JP6949009B2 - ヒトプログラム死リガンド2(pd−l2)に結合する抗体およびその用途 - Google Patents
ヒトプログラム死リガンド2(pd−l2)に結合する抗体およびその用途 Download PDFInfo
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Description
本発明は、ヒトプログラム死リガンド2(PD−L2)に結合し、免疫組織化学的(IHC)分析によるヒト組織サンプルにおけるPD−L2発現の検出に有用である抗体およびその抗原結合性フラグメントに関する。本発明はまた、この抗ヒトPD−L2抗体を使用する免疫組織化学的(IHC)アッセイに関する。
本出願は2015年9月21日付け出願の米国仮特許出願第62/221,472号(その内容の全体を参照により本明細書に組み入れることとする)の利益を主張するものである。
本出願の配列表は、ファイル名「24188WOPCT−SEQLIST−14SEPT2016.TXT」、2016年9月14日の作成日および13.7KBのサイズを有するASCII形式の配列表としてEFS−Webを介して電子的に提出されている。EFS−Webを介して提出されたこの配列表は本明細書の一部であり、その全体を参照により本明細書に組み入れることとする。
本発明は、非常に特異的で高感度で再現性のある様態で凍結組織切片およびFFPEヒト組織切片の両方におけるPD−L2タンパク質に結合しうる新規抗ヒトPD−L2モノクローナル抗体(mAb)に関する。本発明者らは、この新規抗ヒトPD−L2 mAbが、以下の基準、すなわち、特異性、感度および再現性の1以上に基づいて、IHCアッセイで使用される幾つかの商業的に入手可能な抗ヒトPD−L2抗体より優れていると考えている。これらの3つの基準の3つ全てを満たしているわけではない市販抗ヒトPD−L2抗体としては、R&D Systems(Minneapolis,MN,USA)からカタログ番号MAB1224として入手可能なマウスIgG2b mAbであるクローン#176611、ポリクローナルヤギIgGであるR&D Systemsカタログ番号AF1224として入手可能なもの、およびBioLegend(登録商標)(サンディエゴ,CA USA)からカタログ番号345501として入手可能なマウスIgG1 mAbであるクローンMIH18が挙げられる。したがって、本発明はまた、FFPE組織切片におけるPD−L2を検出するためのIHCアッセイを含む、ヒト細胞の表面上のPD−L2発現の検出における本発明の抗PD−L2 mAbの使用に関する。
腫瘍関連PD−L1発現は抗PD−1療法に対する臨床的応答に関連している。しかし、PD−L1陰性患者も抗PD−1療法に応答しうる。このことは、他のPD−1相互作用が応答性に関連している可能性があることを示唆している。PD−1のもう一方の公知リガンドであるPD−L2の保有率および分布は十分には研究されていない。商業的に入手可能な抗ヒトPD−L2抗体は、FFPE組織切片のIHCアッセイにおいてヒトPD−L2を検出するのに満足しうるものではない。この目的を達成するために、本発明は、単離された抗PD−L2抗原結合性タンパク質、およびヒト組織サンプルにおけるPD−L2発現の検出方法における該抗原結合性タンパク質の使用方法を提供する。本発明は更に、抗PD−1治療を要する患者における抗PD−1治療に対する臨床応答性を予測するための、本発明のPD−L2抗体またはその抗原結合性フラグメントの使用方法を提供する。幾つかの実施形態においては、患者は頭頸部扁平上皮癌(HNSCC)を有する。
本発明の詳細な説明および実施例の全体にわたって、以下の略語を用いる。
CHO:チャイニーズハムスター卵巣
EC50:50%の効力または結合をもたらす濃度
ELISA:酵素結合イムノソルベントアッセイ
FFPE:ホルマリン固定パラフィン包埋
FR:フレームワーク領域
HRP:ホースラディッシュペルオキシダーゼ
HNSCC:頭頸部扁平上皮細胞癌
IC50:50%の抑制をもたらす濃度
IgG:免疫グロブリンG
IHC:免疫組織化学または免疫組織化学的
mAbまたはMab:モノクローナル抗体
MES:2−(N−モルホリノ)エタンスルホン酸
NCBI:National Center for Biotechnology Information
NSCLC:非小細胞肺癌
PCR:ポリメラーゼ連鎖反応
PD−1:プログラム死1
PD−L1:プログラム細胞死1リガンド1
PD−L2:プログラム細胞死1リガンド2
TNBC:三種陰性乳癌
VH:免疫グロブリン重鎖可変領域
VK:免疫グロブリンカッパ軽鎖可変領域
VL:免疫グロブリン重鎖可変領域
本発明がより容易に理解されうるように、ある科学技術用語を特に以下に定義する。本明細書の他の箇所で特に定義されていない限り、本明細書で用いられている全ての他の科学技術用語は、本発明が属する技術分野の当業者により一般に理解されている意味を有する。
本明細書中で用いる「細胞」、「細胞系」および「細胞培養」なる表現は互換的に用いられ、全てのそのような語は後代を含む。したがって、「形質転換体」および「形質転換細胞」なる語は、導入の数には無関係に、初代対象細胞、およびそれに由来する培養を含む。また、意図的な又は故意でない突然変異のため、全ての後代が厳密に同じDNA含量を有するわけではないと理解される。元の形質転換細胞において選別されたものと同じ機能または生物活性を有する突然変異体後代も含まれる。異なる名称が意図される場合、それは文脈から明らかであろう。
本明細書および特許請求の範囲の全体において用いられる「から実質的になる」およびその派生語、例えば「から実質的になり」または「から実質的になっており」は、任意の列挙されている要素または要素群の包含、および特定されている投与レジメン、方法または組成物の基本的または新規特性を実質的に変化させない、列挙要素と類似した又は異なる性質の他の要素の随意的(すなわち、所望により含んでいてもよい)包含を示す。非限定的な一例としては、列挙されているアミノ酸配列から実質的になる抗PD−L2抗体は、結合特異性または活性に実質的な影響を及ぼさない、1以上のアミノ酸残基の置換を含む1以上のアミノ酸をも含んでいてもよい。
本発明は、ヒトPD−L2に特異的に結合する単離された抗体またはその抗原結合性フラグメントを提供する。該単離抗体またはその抗原結合性フラグメントは3個の軽鎖CDR(CDRL1、CDRL2およびCDRL3)および3個の重鎖CDR(CDRH1、CDRH2およびCDRH3)を含む。該単離抗PD−L2抗体またはその結合性フラグメントは細胞表面上のヒトPD−L2発現の検出に有用である。本発明の抗PD−L2抗体の例には、抗体3G2の軽鎖および重鎖アミノ酸配列を含む抗体(表1を参照されたい;VLは配列番号8を含み、またはそれからなり、またはそれから実質的になり、VHは配列番号16を含み、またはそれからなり、またはそれから実質的になる)が含まれるが、これに限定されるものではない。
の免疫グロブリン軽鎖の四量体であり、ここで、免疫グロブリン重鎖および軽鎖は例えばジスルフィド結合により互いに連結されている。重鎖定常領域は3個のドメイン、すなわち、CH1、CH2およびCH3を含む。軽鎖定常領域は1個のドメインCLを含む。重鎖および軽鎖の可変領域は、抗原と相互作用する結合ドメインを含む。抗体の定常領域は、典型的には、免疫系の種々の細胞(例えば、エフェクター細胞)および古典的補体系の第1成分(C1q)を含む宿主組織または因子への抗体の結合をもたらす。「抗体」なる語はタイプIgA、IgG、IgE、IgD、IgM(およびそれらのサブタイプ)の無傷免疫グロブリンを含み、ここで、免疫グロブリンの軽鎖はカッパまたはラムダのタイプのものでありうる。
本発明はまた、本明細書に開示される抗PD−L1抗体および抗原結合性フラグメントの免疫グロブリン鎖をコードする組換え核酸を提供する。例えば、本発明は、表1に記載されているアミノ酸配列をコードする核酸、およびそれにハイブリダイズする核酸を含む。
本発明は更に、抗体3G2(「参照抗体」)の軽鎖および重鎖アミノ酸配列を含む四量体抗体の、ヒトPD−L2への結合を、参照抗体と同じエピトープへの結合により遮断する抗体またはその抗原結合性フラグメントを提供する。そのような抗体および結合性フラグメントは、当技術分野で公知の任意の交差遮断または競合分析を用いて特定されうる。第1抗体が第2抗体の結合を交差遮断するとみなされるのは、飽和状態までの第1抗体への標的の予備結合が、標的の最大半量結合を達成するのに必要な第2抗体の濃度を2倍、3倍、4倍、5倍、10倍、20倍、50倍、100倍、200倍以上増加させる場合である。交差遮断抗体の結合性エピトープは、当技術分野でよく知られた技術を用いて特定されうる。
本発明の抗体は、所望の抗体を発現するハイブリドーマクローンを培養することにより製造されうる。例えば、約1グラムの3G2抗体は、以下の方法を用いて、マウスハイブリドーマ細胞株MEB123.3G2.038から製造され、精製されうる。凍結MEB123.3G2.038細胞を、0.18% Pluronic F−68の存在下または非存在下で2mMの追加的L−グルタミンを含有するハイブリドーマ血清非含有培地を含む振とうフラスコ内に解凍する。Pluronic F−68の存在は振とうフラスコ培養の生存性を改善しうる。細胞が振盪フラスコ内に完全に馴化したら、10% CHO CD高効率フィードB(Invitrogen,カタログ番号A10240−01)を加えながら、WAVEバイオリアクター(GE Healthcare Life Sciences)内の無血清培地において20リットルの生産培養を行う。細胞増殖のために、1リットルの培養を小さなWAVEバッグ内で開始させ、ついでその1LのWAVE培養物をWAVEバイオリアクターにおいて20Lの培養へと拡大させる。その20リットルの培養を0.5×106 生存細胞/mLの細胞密度で開始させ、第1日に10% CHO CD高効率フィードBを供給し、1N Na2CO3でpHを毎日調節する。4日後に細胞を集める。NOVA分析のために、少量のサンプルを毎日採取することが可能である。
親抗原結合性タンパク質の可変ドメイン内のフレームワーク残基に対する修飾を含むように、例えば、抗原結合性タンパク質の特性を改善するために、抗PD−L2抗原結合性タンパク質が改変(操作)される実施形態が更に含まれる。典型的には、そのようなフレームワーク修飾は、抗原結合性タンパク質の免疫原性を低下させるために行われる。これは通常、親抗原結合性タンパク質における可変ドメイン内の非CDR残基(すなわち、フレームワーク残基)を、該抗原結合性タンパク質が使用されることになる種の免疫レパトワからの類似残基(例えば、ヒト用治療剤の場合にはヒト残基)で置換することにより達成される。そのような抗体は「ヒト化」抗原結合性タンパク質と称される。幾つかの場合には、改変(例えば、ヒト化)抗原結合性タンパク質の特異性を変化させ、またはアフィニティを増強することが望ましい。1つのアプローチは1以上のフレームワーク残基を対応生殖系列配列へと「復帰突然変異(backmutate)」させることである。より詳しくは、体細胞突然変異を受けた抗原結合性タンパク質は、該抗原結合性タンパク質が由来する生殖系列配列とは異なるフレームワーク残基を含有しうる。そのような残基は、該抗原結合性タンパク質が由来する生殖系列配列と該フレームワーク配列を比較することにより特定されうる。もう1つのアプローチは、該改変(例えば、ヒト化)抗原結合性タンパク質の位置の1以上において元の親残基へと復帰突然変異させること、例えば、フレームワーク残基の置換の過程において喪失した可能がある結合アフィニティを回復させることである(例えば、米国特許第5,693,762号、米国特許第5,585,089号および米国特許第5,530,101号を参照されたい)。
VHおよび/またはVL CDRの変異は、独立して、任意の組合せで選択されうる。また、所望の活性または結合能が維持される限り、本明細書に記載されている任意の変異は、独立して、任意の組合せで選択されうる。
本明細書に開示されている抗原結合性タンパク質はまた、Fc領域内の修飾を含むように、典型的には、抗原結合性タンパク質の機能特性、例えば血清半減期、補体固定、Fc受容体結合および/またはエフェクター機能(例えば、抗原依存性細胞傷害性)の1以上を変化させるために改変されうる。更に、本明細書に開示されている抗原結合性タンパク質は化学的に修飾可能であり(例えば、1以上の化学的部分が該抗原結合性タンパク質に結合可能である)、あるいは、再び抗原結合性タンパク質の機能特性の1以上を改変するために、そのグリコシル化を改変するように修飾されうる。これらの実施形態のそれぞれは後記に更に詳細に記載されている。Fc領域内の残基の番号付けはKabatのEUインデックスのものである。
本明細書に開示されている抗PD−L2抗体および抗体フラグメントはまた、放射性核種または他の検出可能な標識のような化学的部分にコンジュゲート化されうる。放射性核種には、99Tc、90Y、111In、32P、14C、125I、3H、131I、11C、15O、13N、18F、35S、51Cr、57To、226Ra、60Co、59Fe、57Se、152Eu、67CU、217Ci、211At、212Pb、47Sc、109Pd、234Thおよび40K、157Gd、55Mn、52Tr、および56Feが含まれる。蛍光または化学発光標識には、発蛍光団、例えば希土類キレート、フルオレセインおよびその誘導体、ローダミンおよびその誘導体、イソチオシアナート、フィコエリトリン、フィコシアニン、アロフィコシアニン、o−フタルアルデヒド、フルオレスカミン、152Eu、ダンシル、ウンベリフェロン、ルシフェリン、ルミナール標識、イソルミナール標識、芳香族アクリジニウムエステル標識、イミダゾール標識、アクリジミウム塩標識、シュウ酸エステル標識、エクオリン標識、2,3−ジヒドロフタラジンジオン、ビオチン/アビジン、スピン標識および安定なフリーラジカルが含まれる。
本明細書に開示されている抗PD−L2抗体および抗体フラグメントは、細胞の表面上で発現されたヒトPD−L2を特異的に検出するために使用されうる。該細胞は、ヒト個体から得られた組織または血清サンプル中に存在することが可能であり、PD−L2発現の検出は、当技術分野で公知の種々のインビトロアッセイ方法のいずれかを用いて行われる。
(a)基体(例えば、マイクロタイタープレートウェル、例えばプラスチックプレートの表面)を抗PD−L1抗体またはその抗原結合性フラグメントで被覆(コート)し、
(b)ヒトPD−L1の存在に関して試験されるべきサンプルを該基体に適用し、
(c)該サンプル中の未結合物質が除去されるように、該プレートを洗浄し、
(d)同様にヒトPD−L1に特異的である、検出可能な様態で標識された抗体(例えば、酵素結合抗体)を適用し、
(e)未結合標識抗体が除去されるように、該基体を洗浄し、
(f)該標識抗体が、結合した酵素である場合には、該酵素により蛍光シグナルへと変換される化学物質を適用し、
(g)該標識抗体の存在を検出する。
(1)ヒトPD−L2の存在に関して試験されるべき膜または他の固体基体を本発明の抗体またはその抗原結合性フラグメントと接触させる。そのような膜は、非変性PAGE(ポリアクリルアミドゲル電気泳動)ゲルまたはSDS−PAGE(ドデシル硫酸ナトリウムポリアクリルアミドゲル電気泳動)ゲルにおいてPD−L2の存在に関して試験されるべきタンパク質が(例えば、該ゲルにおける電気泳動分離の後で)移されたニトロセルロースまたはビニル系(例えば、ポリビニリデンフルオリド(PVDF))膜の形態をとりうる。抗PD−L2抗体またはフラグメントとの膜の接触の前に、膜を、所望により、例えば乾燥脱脂乳などでブロッキングして、該膜上の非特異的タンパク質結合部位に結合するようにする。
アッセイプロトコル
1)FFPE組織を4μmに薄片化し、一晩風乾させる。
1)キシレン 5分×3
2)キシレン 3分×1
3)100% アルコール 3分×2
4)95% アルコール 3分×1
5)95% アルコール 2分×1
6)70% アルコール 2分×1
7)脱イオン水 1分×1。
7)オートステイナープログラムが完了した後、スライドを装置から取り出し、脱イオン水に浸漬し、対比染色/脱水する。これは、以下のとおりに設定されたLeica Stainer XL(プログラム3)を使用して行う。
2)脱イオン水 2分×1
3)リチャード・アレン(Richard Allen’s)ブルーイング試薬 20秒×1
4)脱イオン水 2分×1
5)95% アルコール 1分×1
6)100% アルコール 1分×2
7)キシレン 1分×3
8)キシレン 終了。
本発明はまた、PD−1アンタゴニストに対する臨床応答を予測するための方法を提供する。1つの実施形態においては、該方法は、ヒト患者から摘出された腫瘍組織サンプルにおけるPD−L2の発現レベルを測定し、腫瘍組織サンプルがPD−L2に関して陽性であるか陰性であるかを判定し、サンプルがPD−L2陽性であると判定された場合にはPD−1アンタゴニストを患者に投与することを含む。
便宜上、本明細書に開示されている抗体または特異的結合性物質は、キット、すなわち、診断または検出アッセイを行うための説明を伴う所定量の試薬のパッケージされた組合せとして提供されうる。該抗体が酵素で標識される場合、該キットは基質と、酵素により要求される補因子(例えば、検出可能な発色団または発蛍光団を与える基質前駆体)とを含むであろう。また、安定剤、バッファー(例えば、ブロックバッファーまたは細胞溶解バッファー)などのような他の添加剤が含まれうる。種々の試薬の相対量は、アッセイの感度を実質的に最適化する該試薬の溶液中の濃度がもたらされるように広範に変動しうる。特に、該試薬は、適当な濃度を有する試薬溶液を溶解に際して与える賦形剤を含む乾燥粉末、通常は凍結乾燥粉末として提供されうる。
分子生物学における標準的な方法はSambrook,FritschおよびManiatis(1982 & 1989 2nd Edition,2001 3rd Edition)Molecular Cloning,A Laboratory Manual,Cold Spring Harbor Laboratory Press,Cold Spring Harbor,NY;SambrookおよびRussell(2001)Molecular Cloning,3rd ed.,Cold Spring Harbor Laboratory Press,Cold Spring Harbor,NY;Wu(1993)Recombinant DNA,Vol.217,Academic Press,San Diego,CAに記載されている。標準的な方法はAusbelら(2001)Current Protocols in Molecular Biology,Vols.1−4,John Wiley and Sons,Inc.New York,NYにも見られ、これは細菌細胞におけるクローニングおよびDNA突然変異誘発(Vol.1)、哺乳類細胞および酵母におけるクローニング(Vol.2)、複合糖質およびタンパク質発現(Vol.3)ならびにバイオインフォマティクス(Vol.4)を記載している。
抗PD−L2ハイブリドーマの作製およびスクリーニング
幾つかの市販抗ヒトPD−L2抗体の試験が、FFPE組織切片のIHCアッセイにおいてヒトPD−L2を検出するのにそれらが満足しうるものではないことを示した後、本発明者らは、高品質抗ヒトPD−L2 IHC試薬を作製することを試みるために一連のげっ歯類免疫化実験を本実施例で行った。最初の2つの実験で用いた免疫原はヒトPD−L2−Fc融合タンパク質(R&D Systems:カタログ番号:1224−PL、ロット番号:FCI051302A)およびヒトPD−L2−HisTag融合タンパク質(Sino Biologicals:カタログ番号:10292−H08H、ロット番号:MB05OC0910)であった。該PD−L2 Fc融合タンパク質は、ヒトIgG1フラグメントに融合したヒトPD−L2(Leu20−Pro219,NCBIアクセッション番号Q9BQ51.2)の細胞外ドメインを含有する。該PD−L2−Hisタグ融合体は、ポリヒスチジンタグに融合したヒトPD−L2の細胞外ドメインを含有する。第3の実験においては、同じ2つの融合タンパク質を、それらを5分間煮沸して変性させた後、免疫原として使用した。
ついで、1次スクリーニングおよび2次スクリーニングの両方においてヒトPD−L2への結合に関して陽性の試験結果を示したハイブリドーマ上清をIHCアッセイにおいてホルマリン固定パラフィン包埋(FFPE)ヒト正常扁桃組織の標識に関してスクリーニングした。染色、核染色、上皮細胞もしくは他の非特異的染色を示さない、または低いシグナル対ノイズ比を有するハイブリドーマを、更なる考慮から完全に除外した。最初の2回の免疫化実験からのPD−L2結合上清はいずれも、満足しうるIHC染色結果を示さなかった。このことに促されて、本発明者らは、第3の実験における免疫原として変性PD−L2融合タンパク質を使用した。PD−L2結合上清を与えた実験からの420個のハイブリドーマのうち、本発明者らは、IHCにおけるPD−L2検出試薬として使用される候補とみなされるのに十分な標識強度、低いバックグラウンドレベルおよびシグナル鮮明度を有する5個だけを特定した。ついで、これらのハイブリドーマを更なる評価のためにサブクローニングし、精製し、抗体クローン3G2が評価基準において最良の特性を有していた。
材料および方法
染色
FFPE組織切片を常法により脱パラフィン化し、PD−L2およびPD−L1 IHCのために再水和させた。全てのスライドを熱誘発性エピトープ回収に付し、内因性ペルオキシダーゼブロッキングを行った後、一次抗体(抗PD−L2クローン3G2または抗PD−L1クローン22C3,Merck Research Laboratories,Palo Alto CA)の存在下でインキュベーションを行った。抗原−抗体結合を3,3’ジアミノベンジジン(DAB)色素原(K4368,Dako,Carpinteria CA)で可視化した。
保存FFPE腫瘍検体をMerck Palo Alto組織バンクから入手した。スコア化は病理学者により行われた。スコアは腫瘍細胞および非腫瘍細胞の両方の標識の保有率を含む。半定量的な0〜5のスコア化系(0=陰性、1=稀少、2=低い、3=中等度、4=高い、5=非常に高い)を用いた。内皮細胞発現の存在または非存在を、特に、別個の値として評価した。
RNAScopeプラットフォーム(RNAscope 2.0高精細度キット,Advanced Cell Diagnostics[ACD],Hayward CA)を製造業者の説明に従い使用するISHにより、PD−L2 mRNAの細胞分布を評価した。ヒトPD−L2用のアンチセンスおよびセンスDNAプローブ(それぞれ試験プローブおよび陰性対照)ならびにPPIB用のアンチセンスプローブ(陽性対照)[全て、ACDにより設計されたもの(それぞれカタログ番号316291、519891および313901)]を使用して、ハイブリダイゼーションを行った。
定量的RT−PCR
リアルタイム定量的PCR分析のために、QuantiTect Reverse Transcription(Qiagen,Valencia,CA)を製造者の説明に従い使用して、DNアーゼ処理された全RNAを逆転写した。PDCD1LG2(PD−L2、CD273)に特異的なプライマーをApplied Biosystems(Foster City,CA)から商業的に入手した。ウラシル−DNAグリコシラーゼの存在下でTaqman Universal PCR Master Mixと共に特異的プローブ/プライマー混合物を使用して、Fluidigm Biomark上でリアルタイム定量的PCRを行った。ユビキチンレベルを別の反応において測定し、それを用いてΔCt方法によりデータを正規化した。
製造業者のプロトコール(NanoString,Seattle WA)に従って切片化FFPE組織から組織ライセートを得た。細胞ライセート(サンプル当たり50ng)をバーコード化3’ビオチン化捕捉プローブおよび蛍光タグ化5’レポータープローブ(所望の遺伝子発現コードセットからのもの)と混合した。プローブおよび標的転写産物を、製造業者の推奨に従い、一晩ハイブリダイズさせた。ハイブリダイズしたサンプルをNanoString nCouter(商標)装置において使用し、ついで、nCounter(商標)Digital Analyzerを使用して、最大スキャン解像度でサンプルをスキャンした。
3G2抗PD−L2 mAbの品質評価
ヒトPD−L2タンパク質の検出のためのIHC試薬としての3G2抗体の品質を試験した。該試験は、10μg/mLの濃度で適用された場合のFFPEヒト正常扁桃組織の標識に関する初期スクリーニング、高分解能、低いバックグラウンドノイズをもたらすアッセイの最適化(抗体の力価測定、複数の検出系の評価)を含む一連の工程、およびそれに続く一連の妥当性確認工程により行った。妥当性確認工程においては、以下の処理を行った:1)各組織に関する対応アイソタイプ対照を伴う37個の正常ヒト組織のパネル上(この場合、PD−L2の豊富な発現が胎盤および複数のリンパ組織において検出された)および複数のヒト腫瘍のコホートにおいてアッセイを行った;2)IHCアッセイにおいて陽性シグナルを示していたサンプル上でPD−L2 mRNAに関してin situハイブリダイゼーション(RNAscope,Advanced Cellular Diagnostics,Hayward CA)を行うことにより、IHCによる組織におけるシグナルの分布の妥当性をクロスチェックした;3)ブロッキング研究の実施により(この場合、IHCアッセイにおいて標識を示していた組織を共に常法で使用した)、および抗体の相補性決定領域(CDR)の結合に対する標識の依存性を判定するために、免疫原での該抗体の予備吸着の後でのみ、該組織への該抗体の適用により、IHCにより生成されたシグナルの特異性をクロスチェックした;4)通常のRNA分析方法により検出されたmRNAの量と、IHCにより生成されたシグナルの度合を比較するために、PD−L2 mRNA発現のレベル差を示すことが知られている一連の細胞系(CHO−K1、PD−L2トランスフェクト化CHO−K1、NCIH−226、NCIH−23、HOP−62、HOP−92、SKBR3、MCF7、M14、SR、RPMI 8226)から得られたFFPE細胞ペレット上でアッセイを行った;ならびに5)IHCシグナルの再現性を評価するために、出力の比較可能性の病理学者による評価により、3つの正常扁桃上で3日間にわたってアッセイを行った。PD−L2 IHCシグナルは、ヒト腫瘍サンプルにおいてNanoString法により定量されたPD−L2 mRNAレベルとも有意に相関した(p<0.0001〜p=0.0037;データ非表示)。
腫瘍および免疫細胞におけるPD−L2発現
腫瘍組織におけるPD−L2発現を検出するための3G2 mAbの有用性を評価するために、7つの異なる腫瘍型の保存サンプルを、3G2抗体を使用する本明細書に記載されているIHCアッセイに付した。腎細胞癌(n=71)、膀胱癌(n=34)、メラノーマ(n=83)、非小細胞肺癌(NSCLC)(n=94)、HNSCC(n=40)、三種陰性乳癌(TNBC)(n=22)および胃癌(n=73)を含む幾つかの腫瘍型のコホートにおいて、3G2抗PD−L2抗体でのIHC染色により、PD−L2タンパク質の発現を評価した(図3を参照されたい)。PD−L2発現のレベルは、染色の強度に基づいて0(陰性)、1(稀少)、2(低い)、3(中等度)、4(高い)または5(非常に高い)として、病理学者によりスコア化された。本発明者らはまた、種々の腫瘍型にわたる或る範囲のPD−L2発現を示す結果を分析した。また、本発明者らは、腫瘍組織切片における3つの異なる細胞型、すなわち、間質細胞、腫瘍細胞および内皮細胞において、PD−L2発現のレベルを評価し、その結果を図4に示す。簡潔に説明すると、該結果は、PD−L2タンパク質が間質細胞(免疫細胞浸潤物を含む)、腫瘍細胞および内皮細胞上で種々の度合で発現されたことを示している(後記)。
3G2抗PD−L2 mAbを使用するIHCアッセイの臨床的有用性
KEYNOTE−12治験(Seiwertら,2016年提出;Chowら,2016年提出)からの172名のHNSCC患者からの腫瘍組織サンプルにおいて、PD−L1およびPD−L2発現ならびに抗PD−1療法に対する臨床応答の間の関係を調べた。RECIST1.1に従い測定可能な再発性または転移性疾患を有し、0または1のECOG性能状態を有し、200mgのペンブロリズマブで3週間ごとに又は10mg/kgで2週間ごとに治療された、PD−L1およびPD−L2 IHCスコア化データが入手可能なHNSCC患者からの前治療サンプルを含めた。腫瘍および免疫浸潤細胞の両方の評価を含む1% 陽性カットオフ(陽性>1%;陰性<1%)を用いて、両方のアナライトに関する発現をスコア化した。1用量以上の治験薬の投与を受け、ベースライン疾患測定値および1以上のベースライン後スキャンを有する者、または薬物関連有害事象もしくは臨床進行性疾患ゆえに服薬を中断した者として定義される完全分析セット集団におけるこれらの患者の146名において、全体的な応答率(ORR)を評価した。1用量以上の治験薬の投与を受けた者として定義される172名の処置全患者集団において、無増悪生存(PFS)および全生存(OS)を評価した。片側検定、PD−L1発現に関する補正を伴う又は伴わないロジスティック(ORR)またはCox(PFS,OS)回帰分析により、PD−L2発現との関係を調べた。PD−L2陽性および陰性患者におけるPFSおよびOSに関する生存期間中央値を推定するために、カプラン−マイヤー統計を用いた。
入手可能なPD−L2およびPD−L1 IHCスコア化データを有する、KEYNOTE−12治験における再発性または転移性疾患を有する172名のペンブロリズマブ処置HNSCC患者に由来する腫瘍組織サンプルにおいて、PD−L2発現の臨床的関連性を評価した。サンプリングされた患者の年齢中央値は60歳(範囲は37〜84歳)で、ほとんどが男性であり(83.1%)、大部分はHPV陰性(65.7%)であった(図6)。患者の大半はECOG状態1であり(71.5%)、M1の転移病期を有し(84.9%)、多数(60.4%)は再発性または転移性疾患に対する2以上の過去の療法を受けていた。
Claims (17)
- CDRL1、CDRL2およびCDRL3の、3個の軽鎖CDR、ならびにCDRH1、CDRH2およびCDRH3の、3個の重鎖CDRを含む、ヒトPD−L2に特異的に結合する単離された抗体またはその抗原結合性フラグメントであって、ここで、
(a)CDRL1は配列番号2であり、
(b)CDRL2は配列番号4であり、
(c)CDRL3は配列番号6であり、
(d)CDRH1は配列番号10であり、
(e)CDRH2は配列番号12であり、
(f)CDRH3は配列番号14である、単離された抗体またはその抗原結合性フラグメント。 - 軽鎖可変領域が配列番号8であり、重鎖可変領域が配列番号16である、軽鎖可変領域および重鎖可変領域を含む、請求項1記載の単離された抗体またはその抗原結合性フラグメント。
- マウスIgG1定常領域を含む、請求項1または2に記載の単離された抗体。
- 各重鎖がマウスIgG1定常領域を含み、各軽鎖がマウスカッパ定常領域を含む、2つの同一重鎖および2つの同一軽鎖を含む、請求項1〜3のいずれか1項記載の単離された抗体。
- 抗体軽鎖可変領域および抗体重鎖可変領域の両方をコードする単離された核酸であって、抗体軽鎖可変領域が配列番号8を含み、抗体重鎖可変領域が配列番号16を含む、単離された核酸。
- 配列番号17および配列番号18の両方を含む、請求項5記載の単離された核酸。
- 請求項5または6記載の単離された核酸を含む発現ベクター。
- 請求項7記載の発現ベクターを含む宿主細胞。
- ヒトから摘出された組織サンプルをPD−L2発現に関してアッセイする方法であって、
(a)ヒトPD−L2へのPD−L2結合性試薬の特異的結合を可能にする条件下、該組織サンプルをPD−L2結合性試薬と接触させ、ここで、該結合性試薬は、請求項1〜4のいずれか1項記載の抗体または抗原結合性フラグメントを含み、
(b)未結合のPD−L2結合性試薬を除去し、
(c)結合したPD−L2結合性物質の存在または非存在を検出することを含む、方法。 - 結合した結合性試薬の量を定量することを更に含む、請求項9記載の方法。
- 結合性試薬が2つの同一重鎖および2つの同一軽鎖を含み、各重鎖が配列番号16およびマウスIgG1定常領域を含み、各軽鎖が配列番号8およびマウスカッパ定常領域を含む、請求項9または請求項10記載の方法。
- 組織サンプルが腫瘍由来である、請求項9〜11のいずれか1項記載の方法。
- 組織サンプルが腫瘍由来であり、患者が膀胱癌、胃癌、頭頸部扁平上皮癌、メラノーマ、非小細胞肺癌、腎細胞癌または三種陰性乳癌と診断されている、請求項9〜12のいずれか1項記載の方法。
- 請求項1〜4のいずれか1項記載の単離された抗体またはその抗原結合性フラグメントと、ヒトPD−L2に結合した該抗体または抗原結合性フラグメントの複合体を検出するための試薬のセットとを含むキット。
- 該抗体が2つの同一重鎖および2つの同一軽鎖を含み、各重鎖が配列番号16およびマウスIgG1定常領域を含み、各軽鎖が配列番号8およびマウスカッパ定常領域を含む、
請求項14記載のキット。 - (1)腫瘍由来のサンプルがPD−L2発現に関して陽性であるか陰性であるかを判定し、
(2)腫瘍がPD−L2に関して陽性である場合には、PD−1アンタゴニストの治療的有効量を対象に投与することを含む、腫瘍を有する患者の治療方法に用いるための、請求項14または15に記載のキット。 - 前記(1)の方法において、腫瘍組織サンプルがPD−L1発現に関して陽性であるかどうかを判定する工程を更に含み、
そして、サンプルがPD−L1およびPD−L2の両方に関して陽性であると判定された場合には、患者にPD−1アンタゴニストを投与することを含む、請求項16記載のキット。
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