JP6281497B2 - ビタミンｄの測定方法および測定用キット - Google Patents

Description

本発明は、ビタミンＤの測定方法などに関する。

Ｖｉｔａｍｉｎ Ｄ類（以下、単にビタミンＤと略称する）は血中で結合タンパク質（ＤＢＰ：ビタミンＤ結合タンパク質。Ｇｃグロブリンとも呼ばれる）と強固に結合していることが知られている。したがって、ビタミンＤを抗原抗体法で正確に測定するためには、ビタミンＤとＤＢＰの解離操作（前処理）が必要とされる。このような前処理としては、変性剤（例、酸、タンパク変性剤、界面活性剤、加水分解酵素）に加えて有機溶媒（例、エタノール、メタノール、ＤＭＳＯ）が使用されている（特許文献１〜７）。

国際公開第０３／１０４８２０号 国際公開第０７／０３９１９４号 国際公開第０２／０４６７４６号 国際公開第０４／０６３７０４号 国際公開第０８／０９２９１７号 国際公開第０２／０５７７９５号 国際公開第０７／１４０９６２号

本発明は、ビタミンＤの測定方法などを提供する。

本発明者らは、鋭意検討したところ、ステロイド骨格を有する界面活性剤でビタミンＤ含有サンプルを処理することにより、ビタミンＤを正確に測定できることなどを見出し、本発明を完成するに至った。

すなわち、本発明は、以下のとおりである。
〔１〕以下を含む、ビタミンＤの測定方法：
１）ステロイド骨格を有する界面活性剤でサンプルを処理すること；および
２）処理されたサンプルにおいてビタミンＤを検出すること。
〔２〕前記界面活性剤が、胆汁酸もしくはその誘導体またはそれらの塩である、〔１〕の方法。
〔３〕前記界面活性剤が、７位にヒドロキシル基を有しないステロイド骨格を有する、〔１〕または〔２〕の方法。
〔４〕前記界面活性剤が、デオキシコール酸もしくはタウロデオキシコール酸またはそれらの塩である、〔１〕〜〔３〕のいずれかの方法。
〔５〕前記界面活性剤と異なる別の変性剤でサンプルを処理することをさらに含む、〔１〕〜〔４〕のいずれかの方法。
〔６〕別の変性剤が、炭化水素鎖から構成される疎水性部分、および親水性部分を含む界面活性剤である、〔５〕の方法。
〔７〕サンプルの処理が混合のみによって行われる、〔１〕〜〔６〕のいずれかの方法。
〔８〕以下を含む方法である、〔１〕〜〔７〕のいずれかの方法：
１’）ステロイド骨格を有する界面活性剤およびビタミンＤに対する親和性物質を含む反応液でサンプルを処理すること；ならびに
２’）処理されたサンプルにおいてビタミンＤを検出すること。
〔９〕以下を含む方法である、〔１〕〜〔７〕のいずれかの方法：
１’’）変性剤を含む前処理液でサンプルを処理すること；
２’’）前記１’’）で処理されたサンプルを、ステロイド骨格を有する界面活性剤を含む希釈液で処理すること；ならびに
３’’）前記２’’）で処理されたサンプルにおいてビタミンＤを検出すること。
〔１０〕サンプルがヒト由来のサンプルである、〔１〕〜〔９〕のいずれかの方法。
〔１１〕サンプルが血液関連サンプルである、〔１〕〜〔１０〕のいずれかの方法。
〔１２〕以下を含む、ビタミンＤの測定用キット：
１）ステロイド骨格を有する界面活性剤；ならびに
２）ビタミンＤに対する親和性物質および／またはビタミンＤ標品。

本発明の方法は、ビタミンＤの測定に有用である。本発明によれば、迅速かつ簡便にビタミンＤを測定できる。
本発明のキットは、例えば、本発明の方法の簡便な実施に有用である。

図１は、デオキシコール酸ナトリウムによる血清サンプルの処理により得られた測定値と、Ｄｉａｓｏｒｉｎ ＲＩＡ法による測定値との高い相関性（Ｒ^２＝０．８９９３）を示す図である。 図２は、有機溶媒による血清サンプルの処理により得られた測定値と、Ｄｉａｓｏｒｉｎ ＲＩＡ法による測定値との低い相関性（Ｒ^２＝０．８３２７）を示す図である。 図３は、デオキシコール酸ナトリウム、ＳＤＳおよび抗体を含む反応液による血清サンプルの処理により得られた測定値と、Ｄｉａｓｏｒｉｎ ＲＩＡ法による測定値との高い相関性（Ｒ^２＝０．９８８１）を示す図である。 図４は、ヒト血清サンプルをコントロール緩衝液（Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ）中でゲルろ過クロマトグラフィーにより溶出した場合の、２５ＯＨビタミンＤ含有画分を示す図である。ＤＣ Ｎａ：デオキシコール酸ナトリウム（以下同様） 図５は、ウエスタンブロッティングによるビタミンＤ結合タンパク質含有画分を示す図である。 図６は、ゲルろ過クロマトグラフィーによるデオキシコール酸ナトリウム溶液中でのヒト血清ビタミンＤおよび遊離ビタミンＤの溶出画分を示す図である。 図７は、ビタミンＤ結合タンパク質および２５ＯＨビタミンＤ３の複合体からの２５ＯＨビタミンＤ３の放出の程度を示す図である。１〜４の実験条件については、表８を参照のこと。

（Ａ．ビタミンＤの測定方法）
本発明は、サンプル中のビタミンＤの測定方法を提供する。

本発明の方法は、以下を含む：
１）ステロイド骨格を有する界面活性剤でサンプルを処理すること；および
２）処理されたサンプルにおいてビタミンＤを検出すること。

（Ａ−１．工程１）
先ず、ステロイド骨格を有する界面活性剤でサンプルが処理される。
本発明の方法で用いられるサンプルは、以下に示すようなビタミンＤまたはその代謝産物を含有する、または含有すると疑われるサンプルである。ビタミンＤの代謝産物としては、例えば、ビタミンＤにヒドロキシル基が付加された化合物、２５ＯＨビタミンＤ２、２５ＯＨビタミンＤ３、１，２５（ＯＨ）２ビタミンＤ２、１，２５（ＯＨ）２ビタミンＤ３が挙げられる。本明細書中で用いられる場合、用語「ビタミンＤ」は、特に指定されないかぎり、ビタミンＤ２およびビタミンＤ３、およびビタミンＤ２およびビタミンＤ３に類似する薬物、ならびにそれらの代謝産物を包括的に含むものとする。

サンプルの由来は特に限定されず、生物由来の生物学的サンプルであってもよく、または環境サンプルなどであってもよい。生物学的サンプルが由来する生物としては、例えば、哺乳動物（例、ヒト、サル、マウス、ラット、ウサギ、ウシ、ブタ、ウマ、ヤギ、ヒツジ）、鳥類（例、ニワトリ）等の動物、昆虫、微生物、植物、菌類、魚類が挙げられるが、好ましくは哺乳動物、菌類、魚類であり、より好ましくは哺乳動物であり、さらにより好ましくはヒトである。生物学的サンプルはまた、血液自体または血液に由来するサンプルである血液関連サンプル（例、全血、血清、血漿）、唾液、尿、乳汁、組織または細胞抽出液、あるいはこれらの混合物であってもよいが、血液関連サンプルが好ましい。環境サンプルとしては、土壌、海水、淡水由来のサンプルが挙げられる。

本発明の方法で用いられるサンプルは、好ましくは、ビタミンＤおよびそれに対する結合能を有する分子の複合体を含むサンプルである。本発明の方法は、サンプル中にビタミンＤに対する強い結合能を有する分子（例、タンパク質）が存在していた場合であっても、ビタミンＤを正確に測定できるという利点を有する。例えば、ビタミンＤは、ヒト血清中に存在するＤＢＰと強固に結合することが知られており、その解離定数はＫｄ＝５×１０^−８であることが報告されているが（特許文献４を参照）、本発明の方法によれば、このような強い結合能を有するタンパク質がサンプル中に存在する場合であっても、サンプル中のビタミンＤを正確に測定することができる。したがって、ビタミンＤに対する結合能を有するＤＢＰ以外の分子（例、ビタミンＤに対する結合能を潜在的に有する分子）がサンプル中に存在する場合であっても、本発明の方法によれば、ビタミンＤを正確に測定することができると考えられる。ビタミンＤに対する結合能を有する他の分子としては、例えば、アルブミン、脂質が挙げられる。具体的には、ビタミンＤおよびそれに対する結合能を有する分子の複合体を含むサンプルとしては、例えば、血液関連サンプル（例、全血、血清、血漿）が挙げられる。

本発明の方法によれば、ビタミンＤに対する結合能を有する分子についてのサンプル中の有無およびその分子の種類、ならびにサンプルの種類を問わず、サンプル中のビタミンＤを測定できる。つまり、本発明の方法は、これらの事項に対する情報を事前に確認することなく、または、ビタミンＤに対する結合能を有する未知の分子がサンプル中に存在する場合であっても、サンプル中のビタミンＤを測定できる。したがって、本発明の方法は、ビタミンＤの測定に汎用され得る標準方法として使用できる。

本発明の方法では、サンプルは、ステロイド骨格を有する界面活性剤により処理される前に、他の処理に付されてもよい。このような処理としては、遠心分離、抽出、ろ過、沈殿、加熱、凍結、冷蔵、攪拌が挙げられる。

ステロイド骨格を有する界面活性剤により処理されるべきサンプルの容量は、ビタミンＤの測定が可能な限り特に限定されないが、例えば０．１〜１０００μｌ、好ましくは０．５〜１００μｌ、より好ましくは１〜５０μｌである。

ステロイド骨格を有する界面活性剤は、ステロイド骨格を、独立した環状構造（即ち、他の環と縮合していないステロイド骨格）として有する化合物、またはその塩である。ステロイド骨格を有する界面活性剤において、その５位の立体構造はαであってもβであってもよい。

ステロイド骨格を有する界面活性剤は、疎水性部分としてのステロイド骨格、および親水性部分を有する化合物、またはその塩であり得る。親水性部分としては、例えば、アニオン性部分〔例、スルホネート（−ＳＯ_３ ⁻）、カルボキシレート（−ＣＯＯ⁻）、およびホスホネート（−ＰＯＯ_２ ⁻）〕、カチオン性部分（例、１〜４個の炭化水素基で置換されていてもよい４級アンモニウムおよび４級ホスホニウム）、非イオン性親水性部分（例、複数のエーテル）およびそれらを有する基（例、このような親水性部分を有する炭化水素基）が挙げられる。したがって、ステロイド骨格を有する界面活性剤は、親水性部分の種類に応じて、アニオン性界面活性剤、カチオン性界面活性剤、両性界面活性剤または非イオン性界面活性剤であり得る。上述した炭化水素基としては、例えば、メチル、エチル、プロピル、ｉｓｏ−プロピル、ブチル、ｉｓｏ−ブチル、ｓｅｃ−ブチル、ｔｅｒｔ−ブチル、ペンチル、ヘキシル、ヘプチル、オクチル、ノニル、デシル、ドデシル（ラウリル）、テトラデシル（ミリスチル）、ヘキサデシル（セチル）、ヘプタデシル、オクタデシル（ステアリル）、シクロプロピル、シクロブチル、シクロペンチル、シクロヘキシル、シクロヘプチル、シクロオクチル、シクロノニル、シクロデシル、フェニル、およびナフタレニルが挙げられる。炭化水素基は、好ましくは、炭素原子数１〜１０の炭化水素基であり、より好ましくは炭素原子数１〜６のアルキル基である。

ステロイド骨格は、親水性部分の他に、１〜６個（好ましくは１、２、３または４個）の置換基を有していてもよい。このような置換基としては、ステロイド骨格の性質（例、疎水性）を大きく損なうものでない限り特に限定されないが、例えば、炭素原子数１〜１０の炭化水素基、ヒドロキシル基、炭素原子数１〜１０の炭化水素基で置換されたヒドロキシル基（例、アルキルオキシ基）、炭素原子数１〜１０の炭化水素基−カルボニル−オキシ基（例、アルキル−カルボニル−オキシ基）、オキソ基、ホルミル基、炭素原子数１〜１０の炭化水素基−オキシ−カルボニル基（例、アルキルオキシ−カルボニル基）、ハロゲン原子（例、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子）、およびシアノが挙げられる。

本明細書中で用いられる用語「塩」は、任意の塩であり、例えば、無機塩、有機塩および分子内塩が挙げられる。無機塩としては、例えば、金属塩、ハロゲン化物塩、酸付加塩、およびアンモニウム塩が挙げられる。金属塩としては、例えば、アルカリ金属（例、リチウム、ナトリウム、カリウム）の塩、アルカリ土類金属（例、マグネシウム、カルシウム）の塩が挙げられる。ハロゲン化物塩におけるハロゲンとしては、例えば、フッ素、臭素、塩素、およびヨウ素が挙げられる。無機塩である酸付加塩としては、例えば、塩酸、硝酸、硫酸等の無機酸との塩が挙げられる。有機塩としては、例えば、トリメチルアミン、トリエチルアミン、ピリジン等の有機塩基との塩、ならびにシュウ酸等の有機酸との塩が挙げられる。

好ましくは、ステロイド骨格を有する界面活性剤は、胆汁酸またはその誘導体あるいはそれらの塩である。胆汁酸としては、例えば、デオキシコール酸、ケノデオキシコール酸、ウルソデオキシコール酸、ヒオデオキシコール酸、コール酸、グリココール酸、タウロコール酸、ヒオコール酸、５α−シプリノール、リトコール酸、タウロデオキシコール酸、およびタウロコール酸が挙げられる。胆汁酸の誘導体としては、例えば、ＣＨＡＰＳ、ＢＩＧＣＨＡＰ、およびｄｅｏｘｙ−ＢＩＧＣＨＡＰが挙げられる。

より好ましくは、ステロイド骨格を有する界面活性剤は、７位にヒドロキシル基を有しないステロイド骨格を有していてもよい。７位にヒドロキシル基を有しないステロイド骨格を有する界面活性剤としては、例えば、ヒドロキシル基以外の基（例、ヒドロキシル基を除く上述した置換基）を７位に有するステロイド骨格を有する界面活性剤、および７位に置換基を有しない（換言すれば、７位の炭素原子が水素原子と結合している）ステロイド骨格を有する界面活性剤が挙げられる。特に好ましくは、７位にヒドロキシル基を有しないステロイド骨格を有する界面活性剤は、７位に置換基を有しないステロイド骨格を有する界面活性剤である。７位に置換基を有しないステロイド骨格を有する界面活性剤としては、例えば、デオキシコール酸、タウロデオキシコール酸、リトコール酸、および５α−シプリノール、ならびにそれらの塩が挙げられる。

サンプルの処理は、１種または複数（例、２または３種）の上記界面活性剤を用いて行われてもよい。上記界面活性剤の濃度は、ビタミンＤの測定に有効な濃度である限り特に限定されず、適宜調整することができるが、例えば、０．００１％（ｗ／ｖ）〜１０％（ｗ／ｖ）％（ｗ／ｖ）であってもよい。
具体的には、ステロイド骨格を有する界面活性剤によりサンプルを処理する場合におけるこのような界面活性剤の濃度は、後述するような反応液を用いる方法によりサンプルを処理する場合、反応液とサンプルとの混合液においてその作用が発揮されるような濃度である限り特に限定されないが、例えば、０．００１％（ｗ／ｖ）〜５％（ｗ／ｖ）であってもよい。このような場合、ステロイド骨格を有する界面活性剤の濃度は、好ましくは０．００５％（ｗ／ｖ）以上、より好ましくは０．０１％（ｗ／ｖ）以上、さらにより好ましくは０．０２％（ｗ／ｖ）以上であってもよい。ステロイド骨格を有する界面活性剤の濃度はまた、好ましくは１％（ｗ／ｖ）以下、より好ましくは０．８％（ｗ／ｖ）以下、さらにより好ましくは０．６％（ｗ／ｖ）以下、特に好ましくは０．５％（ｗ／ｖ）以下であってもよい。複数の界面活性剤を用いる場合、各界面活性剤の濃度もまた、上記のとおりである。
また、ステロイド骨格を有する界面活性剤によりサンプルを処理する場合におけるこのような界面活性剤の濃度は、後述するような前処理液を用いる方法によりサンプルを処理する場合には、前処理液とサンプルとの混合液においてその作用が発揮されるような濃度である限り特に限定されないが、例えば、０．００１％（ｗ／ｖ）〜１０％（ｗ／ｖ）であってもよい。このような場合、ステロイド骨格を有する界面活性剤の濃度は、好ましくは０．００５％（ｗ／ｖ）以上、より好ましくは０．０１％（ｗ／ｖ）以上、さらにより好ましくは０．０２％（ｗ／ｖ）以上であってもよい。ステロイド骨格を有する界面活性剤の濃度はまた、好ましくは１％（ｗ／ｖ）以下、より好ましくは０．８％（ｗ／ｖ）以下、さらにより好ましくは０．６％（ｗ／ｖ）以下、特に好ましくは０．５％（ｗ／ｖ）以下であってもよい。複数の界面活性剤を用いる場合、各界面活性剤の濃度もまた、上記のとおりである。
さらに、ステロイド骨格を有する界面活性剤によりサンプルを処理する場合におけるこのような界面活性剤の濃度は、後述するような前処理液および希釈液を用いる方法によりサンプルを処理する場合には、前処理液、希釈液およびサンプルの混合液においてその作用が発揮されるような濃度である限り特に限定されないが、例えば、０．００１％（ｗ／ｖ）〜１０％（ｗ／ｖ）であってもよい。このような場合、ステロイド骨格を有する界面活性剤の濃度は、好ましくは０．００５％（ｗ／ｖ）以上、より好ましくは０．０１％（ｗ／ｖ）以上、さらにより好ましくは０．０２％（ｗ／ｖ）以上であってもよい。ステロイド骨格を有する界面活性剤の濃度はまた、好ましくは１％（ｗ／ｖ）以下、より好ましくは０．８％（ｗ／ｖ）以下、さらにより好ましくは０．６％（ｗ／ｖ）以下、特に好ましくは０．５％（ｗ／ｖ）以下であってもよい。複数の界面活性剤を用いる場合、各界面活性剤の濃度もまた、上記のとおりである。

一実施形態では、サンプルの処理は、ステロイド骨格を有する界面活性剤に加えて、ステロイド骨格を有する界面活性剤と異なる別の変性剤を併用して行われてもよい。したがって、本発明の方法は、別の変性剤でサンプルを処理することをさらに含んでいてもよい。ステロイド骨格を有する界面活性剤および別の変性剤によるサンプルの処理は、同時または別々に行うことができるが、好ましくは同時に行われる。このような変性剤としては、例えば、界面活性剤（例、アニオン性界面活性剤、カチオン性界面活性剤、両性界面活性剤または非イオン性界面活性剤）、カオトロピック剤、還元剤が挙げられる。変性剤は、１種であってもよいが、複数（例、２または３種）であってもよい。このような変性剤は、変性作用のために有効な濃度で用いられてもよいが、変性作用以外の作用を期待して、変性作用以外の作用に有効な濃度で用いられてもよい。例えば、別の変性剤によりサンプルを処理する場合における別の変性剤の濃度は、ステロイド骨格を有する界面活性剤の上述したような濃度と同様であってもよい。

ステロイド骨格を有する界面活性剤と異なる別の変性剤であるアニオン性界面活性剤としては、例えば、ヘキシル硫酸、オクチル硫酸、デシル硫酸、ドデシル硫酸、テトラデシル硫酸、ヘキサデシル硫酸、ドデシルホスホン酸、ドデシルベンゼンスルホン酸、ｎ−ラウロイルサルコシン、およびｎ−ドデカノイルサルコシン酸、ならびにこれらの塩（例、ナトリウム塩等の上述の塩）が挙げられる。

ステロイド骨格を有する界面活性剤と異なる別の変性剤であるカチオン性界面活性剤としては、例えば、４級アンモニウム化合物および４級ホスホニウム化合物（例、１〜４個の上述したような炭化水素基で置換されたもの）、ならびにこれらの塩（例、ハロゲン化物）が挙げられる。カチオン性界面活性剤の具体例としては、セチルジメチルエチルアンモニウム、ヘキサデシルトリメチルアンモニウム、ヘキサデシルトリメチルアンモニウム、およびミリスチルトリメチルアンモニウム、ならびにそれらのハロゲン化物（例、ブロミド）が挙げられる。

ステロイド骨格を有する界面活性剤と異なる別の変性剤である両性界面活性剤としては、例えば、Ｚｗｉｔｔｅｒｇｅｎｔ、ＡＳＢ−１４、ＡＳＢ−１４−４、Ｃ７Ｂｚ０、ＥＭＰＩＧＥＮ ＢＢ界面活性剤、３−Ｎ（Ｎ，Ｎ−ジメチルオクチルアンモニオ）プロパンスルホン酸、３−ｎ（Ｎ，Ｎ−ジメチルオクチルアンモニオ）プロパンスルホン酸、３−（デシルジメチルアンモニオ）プロパンスルホナート酸、Ｎ−ドデシルＮ，Ｎ−ジメチル−３アンモニオ−１プロパンスルホン酸、３−（Ｎ，Ｎ−ジメチルミリスチルアンモニオ）プロパンスルホン酸、３−（Ｎ，Ｎ−ジメチルパルミチルアンモニオ）プロパンスルホン酸、および３−（Ｎ，Ｎ−ジメチルオクタデシルアンモニオ）プロパンスルホン酸、ならびにそれらの塩（例、分子内塩等の上述した塩）が挙げられる。

ステロイド骨格を有する界面活性剤と異なる別の変性剤である非イオン性界面活性剤としては、例えば、Ｂｒｉｊ３５、Ｂｒｉｊ５６、キラヤ属樹皮由来サポニン、ＴｒｉｔｏｎＸ −４０５、ＴｒｉｔｏｎＸ−Ｎ １０１、ＴｒｉｔｏｎＸ−１００、ＴｒｉｔｏｎＸ−７０５−７０、ＴｒｉｔｏｎＸ−３０５、Ｔｗｅｅｎ−２０、Ｔｗｅｅｎ−４０、Ｔｗｅｅｎ−６０、Ｔｗｅｅｎ−８０、ＭＥＧＡ−８、ＭＥＧＡ−１０、ＮＰ４０が挙げられる。

ステロイド骨格を有する界面活性剤と異なる別の変性剤であるカオトロピック剤としては、例えば、グアニジン、尿素、およびチオ硫酸、ならびにそれらの塩（例、塩酸塩等の酸付加塩およびカリウム塩等の金属塩等の上述した塩）が挙げられる。

ステロイド骨格を有する界面活性剤と異なる別の変性剤である還元剤としては、例えば、ジチオトレイトール（ＤＴＴ）、ジチオエリトリトール（ＤＴＥ）、２−メルカプトエチルアミン（２ＭＥＡ）、２−メルカプトエタノール（２ＭＥ）、トリス−２−カルボキシエチルホスフィン塩酸塩（ＴＣＥＰ−ＨＣｌ）、Ｌ−システイン、Ｎ−アセチル−Ｌ−システイン、アスコルビン酸が挙げられる。

好ましい実施形態では、ステロイド骨格を有する界面活性剤と異なる別の変性剤は、炭化水素鎖から構成される疎水性部分、および親水性部分を含む界面活性剤（塩を含む）である。

別の変性剤において、疎水性部分は、炭化水素鎖から構成される。炭化水素鎖は、直鎖または分岐鎖の炭化水素基であり、炭化水素鎖中の炭素原子数は通常８〜６０個である。炭化水素鎖から構成される疎水性部分、および親水性部分を含む界面活性剤は、少なくとも１つのこのような炭化水素鎖を有していればよい。炭化水素鎖中の炭素原子数は、好ましくは１０個以上である。炭化水素鎖中の炭素原子数はまた、合成または入手の容易の観点から、４０個以下が好ましく、３０個以下がより好ましく、２０個以下がさらにより好ましい。炭化水素鎖中の炭素原子数は、特に好ましくは１０または１１個である。
直鎖の炭化水素基としては、直鎖の飽和炭化水素基であるアルキル基、ならびに直鎖の不飽和炭化水素基（例、アルケニル基およびアルキニル基）が挙げられる。炭素原子数８〜６０個のアルキル基としては、例えば、オクチル、ノニル、デシル、ウンデシル、ドデシル、トリデシル、テトラデシル、ペンタデシル、ヘキサデシル、ヘプタデシル、オクタデシル、ノナデシル、イコシルが挙げられる。炭素原子数８〜６０個の直鎖の不飽和炭化水素基としては、例えば、上述したアルキル基において、１〜４個（好ましくは１または２個）の不飽和結合（二重結合または三重結合）部分を含むものが挙げられる。
分岐鎖の炭化水素基としては、例えば、上述した直鎖の飽和または不飽和炭化水素基上の水素原子が、１〜４個（好ましくは１または２個）の炭素原子数１〜１０の炭化水素基で置換されたものが挙げられる。炭素原子数１〜１０の炭化水素基としては、メチル、エチル、プロピル、ｉｓｏ−プロピル、ブチル、ｉｓｏ−ブチル、ｓｅｃ−ブチル、ｔｅｒｔ−ブチル、ペンチル、ヘキシル、ヘプチル、オクチル、ノニル、デシル、シクロプロピル、シクロブチル、シクロペンチル、シクロヘキシル、シクロヘプチル、シクロオクチル、シクロノニル、シクロデシル、フェニル、ナフタレニルが挙げられる。
疎水性部分を構成する炭化水素鎖は、好ましくは、直鎖の飽和炭化水素基であり、より好ましくは、１０または１１個の炭素原子数を有する直鎖の飽和炭化水素基である。

別の変性剤において、親水性部分としては、例えば、アニオン性親水性部分およびカチオン性親水性部分が挙げられる。炭化水素鎖から構成される疎水性部分、および親水性部分を含む界面活性剤は、１または２種以上の親水性部分を有していてもよく、アニオン性親水性部分およびカチオン性親水性部分の双方を有していてもよい。アニオン性親水性部分としては、例えば、スルホネート基（−ＳＯ_３ ⁻）、カルボキシレート基（−ＣＯＯ⁻）、およびホスホネート基（−ＰＯＯ_２ ⁻）が挙げられる。カチオン性親水性部分としては、例えば、アンモニウム基（Ｎ^＋）、およびホスホニウム基（Ｐ^＋）が挙げられる。親水性部分は、好ましくは、スルホネート基（−ＳＯ_３ ⁻）、カルボキシレート基（−ＣＯＯ⁻）、アンモニウム基（Ｎ^＋）、またはホスホニウム基（Ｐ^＋）であり、より好ましくは、スルホネート基（−ＳＯ_３ ⁻）、カルボキシレート基（−ＣＯＯ⁻）、またはアンモニウム基（Ｎ^＋）であり、さらにより好ましくは、スルホネート基（−ＳＯ_３ ⁻）、またはカルボキシレート基（−ＣＯＯ⁻）であり、特に好ましくは、スルホネート基（−ＳＯ_３ ⁻）である。

炭化水素鎖から構成される疎水性部分、および親水性部分を含む界面活性剤は、炭化水素鎖から構成される疎水性部分および親水性部分に加えて、他の部分（例えば、疎水性部分と親水性部分との間）を含んでいてもよい。このような他の部分としては、例えば、環状基（例、シクロアルキル基、アリール基、複素環基）、および非環状基（例、アミノ基、カルボニル基、カルボニルアミノ基）が挙げられる。

具体的には、炭化水素鎖から構成される疎水性部分、および親水性部分を含む界面活性剤としては、例えば、ヘキシル硫酸、オクチル硫酸、デシル硫酸、ドデシル硫酸、テトラドデシル硫酸、ヘキサデシル硫酸、ドデシルホスホン酸、ドデシルベンゼンスルホン酸、Ｎ−ラウロイルサルコシン酸、およびドデカノイルサルコシン酸、ならびにそれらの塩が挙げられる。

サンプルの処理は、１種または複数（例、２または３種）の別の変性剤を用いて行われてもよい。別の変性剤の濃度は、ビタミンＤの測定に有効な濃度である限り特に限定されず、適宜調整することができる。例えば、炭化水素鎖から構成される疎水性部分、および親水性部分を含む界面活性剤を別の変性剤として用いる場合には、このような界面活性剤の濃度は、例えば、０．００１％（ｗ／ｖ）〜１０％（ｗ／ｖ）％（ｗ／ｖ）であってもよい。
具体的には、炭化水素鎖から構成される疎水性部分、および親水性部分を含む界面活性剤によりサンプルを処理する場合におけるこのような界面活性剤の濃度は、後述するような反応液を用いる方法によりサンプルを処理する場合、反応液とサンプルとの混合液においてその作用が発揮されるような濃度である限り特に限定されないが、例えば、０．００５％（ｗ／ｖ）〜５％（ｗ／ｖ）であってもよい。このような場合、炭化水素鎖から構成される疎水性部分、および親水性部分を含む界面活性剤の濃度は、好ましくは０．０１％（ｗ／ｖ）以上、より好ましくは０．０２％（ｗ／ｖ）以上であってもよい。炭化水素鎖から構成される疎水性部分、および親水性部分を含む界面活性剤の濃度はまた、好ましくは１％（ｗ／ｖ）以下、より好ましくは０．８％（ｗ／ｖ）以下、さらにより好ましくは０．６％（ｗ／ｖ）以下、特に好ましくは０．５％（ｗ／ｖ）以下であってもよい。複数の界面活性剤を用いる場合、各界面活性剤の濃度もまた、上記のとおりである。
また、炭化水素鎖から構成される疎水性部分、および親水性部分を含む界面活性剤によりサンプルを処理する場合におけるこのような界面活性剤の濃度は、後述するような前処理液を用いる方法によりサンプルを処理する場合には、前処理液とサンプルとの混合液においてその作用が発揮されるような濃度である限り特に限定されないが、例えば、０．００１％（ｗ／ｖ）〜１０％（ｗ／ｖ）であってもよい。このような場合、炭化水素鎖から構成される疎水性部分、および親水性部分を含む界面活性剤の濃度は、好ましくは０．００１％（ｗ／ｖ）以上、より好ましくは０．０２％（ｗ／ｖ）以上、さらにより好ましくは０．０３％（ｗ／ｖ）以上であってもよい。炭化水素鎖から構成される疎水性部分、および親水性部分を含む界面活性剤の濃度はまた、好ましくは１％（ｗ／ｖ）以下、より好ましくは０．８％（ｗ／ｖ）以下、さらにより好ましくは０．６％（ｗ／ｖ）以下、特に好ましくは０．５％（ｗ／ｖ）以下であってもよい。複数の界面活性剤を用いる場合、各界面活性剤の濃度もまた、上記のとおりである。

サンプルの処理はまた、他の成分の存在下で行われてもよい。このような成分としては、例えば、ビタミンＤに対する親和性物質、アルブミン（例、ウシ血清アルブミン、ヒト血清アルブミン）、ゼラチン、およびスキムミルクが挙げられる。

ビタミンＤに対する親和性物質とは、ビタミンＤに結合する能力を有する物質をいい、例えば、ビタミンＤに対する抗体、アプタマーが挙げられる。抗体は、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体のいずれでもよい。抗体はまた、抗体のフラグメント（例、Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ’）_２）、組換え抗体（例、ｓｃＦｖ）であってもよい。抗体はさらに、ファージディスプレイ等の分子生物学的手法により、および／または既存のタンパク質モチーフを利用してタンパク質工学的手法により作製された抗体様分子（例、ａｆｆｉｂｏｄｙ、ａｎｔｉｃａｌｉｎ、ＤＡＲＰｉｎｓ、ｍｏｎｏｂｏｄｙ）であってもよい。

サンプルの処理は、例えば、（ａ）サンプルを、上述したような成分を含む水溶液（例、緩衝液）と混合して混合液を調製すること、および（ｂ）混合液をインキュベートすることを含む。

緩衝液としては、例えば、トリス緩衝液（例、Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ緩衝液、ＴＥ緩衝液、ＴＡＥ緩衝液、ＴＢＥ緩衝液、トリス緩衝生理食塩水）、リン酸緩衝液（例、リン酸緩衝生理食塩水、）、炭酸緩衝液（例、炭酸−重炭酸ナトリウム緩衝液）、ＧＯＯＤ緩衝液（例、ＭＥＳ、ＡＤＡ、ＰＩＰＥＳ、ＡＣＥＳ、コラミン塩酸、ＢＥＳ、ＴＥＳ、ＨＥＰＥＳ、アセトアミドグリシン、トリシン、グリシンアミド、ビシン）が挙げられる。サンプルの処理は、中性条件下あるいは酸性またはアルカリ性条件下で行うことができるが、好ましくは中性条件下で行われる。したがって、サンプルの処理において採用されるｐＨ値は、例えば４．０〜９．５、好ましくは５．０〜９．０、好ましくは５．５〜８．５、より好ましくは６．０〜８．０である。サンプルの処理におけるｐＨ値の調整は、緩衝液、酸性物質およびアルカリ性物質を利用して行うことができる。

サンプルの処理（例、上記（ａ）（ｂ）の工程）の温度は、ステロイド骨格を有する界面活性剤等の成分がその作用を発揮するのに適切である限り特に限定されないが、例えば１５〜６０℃、好ましくは２０〜５０℃、より好ましくは２０〜４５℃である。（ａ）における混合液の調製に要する時間は、通常、３０秒以下であり、好ましくは２０秒以下であり、より好ましくは１５秒以下であり、さらにより好ましくは１０秒以下である。（ｂ）におけるインキュベート時間は、例えば６０分以下、好ましくは３０分以下、より好ましくは１０分以下である。測定のための処理時間の短縮の観点から、インキュベート時間は、さらにより好ましくは５分以下であり、特に好ましくは３分以下、２分以下、１分以下、５０秒以下、４０秒以下、３０秒以下、２０秒以下、１５秒以下、１０秒以下または５秒以下であってもよい。したがって、測定のための処理時間の短縮の観点から、サンプルの処理時間（例、上記（ａ）（ｂ）の合計時間）は、３分以下、２分以下、１分以下、５０秒以下、４０秒以下、３０秒以下または１５秒以下であってもよい。

サンプルの処理はまた、混合のみによって行われてもよい。サンプルの処理が「混合のみ」によって行われるとは、サンプルの処理が上記（ａ）によって行われ、上記（ｂ）が行われないこと（即ち、インキュベーションが不要であること）を意味する。迅速かつ簡便な測定という観点からは、サンプルの処理を混合のみによって行ってもよい。

（Ａ−１−１．反応液の使用）
好ましい実施形態では、上記工程１）は、ステロイド骨格を有する界面活性剤およびビタミンＤに対する親和性物質を含む反応液でサンプルを処理することにより行うことができる。

反応液は、ステロイド骨格を有する界面活性剤およびビタミンＤに対する親和性物質を含む。反応液はまた、ステロイド骨格を有する界面活性剤と異なる別の界面活性剤（例、アニオン性界面活性剤、カチオン性界面活性剤、両性界面活性剤または非イオン性界面活性剤）、カオトロピック剤、および還元剤、ならびに炭化水素鎖から構成される疎水性部分、および親水性部分を含む界面活性剤等の上述したような他の成分を１種または複数（例、２または３種以上）含んでいてもよい。

反応液中のステロイド骨格を有する界面活性剤の濃度は、反応液とサンプルとの混合液においてその作用が発揮されるような濃度である限り特に限定されないが、例えば、反応液とサンプルとの混合液において上述したような濃度（ステロイド骨格を有する界面活性剤でサンプルを処理する場合におけるステロイド骨格を有する界面活性剤の濃度）を達成できるような濃度である。したがって、反応液中のステロイド骨格を有する界面活性剤の濃度は、サンプルおよび反応液の容量に基づいて、上述したような濃度を達成するように適宜設定できる。

反応液は、上述したような物質を水溶液（例、上述したような緩衝液）中に含む。反応液は、中性溶液あるいは酸性溶液またはアルカリ性溶液であり得るが、好ましくは中性溶液である。したがって、反応液のｐＨ値は、例えば４．０〜９．５、好ましくは５．０〜９．０、好ましくは５．５〜８．５、より好ましくは６．０〜８．０である。

反応液の容量は、サンプルの容量および種類、ならびにアッセイの目的（例、定性的または定量的測定）等に応じて適宜決定できるが、サンプルの容量に対して、例えば０．１〜１００倍、好ましくは０．５〜５０倍、より好ましくは１〜１０倍である。

反応液によるサンプルの処理は、反応液中に含まれるステロイド骨格を有する界面活性剤等の成分の作用を発揮するのに適切な様式で適宜行われる。例えば、反応液によるサンプルの処理は、上述したようなサンプルの処理と同様にして行うことができ、（ａ１）サンプルを反応液と混合して混合液を調製すること、および（ｂ１）混合液をインキュベートすることを含んでいてもよい。（ａ１）および（ｂ１）における温度および時間の条件は、それぞれ、上記（ａ）および（ｂ）において上述したものと同様である。

（Ａ−１−２．前処理液および希釈液の使用）
別の好ましい実施形態では、上記工程１）は、ｉ）変性剤を含む前処理液でサンプルを処理すること、およびｉｉ）前処理液で処理されたサンプルを、ステロイド骨格を有する界面活性剤を含む希釈液で処理することにより行うことができる。

（工程ｉ）
前処理液は、変性剤を含む。変性剤としては、例えば、ステロイド骨格を有する界面活性剤、ならびにステロイド骨格を有する界面活性剤と異なる別の界面活性剤（例、アニオン性界面活性剤、カチオン性界面活性剤、両性界面活性剤または非イオン性界面活性剤）、カオトロピック剤、および還元剤が挙げられる。前処理液に含まれる変性剤は、１種であってもよいが、複数（例、２または３種以上）であってもよい。前処理液は、変性剤として、希釈液に含まれる界面活性剤と同種の１または２個以上（例、１〜３個）の界面活性剤（例、ステロイド骨格を有する界面活性剤および別の界面活性剤）を含んでいてもよい。前処理液はまた、上述したような他の成分を含んでいてもよい。

前処理液中のステロイド骨格を有する界面活性剤の濃度は、前処理液とサンプルとの混合液においてその作用が発揮されるような濃度である限り特に限定されないが、例えば、前処理液とサンプルとの混合液において上述したような濃度（サンプルをステロイド骨格を有する界面活性剤で処理する場合におけるステロイド骨格を有する界面活性剤の濃度）を達成できるような濃度である。したがって、前処理液中のステロイド骨格を有する界面活性剤の濃度は、サンプルおよび前処理液の容量に基づいて、上述したような濃度を達成するように適宜設定できる。

前処理液は、上述したような物質を水溶液（例、上述したような緩衝液）中に含む。前処理液は、中性溶液あるいは酸性溶液またはアルカリ性溶液であり得るが、好ましくは中性溶液である。したがって、前処理液のｐＨ値は、例えば４．０〜９．５、好ましくは５．０〜９．０、好ましくは５．５〜８．５、より好ましくは６．０〜８．０である。

前処理液の容量は、サンプルの容量および種類、ならびにアッセイの目的（例、定性的または定量的測定）等に応じて適宜決定できるが、サンプルの容量に対して、例えば０．５〜１００倍、好ましくは１〜１０倍、より好ましくは１〜５倍である。

前処理液によるサンプルの処理は、前処理液中に含まれる成分の作用を発揮するのに適切な様式で適宜行われる。例えば、前処理液によるサンプルの処理は、上述したようなサンプルの処理と同様にして行うことができ、（ａ２−１）サンプルを前処理液と混合して第１混合液を調製すること、および（ｂ２−１）第１混合液をインキュベートすることを含んでいてもよい。（ａ２−１）および（ｂ２−１）における温度および時間の条件は、それぞれ、上記（ａ）および（ｂ）において上述したものと同様である。前処理液によるサンプルの処理はまた、上述したように混合のみによって行われてもよい。

（工程ｉｉ）
希釈液は、ステロイド骨格を有する界面活性剤を含む。本発明の方法では、ステロイド骨格を有する界面活性剤を含む希釈液を用いることにより、ビタミンＤの検出感度を向上させることができる。希釈液はまた、ステロイド骨格を有する界面活性剤と異なる別の界面活性剤（例、アニオン性界面活性剤、カチオン性界面活性剤、両性界面活性剤または非イオン性界面活性剤）、カオトロピック剤、および還元剤等の他の成分を１種または複数（例、２または３種以上）含んでいてもよい。希釈液はまた、上述したような他の成分（例、ビタミンＤに対する親和性物質、アルブミン）を含んでいてもよい。

希釈液中のステロイド骨格を有する界面活性剤の濃度は、前処理液、希釈液およびサンプルの混合液においてその作用が発揮されるような濃度である限り特に限定されないが、例えば、前処理液、希釈液およびサンプルとの混合液において上述したような濃度（サンプルをステロイド骨格を有する界面活性剤で処理する場合におけるステロイド骨格を有する界面活性剤の濃度）を達成できるような濃度である。したがって、希釈液中のステロイド骨格を有する界面活性剤の濃度は、サンプル、前処理液および希釈液の容量に基づいて、上述したような濃度を達成するように適宜設定できる。

希釈液は、上述したような物質を水溶液（例、上述したような緩衝液）中に含む。希釈液は、中性溶液あるいは酸性溶液またはアルカリ性溶液であり得るが、好ましくは中性溶液である。したがって、希釈液のｐＨ値は、例えば４．０〜９．５、好ましくは５．０〜９．０、好ましくは５．５〜８．５、より好ましくは６．０〜８．０である。

希釈液の容量は、サンプルおよび前処理液の容量および種類、ならびにアッセイの目的（例、定性的または定量的測定）等に応じて適宜決定できるが、サンプルおよび前処理液の総容量よりも多い容量において用いられ得る。具体的には、希釈液の容量は、サンプルおよび前処理液の総容量に対して、例えば１〜２０倍、好ましくは１〜１０倍、より好ましくは１〜５倍である。

希釈液によるサンプルの処理は、希釈液中に含まれるステロイド骨格を有する界面活性剤の作用を発揮するのに適切な様式で適宜行われる。例えば、希釈液によるサンプルの処理は、前処理液によるサンプルの処理と同様にして行うことができ、（ａ２−２）前処理液で処理されたサンプルを希釈液と混合して第２混合液を調製すること、および（ｂ２−２）第２混合液をインキュベートすることを含んでいてもよい。（ａ２−２）および（ｂ２−２）における温度および時間の条件は、それぞれ、上記（ａ）および（ｂ）において上述したものと同様である。

（Ａ−２．工程２）
上述したとおり処理されたサンプルにおいて、ビタミンＤが検出される。ビタミンＤの検出は、定性的または定量的に行われる。本工程では、上述した親和性物質が用いられる場合、親和性物質を処理されたサンプルに添加することを含んでいてもよい。

ビタミンＤの検出は、任意の方法により行うことができ、例えば、ビタミンＤに対する親和性物質を利用して行うことができる。ビタミンＤの検出はまた、免疫学的手法により行なわれてもよい。このような免疫学的手法としては、例えば、酵素免疫測定法（ＥＩＡ）（例、直接競合ＥＬＩＳＡ、間接競合ＥＬＩＳＡ、サンドイッチＥＬＩＳＡ）、放射免疫測定法（ＲＩＡ）、蛍光免疫測定法（ＦＩＡ）、磁性粒子法、免疫クロマト法、ルミネッセンス免疫測定法、スピン免疫測定法、ラテックス凝集法が挙げられる。ビタミンＤの検出を可能とする上記以外の方法としては、例えば、ＬＣ−ＭＳが挙げられる。

ビタミンＤに対する親和性物質として抗体が用いられる場合、２次抗体がさらに用いられてもよい。２次抗体としては、ビタミンＤに対する抗体（１次抗体）の１次抗体部分に対する抗体であってもよく、ビタミンＤおよび１次抗体の複合体に対する抗体であってもよい。２次抗体等の抗体は、検出用物質に連結されていてもよい。検出用物質としては、例えば、酵素（例、西洋ワサビペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ）、親和性物質（例、ストレプトアビジン、ビオチン）、蛍光物質（例、フルオレセイン、フルオレセインイソチオシアネート、ローダミン）、発光物質（例、ルシフェリン、エクオリン）、放射性物質（例、^３Ｈ、^１４Ｃ、^３２Ｐ、^３５Ｓ、^１２５Ｉ）が挙げられる。２次抗体等の抗体は、抗体は、支持体に固定されていてもよい。支持体としては、例えば、粒子（例、磁性粒子）、メンブレン（例、ニトロセルロース膜）、ガラス、プラスチック、金属、プレート（例、マルチウェルプレート）、デバイスが挙げられる。抗体はまた、濾紙等の媒体に含浸された形態で提供されてもよい。

（Ｂ．ビタミンＤの測定用キット）
本発明はまた、ビタミンＤの測定用キットを提供する。

本発明のキットは、以下を含む：
１）ステロイド骨格を有する界面活性剤；ならびに
２）ビタミンＤに対する親和性物質および／またはビタミンＤ標品。
ビタミンＤに対する親和性物質が１次抗体である場合、本発明のキットは、２次抗体をさらに含んでいてもよい。

好ましい実施形態では、本発明のキットは、ステロイド骨格を有する界面活性剤およびビタミンＤに対する親和性物質を含む反応液を含む。

別の好ましい実施形態では、本発明のキットは、以下を含む：
１）変性剤を含む前処理液；
２）ステロイド骨格を有する界面活性剤を含む希釈液；ならびに
３）ビタミンＤに対する親和性物質および／またはビタミンＤ標品。

本発明のキットに含まれる上述の構成成分の詳細（例、有効成分および濃度、好ましい例）は、本発明の方法において上述したとおりである。反応液ならびに前処理液および希釈液は、本発明の方法において上述した成分および／または物質をさらに含んでいてもよい。ビタミンＤ標品は、所定の濃度（単一または複数）のビタミンＤを含む水溶液またはビタミンＤの粉末であり、コントロールとして有用である。

本発明のキットでは、各構成成分が、それぞれ異なる容器（例、チューブ、プレート）に収容された形態で提供されてもよい。あるいは、本発明のキットは、デバイスの形態で提供されてもよい。具体的には、構成成分の全部がデバイス中に収容された形態で提供されてもよい。あるいは、構成成分の一部がデバイス中に収容された形態で提供され、残りのものがデバイス中に収容されない形態（例、異なる容器に収容された形態）で提供されてもよい。この場合、デバイス中に収容されない構成成分は、標的物質の測定の際に、デバイス中に注入されることにより使用されてもよい。デバイスの構造としては、例えば、１）サンプルとステロイド骨格を有する界面活性剤とを混合して混合液を調製するための第１区域、および調製された混合液を、ビタミンＤに対する親和性物質と接触させて、ビタミンＤを検出するための第２区域を備えるデバイス；２）サンプル、ステロイド骨格を有する界面活性剤およびビタミンＤに対する親和性物質を混合して、ビタミンＤを検出する区域を備えるデバイス；ならびに３）サンプルと上記構成成分（例、反応液、ならびに前処理液および希釈液）との混合を可能にする流路、およびビタミンＤを検出するための区域を備えるデバイスが挙げられる。

以下、本発明の実施例を記載するが、これらの実施例により本発明が限定されるものではない。

以下の実施例では、ビタミンＤを測定する免疫学的方法として、２５ＯＨビタミンＤ２および２５ＯＨビタミンＤ３（以下、必要に応じて、２５ＯＨビタミンＤ２および２５ＯＨビタミンＤ３を包括して２５ＯＨビタミンＤと略記する）を認識する１次抗体を用いた。したがって、以下の実施例で測定された値は、２５ＯＨビタミンＤ２および２５ＯＨビタミンＤ３の総量に対応し得る。

実施例１：界面活性剤で処理されたサンプルにおける２５ＯＨビタミンＤの測定
ヒト血清を、界面活性剤を含む前処理液、および界面活性剤または有機溶媒（エタノール）を含む希釈液を併用して経時的に処理し、次いで、免疫学的方法によりヒト血清中の２５ＯＨビタミンＤを測定した。

方法は、以下のとおりに行った。
１）同一のヒトから採取された同一血清（１０μｌ）に、４倍量（４０μｌ）の各種前処理液〔０．３％（ｗ／ｖ） ＳＤＳ／０．１Ｍ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ７．６）＋０．１％（ｗ／ｖ） 下記界面活性剤〕を加えて、血清と前処理液との第１混合液（５０μｌ）を調製した。第１混合液中の各成分の濃度は、次のとおりである：０．２４％（ｗ／ｖ） ＳＤＳ／０．１Ｍ トリス−ＨＣｌ緩衝液＋０．０８％（ｗ／ｖ） 下記界面活性剤。
２）第１混合液を、室温（２５℃）にて１０分間インキュベートした。
３）インキュベートした第１混合液に、３倍量（１５０μｌ）の各種希釈液〔０．１％（ｗ／ｖ） ＢＳＡ／０．１Ｍ トリス緩衝液（ｐＨ７．６）、０．１％（ｗ／ｖ） 下記界面活性剤または１０％（ｖ／ｖ）エタノール〕を加えて、第１混合液と希釈液との第２混合液（２００μｌ）を調製した。第２混合液中の下記界面活性剤の濃度は、０．０９５％（ｗ／ｖ）であった。
４）第２混合液と抗２５ＯＨビタミンＤ抗体結合磁性粒子液を等量、混合した。
５）上記４）で得られた溶液を、３７℃にて１０分間インキュベートした。
６）インキュベート後、磁性プレート上にてサンプル中の磁性粒子を集め、磁性粒子を３回洗浄した。
７）洗浄液を除いた磁性粒子に、アルカリホスファターゼ標識抗体（２５ＯＨビタミンＤおよび抗２５ＯＨビタミンＤ抗体の免疫複合体に対する抗体）溶液を加えた。
８）上記７）で得られた溶液を、３７℃にて１０分間インキュベートした。
９）インキュベート後、磁性プレート上にて溶液中の磁性粒子を集め、磁性粒子を３回洗浄した。
１０）磁性粒子を含む溶液に、発色基質（ＡＭＰＰＤ）を加えた。
１１）上記１０）で得られた溶液を、３７℃にて５分間インキュベートした。
１２）発光カウントを、ラベルリーダー（ＡＲＶＯ；Ｐｅｒｋｉｎ Ｅｌｍｅｒ）で測定した。

結果は、以下の表１に示すとおりであった。なお、表１では、界面活性剤を含まない前処理液および界面活性剤を含まない希釈液の双方で処理されたヒト血清の発光カウントを１００（コントロール）とし、各種条件下で測定された発光カウントを、コントロールに対するパーセントで表示した。

その結果、ステロイド骨格を有する界面活性剤であるＣＨＡＰＳまたはデオキシコール酸ナトリウム（ＤＣ Ｎａ）を含む前処理液を用いて測定されたシグナル強度（発光カウント）は、ステロイド骨格を有しない界面活性剤（前処理液）を用いて測定されたものよりも高い傾向が認められた（表１）。また、ステロイド骨格を有する界面活性剤であるＣＨＡＰＳまたはデオキシコール酸ナトリウム（ＤＣ Ｎａ）を含む希釈液を用いて測定されたシグナル強度（発光カウント）は、ステロイド骨格を有しない界面活性剤および有機溶媒（希釈液）を用いて測定されたものよりも顕著に高かった（表１）。したがって、ビタミンＤの測定において、ステロイド骨格を有する界面活性剤を含む試薬を用いることで、標的物質を高感度に検出できること、特に、ステロイド骨格を有する界面活性剤を含む希釈液を用いることで、標的物質を高感度に検出できることが示された。

実施例２：カオトロピック剤を含む前処理液、およびステロイド骨格を有する界面活性剤を含む希釈液を併用して経時的に処理されたサンプルにおける２５ＯＨビタミンＤの測定
ヒト血清を、カオトロピック剤を含む前処理液、および界面活性剤または有機溶媒（エタノール）を含む希釈液を併用して経時的に処理し、次いで、免疫学的方法によりヒト血清中の２５ＯＨビタミンＤを測定した。

方法は、以下のとおりに行った。
１）同一のヒトから採取された同一血清（１０μｌ）に、４倍量（４０μｌ）の各種前処理液〔７．５Ｍ グアニジン塩酸塩／ＰＢ（リン酸緩衝液）（ｐＨ７．６）、０．１％（ｗ／ｖ）下記界面活性剤〕を加えて、血清と前処理液との第１混合液（５０μｌ）を調製した。第１混合液中の各成分の濃度は、次のとおりである：６Ｍ グアニジン塩酸塩；０．０８％（ｗ／ｖ）下記界面活性剤。
２）第１混合液を、室温（２５℃）にて１０分間インキュベートした。
３）インキュベートした第１混合液に、３倍量（１５０μｌ）の各種希釈液〔０．１％（ｗ／ｖ） ＢＳＡ／０．１Ｍ トリス緩衝液（ｐＨ７．６）、０．１％（ｗ／ｖ）下記界面活性剤または１０％（ｖ／ｖ）エタノール〕を加えて、第１混合液と希釈液との第２混合液（２００μｌ）を調製した。第２混合液中の下記界面活性剤の濃度は、０．０９５％（ｗ／ｖ）であった。
４）以降の操作は、実施例１の４）〜１２）と同じ方法により行った。

結果は、以下の表２に示すとおりであった。なお、表２では、カオトロピック剤（グアニジン塩酸塩）を含み、かつ界面活性剤を含まない前処理液、および界面活性剤を含まない希釈液の双方で処理されたヒト血清の発光カウントを１００（コントロール）とし、各種条件下で測定された発光カウントを、コントロールに対するパーセントで表示した。

表２に示されるように、カオトロピック剤を含む前処理液を使用した場合であっても、デオキシコール酸ナトリウムを含む希釈液を用いて測定されたシグナル強度（発光カウント）は、有機溶媒または他の界面活性剤（Ｔｗｅｅｎ２０）を含む希釈液を用いて測定されたものよりも高かった。したがって、本発明の方法は、前処理液の種類に特に制限されることなく、標的物質を高感度に検出できることが確認された。

実施例３：前処理液および希釈液を併用する本発明の方法による標的物質の測定値と、既存の方法による測定値との相関係数の比較
本発明の方法による標的物質の測定精度を検証するため、前処理液および希釈液を併用する本発明の方法による標的物質の測定値と、異なる方法論を利用する既存の方法により得られた測定値との相関係数を比較した。

３−１）本発明の方法による測定
方法は、以下のとおりに行った。なお、測定サンプルとしては、ヒト血清１４サンプル、チャコール処理血清強化サンプルが１サンプルの計１５サンプルを用いた。
１）血清（１０μｌ）に、４倍量（４０μｌ）の各種前処理液〔７．５Ｍ グアニジン塩酸塩および４ｍＭ ＤＴＴ／０．１Ｍ トリス緩衝液（ｐＨ７．６） ＋ ０．１％（ｗ／ｖ）デオキシコール酸ナトリウム、または５％（ｖ／ｖ）エタノールおよび５％（ｖ／ｖ）ＤＭＳＯ〕を加えて、第１混合液を調製した。
２）第１混合液を、室温（２５℃）にて１０分間インキュベートした。
３）インキュベートした第１混合液に、３倍量（１５０μｌ）の希釈液〔０．１％（ｗ／ｖ） ＢＳＡ／０．１Ｍ リン酸緩衝液（ｐＨ７．６） ＋ ０．１％（ｗ／ｖ）デオキシコール酸ナトリウムまたは５％（ｖ／ｖ）エタノールおよび０．５％（ｖ／ｖ） ＤＭＳＯ〕を３倍量加えて、第１混合液と希釈液との第２混合液を調製した。
４）以降の操作は、実施例１の４）〜１２）と同じ方法により行った。

３−２）既存の方法による測定
異なる方法論を利用する既存の方法としては、後述するとおり、放射性物質を用いるＤｉａＳｏｒｉｎ−ＲＩＡを用いた。ＤｉａＳｏｒｉｎ−ＲＩＡは、市販のキット（２５−Ｈｙｄｒｏｘｙｖｉｔａｍｉｎ Ｄ ^１２５Ｉ ＲＩＡ ＫＩＴ，ＤｉａＳｏｒｉｎ製）を用いて行った。

具体的には、ＤｉａＳｏｒｉｎ−ＲＩＡは、以下Ｉ）およびＩＩ）のとおり行った。なお、測定サンプルとしては、上記３−１）と同じく、ヒト血清１４サンプル、チャコール処理血清強化サンプルが１サンプルの計１５サンプルを用いた。
Ｉ）前処理操作
ａ）ガラス試験管を準備する。
ｂ）アセトニトリルを各試験管に５００μｌずつ分注する。
ｃ）キャリブレーター、コントロール、またはサンプル（血清など）を５０μｌずつ各試験管に加える。
ｄ）サンプル溶液を１０秒間攪拌する。
ｅ）サンプル溶液を、室温にて１２００×ｇで１０分間遠心分離する。
ｆ）上清をサンプルとして用いる。

ＩＩ）測定操作
ａ）上記サンプル２５μｌ、^１２５Ｉ ２５ＯＨビタミンＤ５０μｌおよび抗２５ＯＨビタミンＤ抗体液１ｍｌを混合する。
ａ）混合液を、室温にて９０分インキュベートする。
ｂ）インキュベートした混合液に、ロバ由来抗ヤギ抗体を５００μｌ加える。
ｃ）得られた溶液を、室温にて２５分インキュベートする。
ｄ）インキュベートした溶液に、ＮＳＢ／添加緩衝液を５００μｌ加える。
ｅ）得られた溶液を、室温にて１８００×ｇで２０分間遠心分離する。
ｆ）遠心分離した溶液から完全に上清を除く。
ｇ）ガンマシンチレーションカウンターを用いて測定を行う。

３−３）結果
デオキシコール酸ナトリウムを含む希釈液を用いる本発明の方法により得られた測定値は、Ｄｉａｓｏｒｉｎ ＲＩＡ法による測定値との相関性が高かった（図１、Ｒ^２＝０．８９９３）。一方、エタノールおよびＤＭＳＯを含む希釈液を用いて得られた測定値は、Ｄｉａｓｏｒｉｎ ＲＩＡ法による測定値との相関性が低かった（図１、Ｒ^２＝０．８３２７）。したがって、本発明の方法は、ビタミンＤの測定に有用と考えられる。

実施例４：界面活性剤による処理時間の検討
２５ＯＨビタミンＤの高感度測定に必要とされる、界面活性剤による処理時間について検討した。

方法は、以下のとおりに行った。
１）同一のヒトから採取された同一血清１０μｌに、前処理液〔Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ７．６）に、１％（ｗ／ｖ） デオキシコール酸ナトリウム〕を４０μｌ加えて、攪拌による混合により血清と前処理液との第１混合液（５０μｌ）を調製した。第１混合液中の各成分の濃度は、次のとおりである：０．８％（ｗ／ｖ） デオキシコール酸ナトリウム。攪拌による混合に要した時間は、約３秒であった。
２）第１混合液を、室温（２５℃）にてインキュベートした（１０分、５分または１分）。また、攪拌による混合のみにより調製された第１混合液を、インキュベートすることなく、次の操作に供した（インキュベート時間：０分）。
３）上記２）で得られた溶液に、希釈液〔ＰＢＳ（ｐＨ７．６）に、０．１％（ｗ／ｖ）デオキシコール酸ナトリウムおよび０．１％（ｗ／ｖ） ＢＳＡ〕を１５０μｌ加えて、第１混合液と希釈液との第２混合液（２００μｌ）を調製した。第２混合液中のデオキシコール酸ナトリウムの濃度は、０．２８％（ｗ／ｖ）であった。
４）以降の操作は、実施例１の４）〜１２）と同じ方法により行った。

結果は、以下の表３に示すとおりであった。なお、表３では、０．１４％（ｗ／ｖ） デオキシコール酸ナトリウムを含む前処理液による１０分のインキュベート時間の条件下で測定された発光カウントを１００（コントロール）とし、０分、１分および５分のインキュベート時間の条件下で測定された発光カウントを、コントロールに対する割合で表示した。

その結果、混合のみ（インキュベート時間：０分）でも、１０分間のインキュベートした場合とほぼ同程度の相対発光カウントが得られた。このことは、上記工程１）のインキュベート操作は必ずしも必要でなく、血清と前処理液とを混合するだけで、２５ＯＨビタミンＤが、血清中のＤＢＰから解離することを示す。したがって、本発明の方法により、標的物質の測定に要する時間が短縮できることが示された。

参考例１：既存製品を用いた前処理に要する時間
既存製品では、血清サンプルの前処理に必要とされる時間は、その使用説明書によれば、以下のとおりである。既存製品として、ＤｉａＳｏｒｉｎ−ＲＩＡ（ＤｉａＳｏｒｉｎ社製）、ＤｉａＳｏｒｉｎ−Ｌｉａｉｓｏｎ（ＤｉａＳｏｒｉｎ社製）を用いた。

実施例５：ステロイド骨格を有する界面活性剤、およびアニオン性、カチオン性または両性界面活性剤を用いたビタミンＤの測定
ステロイド骨格を有する界面活性剤（デオキシコール酸ナトリウム）およびビタミンＤに対する抗体を含む反応液で血清を処理し、次いで、免疫学的方法により血清中の２５ＯＨビタミンＤを測定した。また、ステロイド骨格を有する界面活性剤および他の界面活性剤の併用効果も検討した。

具体的には、方法は、以下のとおりであった。
１）１００ｎｇ／ｍｌ強化ウマ血清３．７５μｌに、反応液〔Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ７．６）、０．０３％（ｗ／ｖ）または０．１％（ｗ／ｖ） 下記の界面活性剤、０．０４％（ｗ／ｖ）デオキシコール酸ナトリウム、０．０４％（ｗ／ｖ）ＢＳＡ、抗２５ＯＨビタミンＤ抗体結合粒子液〕１４６．２５μｌを加えて、血清と反応液との混合液（１５０μｌ）を調製した。混合液中の各成分の濃度は、次のとおりである：約０．０３％（ｗ／ｖ）または約０．１％（ｗ／ｖ） 下記の界面活性剤；約０．０４％（ｗ／ｖ）デオキシコール酸ナトリウム；約０．０４％（ｗ／ｖ）ＢＳＡ。
２）混合液を、３７℃にて１０分間インキュベートした。
３）インキュベート後、磁性プレート上にてサンプル中の磁性粒子を集め、磁性粒子を３回洗浄した。
４）洗浄液を除いた磁性粒子に、ＭＥＳ緩衝液中に懸濁したアルカリホスファターゼ標識抗体（２５ＯＨビタミンＤ−抗２５ＯＨビタミンＤ抗体免疫複合体に対する抗体）を加えた。
５）上記４）で得られた溶液を、３７℃にて１０分間インキュベートした。
６）インキュベート後、磁性プレート上にてサンプル中の磁性粒子を集め、磁性粒子を３回洗浄した。
７）洗浄液を除いた磁性粒子に、発光基質（ＡＭＰＰＤ）液を加えた。
８）磁性粒子および発光基質を含む溶液を、３７℃にて５分間インキュベートした。
９）発光カウントを、ラベルリーダー（ＡＲＶＯ；Ｐｅｒｋｉｎ Ｅｌｍｅｒ）で測定した。

結果は、以下の表５に示すとおりであった。なお、表５では、上述した界面活性剤〔０．０３％（ｗ／ｖ）または０．１％（ｗ／ｖ）〕を加えない条件下で測定された血清の発光カウントを１００（コントロール）とし、ステロイド骨格を有する界面活性剤を加えた条件下で測定された血清の発光カウントを、コントロールに対する割合で表示した。

その結果、アニオン性界面活性剤、カチオン性界面活性剤および両性界面活性剤のいずれもが、ステロイド骨格を有する界面活性剤（デオキシコール酸ナトリウム）との組み合わせにおいて、発光カウントを向上させる傾向が認められた。また、アニオン性界面活性剤であるデオキシコール酸ナトリウム、ＳＤＳ、ｎ−ラウロイルサルコシン、およびドデカノイルサルコシン酸、ならびにカチオン性界面活性剤であるセチルジメチルエチルアンモニウムブロミドが、発光カウントを向上させた。特に、デオキシコール酸ナトリウムが、発光カウントの顕著な向上を示した。

また、ステロイド骨格を有する界面活性剤（デオキシコール酸ナトリウム）およびビタミンＤに対する抗体の双方を含む反応液で処理されたサンプルにおいて、ビタミンＤの測定に成功した（上記工程１）を参照）。このことは、ステロイド骨格を有する界面活性剤が、血清中に含まれるビタミンＤ結合性タンパク質からビタミンＤを解離させることができるにもかかわらず、抗体によるビタミンＤの検出を阻害し得ないことを示す。したがって、本発明によれば、ステロイド骨格を有する界面活性剤、およびビタミンＤに対する抗体で別々にサンプルを処理するという煩雑な手法を利用するのではなく、ステロイド骨格を有する界面活性剤およびビタミンＤに対する抗体の双方を含む反応液を用いて、簡便にビタミンＤを測定できることが示された。

実施例６：ビタミンＤの測定に対する、ステロイド骨格の７位にヒドロキシル基を有するおよび有しない界面活性剤によるサンプル処理の影響の検討
実施例５において、デオキシコール酸ナトリウムは、コール酸ナトリウムおよびＣＨＡＰＳよりもシグナル強度が顕著に向上することが確認されている（表５）。ここで、デオキシコール酸ナトリウムは、ステロイド骨格の７位にヒドロキシル基を有しない界面活性剤である一方で、コール酸ナトリウムおよびＣＨＡＰＳは、ステロイド骨格の７位にヒドロキシル基を有する界面活性剤である。このことより、ステロイド骨格の７位のヒドロキシル基の有無がシグナル強度に影響を与えている可能性が考えられた。そこで、ビタミンＤの測定に対する、ステロイド骨格の７位にヒドロキシル基を有するおよび有しない界面活性剤によるサンプル処理の影響について検討した。

具体的には、方法は、以下のとおりであった。
１）１００ｎｇ／ｍｌ強化ウマ血清３．７５μｌに、反応液〔Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ７．６）、０％（ｗ／ｖ）、０．１％（ｗ／ｖ）、０．２％（ｗ／ｖ）または０．４％（ｗ／ｖ）のステロイド骨格を有する下記の界面活性剤、０．０４％（ｗ／ｖ）ＢＳＡ、抗２５ＯＨビタミンＤ抗体結合粒子液〕１４６．２５μｌを加えて、血清と反応液との混合液（１５０μｌ）を調製した。混合液中の各成分の濃度は、次のとおりである：０％（ｗ／ｖ）、約０．１％（ｗ／ｖ）、約０．２％（ｗ／ｖ）または約０．４％（ｗ／ｖ）のステロイド骨格を有する下記の界面活性剤；約０．０４％（ｗ／ｖ）ＢＳＡ。ステロイド骨格の７位にヒドロキシル基を有しない界面活性剤としては、デオキシコール酸ナトリウムおよびタウロデオキシコール酸ナトリウムを用いた。一方、ステロイド骨格の７位にヒドロキシル基を有する界面活性剤としては、タウロコール酸ナトリウム、コール酸ナトリウム、ＣＨＡＰＳを用いた。
２）以降の工程は、実施例５の工程２）〜９）と同じ方法により行った。

結果は、以下の表６に示すとおりであった。なお、表６では、上述した界面活性剤〔０．１％（ｗ／ｖ）、０．２％（ｗ／ｖ）、０．４％（ｗ／ｖ）〕を加えない条件下で測定された血清の発光カウントを１００（コントロール）とし、ステロイド骨格の７位にヒドロキシル基を有する、または有しない界面活性剤を加えた条件下で測定された血清の発光カウントを、コントロールに対する割合で表示した。

その結果、ステロイド骨格の７位にヒドロキシル基を有しないデオキシコール酸ナトリウムおよびタウロデオキシコール酸ナトリウムで処理されたサンプルで測定されたシグナル強度は、ステロイド骨格の７位にヒドロキシル基を有するコール酸ナトリウム、タウロコール酸ナトリウムで処理されたサンプルで測定されたものに比し、顕著に向上した。したがって、本実施例および実施例１より、ステロイド骨格を有する界面活性剤はビタミンＤの測定に有効であり、ステロイド骨格の７位にヒドロキシル基を有しない界面活性剤は、ビタミンＤの測定に特に有用であることが示された。

実施例７：ステロイド骨格を有する界面活性剤、ＳＤＳおよび抗体を含む反応液を用いたビタミンＤの測定
ビタミンＤの測定に対する、ステロイド骨格を有する界面活性剤およびＳＤＳを含む反応液を用いて、ヒト血清サンプル中の２５ＯＨビタミンＤを測定した。

具体的には、方法は、以下のとおりであった。
１）異なる由来のヒト血清（＃１〜１６）またはチャコール処理ヒト血清（コントロール）３．７５μｌに、反応液〔Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ７．６）、０．１４％（ｗ／ｖ） デオキシコール酸ナトリウム、０．０１５％（ｗ／ｖ）ＳＤＳ、０．０４％（ｗ／ｖ）ＢＳＡ、および抗２５ＯＨビタミンＤ抗体結合粒子液〕１４６．２５μｌを加えて、血清と反応液との混合液を調製した。
２）以降の工程は、実施例５の工程２）〜９）と同じ方法により行った。また、得られた測定値を、ＤｉａＳｏｒｉｎ−ＲＩＡ法による測定値と比較した。ＤｉａＳｏｒｉｎ−ＲＩＡ法は、実施例３−２）に記載の方法により行った。

結果は、表７および図３に示すとおりであった。なお、表７では、チャコール処理ヒト血清の発光カウントを１００（コントロール）とし、測定された血清の発光カウントを、コントロールに対する割合で表示した。

その結果、ステロイド骨格を有する界面活性剤、ＳＤＳおよび抗体を含む反応液を用いる本発明の方法により得られた測定値は、Ｄｉａｓｏｒｉｎ ＲＩＡ法による測定値との相関性が高かった（図３、Ｒ^２＝０．９８８１）。したがって、本発明は、ビタミンＤの測定に有用と考えられる。

実施例８：ステロイド骨格を有する界面活性剤での処理によりビタミンＤ結合タンパク質およびヒト血清から放出された２５ＯＨビタミンＤの測定
８−１）ステロイド骨格を有する界面活性剤による画分の処理
コントロール緩衝液（Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ）で処理したヒト血清をゲルろ過クロマトグラフィーにより溶出させて得られた画分（コントロール画分）を、抗２５ＯＨビタミンＤ抗体による測定に付した。また、コントロール画分をデオキシコール酸ナトリウムで処理し、抗２５ＯＨビタミンＤ抗体による測定に付した。

具体的には、方法は、以下のとおりであった。
１）ヒト血清（５０μｌ）に４倍量（２００μｌ）の０．１Ｍ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ７．８）を加えて、混合液を調製した。なお、混合液は、攪拌による混合のみ（約３秒）により調製した（即ち、インキュベート無し）。
２）ゲルろ過クロマトグラフ（ＧＥヘルスケア：ＡＫＴＡ ｅｘｐｌｏｒｅｒ）およびゲルろ過クロマトグラフィーカラム（ｓｕｐｅｒｄｅｘ２００ １０／３０）を用いて、０．１Ｍ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌにより混合液を溶出（０．２５−１カラム容量）することで、分子量依存的な画分を得た。
３）上記２）で得られた画分と、０．４％（ｗ／ｖ）デオキシコール酸Ｎａ塩を含む抗２５ＯＨビタミンＤ抗体結合磁性粒子液とを等量、混合した（デオキシコール酸Ｎａ存在下の条件）。一方、デオキシコール酸Ｎａの非存在下の条件については、０．４％（ｗ／ｖ）デオキシコール酸Ｎａ塩を含まない抗２５ＯＨビタミンＤ抗体結合磁性粒子液と等量、混合した。
４）以降の操作は、実施例１の５）〜１２）と同じ方法により行った。

その結果、デオキシコール酸で処理しない場合、有意な発光カウントは検出されず、２５ＯＨビタミンＤを測定できなかった（図４）。一方、デオキシコール酸で処理し、２５ＯＨビタミンＤを測定した場合、画分＃１５−＃１７において強い発光カウントが検出された。

８−２）ウエスタンブロッティングによるコントロール画分中のビタミンＤ結合タンパク質の検出
ビタミンＤの検出画分が、ビタミンＤ結合タンパク質の検出画分と一致するかどうかについて検討した。

具体的には、方法は、以下のとおりであった。
１）コントロール画分（上記８−１で得られた画分）、３０μｌ）に、その１／３倍量 （１０μｌ）のＮｕＰＡＧＥ ＬＳＤサンプルバッファー（ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）、終濃度１ｍＭのＤＴＴを加えて、混合液を調製した。
２）混合液を、１００℃の超純水にて、５分間ボイルした。
３）得られた溶液を４−１０％アクリルアミドゲルにアプライした。
４）２００Ｖの電圧を２５分間かけ、ＳＤＳ−ＰＡＧＥを実施した。
５）得られたゲルを、ｉＢｌｏｔ（ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を利用してＰＶＤＦ膜へ転写した。
６）転写膜を５％スキムミルク溶液中へ入れ、室温で１時間振とうした。
７）溶液をＰＢＳｔに交換し、転写膜を５分間振とうし、洗浄を行った。
８）上記洗浄操作を、さらに二回繰り返した。その後、溶液を５％スキムミルク溶液に交換した。
９）一次抗体として抗ヒトビタミンＤ結合タンパク質抗体（Ａｂｃａｍ）を１μｇ／ｍｌになるよう５％スキムミルク溶液に加え、転写膜を４℃で一晩振とうした。
１０）溶液をＰＢＳｔに交換し、転写膜を５分間振とうし、洗浄を行った。
１１）上記洗浄操作を、さらに二回繰り返した。その後、溶液を５％スキムミルク溶液に交換した。
１２）二次抗体として抗マウスＩｇ抗体−ＨＲＰを１０００倍希釈になるように５％スキムミルク溶液に加え、室温で１時間振とうした。
１３）溶液をＰＢＳｔに交換し、５分間振とうし、洗浄を行った。
１４）上記洗浄操作を、さらに二回繰り返した。その後、ＰＢＳｔを超純水に交換した。
１５）転写膜を、超純水にて１回すすいだ。
１６）溶液を発光基質（ＥＣＬ ｓｅｌｅｃｔ；ＧＥヘルスケア）に交換した。
１７）ＬＡＳ３０００ ＭＩＮＷＩＮ（ＦＵＪＩＦＩＬＭ）にて転写膜の撮影を実施した。

その結果、ビタミンＤ結合タンパク質が検出された画分＃１５−１７は実施例８−１において２５ＯＨビタミンＤが検出された画分と一致していた（図５）。したがって、０．１Ｍ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌで処理および溶出した場合、２５ＯＨビタミンＤはビタミンＤ結合タンパク質と結合した状態で回収されることが示唆された。

８−３）ステロイド骨格を有する界面活性剤によるビタミンＤ結合タンパク質からのビタミンＤの解離
デオキシコール酸での処理により、ヒト血清中の２５ＯＨビタミンＤが遊離するかどうかについて検討した。

具体的には、方法は、以下のとおりであった。
１）ヒト血清または１４３ｎｇ／ｍｌ ２５ＯＨビタミンＤ添加１％ＢＳＡ−ＰＢＳ溶液（５０μｌ）に、４倍量（２００μｌ）の０．４％（ｗ／ｖ）デオキシコール酸溶液を加えて、混合液を調製した。なお、混合液は、攪拌による混合のみ（約３秒）により調製した（即ち、インキュベート無し）。
２）ゲルろ過クロマトグラフ（ＧＥヘルスケア：ＡＫＴＡ ｅｘｐｌｏｒｅｒ）およびゲルろ過クロマトグラフィーカラム（ｓｕｐｅｒｄｅｘ２００ １０／３０）を用いて、０．４％デオキシコール酸溶液により溶出することで、分子量依存的な画分を得た。次いで、カラム容量の０．２５〜１を回収した。
３）上記処理を行ったサンプルとデオキシコール酸を含まない抗２５ＯＨビタミンＤ抗体結合磁性粒子液を等量、混合した。
４）以降の操作は、実施例１の５）〜１２）と同じ方法により行った。

その結果、実施例８−１）のビタミンＤ結合タンパクが検出された画分＃１５−１７よりも分子量の小さい画分＃２２−２８から２５ＯＨビタミンＤが検出された（図６）。デオキシコール酸で溶出した際に２５ＯＨビタミンＤが検出された画分＃２２−２８は、フリーの２５ＯＨビタミンＤが溶出された画分＃２２−２８と同じであったことから（図６）、デオキシコール酸での処理により、ヒト血清中の２５ＯＨビタミンＤが遊離することが示唆された。

８−４）ステロイド骨格を有する界面活性剤での処理による、ビタミンＤ結合タンパク質および血清からの２５ＯＨビタミンＤの放出
２５ＯＨビタミンＤが、ステロイド骨格を有する界面活性剤での処理により、ビタミンＤ結合タンパク質および２５ＯＨビタミンＤ３の複合体から放出されるかどうかについて検討した。

具体的には、方法は、以下のとおりであった。
１）表８に示されるとおり、サンプルを調製した。具体的には、精製ビタミンＤ結合タンパク質（Ａｂｃａｍ） １．６４ｍｇ／ｍｌ（＋または−） １７．２μｌに２５ＯＨビタミンＤ３（Ｔｒｏｎｔｏ ｃｈｅｍｉｃａｌ ｒｅａｇｅｎｔ） １ｍｇ／ｍｌ（＋または−）を２．８２μｌ加えてサンプルを調製し、次いで得られたサンプルを１０ｍｉｎインキュベートした。
２）上記サンプル３．７５μｌに、表８に示される溶液（ｐＨ７．６ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ緩衝液、０．１３８％（ｗ／ｖ） デオキシコール酸ナトリウム塩＋０．０３８％ ＢＳＡ＋抗２５ＯＨビタミンＤ抗体結合粒子液）１４６．２５μｌを加えて、混合液を調製した。
３）以降の操作は、実施例１の５）〜１２）と同じ方法により行った。

その結果、市販の精製ビタミンＤ結合タンパク質および２５ＯＨビタミンＤ３を用いてビタミンＤ結合タンパク質および２５ＯＨビタミンＤ３の複合体が形成された場合、２５ＯＨビタミンＤ３は検出できなかった（図７および表８の番号２を参照）。一方、デオキシコール酸で処理した場合、２５ＯＨビタミンＤ３を測定できた（図７および表８の番号３を参照）。この場合の測定カウントは、番号１の測定カウントの８８％であった（図７および表８）。

以上より、ステロイド骨格を有する界面活性剤での処理により、ビタミンＤ結合タンパク質および２５ＯＨビタミンＤの複合体から２５ＯＨビタミンＤが放出されること、および放出された２５ＯＨビタミンＤを高感度に測定できることが実証された。

本発明の方法およびキットは、ビタミンＤの測定に有用である。

Claims (12)

1. 以下を含む、ビタミンＤの測定方法：
   １）ステロイド骨格を有する界面活性剤でサンプルを処理すること；および
   ２）処理されたサンプルにおいてビタミンＤを検出すること。
2. 前記界面活性剤が、胆汁酸もしくはその誘導体またはそれらの塩である、請求項１記載の方法。
3. 前記界面活性剤が、７位にヒドロキシル基を有しないステロイド骨格を有する、請求項１または２記載の方法。
4. 前記界面活性剤が、デオキシコール酸もしくはタウロデオキシコール酸またはそれらの塩である、請求項１〜３のいずれか一項記載の方法。
5. ステロイド骨格を有する界面活性剤以外の変性剤でサンプルを処理することをさらに含む、請求項１〜４のいずれか一項記載の方法。
6. ステロイド骨格を有する界面活性剤以外の変性剤が、炭化水素鎖から構成される疎水性部分、および親水性部分を含む界面活性剤である、請求項５記載の方法。
7. サンプルの処理が混合のみによって行われる、請求項１〜６のいずれか一項記載の方法。
8. 以下を含む方法である、請求項１〜７のいずれか一項記載の方法：
   １’）ステロイド骨格を有する界面活性剤およびビタミンＤに対する親和性物質を含む反応液でサンプルを処理すること；ならびに
   ２’）処理されたサンプルにおいてビタミンＤを検出すること。
9. 以下を含む方法である、請求項１〜７のいずれか一項記載の方法：
   １’’）変性剤を含む前処理液でサンプルを処理すること；
   ２’’）前記１’’）で処理されたサンプルを、ステロイド骨格を有する界面活性剤を含む希釈液で処理すること；ならびに
   ３’’）前記２’’）で処理されたサンプルにおいてビタミンＤを検出すること。
10. サンプルがヒト由来のサンプルである、請求項１〜９のいずれか一項記載の方法。
11. サンプルが血液関連サンプルである、請求項１〜１０のいずれか一項記載の方法。
12. 以下を含む、ビタミンＤの測定用キット：
    １）ステロイド骨格を有する界面活性剤；ならびに
    ２）ビタミンＤに対する親和性物質および／またはビタミンＤ標品。