glu-Glu 式(2)
ただし、セリン(Ser)についてはリン酸化されていても良い。 - 乳タンパク質に由来する請求項1または2に記載のアミノ酸配列からなる抗酸化作用を持つペプチド。
- 請求項1または2に記載のペプチドを有効成分とする抗酸化剤。
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