JP6530192B2 - ヘルパーt細胞の活性化方法 - Google Patents
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Description
(1)WT1ペプチドを抗原提示細胞に添加して、ヘルパーT細胞を活性化させる工程を含む、ヘルパーT細胞の活性化方法であって、該WT1ペプチドが、HLA-DRB1*08:02分子、HLA-DRB1*13:02分子、HLA-DRB1*14:03分子、HLA-DRB1*14:05分子、HLA-DQB1*03:02分子、およびHLA-DQB1*04:01分子から選択されるいずれかのMHCクラスII分子に結合する能力を有するものである方法、
(2)WT1ペプチドが、HLA-DRB1*08:02分子、HLA-DRB1*13:02分子、HLA-DRB1*14:03分子、HLA-DRB1*14:05分子、HLA-DQB1*03:02分子、およびHLA-DQB1*04:01分子のうちの少なくとも2つのMHCクラスII分子に結合する能力を有するものである、(1)記載の方法、
(3)WT1ペプチドが、さらに、HLA-DRB1*01:01分子、HLA-DRB1*04:01分子、HLA-DRB1*04:03分子、HLA-DRB1*04:05分子、HLA-DRB1*04:06分子、HLA-DRB1*08:03分子、HLA-DRB1*09:01分子、HLA-DRB1*11:01分子、HLA-DRB1*15:01分子、HLA-DRB1*15:02分子、HLA-DRB3*02:02分子、HLA-DRB4*01:01分子、HLA-DPB1*02:01分子、HLA-DPB1*03:01分子、HLA-DPB1*05:01分子、およびHLA-DPB1*09:01分子から選択されるいずれかのHLAクラスII分子に結合する能力を有するものである、(1)または(2)記載の方法、
(4)WT1ペプチドの抗原提示細胞への添加が、WT1ペプチド、WT1ペプチドをコードするポリヌクレオチド、該ポリペプチドを含む発現ベクター、または該発現ベクターを含む細胞の添加により行われる、(1)から(3)のいずれか1つ記載の方法、
(5)WT1ペプチドが、アミノ酸配列:Lys Arg Tyr Phe Lys Leu Ser His Leu Gln Met His Ser Arg Lys His(配列番号2)を含むペプチド、その変異体または修飾体である、(1)〜(4)のいずれか1つ記載の方法、
(6)WT1ペプチドを抗原提示細胞に添加して、ヘルパーT細胞を活性化させるための、WT1ペプチドを含む組成物であって、該WT1ペプチドが、HLA-DRB1*08:02分子、HLA-DRB1*13:02分子、HLA-DRB1*14:03分子、HLA-DRB1*14:05分子、HLA-DQB1*03:02分子、およびHLA-DQB1*04:01分子から選択されるいずれかのMHCクラスII分子に結合する能力を有するものである組成物、
(7)WT1ペプチドが、HLA-DRB1*08:02分子、HLA-DRB1*13:02分子、HLA-DRB1*14:03分子、HLA-DRB1*14:05分子、HLA-DQB1*03:02分子、およびHLA-DQB1*04:01分子のうちの少なくとも2つのMHCクラスII分子に結合する能力を有するものである、(6)記載の組成物、
(8)WT1ペプチドが、さらに、HLA-DRB1*01:01分子、HLA-DRB1*04:01分子、HLA-DRB1*04:03分子、HLA-DRB1*04:05分子、HLA-DRB1*04:06分子、HLA-DRB1*08:03分子、HLA-DRB1*09:01分子、HLA-DRB1*11:01分子、HLA-DRB1*15:01分子、HLA-DRB1*15:02分子、HLA-DRB3*02:02分子、HLA-DRB4*01:01分子、HLA-DPB1*02:01分子、HLA-DPB1*03:01分子、HLA-DPB1*05:01分子、およびHLA-DPB1*09:01分子から選択されるいずれかのHLAクラスII分子に結合する能力を有するものである、(6)または(7)記載の組成物、
(9)WT1ペプチドの抗原提示細胞への添加が、WT1ペプチド、WT1ペプチドをコードするポリヌクレオチド、該ポリヌクレオチドを含む発現ベクター、または該発現ベクターを含む細胞の添加により行われる、(6)〜(8)のいずれか1つ記載の組成物、
(10)WT1ペプチドが、アミノ酸配列:Lys Arg Tyr Phe Lys Leu Ser His Leu Gln Met His Ser Arg Lys His(配列番号2)を含むペプチド、その変異体または修飾体である、(6)〜(9)のいずれか1つ記載の組成物、
(11)WT1ペプチドを含む抗原ペプチドとMHCクラスII分子との複合体が提示されている抗原提示細胞であって、前記MHCクラスII分子が、HLA-DRB1*08:02分子、HLA-DRB1*13:02分子、HLA-DRB1*14:03分子、HLA-DRB1*14:05分子、HLA-DQB1*03:02分子、およびHLA-DQB1*04:01分子から選択されるいずれかのMHCクラスII分子である、抗原提示細胞、
(12)WT1ペプチドを含む抗原ペプチドとMHCクラスII分子との複合体を認識するヘルパーT細胞であって、前記MHCクラスII分子が、HLA-DRB1*08:02分子、HLA-DRB1*13:02分子、HLA-DRB1*14:03分子、HLA-DRB1*14:05分子、HLA-DQB1*03:02分子、およびHLA-DQB1*04:01分子から選択されるいずれかのMHCクラスII分子である、ヘルパーT細胞、
(13)(11)記載のヘルパーT細胞により活性化される、細胞傷害性T細胞、
(14)(6)〜(10)のいずれか1つ記載の組成物、(11)記載の抗原提示細胞、(12)記載のヘルパーT細胞、または(13)記載の細胞傷害性T細胞のいずれかを有効成分として含む、癌を治療または予防するための医薬組成物、
(15)WT1ペプチド、WT1ペプチドをコードするポリヌクレオチド、該ポリヌクレオチドを含む発現ベクター、または該発現ベクターを含む細胞のいずれかを有効成分として含む、細胞傷害性T細胞を活性化させるための医薬組成物であって、HLA-DRB1*08:02分子、HLA-DRB1*13:02分子、HLA-DRB1*14:03分子、HLA-DRB1*14:05分子、HLA-DQB1*03:02分子、およびHLA-DQB1*04:01分子から選択されるいずれかのMHCクラスII分子を有する対象に投与するための医薬組成物、
(16)WT1ペプチドに特異的に結合する抗体であって、該WT1ペプチドが、HLA-DRB1*08:02分子、HLA-DRB1*13:02分子、HLA-DRB1*14:03分子、HLA-DRB1*14:05分子、HLA-DQB1*03:02分子、およびHLA-DQB1*04:01分子から選択されるいずれかのMHCクラスII分子に結合する能力を有するものである抗体、
(17)HLA-DRB1*08:02分子、HLA-DRB1*13:02分子、HLA-DRB1*14:03分子、HLA-DRB1*14:05分子、HLA-DQB1*03:02分子、およびHLA-DQB1*04:01分子から選択されるいずれかのMHCクラスII分子陽性対象におけるWT1特異的ヘルパーT細胞の存在または量を決定する方法であって、
(a)前記対象から取得した試料をWT1ペプチドを用いて刺激し、
(b)サイトカインまたはヘルパーT細胞の存在または量を調べる、
工程を含み、サイトカインまたはヘルパーT細胞の存在または量の増大がWT1特異的ヘルパーT細胞の存在または量を示すものである方法、
を提供する。
(a)前記対象から取得した試料を上記抗WT抗体と反応させ、次いで、
(b)前記試料に含まれる上記抗WT抗体の存在または量を調べる、
工程を含む方法を提供する。前記工程(a)において用いられる試料として、HLA-DRB1*08:02分子、HLA-DRB1*13:02分子、HLA-DRB1*14:03分子、HLA-DRB1*14:05分子、HLA-DQB1*03:02分子、およびHLA-DQB1*04:01分子から選択されるいずれかのMHCクラスII分子を有する対象から取得されたものを用いることができる。前記工程(a)に用いられる試料は、例えば、血液、リンパ球などの体液、組織などを挙げることができる。試料の取得や抗体との反応などは、当業者であれば公知の手法を用いて適宜行うことができる。本発明における工程(b)は、例えば、上記抗WT抗体の局在、部位、量等を決定することを含むので、癌の診断、予後診断などに用いることができる。上記抗WT抗体は標識されていてもよい。標識としては、蛍光標識、放射性標識などの公知のものを使用することができる。標識することによりWT1ペプチドの存在または量の決定を簡便かつ迅速に行うことが可能となる。
(a)前記対象から取得した試料をWT1ペプチドを用いて刺激し、
(b)サイトカイン、ヘルパーT細胞または細胞傷害性T細胞の存在または量を調べる、
工程を含み、サイトカイン、ヘルパーT細胞または細胞傷害性T細胞の存在または量の増大がWT1特異的ヘルパーT細胞またはWT1特異的細胞傷害性T細胞の存在または量を示すものである方法を提供する。本発明の試料は、抗原提示細胞を含むものであればいかなるものであってもよく、例えば、末梢血単核球、浸潤性リンパ球、腫瘍細胞、腹水中の細胞、胸水中の細胞、脳脊髄液中の細胞、骨髄細胞、またはリンパ節細胞などを挙げることができる。本発明に用いられる試料は、健常人由来であっても、あるいは癌患者由来であってもよい。健常人由来のこれらの細胞を用いることにより、例えば、癌に罹患しているかどうか、あるいはその素因を有するかどうかを診断することなどが可能になる。癌患者由来のこれらの細胞を用いることにより、例えば、癌患者においてWT1免疫療法が効果を有するかどうかを予測することなどが可能になる。本発明の方法において、取得した試料は、WT1ペプチドによる刺激の前後に培養されていてもよく、前記培養条件は当業者が適宜決定することができる。WT1ペプチドを用いたこれらの細胞の刺激は、エレクトロポレーションなどの公知の手法を用いて行うことができ、インビトロまたはインビボのいずれにおいて行われてもよい。サイトカイン産生、ヘルパーT細胞、細胞傷害性T細胞の反応が存在するか、あるいはサイトカイン産生量、ヘルパーT細胞、または細胞傷害性T細胞の反応量は既知の方法により調べることができる。
WT1ペプチドを抗原提示細胞に添加して、ヘルパーT細胞を活性化させるための、WT1ペプチドを含む組成物であって、該ヘルパーT細胞が、HLA-DRB1*08:02分子、HLA-DRB1*13:02分子、HLA-DRB1*14:03分子、HLA-DRB1*14:05分子、HLA-DQB1*03:02分子、およびHLA-DQB1*04:01分子から選択されるいずれかのMHCクラスII分子と該WT1ペプチドとの複合体を認識するものである、組成物、および前記組成物を有効成分として含む、癌を治療または予防するための医薬組成物;
WT1ペプチド、WT1ペプチドをコードするポリヌクレオチド、該ポリヌクレオチドを含む発現ベクター、または該発現ベクターを含む細胞のいずれかを有効成分として含む、癌を治療または予防するための医薬組成物であって、HLA-DRB1*08:02分子、HLA-DRB1*13:02分子、HLA-DRB1*14:03分子、HLA-DRB1*14:05分子、HLA-DQB1*03:02分子、およびHLA-DQB1*04:01分子から選択されるいずれかのMHCクラスII分子を有する対象に投与するための医薬組成物;および
WT1ペプチドを抗原提示細胞に添加して、ヘルパーT細胞を活性化させる工程を含む、ヘルパーT細胞の活性化方法であって、該ヘルパーT細胞が、HLA-DRB1*08:02分子、HLA-DRB1*13:02分子、HLA-DRB1*14:03分子、HLA-DRB1*14:05分子、HLA-DQB1*03:02分子、およびHLA-DQB1*04:01分子から選択されるいずれかのMHCクラスII分子と該WT1ペプチドとの複合体を認識するものである、方法。
(1)ヘルパーT細胞を活性化させるための、WT1ペプチド、WT1ペプチドをコードするポリヌクレオチド、該ポリヌクレオチドを含む発現ベクター、または該発現ベクターを含む細胞を含む組成物であって、該ヘルパーT細胞が、HLA-DRB1*08:02分子、HLA-DRB1*13:02分子、HLA-DRB1*14:03分子、HLA-DRB1*14:05分子、HLA-DQB1*03:02分子、およびHLA-DQB1*04:01分子から選択されるいずれかのMHCクラスII分子と該WT1ペプチドとの複合体を認識するものである、組成物。
(2)細胞傷害性T細胞を活性化させるための、WT1ペプチド、WT1ペプチドをコードするポリヌクレオチド、該ポリヌクレオチドを含む発現ベクター、または該発現ベクターを含む細胞を含む組成物であって、HLA-DRB1*08:02分子、HLA-DRB1*13:02分子、HLA-DRB1*14:03分子、HLA-DRB1*14:05分子、HLA-DQB1*03:02分子、およびHLA-DQB1*04:01分子から選択されるいずれかのMHCクラスII分子を有する対象に投与される、組成物。
(3)癌を治療または予防するための、WT1ペプチド、WT1ペプチドをコードするポリヌクレオチド、該ポリヌクレオチドを含む発現ベクター、または該発現ベクターを含む細胞を含む組成物であって、HLA-DRB1*08:02分子、HLA-DRB1*13:02分子、HLA-DRB1*14:03分子、HLA-DRB1*14:05分子、HLA-DQB1*03:02分子、およびHLA-DQB1*04:01分子から選択されるいずれかのMHCクラスII分子を有する対象に投与される、組成物。
(4)WT1ペプチドを含む、上記(1)〜(3)のいずれかに記載の組成物。
(5)WT1ペプチドが、アミノ酸配列:Lys Arg Tyr Phe Lys Leu Ser His Leu Gln Met His Ser Arg Lys His(配列番号2)を含むペプチド、その変異体または修飾体である、上記(1)〜(4)のいずれかに記載の組成物。
(6)WT1ペプチドが、アミノ酸配列:Lys Arg Tyr Phe Lys Leu Ser His Leu Gln Met His Ser Arg Lys His(配列番号2)を含むペプチドである、上記(5)記載の組成物。
(7)WT1ペプチドを含む抗原ペプチドとMHCクラスII分子との複合体が提示されている抗原提示細胞であって、前記MHCクラスII分子が、HLA-DRB1*08:02分子、HLA-DRB1*13:02分子、HLA-DRB1*14:03分子、HLA-DRB1*14:05分子、HLA-DQB1*03:02分子、およびHLA-DQB1*04:01分子から選択されるいずれかのMHCクラスII分子である、抗原提示細胞。
(8)WT1ペプチドが、アミノ酸配列:Lys Arg Tyr Phe Lys Leu Ser His Leu Gln Met His Ser Arg Lys His(配列番号2)を含むペプチド、その変異体または修飾体である、上記(7)記載の抗原提示細胞。
(9)WT1ペプチドが、アミノ酸配列:Lys Arg Tyr Phe Lys Leu Ser His Leu Gln Met His Ser Arg Lys His(配列番号2)を含むペプチドである、上記(8)記載の抗原提示細胞。
(10)WT1ペプチドを含む抗原ペプチドとMHCクラスII分子との複合体を認識するヘルパーT細胞であって、前記MHCクラスII分子が、HLA-DRB1*08:02分子、HLA-DRB1*13:02分子、HLA-DRB1*14:03分子、HLA-DRB1*14:05分子、HLA-DQB1*03:02分子、およびHLA-DQB1*04:01分子から選択されるいずれかのMHCクラスII分子である、ヘルパーT細胞。
(11)WT1ペプチドが、アミノ酸配列:Lys Arg Tyr Phe Lys Leu Ser His Leu Gln Met His Ser Arg Lys His(配列番号2)を含むペプチド、その変異体または修飾体である、上記(10)記載のヘルパーT細胞。
(12)WT1ペプチドが、アミノ酸配列:Lys Arg Tyr Phe Lys Leu Ser His Leu Gln Met His Ser Arg Lys His(配列番号2)を含むペプチドである、上記(11)記載のヘルパーT細胞。
(13)上記(12)記載のヘルパーT細胞により活性化される、細胞傷害性T細胞。
(14)上記(7)〜(9)のいずれかに記載の抗原提示細胞、上記(10)〜(12)のいずれかに記載のヘルパーT細胞、または上記(13)記載の細胞傷害性T細胞のいずれかを有効成分として含む、癌を治療または予防するための医薬組成物。
(1)WT1ペプチドを抗原提示細胞に添加して、ヘルパーT細胞を活性化させる工程を含む、ヘルパーT細胞の活性化方法であって、該ヘルパーT細胞が、HLA-DRB1*08:02分子、HLA-DRB1*13:02分子、HLA-DRB1*14:03分子、HLA-DRB1*14:05分子、HLA-DQB1*03:02分子、およびHLA-DQB1*04:01分子から選択されるいずれかのMHCクラスII分子と該WT1ペプチドとの複合体を認識するものである、方法。
(2)WT1ペプチドの抗原提示細胞への添加が、WT1ペプチドと抗原提示細胞とを接触させることにより、またはWT1ペプチドをコードするポリヌクレオチドもしくは該ポリヌクレオチドを含む発現ベクターを抗原提示細胞に導入することにより行われる、上記(1)記載の方法。
(3)細胞傷害性T細胞の活性化方法であって、HLA-DRB1*08:02分子、HLA-DRB1*13:02分子、HLA-DRB1*14:03分子、HLA-DRB1*14:05分子、HLA-DQB1*03:02分子、およびHLA-DQB1*04:01分子から選択されるいずれかのMHCクラスII分子を有する対象に、WT1ペプチド、WT1ペプチドをコードするポリヌクレオチド、該ポリヌクレオチドを含む発現ベクター、または該発現ベクターを含む細胞を投与することを含む、方法。
(4)癌を治療または予防するための方法であって、HLA-DRB1*08:02分子、HLA-DRB1*13:02分子、HLA-DRB1*14:03分子、HLA-DRB1*14:05分子、HLA-DQB1*03:02分子、およびHLA-DQB1*04:01分子から選択されるいずれかのMHCクラスII分子を有する対象に、WT1ペプチド、WT1ペプチドをコードするポリヌクレオチド、該ポリヌクレオチドを含む発現ベクター、または該発現ベクターを含む細胞を投与することを含む、方法。
(5)WT1ペプチドが、アミノ酸配列:Lys Arg Tyr Phe Lys Leu Ser His Leu Gln Met His Ser Arg Lys His(配列番号2)を含むペプチド、その変異体または修飾体である、上記(1)〜(4)のいずれかに記載の方法。
(6)WT1ペプチドが、アミノ酸配列:Lys Arg Tyr Phe Lys Leu Ser His Leu Gln Met His Ser Arg Lys His(配列番号2)を含むペプチドである、上記(5)記載の方法。
(1)ヘルパーT細胞を活性化させるための医薬の製造ための、WT1ペプチド、WT1ペプチドをコードするポリヌクレオチド、該ポリヌクレオチドを含む発現ベクター、または該発現ベクターを含む細胞の使用であって、該ヘルパーT細胞が、HLA-DRB1*08:02分子、HLA-DRB1*13:02分子、HLA-DRB1*14:03分子、HLA-DRB1*14:05分子、HLA-DQB1*03:02分子、およびHLA-DQB1*04:01分子から選択されるいずれかのMHCクラスII分子と該WT1ペプチドとの複合体を認識するものである、使用。
(2)細胞傷害性T細胞を活性化させるための医薬の製造のための、WT1ペプチド、WT1ペプチドをコードするポリヌクレオチド、該ポリヌクレオチドを含む発現ベクター、または該発現ベクターを含む細胞の使用であって、該医薬がHLA-DRB1*08:02分子、HLA-DRB1*13:02分子、HLA-DRB1*14:03分子、HLA-DRB1*14:05分子、HLA-DQB1*03:02分子、およびHLA-DQB1*04:01分子から選択されるいずれかのMHCクラスII分子を有する対象に投与されるものである、使用。
(3)癌を治療または予防するための医薬の製造のための、WT1ペプチド、WT1ペプチドをコードするポリヌクレオチド、該ポリヌクレオチドを含む発現ベクター、または該発現ベクターを含む細胞の使用であって、該医薬がHLA-DRB1*08:02分子、HLA-DRB1*13:02分子、HLA-DRB1*14:03分子、HLA-DRB1*14:05分子、HLA-DQB1*03:02分子、およびHLA-DQB1*04:01分子から選択されるいずれかのMHCクラスII分子を有する対象に投与されるものである、使用。
(4)WT1ペプチドを含む医薬の製造のための、上記(1)〜(3)のいずれかに記載の使用。
(5)WT1ペプチドが、アミノ酸配列:Lys Arg Tyr Phe Lys Leu Ser His Leu Gln Met His Ser Arg Lys His(配列番号2)を含むペプチド、その変異体または修飾体である、上記(1)〜(4)のいずれかに記載の使用。
(6)WT1ペプチドが、アミノ酸配列:Lys Arg Tyr Phe Lys Leu Ser His Leu Gln Met His Ser Arg Lys His(配列番号2)を含むペプチドである、上記(5)記載の使用。
WT1ペプチド(配列番号2)(以降WT1-332と表記)特異的Th1クローン細胞(以下、Th1クローン細胞)の樹立を目的に、以下の検討を行った。
主な試験材料は以下の通りである。
被験物質
*WT1-332:Lys Arg Tyr Phe Lys Leu Ser His Leu Gln Met His Ser Arg Lys His(配列番号2)
10 mM酢酸で20 mg/mLに溶解し、濾過滅菌して冷凍保存(−30℃設定)した。
1)細胞名:PBMC
2)由来:健康成人血液提供者末梢血
個人情報管理者の管理下で連結可能匿名化、及び文書によるインフォームドコンセントを行い、本試験にて採血、調製した。
3)検体条件:フィーダーの内、いずれかがクローニング実施検体と異なること。
4)採取条件:加ヘパリンナトリウム採血40 mL
5)細胞株名:B-LCL細胞株
6)由来:ヒト末梢血
7)入手先:理研セルバンクもしくはIHWGセルバンク
ヒトAB型血清及び牛胎仔血清(FBS)は、非働化処理後、0.2 μmフィルターで濾過して用いた。培地は、PBMC分離用に20 U/mLヘパリン HBSSを、B-LCL細胞用に10% FBS/ RPMI-1640(100 units/mL penicillin, 100 μg/mL streptomycin)培地を、その他の培養には10% ヒトAB型血清/AIM-V(インビトロジェン)培地を用いた。細胞の培養は、各培地中、37℃-5%CO2インキュベーターで行った。
PBMCの調製
健常人ボランティア末梢血から比重遠心法によりPBMCを調製し、その一部をWT1-332特異的T細胞の誘導に用いた。残りの細胞はセルバンカー(十慈フィールド株式会社)中に凍結保存し、再刺激時の抗原提示細胞もしくはフィーダー細胞として使用した。
調製したPBMCを1.5×106個/ウェル×10 ウェルで24ウェルプレートへ播種し、最終濃度20 μg/mL のWT1-332及び最終濃度10 ng/mL のIL-7を添加して培養を開始した(Day0,総培地量:2 mL/ウェル)。
1週間後に再刺激を行った。再刺激にはまず、細胞濃度を3.0×106個/mL以下に調製した抗原提示細胞用PBMCに最終濃度20 μg/mLのWT1-332を添加して2時間培養し、さらにマイトマイシンC(MMC)溶液(最終濃度=50 μg/mL)を添加して45分間培養し、AIM-Vで洗浄して抗原提示細胞とした。次に、培養していたPBMCを回収後、接着細胞を除去し、1.15-1.43×106個/ウェルで播種し、同数のWT1/MMC処理済みの抗原提示細胞と共に、最終濃度10 ng/mL のIL-7を添加して培養を再開した(Day7)。2日後に40 U/mL IL-2含有培地で培養液の半量交換を行い、さらに隔日で20 U/mL IL-2含有培地で培養液の半量交換を行いながら1週間培養を続けた。
Day14に培養細胞を回収し、96ウェル丸底プレートに2.0×105個ずつ2ウェルに播種し、一方に20 μg/mL WT1-332を、他方に溶媒を添加して4時間培養した後、さらに最終濃度1×のBrefeldin Aを添加して2時間培養した。細胞を回収し、PE標識抗ヒトCD4抗体、FITC標識抗ヒトCD8抗体を添加し、4℃、15分間反応させ、Staining Bufferで洗浄し、Cytofix Cytoperm Fix/Permを添加し、4℃、20分間処理した。Perm./Wash Buffer で洗浄し、PerCP標識抗ヒトIFN-γ抗体を添加して4℃、30分間反応させ、Perm./Wash Bufferで洗浄後、FACSにより解析した。
凍結保存細胞から約3×105個/mLで培養開始し、サブコンフルエント時に継代操作を行い、PHA刺激時のフィーダー用B-LCL細胞とした。
メーカーの推奨プロトコールに準じて、培養細胞からMACS Microbeadsを用いてポジティブセレクションを行い、CD4+細胞を単離した。
各フィーダー用B-LCL細胞及びPBMC(細胞濃度3×106/mL以下)を、マイトマイシンC溶液(最終濃度=50 μg/mL)でCO2インキュベーター中45分間処理し、AIM-Vで洗浄後、PBMC2種とB-LCL細胞2種の計4種の細胞を混和(各PBMCの最終濃度2.5×105個/mL、各B-LCL細胞の最終濃度2.5×104個/mL)した。これをクローニングする検体数に応じて、必要セット数調製し、最終濃度200 ng/mLでPHAを添加して、PHA含有フィーダー細胞混和液とした。
次に、分画したCD4+細胞の内、ICSの結果からCD4+IFN-γ+細胞比率が高い検体を選択し、準備したPHA含有フィーダー細胞混和液で、CD4+細胞濃度が10個/mLになるよう調整し、96 ウェル プレートに100 μL/ウェル(PBMC総量:5.0×104cells/ウェル、B-LCL細胞:5.0×103個/ウェル、PHA:200 ng/mL、CD4+細胞:1個/ウェル)で播種し、培養を開始した。5日後に培養液と等量の80 U/mL IL-2含有培地を添加し、その後隔日で80 U/mL IL-2含有培地で培養液の半量交換を行った。この間に、明らかな細胞増幅が観察されたウェルは、48ウェルプレートにスケールアップし培養を続けた。
クローニング開始から10日から14日間隔で、上記と同様にPHA刺激による増幅刺激を加えたが播種時に、培養皿を24ウェルプレートに、PBMC総量を1.0×106 個/ウェルに、B-LCL細胞総量を1.0×105個/ウェルに、PHA最終濃度を50ng/mLに、増幅させるTh1クローン細胞数は2.0×105個/ウェル以下に変更した。また、IL-2添加のタイミングを培養開始から3日後としさらに添加する培地のIL-2含有量を200 U/mLとした。
クローニングし、増幅させたTh1クローン細胞の抗原反応性を確認するため、回収したTh1クローン細胞を96ウェル丸底プレートに1ウェルもしくは3ウェルで播種した。これに10 μM酢酸もしくは、20 μg/mLの各ペプチドを添加して、培養を開始し(総培養液量:200 μL/ウェル)、約24時間後に培養上清を回収した。
各培養上清中のIFN-γ濃度は、各培養上清をAssay Diluent(Becton Dickinson社)で4倍希釈後に測定した。IFN-γ濃度の測定には、BD OptEIA ELISA set(human IFN-γ、Becton Dickinson社)を用い添付文書に従い測定したが、抗体の希釈濃度を500倍に、検量線の範囲を18.75−1200 pg/mLに、また、発色反応時間を5分に変更し、測定域を超えた場合は外挿値、吸光度が0を下回った場合は0として扱った。
抗原反応性が確認されたTh1クローン細胞をセルバンカー中で凍結保存し、マスターセルバンクとした。
WT1-332刺激下で14日間培養を行ったCD4+細胞中に、WT1-332特異的Th1細胞が有意に誘導されているか否かを評価するため、下式に従いWT1-332特異的Th1細胞比率(%)と、WT1-332非特異的Th1比率(%)を算出した。
WT1-332特異的Th1細胞比率(%)
=WT1-332刺激時のCD4+細胞内IFN-γ+細胞数 / 総生細胞数×
分画後CD4+細胞比率 / 分画前CD4+細胞比率 ×100
WT1-332非特異的Th1細胞比率(%)
=AcOH添加時のCD4+細胞内IFN-γ+細胞数 / 総生細胞数×100×
分画後CD4+細胞比率 / 分画前CD4+細胞比率 ×100
各実験でWT1-332特異的Th1比率からWT1-332非特異的Th1比率を除した値が高かった6〜7検体についてクローニングを実施した。
各群の培養上清中IFN-γ濃度をELISAにより測定し、溶媒添加時に対してWT1-332添加時のIFN-γ産生量が500 pg/mL以上多く、1.2倍以上高い場合に抗原反応性が維持されているものと判断し、その後の操作を行った。
種々のTh1クローン細胞の樹立を行うことができた。得られたクローンの一部は、タイピングの結果、新規の拘束アレルを有していることが確認された。結果を表4に示す。これらのクローンを用いて、実施例2においてWT1-332が特定のHLA拘束性にTh1細胞を活性化できるか検討行った。
*HLAタイピングを実施していないHLA座はN.T.と表記した。
実施例1においてWT1-332添加により樹立された特異的Th1クローン細胞(以下、Th1クローン細胞)において、WT1-332が特定のHLA拘束性にT細胞を活性化できるかの検討を行い、またその拘束アレルを確認した。
培地類の調製
ヒトAB型血清及びFBSは非働化処理後、0.2 μmフィルターで濾過して用いた。培地は、PBMC分離用に20 U/mLヘパリン HBSSを、B-LCL細胞用に10% FBS及び1% P/S(100 units/mL ペニシリン, 100 μg/mL ストレプトマイシン)含有RPMI-1640を、その他の培養には10% ヒトAB型血清含有AIM-V培地を用いた。細胞の培養は、各培地中、37℃-5%CO2インキュベーターで行った。
適当なHLAクラスIIアレルを持ったB-LCL細胞にWT1-332パルスを行ったものを抗原提示細胞とし、Th1クローン細胞と共培養後、産生されるIFN-γ量を測定することにより、Th1クローン細胞のHLA拘束性を評価した。
具体的には、フィーダー用B-LCL細胞及び末梢血より調製した他家PBMCをフィーダー細胞として用い、PHA刺激下でTh1クローン細胞を培養した。次に、WT1-332或いは溶媒で処理したB-LCL細胞を抗原提示細胞として、回収したTh1クローン細胞と共培養し、産生されたIFN-γ量を測定してWT1-332特異的抗原刺激の有無を評価した。それぞれのTh1クローン細胞のHLAクラスII型に基づき、一部異なる型を有する種々のB-LCL細胞を抗原提示細胞として用いることにより、各Th1クローン細胞のHLAクラスII拘束性を評価した。
Day 0に凍結保存細胞から1×105個/mLで培養開始し、Day 3に回収してPHA刺激時のフィーダー用B-LCL細胞とした。
Day 2までに健常人ボランティア末梢血から比重遠心法により調製し、細胞数を測定後、細胞ペレットを回収し、セルバンカー(三菱化学メディエンス株式会社)に再懸濁後、クライオチューブに分注して−80℃設定の冷凍庫中で凍結保存した。PHA刺激時に凍結保存PBMCを随時融解し、フィーダー用PBMCとして供した。
Day 2に、凍結保存細胞から20 U/mL IL-2含有培地中で2×106cells/mL以下で培養開始し、Day 3に回収してPHA刺激時のTh1クローン細胞とした。
Day 3に、各フィーダー用B-LCL細胞及びPBMCを、マイトマイシンC溶液(最終濃度=50 μg/mL)でCO2インキュベーター中45分間処理し、AIM-Vで洗浄後、PBMC2種とB-LCL細胞2種の計4種の細胞を混和(各PBMCの最終濃度1.0×106個/mL、各B-LCL細胞の最終濃度1.0×105個/mL)した。これを、播種するTh1クローン細胞に対して必要セット数調製し、最終濃度100 ng/mLでPHAを添加して、PHA含有フィーダー細胞混和液とした。次に、培養していたTh1クローン細胞を24 ウェルプレートに0.5mL/個(細胞濃度4.0×105個/mL)で播種し、さらにPHA含有フィーダー細胞混和液を0.5 mL/ウェルで播種し、培養を行った。Day 6に培養液と等量の200 U/mL IL-2含有培地を添加し、Day 8、Day 10、Day 12、Day14には40 U/mL IL-2含有培地で培養液の半量交換を行い、Day 15に拘束性評価試験に供した。尚、培養途中で細胞がコンフルエントに達した場合は、20 U/mL IL-2含有培地で継代培養を行った。
Day 11に、凍結保存細胞から約1×105個/mLで培養開始し、Day 15に細胞を回収し拘束性評価試験に用いた。
Day 15にTh1クローン細胞を回収し、回収細胞数に応じて96ウェル丸底プレートに1.0-2.5×104cells/100 μL/ウェル、3ウェルで播種した。細胞濃度を1×106個/mLに調製した抗原提示用B-LCL細胞を4−7mLずつコニカルチューブ2本に分注し、一方に最終濃度10 μMで酢酸を、他方に最終濃度20 μg/mLでWT1-332を添加して2時間培養した後、AIM-Vで洗浄し、Th1クローン細胞を播種した96ウェルプレートへ2.5×104cells/100 μL/ウェルで添加し、16時間以上培養した。尚、WT1-332反応性を確認する為に、同プレートに、B-LCL細胞の代わりにWT1-332或いは溶媒を添加したウェルを用意した。
各培養上清中のIFN-γ濃度は、各培養上清をAssay Diluent(Becton Dickinson)で100倍希釈後に測定した。IFN-γ濃度の測定には、BD OptEIA ELISA set(human IFN-γ, Becton Dickinson)を用い添付文書に従い測定したが、検量線の範囲を5−640 pg/mLに、また、発色反応時間を10分に変更し、測定域を超えた場合は外挿値、吸光度が0を下回った場合は0として扱った。
各培養上清中のIFN-γ量
(i)Th1クローン細胞CloneR82-1 (DRB1*08:02/14:03, DPB1*02:01, DQB1*03:01/03:02) のHLA拘束性評価試験
CloneR82-1のIFN-γ産生は、WT1-332パルスDRB1*08:02(+) B-LCL (HEV#0052およびHEV#0324)の刺激によって検出された(図1)。したがって、CloneR82-1はWT1-332特異的HLA-DRB1*08:02-拘束性Th1クローンであることが判明した。
CloneR132-1のIFN-γ産生は、WT1-332パルスDRB1*13:02(+) B-LCL (HEV#0046)の刺激によってのみ検出された(図2)。したがって、CloneR132-1は、WT1-332特異的HLA-DRB1*13:02-拘束性Th1クローンであることが判明した。
CloneR143-1のIFN-γ産生は、WT1-332パルスDRB1*14:03(+) B-LCL (HEV#0052)の刺激によってのみ検出された(図3)。したがって、CloneR143-1はWT1-332特異的HLA-DRB1*14:03拘束性Th1クローンであることが確認された。
Clone R145-2のIFN-γ産生は、WT1-332パルスDRB1*14:05(+) B-LCL (ISH5)の刺激によってのみ検出された(図4)。したがって、Clone R145-2はWT1-332特異的HLA-DRB1*14:05拘束性Th1クローンであることが判明した。
CloneQ32-1のIFN-γ産生は、WT1-332パルスDQB1*03:02(+) B-LCL (HEV#0052およびHEV#0238)の刺激によって検出された(図5)。したがって、CloneQ32-1はWT1-332特異的HLA-DQB1*03:02拘束性Th1クローンであることが確認された。
CloneQ41-1のIFN-γ産生は、WT1-332をパルスした種々の抗原提示細胞(HEV#0174、HEV#0013、HEV#0035、およびHEV#0050)の刺激によって検出されたが、WT1-332をパルスしたHEV#0201およびHEV#0073では検出されなかった(図6)。DQB1*04:01は、HEV#0174、HEV#0013、HEV#0035、および0050においてのみ発現している。したがって、CloneQ41-1はWT1-332特異的HLA-DQB1*04:01拘束性Th1クローンであることが確認された。
Claims (9)
- HLA-DRB1*08:02分子、HLA-DRB1*13:02分子、HLA-DRB1*14:03分子、HLA-DRB1*14:05分子、HLA-DQB1*03:02分子、およびHLA-DQB1*04:01分子から選択されるいずれかのMHCクラスII分子を有する対象におけるヘルパーT細胞を活性化させるための、WT1ペプチド、WT1ペプチドをコードするポリヌクレオチド、該ポリヌクレオチドを含む発現ベクター、または該発現ベクターを含む細胞を含む組成物であって、
該ヘルパーT細胞が、HLA-DRB1*08:02分子、HLA-DRB1*13:02分子、HLA-DRB1*14:03分子、HLA-DRB1*14:05分子、HLA-DQB1*03:02分子、およびHLA-DQB1*04:01分子から選択されるいずれかのMHCクラスII分子と該WT1ペプチドとの複合体を認識するものであり、
該WT1ペプチドが、アミノ酸配列:Lys Arg Tyr Phe Lys Leu Ser His Leu Gln Met His Ser Arg Lys His(配列番号2)からなるペプチドである、
組成物。 - HLA-DRB1*08:02分子、HLA-DRB1*13:02分子、HLA-DRB1*14:03分子、HLA-DRB1*14:05分子、HLA-DQB1*03:02分子、およびHLA-DQB1*04:01分子から選択されるいずれかのMHCクラスII分子を有する対象における細胞傷害性T細胞を活性化させるための、WT1ペプチド、WT1ペプチドをコードするポリヌクレオチド、該ポリヌクレオチドを含む発現ベクター、または該発現ベクターを含む細胞を含む組成物であって、
該WT1ペプチドが、アミノ酸配列:Lys Arg Tyr Phe Lys Leu Ser His Leu Gln Met His Ser Arg Lys His(配列番号2)からなるペプチドである、
組成物。 - HLA-DRB1*08:02分子、HLA-DRB1*13:02分子、HLA-DRB1*14:03分子、HLA-DRB1*14:05分子、HLA-DQB1*03:02分子、およびHLA-DQB1*04:01分子から選択されるいずれかのMHCクラスII分子を有する対象における癌を治療または予防するための、WT1ペプチド、WT1ペプチドをコードするポリヌクレオチド、該ポリヌクレオチドを含む発現ベクター、または該発現ベクターを含む細胞を含む組成物であって、
該WT1ペプチドが、アミノ酸配列:Lys Arg Tyr Phe Lys Leu Ser His Leu Gln Met His Ser Arg Lys His(配列番号2)からなるペプチドである、
組成物。 - WT1ペプチドを含む、請求項1〜3のいずれかに記載の組成物。
- WT1ペプチドが、アミノ酸配列:Lys Arg Tyr Phe Lys Leu Ser His Leu Gln Met His Ser Arg Lys His(配列番号2)からなるペプチドである、請求項4記載の組成物。
- WT1ペプチドを含む抗原ペプチドとMHCクラスII分子との複合体を認識するヘルパーT細胞であって、前記MHCクラスII分子が、HLA-DRB1*08:02分子、HLA-DRB1*13:02分子、HLA-DRB1*14:03分子、HLA-DRB1*14:05分子、HLA-DQB1*03:02分子、およびHLA-DQB1*04:01分子から選択されるいずれかのMHCクラスII分子であり、
該WT1ペプチドが、アミノ酸配列:Lys Arg Tyr Phe Lys Leu Ser His Leu Gln Met His Ser Arg Lys His(配列番号2)からなるペプチドである、
ヘルパーT細胞。 - WT1ペプチドが、アミノ酸配列:Lys Arg Tyr Phe Lys Leu Ser His Leu Gln Met His Ser Arg Lys His(配列番号2)からなるペプチドである、請求項6記載のヘルパーT細胞。
- 請求項6または7に記載のヘルパーT細胞によりインビトロで活性化することを特徴とする、細胞傷害性T細胞の製造方法。
- 請求項1〜5のいずれかに記載の組成物、または請求項6または7に記載のヘルパーT細胞のいずれかを有効成分として含む、HLA-DRB1*08:02分子、HLA-DRB1*13:02分子、HLA-DRB1*14:03分子、HLA-DRB1*14:05分子、HLA-DQB1*03:02分子、およびHLA-DQB1*04:01分子から選択されるいずれかのMHCクラスII分子を有する対象の癌を治療または予防するための医薬組成物。
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