JP6942611B2

JP6942611B2 - 微生物培養用培地及び酢酸菌の検出方法

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Publication number: JP6942611B2
Application number: JP2017215821A
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Inventors: 奥村　健一; 健一奥村; 瞳岡田; 静野場
Original assignee: Asahi Breweries Ltd
Current assignee: Asahi Breweries Ltd
Priority date: 2017-11-08
Filing date: 2017-11-08
Publication date: 2021-09-29
Anticipated expiration: 2037-11-08
Also published as: JP2019083771A

Description

本発明は、主にワインに混入している酢酸菌を検出するために有用な微生物培養用培地、及び当該微生物培養用培地を用いて、被検試料中の酢酸菌を検出する方法に関する。

ワインは、ブドウの搾り汁をワイン酵母で発酵させて得られる醸造酒である。このため、ワインには、ワイン酵母以外にも原料のブドウなどに由来する様々な微生物が含まれている場合がある。ワインの保存中にこれらの微生物が増殖することによって、混濁が生じたり、ワインの香味が損なわれることがある。特に、ワインにとって、ある種の酢酸菌は有害菌である。酢酸菌が増殖すると、産生される酢酸によってワインの香味が大きく損なわれる。

このため、微生物混濁や香味劣化を抑制するために、多くのワインには、亜硫酸塩を添加して微生物耐久性を向上させている。しかしながら、亜硫酸塩は、健康への影響も懸念されている。そこで、最近では、亜硫酸塩無添加のワインの製造が増加しつつある。この亜硫酸塩無添加ワインでは、容器充填前のワインに酢酸菌が含まれていると、保存後に微生物混濁が生じる可能性が高い。そこで、容器充填前に予めワインに酢酸菌が含まれているかどうかを調べることが行われている。

微生物混濁の懸念が高い亜硫酸無添加ワインにおける酢酸菌の検出検査は、一般的に、被検試料であるワインを、酢酸菌の生育が可能な平板培地に塗抹し、生育したコロニーについて酢酸菌かどうかを判別する方法で行われている。この際に使用される平板培地としては、酢酸菌検出用として市販されている培地はないため、従来は、市販のｐＨ６程度の一般的な合成培地にエタノールやワイン等を添加した平板培地を調製して用いていた（例えば、非特許文献１参照。）。

Bartowsky et al.，Letters in Applied Microbiology，2003，vol.36，p.307-314.

実際のワイン製造現場において、酢酸菌検出検査を行う場合、使用する微生物検査用培地としては、酢酸菌の検出感度が高く、かつ酢酸菌などのワイン混濁菌以外の菌の検出が抑制されているものが好ましい。さらに、ワイン製造現場において比較的簡便に調製できることも重要である。

本発明は、被検試料、主にワインに混入している酢酸菌を検出するために有用な微生物培養用培地、及び当該微生物培養用培地を用いて、被検試料中の酢酸菌を検出する方法を提供することを目的とする。

本発明者は、上記課題を解決すべく鋭意研究した結果、酢酸菌の培養には炭素源と窒素源とワインを含む培地を用いること、この際、培地の遊離型亜硫酸濃度を１５ｐｐｍ以下に抑え、かつｐＨを３．５〜４．５の範囲内に調整することにより、環境菌の生育を効果的に抑制することができ、酢酸菌の検出精度を有意に向上させられることを見出し、本発明を完成させた。

本発明に係る微生物培養用培地及び酢酸菌の検出方法は、下記［１］〜［１０］である。
［１］炭素源と窒素源とワインを含有し、遊離型亜硫酸濃度が０ｐｐｍであり、ｐＨ３．５〜４．５であり、エタノール濃度が２〜４容量％であり、酢酸菌検出用である、微生物培養用培地。
［２］ｐＨが３．５〜４．２である、前記［１］の微生物培養用培地。
［３］前記ワイン濃度が、前記培地のエタノール濃度が２〜４容量％となる濃度である、前記［１］又は［２］の微生物培養用培地。
［４］前記炭素源濃度が０．５〜５０ｇ／Ｌであり、前記窒素源濃度が５〜２０ｇ／Ｌである、前記［１］〜［３］のいずれかの微生物培養用培地。
［５］平板培地である、前記［１］〜［４］のいずれかの微生物培養用培地。
［６］さらに、寒天を含有し、寒天濃度が１５ｇ／Ｌ以下である、前記［１］〜［４］のいずれかの微生物培養用培地。
［７］前記［５］又は［６］の微生物培養用培地に、被検試料を塗抹した後、形成されたコロニーが酢酸菌かどうかを判定する、酢酸菌の検出方法。
［８］酢酸菌かどうかの判定を、コロニーの外観、ゲノムの配列情報、及び発現しているタンパク質の情報かならなる群より選択される一種以上に基づいて判定する、前記［７］の酢酸菌の検出方法。
［９］酢酸菌かどうかの判定を、マトリックス支援レーザー脱離イオン化飛行時間質量分析を用いて行う、前記［７］の酢酸菌の検出方法。
［１０］前記被検試料がワインである、前記［７］〜［９］のいずれかの酢酸菌の検出方法。

本発明に係る微生物培養用培地は、酢酸菌の生育に適しているものの、その他の自然界に多く存在している微生物の生育には適さない。このため、当該培地は、微生物混濁の懸念が高い亜硫酸無添加ワインにおいて、ワイン混濁菌の一つである酢酸菌を検出する培地として特に好適である。
また、当該培地を用いた本発明に係る酢酸菌の検出方法により、ワイン等の被検試料中の酢酸菌を容易に検出することができる。

＜微生物培養用培地＞
本発明に係る微生物培養用培地は、炭素源と窒素源とワインを含有し、遊離型亜硫酸濃度が１５ｐｐｍ以下であり、ｐＨ３．５〜４．５である。微生物検査に使用される微生物培養用培地としては、検出対象の微生物が生育可能であることに加えて、検査工程で混入してしまう環境菌（一般的に自然環境に存在する微生物）の培養を充分に抑制することが必要である。環境菌の生育を抑制することにより、目的の微生物の検出精度を高められるためである。本発明に係る微生物培養用培地は、様々な種類の酢酸菌の生育が可能であることに加えて、環境菌の生育を充分に抑制することができるため、特に、酢酸菌検出検査に使用される微生物培養用培地として有用であり、特にワイン中の酢酸菌を検出するための検査に使用される微生物培養用培地として有用である。

本発明に係る微生物培養用培地は、微生物の栄養源として炭素源を含有する。当該培地が含有する炭素源としては、いずれかの酢酸菌が資化可能な炭素源であれば特に限定されるものではなく、一般的に微生物培養用培地の原料として用いられている炭素源と同様のものが挙げられる。また、１種類の炭素源のみを含む培地であってもよく、２種類以上の炭素源を含む培地であってもよい。本発明に係る微生物培養用培地が含有する炭素源としては、具体的には、グルコース、スクロース、マルトース、マンノース、ガラクトース、フラクトース、澱粉加水分解物、糖蜜等の糖類；マンニトール、エリスリトール等の糖アルコール類；グリセロール、エタノール、プロパノール等のアルコール類；酢酸、リンゴ酸、乳酸、クエン酸、酒石酸、コハク酸、フマル酸、プロピオン酸、マロン酸等の有機酸などが挙げられる。本発明に係る微生物培養用培地が含有する炭素源としては、比較的多くの酢酸菌が資化性であることから、グルコース、グリセロール、酢酸、乳酸、及びリンゴ酸からなる群より選択される１種以上が好ましい。本発明に係る微生物培養用培地の炭素源濃度としては、特に限定されるものではないが、酢酸菌をより短時間で効率よく検出できることから、０．１〜１００ｇ／Ｌであることが好ましく、０．５〜５０ｇ／Ｌであることがより好ましい。

本発明に係る微生物培養用培地は、微生物の栄養源として窒素源を含有する。当該培地が含有する窒素源としては、いずれかの酢酸菌が資化可能な窒素源であれば特に限定されるものではなく、一般的に微生物培養用培地の原料として用いられている窒素源と同様のものが挙げられる。また、１種類の窒素源のみを含む培地であってもよく、２種類以上の窒素源を含む培地であってもよい。本発明に係る微生物培養用培地が含有する窒素源としては、具体的には、アミノ酸、硝酸カリウム、硝酸アンモニウム、塩化アンモニウム、硫酸アンモニウム、リン酸アンモニウム、アンモニア、尿素、カゼイン、ポリペプトン、ペプトン、カザミノ酸、ＮＺアミン、トリプトース、コーンスティープリカー、酵母エキス、肉エキス、魚肉エキスなどが挙げられる。本発明に係る微生物培養用培地が含有する窒素源としては、比較的多くの酢酸菌が資化性であることから、カゼイン、ポリペプトン、ペプトン、カザミノ酸、ＮＺアミン、酵母エキス、及び肉エキスからなる群より選択される１種以上が好ましい。本発明に係る微生物培養用培地の窒素源濃度としては、特に限定されるものではないが、酢酸菌をより短時間で効率よく検出できることから、１〜３０ｇ／Ｌであることが好ましく、５〜２０ｇ／Ｌであることがより好ましい。

本発明に係る微生物培養用培地は、一般的な微生物培養用の合成培地で使用されている炭素源と窒素源に加えて、ワインを含有している。酢酸菌の資化性は様々であり、酢酸やエタノールに対する資化性を有するが、グルコースに対する資化性がない酢酸菌もある。一般的に、ワイン中には、エタノール、グリセロール等のアルコール；酢酸、乳酸、リンゴ酸等の有機酸；プロリン、アルギニン等のアミノ酸などの、微生物培養のための炭素源や窒素源となり得る成分が含まれている。つまり、ワインを培地成分に含ませることにより、様々な酢酸菌の生育に必要な炭素源や窒素源を確保することが容易となる。本発明に係る微生物培養用培地は、ワインを含むことにより、ワイン中で増殖可能であって、資化性の異なる様々な種類の酢酸菌を効率よく生育させることができる。

本発明に係る微生物培養用培地が含有するワインとしては、特に限定されるものではなく、赤ワインであってもよく、白ワインであってもよく、ロゼワインであってもよい。また、本発明に係る微生物培養用培地が含有するワインとしては、亜硫酸塩が添加されているワインであってもよいが、亜硫酸塩無添加ワインの方が好ましい。

本発明に係る微生物培養用培地のワイン濃度としては、培地の遊離型亜硫酸濃度が１５ｐｐｍ以下となる量であれば特に限定されるものではないが、培地のエタノール濃度が２〜４容量％となる濃度であることが好ましい。エタノール濃度が前記範囲内であることにより、酢酸菌の生育は可能としつつ、大多数の環境菌の生育を充分に抑制することができる。例えば、本発明に係る微生物培養用培地のワイン濃度は、１００〜３００ｍＬ／Ｌとすることができる。

本発明に係る微生物培養用培地は、炭素源、窒素源、及びワインの他にも、その他の成分を含有していてもよい。当該その他の成分としては、培地に添加されることによって酢酸菌の生育を過剰に抑制しないものであれば特に限定されるものではなく、無機イオンやビタミン類を必要に応じ添加することは有効である。無機イオンとしては、例えば、カリウムイオン、ナトリウムイオン、カルシウムイオン、マグネシウムイオン、鉄イオン、マンガンイオン、モリブデンイオン、リン酸イオン、塩化物イオン、硫酸イオン等が挙げられる。ビタミン類としては、チアミン、イノシトール、パントテン酸、ニコチン酸アミド等が挙げられる。

本発明に係る微生物培養用培地は、遊離型亜硫酸濃度が１５ｐｐｍ以下であり、１３ｐｐｍ以下であることがより好ましい。遊離型亜硫酸濃度が高いと、酢酸菌の生育が抑制されるため、酢酸菌検出のために必要な培養時間が長くなる。遊離型亜硫酸濃度が低いほど、酢酸菌の生育が抑制されにくく、より短時間の培養で酢酸菌を検出できる。

ワイン中に含まれている亜硫酸塩は、糖やアルデヒド等の他の成分と結合している結合型亜硫酸と、遊離型亜硫酸とに分けられる。遊離型亜硫酸は、酸性では、重亜硫酸イオン（ＨＳＯ^３−）と分子状の亜硫酸（分子状ＳＯ_２、二酸化硫黄）とになる。微生物に対する抗菌作用は、主に分子状ＳＯ_２による。重亜硫酸イオンと分子状ＳＯ_２の存在比は、ｐＨによって変動する。ｐＨが３．５超の酸性では、重亜硫酸イオンよりも分子状ＳＯ_２の存在比率が高くなり、逆にｐＨが３．２未満では、重亜硫酸イオンの存在比率のほうが分子状ＳＯ_２よりも高くなる。例えば、ｐＨ３．５〜４．５の範囲内においては、遊離型亜硫酸濃度が１３ｐｐｍ以下である場合、分子状ＳＯ_２濃度は０．８ｐｐｍ以下である。

本発明に係る微生物培養用培地は、ｐＨが３．５〜４．５、好ましくは３．５〜４．２である。本発明に係る微生物培養用培地は、ｐＨが充分に酸性であるため、ｐＨが６付近である一般的な微生物培養用培地を用いた場合よりも、環境菌の生育が顕著に抑制されるため、酢酸菌の検出精度が向上する。

本発明に係る微生物培養用培地は、液体培地であってもよく、平板培地であってもよい。平板培地の場合、含有するゲル成分としては、酢酸菌の生育を抑制しないものであれば特に限定されるものではないが、汎用されており、取扱い性に優れている点から寒天が好ましい。本発明に係る微生物培養用培地が平板培地である場合の寒天濃度は、平板培地となるために充分な濃度であれば特に限定されるものではないが、１５ｇ／Ｌ以下であることが好ましい。寒天濃度が低いほど、酢酸菌の生育が促進される結果、より短時間の培養で充分な大きさのコロニーを形成できる。

＜酢酸菌の検出方法＞
本発明に係る酢酸菌の検出方法は、前記微生物培養用培地の平板培地に、被検試料を塗抹した後、形成されたコロニーが酢酸菌かどうかを判定する。被検試料としては特に限定されるものではないが、ワインが好ましい。

平板培地への被検試料の塗抹は、常法により行うことができる。被検試料を塗抹した平板培地を、所定時間培養することにより、コロニーを形成させる。培養期間としては特に限定されるものではないが、１〜１０日間が好ましく、３〜７日間がより好ましく、４〜６日間がさらに好ましい。培養温度は、酢酸菌が培養可能な温度であれば特に限定されるものではなく、１０〜４０℃が好ましく、１５〜３８℃がより好ましく、２０〜３８℃がさらに好ましく、２５〜３５℃がよりさらに好ましい。

被検試料中に酢酸菌が含まれていた場合には、培養により、酢酸菌のコロニーが形成される。培養後に形成されたコロニーが酢酸菌のコロニーかどうかは、例えば、コロニーの外観、ゲノムの配列情報、及び発現しているタンパク質の情報かならなる群より選択される一種以上に基づいて判定することができる。

ゲノムの配列情報に基づく酢酸菌の同定は、例えば、ｒＲＮＡ遺伝子の塩基配列情報を利用して行うことができる。コロニーを構成する菌体からＤＮＡを抽出し、抽出されたＤＮＡ中のｒＲＮＡ遺伝子の塩基配列情報を解析し、その結果を酢酸菌のｒＲＮＡ遺伝子の塩基配列情報と比較する。両者が一致した場合には、当該コロニーを構成する菌体が酢酸菌であると判定することができる。ｒＲＮＡ遺伝子の塩基配列情報に基づく微生物の同定は、ｒＲＮＡ遺伝子の塩基配列自体を、酢酸菌のｒＲＮＡ遺伝子の塩基配列と一致するか否かで行うことができ、また、例えば、ＰＣＲ−ＤＧＧＥ（Polymerase chain reaction−Denaturing gradient gel electrophoresis）法等の微生物を同定する際に使用されている方法を利用することもできる。

発現しているタンパク質の情報に基づく酢酸菌の同定は、例えば、マトリックス支援レーザー脱離イオン化飛行時間質量分析（ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦＭＳ）を用いて行うことができる。例えば、コロニーを構成する菌体をマトリックス試薬と混合し、この混合物をＭＡＬＤＩ−ＴＯＦＭＳにより測定し、得られたマススペクトルのパターンを酢酸菌のマススペクトルのパターンと比較する。両者のパターンが一致した場合には、当該コロニーを構成する菌体が酢酸菌であると判定することができる。ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦＭＳは、常法により行うことができる。

次に実施例及び参考例を示して本発明をさらに詳細に説明するが、本発明は以下の実施例等に限定されるものではない。

［参考例１］
酢酸菌の株ごとの資化性を調べた。
被検酢酸菌としては、ワイン製造現場から単離されたAcetobacter pasteurianusの３株（ＡＧＢＣ３２３株、ＡＢＢＣ６５３株、ＡＢＢＣ６５９株）と、セルバンクから入手した３株のAcetobacter pasteurianusの標準株（ＡＢＢＣ６６０株、ＡＢＢＣ６６２株、ＡＢＢＣ６６３株）を用いた。
培養するための平板培地としては、ＹＰＧ培地（グルコース５ｇ／Ｌ、グリセロール２０ｇ／Ｌ、酵母エキス１０ｇ／Ｌ、ポリペプトン１０ｇ／Ｌ、寒天１５ｇ／Ｌ）、３容量％エタノール含有ＹＰＧ培地、又は０．３容量％酢酸含有ＹＰＧ培地を用いた。

まず、各平板培地の１０ｃｍディッシュに、被検酢酸菌を１０^２個ずつ塗抹し、５日間３０℃で培養した。培養終了後に形成されたコロニー数を計数した。結果を表１に示す。表中、「ＹＰＧ」の欄は培地の結果を、ＹＰＧ「ＹＰＧ＋エタノール」の欄は３容量％エタノール含有ＹＰＧ培地の結果を、「ＹＰＧ＋酢酸」の欄は０．３容量％酢酸含有ＹＰＧ培地の結果を、それぞれ示す。また、表中「＋」は、コロニーが小さすぎてカウント不可能であったことを意味する。

ＡＢＢＣ６５３株とＡＢＢＣ６６２株は、ＹＰＧ培地ではコロニーが形成されなかった。この結果から、酢酸菌には、市販の微生物培養用培地の一般的な炭素源であるグルコースとグリセロールが資化できず、酢酸やエタノールが生育に必要である株が存在することが判明した。また、ＡＢＢＣ６５３株は、エタノール含有ＹＰＧ培地と酢酸含有ＹＰＧ培地ではコロニーが形成されたこと、酢酸含有ＹＰＧ培地よりもエタノール含有ＹＰＧ培地で形成されたコロニー数が多かったことから、エタノールと酢酸はどちらも資化できること、酢酸よりもエタノールの方が資化しやすいことがわかった。ＡＢＢＣ６６２株は、エタノール含有ＹＰＧ培地でもコロニーが形成されず、酢酸含有ＹＰＧ培地でのみコロニーが形成されており、エタノールは資化できないが、酢酸は資化できた。

一方で、ＡＧＢＣ３２３株、ＡＢＢＣ６５９株、ＡＢＢＣ６６０株、及びＡＢＢＣ６６３株は、ＹＰＧ培地でコロニーが形成されたことから、これらの酢酸菌は、グルコースとグリセロールのいずれかに対して資化性を有することが判明した。このうち、ＡＧＢＣ３２３株、ＡＢＢＣ６５９株、及びＡＢＢＣ６６０株は、ＹＰＧ培地よりも、エタノール含有ＹＰＧ培地と酢酸含有ＹＰＧ培地のほうが、形成されたコロニー数が多かったことから、エタノールと酢酸も資化できることが判明した。中でも、ＡＢＢＣ６５９株及びＡＢＢＣ６６３株は、酢酸含有ＹＰＧ培地に形成されたコロニー数が、他の２種の培地よりも明らかに多かったことから、酢酸に対する資化性が高いことがわかった。

［実施例１］
市販のＷＬ（Wallerstein）培地（グルコース５０ｇ／Ｌ、カゼイン５ｇ／Ｌ、酵母エキス４ｇ／Ｌ、ＫＨ_２ＰＯ_４０．５５ｇ／Ｌ、ＫＣｌ０．４２５ｇ／Ｌ、ＣａＣｌ_２０．１２５ｇ／Ｌ、ＭｇＳＯ_４０．１２５ｇ／Ｌ、ＦｅＣｌ_３０．００２５ｇ／Ｌ、ＭｎＳＯ_４０．００２５ｇ／Ｌ、寒天２０ｇ／Ｌ）に２０容量％となるようにワインを含有させたワイン含有ＷＬ培地、又は、ＹＰＧ培地に３容量％のエタノールと０．３容量％の酢酸を含有させたエタノール・酢酸含有ＹＰＧ培地の１０ｃｍディッシュに、ＡＧＢＣ３２３株、ＡＢＢＣ６５３株、又はＡＢＢＣ６５９株をそれぞれ１０^３個ずつ塗抹し、５日間３０℃で培養した。培養終了後に形成されたコロニー数を計数した。なお、原料として使用したワインには遊離型亜硫酸が検出されなかったことから、ワイン含有ＷＬ培地の遊離型亜硫酸濃度は０ｐｐｍであった。

各平板培地のコロニー数の測定結果を表２に示す。表中、「ＹＰＧ＋エタノール＋酢酸」の欄はエタノール・酢酸含有ＹＰＧ培地の結果を、「ＷＬ＋ワイン」の欄は２０容量％ワイン含有ＷＬ培地の結果を、それぞれ示す。ワイン含有ＷＬ培地では、エタノール・酢酸含有ＹＰＧ培地と同程度の数のコロニーが形成され、ワイン含有ＷＬ培地がエタノール・酢酸含有ＹＰＧ培地と同様に酢酸菌検出用の培養培地として使用可能であることが確認された。ワイン含有ＷＬ培地は、市販のＷＬ培地にワインを混合するだけで調製することができ、エタノール・酢酸含有ＹＰＧ培地よりも容易に調製できる点で好ましい。

［実施例２］
平板培地の寒天濃度の酢酸菌の検出に対する影響を調べた。
具体的には、実施例１で使用した２０容量％ワイン含有ＷＬ培地の寒天濃度を１．０、１．５、又は２．０質量／容量％（１０ｇ／Ｌ、１５ｇ／Ｌ、又は２０ｇ／Ｌ）とした平板培地の１０ｃｍディッシュに、ＡＢＢＣ６５３株を１０^２個ずつ塗抹し、５日間３０℃で培養した。培養終了後に形成されたコロニーについて、直径の大きさが３ｍｍ以上と３ｍｍ未満に分けてその数を調べた。測定結果を表３に示す。

寒天濃度が１質量／容量％又は１．５質量／容量％の平板培地では、直径が３ｍｍ以上の大きなコロニーが多数形成されていたが、寒天濃度が２質量／容量％の平板培地では、直径が３ｍｍ以上のコロニーは形成されなかった。コロニーの大きさは、酢酸菌の増殖しやすさの指標である。つまり、これらの結果から、酢酸菌検出用に用いられる微生物培養用培地の平板培地の寒天濃度を１．５質量／容量％以下（１５ｇ／Ｌ以下）とすることにより、より短時間の培養時間で酢酸菌のコロニーを形成させることができる、すなわち、酢酸菌検出のための培養時間を短縮することができる。

［実施例３］
微生物培養用培地の平板培地に含有させるワインの種類の酢酸菌の検出に対する影響を調べた。
具体的には、平板培地として、実施例１で用いた２０容量％ワイン含有ＷＬ培地の原料のワインを、赤ワインとした２０容量％赤ワイン含有ＷＬ培地と白ワインとした２０容量％白ワイン含有ＷＬ培地をそれぞれ用いた。いずれの培地も遊離型亜硫酸濃度は０ｐｐｍであった。
２０容量％赤ワイン含有ＷＬ培地又は２０容量％白ワイン含有ＷＬ培地の１０ｃｍディッシュに、ＡＢＢＣ６５３株を１０^２個ずつ塗抹し、４日間３０℃で培養した。培養終了後に形成されたコロニーの数を調べたところ、２０容量％赤ワイン含有ＷＬ培地のコロニー数が１７７個、２０容量％白ワイン含有ＷＬ培地のコロニー数が１７９個であり、両者に特段の差はなかった。

［実施例４］
ワインを添加したＷＬ培地とワイン無添加のＷＬ培地について、酢酸菌と、環境菌の一種であるスフィンゴモナス属菌の生育性を調べた。スフィンゴモナス属菌としては、ワイン製造現場の環境から単離されたSphingomonas paucimobilis ＨＣ６２０株を用いた。
具体的には、ＡＢＢＣ６５３株又はＨＣ６２０株を、ＷＬ培地又は２０容量％ワイン含有ＷＬ培地（遊離型亜硫酸濃度０ｐｐｍ）の１０ｃｍディッシュに、１０^３個ずつ塗抹し、５日間３０℃で培養した。培養終了後に形成されたコロニー数を計数した。

各平板培地のコロニー数の測定結果を表４に示す。表中、「ＷＬ」の欄はワインを含有させていないＷＬ培地の結果を、「ＷＬ＋ワイン」の欄は２０容量％ワイン含有ＷＬ培地の結果を、それぞれ示す。この結果、環境菌であるＨＣ６２０株はＷＬ培地ではコロニーを形成したが、２０容量％ワイン含有ＷＬ培地では生育できなかった。逆に、酢酸菌であるＡＢＢＣ６５３株は、２０容量％ワイン含有ＷＬ培地ではコロニーを形成したが、ＷＬ培地では生育できなかった。これらの結果から、ワインを含有させたＷＬ培地では、酢酸菌は生育できるが、酢酸菌以外の環境菌は生育が抑制されることがわかった。

［実施例５］
ワイン含有ＷＬ培地に含有されているワイン由来の遊離型亜硫酸の濃度の酢酸菌の検出に対する影響を調べた。
具体的には、平板培地として、実施例１で用いた２０容量％ワイン含有ＷＬ培地の原料のワインを、遊離型亜硫酸（遊離型ＳＯ_２）濃度が１００ｐｐｍのワインＡ、遊離型亜硫酸濃度が６５ｐｐｍのワインＢ、遊離型亜硫酸濃度が０ｐｐｍのワインＣとしたものを調製した。比較対象として、ＧＹＰ培地（グルコース０．５ｇ／Ｌ、酵母エキス５．０ｇ／Ｌ、ペプトン３．０ｇ／Ｌ、寒天１２ｇ／Ｌ）に３容量％となるようにエタノールを含有させたエタノール含有ＧＹＰ培地も用いた。
ＡＢＢＣ６５３株を、各平板培地の１０ｃｍディッシュに、１０^２個ずつ塗抹し、５日間３０℃で培養した。培養終了後に形成されたコロニー数を計数した。

各平板培地の形成されたコロニー数の計数結果を、各平板培地の遊離型亜硫酸濃度（ｐｐｍ）及び分子状ＳＯ_２濃度（ｐｐｍ）と共に表５に示す。この結果、ＷＬにワインを含有させた培地では、培地中の遊離型亜硫酸濃度、すなわち分子状亜硫酸の濃度が低い培地ほど、形成されたコロニー数が多くなっていた。一方で、エタノールを含有するものの、酵母エキスやペプトンの含有量が少ないエタノール含有ＧＹＰ培地では、酢酸菌のコロニーは形成されなかった。これらの結果から、平板培地中の遊離型亜硫酸と分子状亜硫酸の濃度が低いほど酢酸菌の検出感度を高めることができること、特に、遊離型亜硫酸濃度を１３ｐｐｍ以下又は分子状亜硫酸濃度を０．８ｐｐｍ以下にすることにより、酢酸菌の検出感度を高く維持できることが判明した。

Claims

炭素源と窒素源とワインを含有し、遊離型亜硫酸濃度が０ｐｐｍであり、ｐＨ３．５〜４．５であり、エタノール濃度が２〜４容量％であり、酢酸菌検出用である、微生物培養用培地。
ｐＨが３．５〜４．２である、請求項１に記載の微生物培養用培地。
前記ワイン濃度が、前記培地のエタノール濃度が２〜４容量％となる濃度である、請求項１又は２に記載の微生物培養用培地。
前記炭素源濃度が０．５〜５０ｇ／Ｌであり、前記窒素源濃度が５〜２０ｇ／Ｌである、請求項１〜３のいずれか一項に記載の微生物培養用培地。
平板培地である、請求項１〜４のいずれか一項に記載の微生物培養用培地。
さらに、寒天を含有し、寒天濃度が１５ｇ／Ｌ以下である、請求項１〜４のいずれか一項に記載の微生物培養用培地。
請求項５又は６に記載の微生物培養用培地に、被検試料を塗抹した後、形成されたコロニーが酢酸菌かどうかを判定する、酢酸菌の検出方法。
酢酸菌かどうかの判定を、コロニーの外観、ゲノムの配列情報、及び発現しているタンパク質の情報かならなる群より選択される一種以上に基づいて判定する、請求項７に記載の酢酸菌の検出方法。
酢酸菌かどうかの判定を、マトリックス支援レーザー脱離イオン化飛行時間質量分析を用いて行う、請求項７に記載の酢酸菌の検出方法。
前記被検試料がワインである、請求項７〜９のいずれか一項に記載の酢酸菌の検出方法。