JP6982004B2 - ソベチロム誘導体 - Google Patents
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Description
本出願は、2016年5月18日に出願された米国仮特許出願第62/338,178号に対する優先権を主張し、その出願は、その全体が参照により本明細書に組み込まれる。
本発明は、National Institutes of Healthにより付与された助成金番号DK−52798の下で政府の支援によってなされた。政府は本発明において一定の権利を有する。
甲状腺ホルモン(TH)は、成長の間のオリゴデンドロサイト分化及び髄鞘化の重要なシグナルであり、多発性硬化症(MS)の成人モデルにおいても再髄鞘化を刺激する(Calza L et al.Brain Res Revs48,339−346(2005(非特許文献1))、参照により本明細書に組み込まれる)。しかしながら、THは、慢性甲状腺機能亢進症に伴う心毒性及び骨の脱灰を回避しながら髄鞘化を達成することができる治療域が事実上存在しないことから、許容可能な長期療法ではない。いくつかの甲状腺ホルモン類似体は、甲状腺ホルモン応答性遺伝子を活性化する一方で、甲状腺ホルモン受容体の分子的及び生理学的特徴を活用することによってTHに関連する欠点を回避することができる(Malm J et al.Mini Rev Med Chem7,79−86(2007)(非特許文献2)、参照により本明細書に組み込まれる)。これらの受容体は、異種組織分布及び重複するが異なる標的遺伝子セット(Yen PM,Physiol Rev81,1097−1142(2001)(非特許文献3)、参照により本明細書に組み込まれる)を有する2つの主な形態で発現する。TRαは心臓、脳及び骨に多く、TRβは肝臓に多い(O’Shea PJ et al.Nucl Recept Signal4,e011(2006)(非特許文献4)、参照により本明細書に組み込まれる)。選択的な甲状腺ホルモン様物質の開発は、甲状腺ホルモン受容体サブタイプの高い配列相同性、つまりリガンド結合ドメインの空洞の内部表面において、α1型とβ1型の間で1つのアミノ酸残基しか異ならないために困難であった。GC−1は、in vitro(Chiellini G et al.Chem Biol5、299−306(1998)(非特許文献5)及びYoshihara HAI et al.J Med Chem46,3152−3161(2003)(非特許文献6)、いずれも参照により本明細書に組み込まれる)及びin vivo (Trost SU et al.Endocrinology141,3057−3064(2000)(非特許文献7)、Grover GJ et al.Endocrinology145,1656−1661(2004)(非特許文献8)、ならびにBaxter JD et al.Trends Endocrinol Metab15,154−157(2004)(非特許文献9)、これらの全ては参照により本明細書に組み込まれる)で有意なTRβ選択性を示した最初の有望な類似体の1つであった。
本明細書に開示されるのは、以下の式Iによる化合物、
またはその任意の薬学的に許容される塩であり、
式中、
R1及びR2は、フルオロ、クロロ、ブロモ及びヨードからなる群から独立して選択され、ならびに
R3は、−OH及び−NR3aR3bからなる群から独立して選択され、
R3aは、水素及びC1〜6アルキルからなる群から独立して選択され、ならびに
R3bはC1〜6アルキルである。
[本発明1001]
式Iの化合物
またはその任意の薬学的に許容される塩:
式中、
R 1 及びR 2 は、フルオロ、クロロ、ブロモ及びヨードからなる群から独立して選択され、ならびに
R 3 は、−OH及び−NR 3a R 3b からなる群から独立して選択され、
R 3a は水素及びC 1〜6 アルキルから独立して選択され、ならびに
R 3b はC 1〜6 アルキルである。
[本発明1002]
R 1 及びR 2 が、クロロ及びブロモからなる群から独立して選択される、本発明1001の化合物またはその薬学的に許容される塩。
[本発明1003]
R 1 及びR 2 の両方がブロモである、本発明1001の化合物またはその薬学的に許容される塩。
[本発明1004]
R 3 が−OHである、本発明1003の化合物またはその薬学的に許容される塩。
[本発明1005]
R 3 が−NHR 3b であり、R 3b がC 1〜6 アルキルである、本発明1003の化合物またはその薬学的に許容される塩。
[本発明1006]
R 3b がメチルである、本発明1005の化合物またはその薬学的に許容される塩。
[本発明1007]
R 1 及びR 2 の両方がクロロである、本発明1001の化合物またはその薬学的に許容される塩。
[本発明1008]
R 3 が−OHである、本発明1007の化合物またはその薬学的に許容される塩。
[本発明1009]
R 3 が−NHR 3b であり、R 3b がC 1〜6 アルキルである、本発明1007の化合物またはその薬学的に許容される塩。
[本発明1010]
R 3b がメチルである、本発明1015の化合物またはその薬学的に許容される塩。
[本発明1011]
神経変性疾患の治療に使用するための、本発明1001〜1010のいずれかの化合物またはその薬学的に許容される塩。
[本発明1012]
前記神経変性疾患が脱髄疾患である、本発明1011の化合物またはその薬学的に許容される塩。
[本発明1013]
前記神経変性疾患が、X連鎖性副腎白質ジストロフィーまたは多発性硬化症である、本発明1011の化合物またはその薬学的に許容される塩。
[本発明1014]
本発明1001の化合物またはその薬学的に許容される塩、及び1つ以上の薬学的に許容される担体を含む、医薬組成物。
[本発明1015]
神経変性疾患の治療に使用するための、本発明1014の医薬組成物。
[本発明1016]
前記神経変性疾患が脱髄疾患である、本発明1015の医薬組成物。
[本発明1017]
前記神経変性疾患が、X連鎖性副腎白質ジストロフィーまたは多発性硬化症である、本発明1014の医薬組成物。
[本発明1018]
有効量の本発明1001の化合物またはその薬学的に許容される塩を、それを必要とする対象に投与することで神経変性疾患を治療することを含む、神経変性疾患を治療する方法。
[本発明1019]
前記神経変性疾患が脱髄疾患である、本発明1018の方法。
[本発明1020]
前記神経変性疾患が、X連鎖性副腎白質ジストロフィーまたは多発性硬化症を含む、本発明1018の方法。
I.定義
特に別様に定義されない限り、本明細書で使用される技術用語は、当技術分野で理解されるような通常の意味を有する。以下の用語及び方法の説明は、本発明の化合物、組成物及び方法をより良く説明し、本開示の実施において当業者を導くために提供される。本開示において使用される用語は、特定の実施形態及び実施例のみを説明するためのものであり、限定することを意図するものではないことも理解されたい。
第1の態様において、本発明は式Iに記載の化合物、
またはその任意の薬学的に許容される塩を提供し、
式中、
R1及びR2は、フルオロ、クロロ、ブロモ及びヨードからなる群から独立して選択され、ならびに
R3は、−OH及び−NR3aR3bからなる群から独立して選択され、
R3aは、水素及びC1〜6アルキルからなる群から独立して選択され、ならびに
R3bはC1〜6アルキルである。
またはその薬学的に許容される塩を提供し、ここでR1及びR2は、ともにハロ(フルオロ、ブロモ、クロロ、またはヨードを含む)である。いくつかの実施形態において、R1及びR2は、ともにブロモである。いくつかの実施形態において、R1及びR2は、ともにクロロである。いくつかの実施形態において、R1はブロモ、かつR2はクロロである。いくつかの実施形態において、R1はクロロ、かつR2はブロモである。
試薬及び条件:(a)トリエチルシリルクロリド、イミダゾール、DCM、0℃、95%、(b)(i)nBuLi、DIA/TMP、THF、−78℃(ii)DMF、56〜67%、(c)tertクロロアセテート、NaI、Cs2CO3、アセトン、60〜65℃、84〜88%、(d)NaI、NaOH、NaOCl、MeOH、H2O、87%(e)MOMCl、TBAI、NaOH、DCM、H2O、81%、(f)(i)iPMgCl、THF、0℃〜RT(ii)4、−78℃、54〜79%、(g)TFA、トリエチルシラン、DCM、0℃〜RT、58〜69%。
本明細書中に開示される化合物は、典型的には1種以上の薬学的に許容される担体(ビヒクルと同じ意味合いで知られる)及び任意選択で他の治療成分とともに組み合わされて医薬組成物(治療用及び予防用製剤を含む)に含めることができる。
1つ以上の開示化合物の投与を介して、神経変性疾患を有する対象を治療する方法が、本明細書中で開示される。化合物は、経口的投与、非経口的投与、または局所的投与を含む、任意の適切な経路によって投与され得る。特定の実施例において、ソベチロムまたはその薬学的に許容される塩は、経口投与される。ある特定の実施例において、ソベチロムまたはその薬学的に許容される塩は、非経口的に投与される。いくつかの実施形態において、ソベチロムまたはその薬学的に許容される塩は、口腔内、舌下、口唇下、または吸入によって投与される。別の実施形態において、ソベチロムまたはその薬学的に許容される塩は、舌下投与される。さらに別の実施形態において、ソベチロムまたはその薬学的に許容される塩は、非経口的に投与される。特定の実施形態において、ソベチロムまたはその薬学的に許容される塩は、動脈内、静脈内、脳室内、筋肉内、皮下、脊髄内、眼窩内、頭蓋内または髄腔内投与される。
以下の実施例は、説明のためだけのものである。本開示の見地から、当業者は、これらの実施例の変形形態及び開示された本発明の別の実施例が過度な実験をすることなくできることを理解するであろう。
トランス活性化アッセイ。10%ウシ胎仔血清、50単位/mLペニシリン及び50μg/mLストレプトマイシンを含有するDubelcco改変イーグル4.5g/Lグルコース培地(高グルコースDMEM)において、ヒト上皮腎臓細胞(HEK293)を80%コンフルエントになるまで増殖させた。細胞を0.25%トリプシンでトリプシン処理し、次いで高グルコースDMEMで5x105細胞/mLに希釈した。細胞を5x104細胞/ウェルでCostar3917の96ウェルプレートに添加し、次いで37℃で24時間インキュベートした。TR発現ベクター(全長TRα−CMVまたはTRβ−CMV)を1.5μg、ホタルルシフェラーゼコード配列に連結された最小チミジンキナーゼプロモーターの上流にクローン化された4ヌクレオチド(AGGTCAcaggAGGTCA)により間隔の空いたDR4甲状腺ホルモン応答エレメント(TRE)直列反復配列を含有するレポータープラスミドを1.5μg、及びpRL−SV40構成Renillaルシフェラーゼレポータープラスミド0.75μgを、540μlのOptiMEMに希釈した。27μLのリポフェクタミン試薬を540μLのOptiMEMに希釈した。プラスミド及びリポフェクタミン希釈液を合わせ、次いで室温で10分間インキュベートした。次いで、その混合物を4.29mLのOptiMEMに希釈した。プレートは、1ウェル当たりマグネシウムまたは塩化カルシウムを含まないpH7.2のリン酸緩衝生理食塩水(PBS)100μLで洗浄した。トランスフェクション混合物を1ウェル当たり50μLで添加し、次いで37℃で4時間インキュベートした。15mMのHEPES及び重炭酸塩、5mMのL−グルタミン、チャコール処理済みFBS、50単位/mLペニシリン及び50μg/mLストレプトマイシンを含有するフェノールレッド不含の改変DME/F−12ハム培地を50μL/ウェルで添加し、次いでプレートを37℃で20時間インキュベートした。薬剤ストックをDMSO中10mMで作製し、次いでDME/F−12ハムで1X濃度まで連続希釈した。1ウェル当たり100μLのPBS(pH7.2)でプレートを洗浄した。100μLの各薬剤ストックを3連でウェルに添加し、次いでプレートを37℃で24時間インキュベートした。
は、Barca−Mayo19により以前に記載された。鋳型cDNAを、qPCR反応におけるRT試薬の干渉を最小限にするために2倍希釈した。グリセルアルデヒド−3−リン酸脱水素酵素(GAPDH)は、試料間の標準化に使用されるハウスキーピング遺伝子であった。Hr遺伝子発現の相対的差異を調べるために、比較CT法を用いて、単回投与試験のデータ解析を行った。用量反応試験のためのデータ解析は、EC50値±SEMを生成するためにシグモイド用量反応モデルを用いてGraphPad Prism v.4aを用いて行った。
1a(5.04g、20mmol)及びイミダゾール(4.09g、60mmol)を80mLのDCMに溶解した。溶液を0℃に冷却し、次いでトリエチルシリルクロリド(5.03mL、30mmol)を加え、次いで反応物を0℃で30分間撹拌した。反応物を160mLのEt2Oで希釈し、50mLのH2Oで2回、50mLのブラインで2回洗浄してからMgSO4で脱水させ、濾過し、濃縮して定量的収率で2aを得、これを精製せずに使用した。1H NMR (400 MHZ, CDCl3): δ 7.37 (t, 1H), 7.10 (d, 2H), 1.02 (t, 9H), 0.82 (q, 6H)。
フラスコにモレキュラーシーブを入れ、次いで真空下で火炎乾燥させた。アルゴン下で冷却した後、2a(5.49g、15mmol)を添加し、次いでフラスコを密閉して脱気し、そしてアルゴンを流した。30mLの脱水THFを添加して脱気した後、溶液を−78℃に冷却した。第2のフラスコにモレキュラーシーブを入れて、真空下で火炎乾燥させた。アルゴン下で冷却した後、ジイソプロピルアミン(4.6mL、33mmol)、続いて脱水THF60mLを加えてから溶液を脱気し、−78℃に冷却した。ヘキサン中2.5Mのn−ブチルリチウム溶液(12mL、30mmol)を添加し、次いで溶液を−78℃で1時間撹拌した。リチウムジイソプロピルアミド溶液を、カニューレを介して2a溶液に滴下して移し、次いで脱プロトンを−78℃で1時間撹拌した。5.8mLの脱水DMF(75mmol)を加え、次いで反応物を−78℃で1時間撹拌した。反応物を50mLの1N HCl水溶液にデカントした。水層を90mLのEt2Oで3回抽出した。有機画分を合わせ、50mLのブラインで2回洗浄し、次いでMgSO4で脱水させ、濾過、濃縮して粗生成物を得、これを−78℃にてヘキサンで沈殿させて、2.8gの3aを得た(収率67%)。1H NMR (400 MHz, d6−アセトン) δ 10.16 (s, 1H), 7.27 (s, 2H)。
3a(2.8g、10mmol)、ヨウ化ナトリウム(3g、20mmol)及び炭酸セシウム(3.24g、10mmol)を40mLのアセトンに溶解させた。クロロ酢酸tert−ブチル2.86mL(20mmol)を加え、次いで反応物を65℃で2時間還流した。反応物を80mLのEt2Oで希釈し、30mLの水で2回、30mLのブラインで2回洗浄し、次いでMgSO4で脱水させ、濾過し、そして濃縮した。生成物をヘキサンで沈殿させ、濾過により回収してから真空下で乾燥させて、3.49gの4aを得た(収率88%)。1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 10.23 (s, 1H), 7.19 (s, 2H), 4.59 (s, 2H), 1.52 (s, 9H)。
1b(6.54g、40mmol)及びイミダゾール(8.18g、120mmol)を160mLのDCMに溶解させた。溶液を0℃に冷却し、次いでトリエチルシリルクロリド(10mL、60mmol)を加えてから反応物を0℃で30分間撹拌した。反応物を320mLのEt2Oで希釈し、100mLのH2Oで2回、75mLのブラインで2回洗浄し、次いでMgSO4で脱水させ、濾過し、濃縮して2bを得、これを精製せずに使用し、乾燥後に秤量した(10.58g、収率95%)。1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 6.98 (t, 1H), 6.76 (d, 2H), 1.02 (t, 9H), 0.77 (q, 6H)。
フラスコにモレキュラーシーブを入れ、次いで真空下で火炎乾燥させた。アルゴン下で冷却した後、2b(3.6g、13mmol)を入れ、次いでフラスコを密閉し、排気し、アルゴンを流した。13mLの脱水THFを添加して脱気した後、溶液を−78℃に冷却した。第2のフラスコにモレキュラーシーブを入れて、真空下で火炎乾燥させた。アルゴン下で冷却した後、2,2,6,6−テトラメチルピペリジン(1.84g、13mmol)、続いて13mLの脱水THFを加え、次いで溶液を脱気し、−78℃に冷却した。2.5Mのn−ブチルリチウムのヘキサン溶液(5.2mL、13mmol)を加えてから、溶液を0℃で20分間撹拌した。リチウムTMP溶液を、カニューレを介して2b溶液に滴下して移し、次いで脱プロトンでは−78℃で30分間撹拌した。5mLの脱水DMF(65mmol)を加え、次いで反応物は−78℃で30分間撹拌した。反応物を15mLの1N HCl水溶液にデカントした。水層を15mLのEtOAcで3回抽出した。有機画分を合わせ、15mLのブラインで2回洗浄し、次いでMgSO4で脱水させ、濾過、濃縮して粗生成物を得、これを−20℃にてヘキサンで再結晶させて、1.39gの3bを得た(収率56%)。1H NMR (400 MHz, d6−アセトン) δ 10.37 (s, 1H), 7.01 (s, 2H)。
3b(1.15g、6mmol)、ヨウ化ナトリウム(1.8g、12mmol)及び炭酸セシウム(1.94g、6mmol)を24mLのアセトンに溶解させた。クロロ酢酸tert−ブチル1.72mL(12mmol)を加え、次いで反応物を60℃で24時間還流した。反応物を30mLのEt2Oで希釈し、10mLの水で2回、そして10mLのブラインで2回洗浄し、次いでMgSO4で脱水させ、濾過して濃縮した。粗製油状物を最小量のEt2Oに再溶解させ、次いで−78℃で激しく撹拌しているヘキサン100mLに滴下した。沈殿物を濾過により回収し、真空下で乾燥して、1.545gの4b(収率84%)を得た。1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 10.43 (s, 1H), 6.92 (s, 2H), 4.59 (s, 2H), 1.52 (s, 9H)。
5(6.8g、50mmol)及びNaI(7.5g、50mmol)を70mLのMeOHに溶解させた。10MのNaOH水溶液(5mL、50mmol)を加え、次いで溶液を0℃に冷却した。6.25%w/vのNaOCl水溶液(62.5mL、50mmol)を0℃で24時間かけて滴下した。反応物を12NのHCl水溶液でpH7に酸性化し、次いで10mLの飽和Na2S2O3水溶液で反応停止した。水層をEt2Oで3回抽出した。有機画分を合わせ、ブラインで2回洗浄し、次いでMgSO4で脱水させ、濾過し、濃縮して粗生成物を得、これをフラッシュクロマトグラフィー(シリカゲル、ヘキサン/酢酸エチル、1〜20%)で精製して赤色の油状物として11.35gの6(収率87%)を得た。1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 7.47 (d, 1H), 7.36 (dd, 1H), 6.54 (d, 1H), 3.16 (m, 1H), 1.25 (d, 6H)。
6(2.62g、10mmol)及びテトラブチルアンモニウムヨージド(369mg、1mmol)を100mLのDCMに溶解させた。10MのNaOH水溶液を10mL加え、続いて5mLの6Mクロロメチルメチルエーテル/MeOAcを添加した。反応物を室温で30分間撹拌し、次いで200mLのEt2Oで希釈した。有機層を100mLのH2Oで2回、100mLのブラインで2回洗浄し、次いでMgSO4で脱水させ、濾過、濃縮して粗生成物を得、これをフラッシュクロマトグラフィー(シリカゲル、ヘキサン/酢酸エチル、1〜20%)で精製して、2.48gの7を得た(収率81%)。1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 7.47 (d, 1H), 7.42 (dd, 1H), 6.83 (d, 1H), 5.18 (s, 2H), 3.47 (s, 3H), 3.27 (m, 1H), 1.20 (d, 6H)。
フラスコに4Åモレキュラーシーブを入れ、真空下で火炎乾燥させた。7(1.47g、4.8mmol)を入れ、フラスコを密閉し、排気し、アルゴンを流した。24mLの脱水THFを添加し、脱気してから溶液を0℃に冷却した。イソプロピルマグネシウムクロリド(2M THF、5.5mL、7.2mmol)を加え、次いで反応物を室温で2時間撹拌した。第2のフラスコに4Åモレキュラーシーブを入れ、真空下で火炎乾燥させた。4a(946mg、2.4mmol)を入れ、フラスコを密閉し、排気し、アルゴンを流した。12mLの脱水THFを添加し、脱気した。アリールマグネシウム溶液を−78℃に冷却し、次いで4a溶液を、カニューレを介して滴下して添加し、反応物を−78℃で1時間攪拌した。反応を1N HCl水溶液10mLで停止させた。水層を10mLのEtOAcで3回抽出した。有機画分を合わせ、10mLのブラインで2回洗浄した。有機層をMgSO4で脱水させ、濾過し、濃縮して粗生成物を得、これをフラッシュクロマトグラフィー(シリカゲル、ヘキサン/EtOAc4〜40%)で精製して1.089gの8a(収率79%)を得た。1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 7.24 (d, 1H), 7.17 (s, 2H), 7.00 (d, 1H), 6.90 (dd, 1H), 6.51 (d, 1H), 5.21 (s, 2H), 4.53 (s, 2H), 3.49 (s, 3H), 3.34 (m, 3H), 1.52 (s, 9H), 1.21 (t, 6H)。
8a(1.089g、1.9mmol)を19mLのDCMに1.21mLのトリエチルシラン(7.58mmol)と共に溶解させた。溶液を0℃に冷却してから4.35mLのトリフルオロ酢酸(56.9mmol)を加え、反応物を0℃で30分間、次いで室温で2時間撹拌した。溶媒を真空下で除去し、次いで生成物をヘキサンの添加により沈殿させ、そして濾過により回収した。固形物を真空乾燥させて505mgのJD−20(9a)を得た(収率58%)。1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 7.19 (s, 2H), 7.10 (d, 1H), 6.82 (dd, 1H), 6.64 (d, 1H), 4.68 (s, 2H), 4.28 (s, 2H), 3.18 (m, 1H), 1.24 (d, 6H)。
フラスコに4Åモレキュラーシーブを入れ、真空下で火炎乾燥させた。7(459mg、1.5mmol)を入れ、フラスコを密閉し、排気し、アルゴンを流した。6mLの脱水THFを添加し、脱気してから溶液を0℃に冷却した。イソプロピルマグネシウムクロリド(2M THF、1.125mL、2.25mmol)を加え、次いで反応物を室温で2時間撹拌した。第2のフラスコに4Åモレキュラーシーブを入れ、真空下で火炎乾燥させた。4b(305mg、1mmol)を入れ、フラスコを密閉し、排気し、そしてアルゴンを流した。4mLの脱水THFを添加して脱気した。アリールマグネシウム溶液を−78℃に冷却し、次いで4b溶液を、カニューレを介して滴下して添加し、反応物を−78℃で1時間攪拌した。反応を1N HCl水溶液5mLで停止させた。水層を5mLのEtOAcで3回抽出した。有機画分を合わせ、5mLのブラインで2回洗浄した。有機層をMgSO4で脱水させ、濾過し、濃縮して粗生成物を得、これをフラッシュクロマトグラフィー(シリカゲル、ヘキサン/EtOAc2〜20%)で精製して260mgの8b(収率54%)を得た。1H NMR (400 MHZ, CDCl3) δ 7.26 (d, 1H), 6.99 (dd, 1H), 6.94 (d, 1H), 6.93 (s, 2H), 6.50 (d, 1H), 5.21 (s, 2H), 4.53 (s, 2H), 3.50 (s, 3H), 3.33 (m, 1H), 3.23 (d, 1H), 1.52 (s, 9H), 1.21 (t, 6H)。
8b(260mg、0.54mmol)を5.4mLのDCMに0.345mLのトリエチルシラン(2.16mmol)と共に溶解させた。溶液を0℃に冷却してから1.24mLのトリフルオロ酢酸(16.2mmol)を加え、反応物を0℃で30分間、次いで室温で2時間撹拌した。溶媒を真空下で除去し、次いで生成物をヘキサンの添加により沈殿させ、そして濾過により回収した。固形物を真空乾燥させて137mgのJD−21(9b)を得た(収率69%)。1H NMR (400 MHz, CDCl3) δ 7.12 (d, 1H), 6.95 (s, 2H), 6.86 (dd, 1H), 6.64 (d, 1H), 4.68 (s, 2H), 4.18 (s, 2H), 3.17 (m, 1H), 1.24 (d, 6H)。
細胞をベースにしたin vitroトランス活性化アッセイは、JD−20及びJD−21が親GC−1と比較して改善された力価を有することを示す(図1)。TRαの力価の増加は中程度であったが、TRβではT3のEC50にほぼ一致する、さらなる改善が見られた(表1)。
密閉管の中で2−(3,5−ジブロモ−4−(4−ヒドロキシ−3−イソプロピルベンジル)フェノキシ)酢酸(100mg、0.22mmol)をメタノール(4mL)に溶解させ、濃硫酸1滴をこれに加えた。密閉した反応混合物を1時間攪拌しながら65℃まで加熱した。次いでこれを室温まで冷却し、そしてTLC(酢酸エチル:ヘキサンは1:1)により対応するメチルエステルへの完全な変換が示された。この溶液に、水中40%メチルアミン(285μl、3.3mmol、15当量)を添加し、再び密閉状態で1時間65℃まで加熱した。これを冷却し、生成物への完全な変換をTLCによって観察した。水酸化ナトリウム(0.5N、10ml)をこれに加え、生成物をジクロロメタン(3×50ml)で抽出した。有機層を合わせ、無水Mg2SO4で脱水させ、濾過し、濃縮した。粗生成物をフラッシュクロマトグラフィー(50%ヘキサン/酢酸エチル)で精製した。ヘキサンとジクロロメタンの混合物からの再結晶で、最終化合物を得た(70mg、0.15mmol、68%)。1HNMR (400MHz, MeOH−d4): δ=7.35 (s, 2H), 6.98 (d, 1H, J=2.3Hz), 6.74 (dd, 1H, J=8.3 Hz, 2.3Hz), 6.62 (d, 1H, J=8.2Hz), 4.55 (s, 2H), 4.26 (s, 2H), 3.24 (septet, 1H, J=6.9 Hz), 2.84 (s, 3H), 1.17 (d, 6H, J=6.98Hz)。C19H21Br2NO3[M+H]+:m/z471.99416に対するHRMSの計算精密質量は、m/z471.99446であった。
密閉管の中で2−(3,5−ジクロロ−4−(4−ヒドロキシ−3−イソプロピルベンジル)フェノキシ)酢酸(100mg、0.27mmol、1当量)をメタノール(5mL)に溶解させた。硫酸(1滴)をこれに加え、反応物を密閉し、攪拌しながら1時間65℃まで加熱した。それを室温まで冷却し、TLC分析(酢酸エチル:ヘキサン1:1)により、中間体メチルエステルへの完全な変換が示された。次に、これに水中40%メチルアミン(320μl、4mmol、15当量)を添加した。反応物は、再密閉して、65℃まで1時間加熱した。反応フラスコを室温まで冷却し、水酸化ナトリウム(0.5N、10mL)をそれに加えた。反応生成物をジクロロメタン(3×50mL)で抽出した。有機層を合わせ、無水Mg2SO4で脱水させ、濾過し、濃縮した。フラッシュクロマトグラフィー(50%ヘキサン/酢酸エチル)で精製して、白色固体として生成物を得た(65mg、0.17mmol、63%)。1H NMR (400 MHz, MeOH−d4): δ=7.12 (s, 2H), 7.01 (d, 1H, J=1.98Hz), 6.77 (dd, 1H, J=8.21Hz, 2.26Hz), 6.62 (d, 1H, J=8.21Hz), 4.56 (s, 2H), 4.15 (s, 2H), 3.23 (septet, 1H, J=7.14Hz), 2.85 (s, 3H), 1.17 (d, 6H, J= 6.93Hz)。C19H21Cl2NO3[M+H]+:m/z384.09455についてのHRMSの計算精密質量は、m/z384.09473であった。
動物試験。8〜10週齢の野生型雄C57Bl/6マウスを、気温湿度が制御された部屋にて12時間の明暗サイクルで飼育し、食物及び水を自由に摂取させた。アミドMA−JD20から生成したJD−20に対するJD−20、及びアミドMA−JD−21から生成されたJD−21に対するJD−21の単一時点の薬物分布を比較するために、JD−20、JD−21、MA−JD20及びMA−JD21を腹腔内及び経口の両方で3.05μmol/kg(1用量につき3匹のマウス)の用量を投与することによって親薬物の濃度をマウスの脳及び血清で分析した。化合物を50:50のDMSO及び0.9%の塩化ナトリウム静菌溶液の混合物に溶解させた。500μlインスリン注射器(Covidien LLC MA、USA)に接続したプラスチック供給管(20ga×38mm、Instech Laboratories Inc.、PA、USA)を用いて経口投与を行った。両方の実験において、薬物投与1時間後にマウスを安楽死させた。
材料。ソベチロム及びd6−ソベチロムは、上述したように合成した。(Placzek and Scanlan.Tetrahedron2015,71(35),5946−5951)。 アナンダミドはCaymanから購入した(90050)。アラキドン酸はSignmaから購入した(23401)。d11−アラキドン酸は、Avantiから購入した(861810E)。溶媒は、FisherのHPLCグレードである。pcDNA4バックボーンのヒトFAAH cDNAは、Martin Kaczocha教授(Stony Brook)により、快く提供して頂いた。C末端FLAG配列は、プライマー
を用いてPCRにより挿入された。Kpn1/Xho1消化断片はpcDNA4に再挿入された。得られたpcDNA4−FAAH−FLAG構築物を配列決定により確認した。
Claims (13)
- R1及びR2が、クロロ及びブロモからなる群から独立して選択される、請求項1に記載の化合物またはその薬学的に許容される塩。
- R1及びR2の両方がブロモである、請求項1に記載の化合物またはその薬学的に許容される塩。
- R3bがメチルである、請求項3に記載の化合物またはその薬学的に許容される塩。
- R1及びR2の両方がクロロである、請求項1に記載の化合物またはその薬学的に許容される塩。
- R3bがメチルである、請求項5に記載の化合物またはその薬学的に許容される塩。
- 神経変性疾患の治療に使用するための、請求項1〜6のいずれか1項に記載の化合物またはその薬学的に許容される塩。
- 前記神経変性疾患が脱髄疾患である、請求項7に記載の化合物またはその薬学的に許容される塩。
- 前記神経変性疾患が、X連鎖性副腎白質ジストロフィーまたは多発性硬化症である、請求項7に記載の化合物またはその薬学的に許容される塩。
- 請求項1〜6のいずれか1項に記載の化合物またはその薬学的に許容される塩、及び1つ以上の薬学的に許容される担体を含む、医薬組成物。
- 神経変性疾患の治療に使用するための、請求項10に記載の医薬組成物。
- 前記神経変性疾患が脱髄疾患である、請求項11に記載の医薬組成物。
- 前記神経変性疾患が、X連鎖性副腎白質ジストロフィーまたは多発性硬化症である、請求項11に記載の医薬組成物。
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