JP5124440B2 - フラバノン誘導体を含む皮膚外用剤 - Google Patents
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Description
また、本発明は、皮膚組織を再生する技術を提供することを課題とする。具体的には、ケラチノサイトに作用することにより、線維芽細胞のコラーゲン類産生能を増強する技術を提供することを課題とする。
また、本発明は、創傷治癒を促進する効果に優れる物質をスクリーニングする方法を提供することを課題とする。
すなわち、本発明は以下の通りである。
前記フラバノン誘導体は、好ましくはファレロールである。
上記第二及び第三の発明におけるフラバノン誘導体の好ましい態様及び皮膚外用剤の好ましい用途は、第一の発明と同様である。
前記フラバノン誘導体の好ましい態様は、第一の発明と同様である。
具体的には、被験物質の存在下での前記欠損部の補填、収縮の程度が、被験物質の非存在下での前記欠損部の補填、収縮の程度に比して大きい場合に、前記被験物質は創傷治癒促進効果を有すると判別することができる。
本発明で使用されるフラバノン誘導体は、前記一般式(1)で表される化合物である。
一般式(1)において、R1、R2、R3、R4、R5はそれぞれ独立に水素原子又は炭素数1〜4のアルキル基を表す。
前記R1、R2、R4の少なくとも1つは、水素原子であることが好ましく、特に好ましくは3つ全てが水素原子である。アルキル基としては、メチル基、エチル基、プロピル基、ブチル基などが例示できるが、メチル基であることが特に好ましい。
オトギリソウ科オトギリソウ(Hypericum erectum Thunberg (Guttiferae))の地上部の乾燥物1kgに80%エタノール水溶液10lを加え、攪拌下4時間還流を行った。冷却後不溶物を濾過で除去し、減圧濃縮した後、凍結乾燥し、アモルファスを51g得た。このものを水に分散させ、ダイアイオンHP20にチャージし、5lの水、次いで5lの50%エタノール水溶液を流して洗浄し、99%のエタノールで溶出させ、溶出分をフラクショネーションし、フラクションを薄層クロマトグラフィーとHPLCでチェックしながら、同一の単一物質を含むフラクションは合一させ、複数の成分を含むフラクションは再度クロマトグラフィーで精製した。得られた単一成分を含むフラクションのコラーゲン線維束再構築作用を調べ、この作用の強いフラクションに含まれる単一成分の構造をプロトンNMR、元素分析、質量分析、13C−NMRより同定した。この成分は、ファレロールであり、収量は3.2mgであった。また、ファレロールは80%エタノール水溶液抽出物の溶媒除去物中に約0.006質量%含有されていた。
本発明の皮膚外用剤は、前記フラバノン誘導体及び/又はその塩を含有することを特徴とする。例えば、植物体の抽出物として、前記フラバノン誘導体及び/又はその塩を含有させることができる。前記フラバノン誘導体としては、ファレロールが好ましく挙げられる。本発明の皮膚外用剤においては、ファレルロールを含有するオトギリソウ抽出物を含有させることが好ましい。
また、特に創傷治癒を目的とした皮膚外用医薬においては、前記フラバノン誘導体及び/又はその塩の含有量の下限値を好ましくは1×10-6M、より好ましくは1×10-4M、上限値を好ましくは1M、より好ましくは0.1Mとすることもよい。
また、本発明の皮膚外用剤の使用方法は、皮膚外用剤の用途、剤形、使用部位、症状などに応じて調節することができる。
本発明のケラチノサイトの線維芽細胞コラーゲン類産生能を増大する作用を増強する方法(以下「本発明の方法」ともいう)は、ケラチノサイトと線維芽細胞の共存下に、前記一般式(1)に表されるフラバノン誘導体及び/又はその塩を投与することを特徴とする。
本発明の方法に使用する前記フラバノン誘導体及び/又はその塩は、上記(A)で説明した通りである。前記フラバノン誘導体及び/又はその塩は、ケラチノサイトに働きかけることにより、線維芽細胞のコラーゲン類産生能を増大させる作用を有する。
「コラーゲン類」とは、コラーゲン及びコラーゲンに派生分化する前のプロコラーゲンを合わせた概念である。
前記フラバノン誘導体及び/又はその塩の投与は、in vitroでは、例えばケラチノサイトと線維芽細胞の供培養に用いる培地に前記フラバノン誘導体及び/又はその塩を混在させることにより行うことができる。この場合の混在(投与)量は、培地中の濃度で、下限値が好ましくは10-8Mであり、より好ましくは10-7Mであり、上限値が好ましくは10-3Mであり、より好ましくは10-5Mである。
また、in vivoで投与する方法としては、経皮的投与が挙げられる。経皮的投与の方法は、通常用いられる方法であれば特に制限されないが、前記フラバノン誘導体及び/又はその塩を含有する皮膚外用剤を皮膚に塗布する方法が好ましい。本発明の方法に用いることができる皮膚外用剤は、上述した本発明の皮膚外用剤であり、その好ましい態様も上述したとおりである。
本発明のスクリーニング方法は、動物の正常線維芽細胞を被験物質の存在下培養し、得られた培養物にコラーゲン培地溶液を加えてコラーゲンゲルを作製し、前記コラーゲンゲル内の前記線維芽細胞を前記被験物質の存在下培養した後、該コラーゲンゲルに欠損部を設け、該欠損部を設けたコラーゲンゲル及び前記被験物質を共存させて前記線維芽細胞を培養し、該培養の間、前記欠損部の補填、収縮の程度を観察することを特徴とする。
なお、以下、このような動物の正常線維芽細胞を単に、線維芽細胞ともいう。
具体的には、例えば、前培養で得た線維芽細胞を個々の細胞にほぐした細胞浮遊液をプレートに播種し、24時間前後培養した後、種々の濃度の被験物質の溶液を添加し、3〜5日培養を行うことが好ましい。
培養に用いる培地における被験物質の濃度は、前記被験物質の存在下での線維芽細胞の培養に用いた培地の濃度に対応させればよい。培養時間は、コラーゲンゲルの収縮状況により調節することができる。具体的には、ゲルの大きさがコラーゲン溶液を添加してゲルを作製した時点より1/5〜1/10程度のサイズまで収縮した時点まで培養することが好ましい。このような培養時間として3〜5日間を目安とすることができる。
なお、このようなコラーゲンゲルの損傷モデルの作製方法は、Roman O' Leary, Mark Rerek, and Edward John Wood, Biol. Pharm. Bull., 27 (2), 266-270 (2004)に開示されている。
この様な方法で被験物質の創傷治癒促進効果を評価することにより、線維芽細胞の遊走を促進するのみで線維芽細胞のコラーゲン産生を促進しない物質や、線維芽細胞のコラーゲン産生を促進するのみで線維芽細胞の遊走(移動)を促進しない物質を除外することができ、損傷治癒に有効な物質のスクリーニングをより効率化できる。
・正常ヒト線維芽細胞(クラボウ)
・10%FBS添加DMEM(GIBCO)
・WST−8/1−Methyl PMS (Cell Counting Kit−8:同仁化学研究所)
尚、ファレロールはジメチルスルホキシド(DMSO)に溶解して用いた。
<プロトコール>
1.80%confluentに増殖した線維芽細胞を0.05%Trypsin・EDTAで分散した。これを96well/plateに3×103cells/wellの濃度で播種した。
2.24時間後、濃度調製したファレロールを10ml/wellずつ添加した(n=8)。
3.ファレロール添加24時間後、48時間後、72時間後にWST−8/1−Methyl PMSを10ml/wellで添加、37℃で4時間インキュベートした。
4.測定波長450nm、参考波長650nmで吸光度を測定した。
<結果>
検討したいずれの濃度においても顕著な細胞毒性は確認されなかった。逆に、ファレロールを添加する事で細胞増殖を促進する効果が確認された。特に、ファレロールの濃度が10-6ml/ml−DMEM、5x10-7ml/ml−DMEM、10-7ml/ml−DMEMにおいて特に増殖促進が見られたことから、以下のコラーゲン産生試験は、この3つの濃度で行うこととした。
<使用細胞および試薬類>
・正常ヒト線維芽細胞(クラボウ)
・HEPARIN(SIGMA:H−3149)
・DMEM(GIBCO)
・FBS
<プロトコール>
1.10%FBSを含む培地でconfluentに増殖した線維芽細胞をトリプシン処理により分散させ、遠心分離を行った。
2.上清を除去して10%FBSを含むDMEMに再懸濁し、線維芽細胞を12 well plate(4.5cm2/well)に3×103cells/cm2で播種した。
3.細胞播種4時間後に、上清のDMEMを除去し、0.4%FBSを含むDMEMに交換して細胞増殖抑制条件下にて72時間培養を行った(37℃、5%CO2)。
4.0.4%FBSを含むDMEMを除去して10%FBSを含むDMEMに交換することで、細胞増殖抑制を解除した。この時の培養条件はヘパリンによる影響を見るため、10%FBS−DMEM、0.1%ヘパリン/10%FBS−DMEM、1.0%ヘパリン/10%FBS−DMEM(各n=3)とした。さらに、ここにファレロールを10-6ml/ml−DMEM、5x10-7ml/ml−DMEM、10-7ml/ml−DMEM濃度で添加したものを作製した。
<結果>
結果を図1のグラフに示した。グラフ1はヘパリン未処理条件、グラフ2は0.1%ヘパリン処理条件で、各濃度のファレロール溶液を培地に加えた場合の細胞増殖効果を示している。何れの条件においても、ファレロールを添加した群の方が、コントロールであるDMSO添加群よりも細胞増殖が促進される傾向が示された。これより、ファレロールに線維芽細胞増殖促進作用が存することがわかる。
<使用細胞および試薬類>
・正常ヒト線維芽細胞(クラボウ)
・10%FBS添加DMEM(GIBCO)
・コラーゲン培地溶液(05% typeI collagen:5×DMEM:200mM HEPES:2.2%NaHCO3:0.1N NaOH:FBS:水を4:4:2:2:1:2:3の割合で混合)
・生検トレパン(先端径φ3.0mm)
<プロトコール>
1)実施例1のプロトコールの4で得た線維芽細胞の培養物とコラーゲン培地溶液を1:9(体積)の割合で混合してコラーゲンゲルを作製し、10%FBS培地で1週間浮遊培養した。
2)ゲルの大きさがコラーゲン培地溶液を加えてコラーゲンゲルを作製した時点から1/5〜1/10程度のサイズまで収縮したら、直径3mmの生検トレパンでゲルの中央部分を打ち抜いた。
3)6well plateを準備し、ウェルの中央にコラーゲン溶液を15μl滴下し、そこに打ち抜いた三次元コラーゲンゲルを乗せて10分間インキュベートした(37℃、5%CO2)
4)滴下したコラーゲンが固まり、三次元コラーゲンゲルがウェルの底面に接着したら、10%FBS−DMEM、0.1%ヘパリン/10%FBS−DMEM、1.0%ヘパリン/10%FBS−DMEMを3ml/wellで添加した。
5)さらに、4)の各培養条件にファレロールを10-6ml/ml−DMEMで添加した群を作製した。
<結果>
「創傷治癒モデル」を作製してから24時間後の線維芽細胞の挙動を観察した。生検トレパンで打ち抜いた創傷部位から派生した線維芽細胞の写真を図2に示した。ヘパリンを添加していない10%FBS−DMEMにおいては、ファレロールを添加した群の方が添加していない群よりも線維芽細胞の移動距離が長く、細胞が活発に動いている傾向があった。一方、0.1%ヘパリン/10%FBS−DMEM、1.0%ヘパリン/10%FBS−DMEMにおいては、ファレロールを添加した群と添加していない群の間に、細胞移動の差は見られず、両方ともヘパリンの作用によって移動が抑制されていた。
これより、ファレロールは、ヘパリンの線維芽細胞の移動能への影響を抑制するのではなく、線維芽細胞に直接作用し、細胞の移動能を高めることが推察できる。
05% typeI collagen:5×DMEM:200mM HEPES:2.2%NaHCO3:0.1N NaOH:FBS:水を4:4:2:2:1:2:3の割合で混合し、コラーゲン溶液を作製する。(冷やしながら行う)
↓
コラーゲン溶液:水=9:1の割合で混合し、下層コラーゲン溶液を作製する。
↓
48穴プレートに下層コラーゲン溶液を100μl/wellづつ分注する。
↓
CO2 インキュベーター内で固める。(15min位)
↓
NHDFを定法に従い回収する。
↓
(細胞をセルストレイナーにてバラバラにする。)
↓
細胞をカウントし(トリパンブルー)、1×105cells/mlに調整する。
↓
コラーゲン溶液:細胞浮遊液=9:1(体積)の割合で混合し、300μl/wellずつ分注する。
(細胞が不均一にならないよう、時々混ぜながら作業する。(final 1×104cells/ml))
↓
CO2 インキュベーター内で4時間静置。
↓
注射針の針でゲルをwellの内壁から離し、ゲルの収縮を妨げないようにする。
↓
1.8% Heparin/10% FBS-DMEMを500μl/well添加。(final 1% Heparin/well)
↓
ファレロール(DMSOに溶解)を0.9μl/well添加。(1000倍希釈)
↓
CO2インキュベーター内にて培養。(5日間)
↓
SEM観察の試料とする。
1群5名、2群計10名の40〜50歳のパネラーを用いて、上記で作製したエッセンス1及び比較例1の化粧料について8週間の使用テストを行った。これらの化粧料を朝晩2回連日使用してもらい、使用テストの前後で目尻のレプリカを採取した。斜め45度からの光の照射下、シワによってできる陰影を顕微鏡から画像に取り込み、二値化を行い、視野における陰影の面積比を求め、この値の群の平均値を求めた。結果を表2に示す。これより、本発明の皮膚外用剤である化粧料(エッセンス)は優れたシワ改善効果を有することがわかる。
エッセンス1と同様に下記処方に従って本発明の皮膚外用剤であるエッセンス2を作製した。このものを試験例1の方法で評価したところ、試験前のシワ面積比が8.2±3.2%であったものが、試験後3.9±1.1%となっており、効果が確認された。
1)80%コンフルエントに増殖した正常ヒト線維芽細胞を0.05%Trypsin・EDTAで分散した。これを3×105cells/25cm2で播種した。
2)24時間後に、ファレロール(Farrerol;終濃度10-5M、10-6M、10-7M)およびDMSOを添加した培地に交換し、4日間培養した。
3)それぞれの条件での培養により得た培養物に、実施例2と同様にコラーゲン培地溶液を加えてコラーゲンゲルを作製した。作製したコラーゲンゲルを、2)の培養条件と同様の培地で1週間浮遊培養した。すなわち2)で、10-5M、10-6M、10-7Mのファレロールを含む培地で培養した線維芽細胞は、コラーゲンゲル作製後も、それぞれファレロール終濃度が10-5M、10-6M、10-7Mの培地を用いて培養した。
4)ゲルの大きさがコラーゲン培地溶液を加えてコラーゲンゲルを作製した時点より1/5〜1/10程度のサイズまで収縮したら、直径3mmの生検トレパンでゲルの中央部分をドーナツ状に打ち抜き、「創傷モデル」を作製した。
5)6ウェルプレートを準備してウェルの中央部分に5μlのコラーゲンを滴下し、そこに創傷モデルのコラーゲンゲルを乗せて37℃で15分間インキュベートした。
6)適下したコラーゲンが固まりゲルがウェルの底面に接着したら、3)と同条件の培地を3ml加えて、「創傷による皮膚組織欠損モデル」として培養を行った。その後、コラーゲンゲルの創傷部位がふさがっていく過程を目視観察した。
エッセンス3と比較例2とを用いて、パネラーを用いて創傷による欠損部位の組織再生促進作用を検討した。即ち、パネラーの上腕内側部に、抜き型を当て、メスで表皮をはぎ取り、1mm×1mmの部位を3つ作製した。1部位はエッセンス3を表皮を除去した日より5日間、1日1回塗布し、1部位は比較例2を表皮を除去した日より5日間、1日1回塗布し、残る1部位は何の処置もしなかった。塗布後1週間及び2週間に観察を行い、欠損部位の組織再生の度合いを観察した。結果を表5に示す。これより、本発明の皮膚外用剤であるエッセンス3は欠損部位の組織再生促進作用に優れることがわかる。又、瘢痕の生成も全く観察されなかった。
下記に示す処方に従って、実施例7と同様の方法により、本発明の皮膚外用剤である皮膚外用医薬1を作製した。試験例3と同様の評価を行ったところ、皮膚外用医薬1は、抗生物質が共存するにもかかわらず、優れた欠損皮膚組織の再生促進作用を示していた。
〔使用細胞および試薬類〕
・正常ヒト表皮角化細胞 (クラボウ株式会社製)
・Humedia KG2 (GIBCO社製)
・WST-8/1-Methyl PMS (Cell Counting Kit-8:同仁化学研究所株式会社製)
〔サンプル調製〕
DMSOに溶解された10-2 M ファレロールをDMSOで希釈して、濃度調整したファレロールのサンプルを作製した。
〔プロトコール〕
1)80%confluentに増殖した正常ヒト表皮角化細胞を0.05%Trypsin・EDTAで分散した。これを96 well/plateに3×103 cells/ well、6×103cells/wellの2条件の細胞濃度で播種した。
2)24時間後、濃度調製したファレロールのサンプルを100 μl /wellずつ添加した(n=8)。
3)サンプル添加24 時間後、48時間後にWST-8/1-Methyl PMSを10 μl/wellで添加し、37℃で4時間インキュベートした。
4)測定波長450 nm、参考波長650 nmで吸光度(OD値)を測定した。
<結果>
MTTによる評価結果を以下の図5のグラフに示す。OD値はファレロールの濃度依存的に増加することが示された。3×103 cells/ wellの24時間においては、コントロールであるDMSOに比較して10-5Mファレロールは2倍以上のOD値を示した。48時間においてもDMSOに比べて1.7倍程度の値を示した。しかし、細胞数が少なく元々のOD値が低かったため、播種細胞数を倍にした6×103cells/wellにおいて再現性を確認した。その結果、ほぼ同様の結果を得ることができた。
一方、目視評価においては、DMSOに比較してファレロール添加群における細胞増殖が促進されている印象を受けなかった。
〔使用細胞および試薬類〕
・正常ヒト表皮角化細胞(クラボウ株式会社製)
・Humedia KG2(GIBCO社製)
〔プロトコール〕
1)正常ヒト表皮角化細胞を6×103 cells/mlに調製し、これを96 well/plateに1mlずつ播種した。
2)24時間後に上清を除去して、DMSOで濃度調製したファレロールのサンプルを加えた培地を1mlずつ添加した。
3)サンプル添加24 時間後、48時間後、72時間後に細胞を0.05%Trypsin・EDTAで分散し、これを血球計算盤を用いてセルカウントした。なお、実験1ではWST-8での評価を細胞数の指標としたが、この方法はミトコンドリア内の脱水素酵素に作用して間接的に細胞数を評価する方法であることから、本検討では直接的に細胞数を測定した。
〔結果〕
セルカウントの結果を図6に示す。グラフは、コントロール(DMSO添加群)の細胞数を100%とした場合の細胞増殖率で示している。コントロールと比較して、濃度依存的に細胞増殖率は抑制される傾向が示された。10-5Mファレロールを添加した群の細胞増殖率は24時間後で75.1±5.2%に抑制され、その他の濃度においても10-6 Mでは75.5±5.8%、10-7Mでは77.1±8.6%の細胞増殖率に留まっていた。48時間後では、10-5 M ファレロールを添加した群では約71.9±16.6%の増殖率であったが、それ以下の濃度においてはコントロール群と同等程度の細胞増殖率を示した。また、細胞形態においては変化は認められなかった(図7)。すなわち直接評価による結果は、WST-8による間接的な細胞数の評価とは一致しなかった。この結果より、ファレロールはケラチノサイト1細胞当りのミトコンドリア内のクエン酸回路の反応を促進していることが推測される。従って、クエン酸回路の反応時に生じるNADHの作用により、次の反応段階である酸化的リン酸化反応も促進されることが予想され、その結果細胞内のエネルギー源となるATPの生成、すなわちエネルギー代謝能が亢進している可能性が示唆される。
〔概要〕
表皮角化細胞と線維芽細胞との間に何らかの相互作用があるか、また共培養においてファレロールが線維芽細胞に対して作用するかを見出すためにプロコラーゲン産生量を指標とした評価を実施した。方法はEming SA et al., Hum. Gene. Ther., 9 (4), 529-39 (1998)に記載の方法に準じた。
〔使用細胞および試薬類〕
・正常ヒト表皮角化細胞 (クラボウ株式会社製)
・Humedia KG2 (クラボウ株式会社製)
・正常ヒト線維芽細胞 (クラボウ株式会社製)
・DMEM (GIBCO社製)
・PIP EIA Kit (タカラバイオ株式会社製)
〔プロトコール〕
1)表皮角化細胞
Day1 :24ウェルプレートに3×104cells/ well播種する。
Day6 :PBSで洗浄後、DMEM+2%FBSに培地交換し、ファレロール(10-6 M、10-7M、10-8 M、DMSO)を添加する。
Day7 :培養上清を採取
2)線維芽細胞
Day3 :24ウェルプレートに2.5×104 cells/ well播種する。
Day7 :PBSで洗浄後、表皮角化細胞の培養上清(900 μl)を添加して48時間培養する。
Day9 :PBS及び無血清DMEMで洗浄後、無血清DMEM500μlに培地交換し、2時間培養し、培養上清を回収し、遠心上清(15000 rpm、5sec)のプロコラーゲン量を下記の方法に従って、測定した。
〔プロコラーゲン産生量の定量〕
1)標準抗体液を100μlずつプレートの各ウェルに加えた後、あらかじめ調製した各濃度のPIP標準液(320、160、80、40、20、10μl/ml:検体の希釈はDMEMで実施した)および検体を20μlずつマイクロピペットで2連ずつ加え、37℃で3時間反応する。(第一次反応)
2)反応液を捨て、PBSで4回洗浄後、Substrate Solution(TMBZ)を100μlずつ8連ピペットで各ウェルに加え、室温(20℃〜30℃)で15分反応させる。(第二次反応)
3)Stop solutionを100μlずつ、Substrate Solutionを入れた順番に各ウェルに加え反応を停止させた後よく混和する。
4)培地を対照としてゼロ調節し、波長450nmで吸光度をプロットして標準曲線を作成し、検体の吸光度から対応するPIP濃度を読み取る。
〔結果〕
結果を図8に示す。ファレロールの濃度依存的にプロコラーゲン産生量が有意に増加した。一方、線維芽細胞培養時にファレロールを添加して、その後表皮角化細胞の培養上清を添加した方法で評価した別の系では、プロコラーゲンの産生量に大きな変化が見られなかった。このことから、ファレロールが線維芽細胞に対して直接的にプロコラーゲン産生増加を促す作用は小さいと考えられる。従って、ファレロールは表皮角化細胞に作用して、表皮角化細胞が線維芽細胞のコラーゲン類の産生を高める作用を増大させていると判断できる。この様に、共培養系で角化細胞を介して線維芽細胞のコラーゲン産生能を変化させることができるので、例えば、三次元培養皮膚などに於いて、三次元皮膚の性状を、望む形に変化させることにも応用できる。
スクリニーングの被験物質として、オトギリソウの抽出物を作製した。即ち、オトギリソウ科オトギリソウ(Hypericum erectum Thunberg (Guttiferae))の地上部の乾燥物1kgに80%エタノール水溶液10lを加え、攪拌下4時間還流を行った。冷却後不溶物を濾過で除去し、減圧濃縮した後、凍結乾燥し、アモルファスを51g得た。このものを水に分散させ、ダイアイオンHP20にチャージし、5lの水、次いで5lの50%エタノール水溶液を流して洗浄し、99%のエタノールで溶出させ、溶出分をフラクショネーションし、フラクションを薄層クロマトグラフィーとHPLCでチェックしながら、同一の単一物質を含むフラクションは合一させ、複数の成分を含むフラクションは再度クロマトグラフィーで精製し、単一成分を含むフラクションを7本得た。
上記で得られた単一成分を含むフラクションを被験物質として、以下の方法を用いて、各被験物質のコラーゲン構築作用を評価することにより、創傷治癒効果を有する物質をスクリーニングした。具体的な手順は後述する。
動物の線維芽細胞を含むコラーゲンゲルをパンチして欠損部を設けた「創傷モデル」を用いて、被験物質存在下での欠損部の補填、収縮の程度を観察した。手順を以下に示す。試験物質のうち、最も欠損部の補填、収縮の程度が最も大きかったものについて、単一成分の構造をプロトンNMR、質量分析、13C−NMRより同定したところ、ファレロールであった。なお、上記抽出物からのファレロールの収量は3.2mgであった。ファレロールは80%エタノール水溶液抽出物の溶媒除去物中に約0.006質量%含有されていた。
更に、ファレロールの終濃度を、10-5M、10-6M、10-7Mに調節して、それぞれの濃度における欠損部の収縮の程度を観察した。この結果を図9に示す。この図より、ファレロールの終濃度が10-5M、10-6Mであれば、パンチ穴(欠損部)の収縮は明瞭に促進されているが、10-7Mでは収縮の促進が不明瞭であることがわかる。これより、ファレロールのコラーゲン構築促進効果は、ファレロールを少なくとも10-6M用いることで、創傷治癒促進効果を発揮しうることがわかる。この様に本発明のスクリーニング方法によれば、創傷治癒促進作用を有する被験物質の有効濃度を求めることもできる。
1)前培養により、80%コンフルエントに増殖した正常ヒト線維芽細胞を0.05%Trypsin・EDTAで分散した。これを3×105cells/25cm2(1×104cells/cm2)でプレートに播種した。
2)24時間培養した後、ファレロール(Farrerol;終濃度10-5M、10-6M、10-7M)およびDMSOを添加した培地に交換し、4日間培養した。
3)得られた培養物に、実施例3と同様にコラーゲン培地溶液を加えてコラーゲンゲルを作製した後、2)で使用した培地を用いてコラーゲンゲル内の線維芽細胞を培養した。培地における被験物質の濃度は、2)の培地における濃度に対応させた。すなわち2)で、10-5M、10-6M、10-7MのFarrerolを含む培地で培養した線維芽細胞は、コラーゲンゲル作製後も、それぞれファレロールの終濃度が10-5M、10-6M、10-7Mの培地で培養した。
4)1週間の培養後、コラーゲンゲルの大きさがコラーゲン溶液を加えた時点より1/5〜1/10程度のサイズまで収縮した。続いて、直径3mmの生検トレパンでコラーゲンゲルの中央部分をドーナツ状に打ち抜き、「創傷モデル」を作製した。
5)6ウェルプレートを準備してウェルの中央部分に5μlのコラーゲン溶液を滴下し、創傷モデルのコラーゲンゲルを乗せて37℃で15分間インキュベートし、コラーゲンゲルをウェルの底面に接着させた。
6)続いて、各ウェルに、2)の培地と同じ培地を3mlずつ加えて、前記コラーゲンゲルに含まれる線維芽細胞の培養を7日行った。この培養の期間中、コラーゲンゲルの創傷部位がふさがっていく過程を目視観察した。
また、本発明の線維芽細胞コラーゲン産生能の増強方法を用いて、例えば、三次元培養皮膚などに於いて、三次元皮膚の性状を望む形に変化させ、人工皮膚を作ることにも応用できる。
また、本発明のスクリーニング方法を用いて、皮膚外用医薬に好適な創傷治癒促進作用を有する物質をスクリーニングすることができる。
Claims (5)
- 下記一般式(1)に表されるフラバノン誘導体及び/又はその塩を含有する、創傷治癒用の皮膚外用剤。
(但し、式中R1、R2、R3、R4、R5はそれぞれ独立に水素原子又は炭素数1〜4のアルキル基を表す。) - 前記フラバノン誘導体が、ファレロールであることを特徴とする、請求項1に記載の皮膚外用剤。
- 前記フラバノン誘導体及び/又はその塩を10−6〜0.1質量%含むオトギリソウ科オトギリソウの抽出物を含有することを特徴とする、請求項1又は2に記載の皮膚外用剤。
- 前記フラバノン誘導体及び又はその塩の含有量が、1×10−6〜1質量%であることを特徴とする、請求項1〜3の何れか一項に記載の皮膚外用剤。
- 下記一般式(1)に表されるフラバノン誘導体及び/又はその塩を含有する、創傷治癒剤。
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