JP7625515B2 - Aavカプシドの向性の再指向化 - Google Patents
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Description
アデノ随伴ウイルス(AAV)由来ベクターは、それらの性質が非病原性であり、それらの免疫原性プロファイルが低く、宿主ゲノムへの組込み率が低く、非分裂細胞での導入遺伝子発現が長期にわたるため、臨床遺伝子移入の有望なツールである。しかしながら、ある特定の臓器ではAAV天然バリアントの形質導入効率は低過ぎて、臨床に応用することができず、既存の中和抗体によるカプシド中和は、大部分の患者の治療を妨げる可能性がある。こうした理由から、特性が増強された新規カプシドバリアントを得るために多大な努力が捧げられている。これまでに試験された多くの手法の中でも、最も有意義な進歩は、エラープローンPCR、種々の親血清型のシャッフル、または規定の位置への完全ランダム化短鎖ペプチドの挿入のいずれかを用いたカプシド配列ランダム化により作出されるカプシドバリアントのin vitroまたはin vivo選択を使用するAAVカプシドの指向性進化からもたらされている。
この問題に対処するために、2つの以前の手法が使用されてきた。第1の戦略では、感染性AAV DNAの指数関数的複製の引き金を引くために、培養細胞(非特許文献1)またはin situ動物組織(非特許文献2)にアデノウイルスと共に共感染させることが使用された。別の成功した手法には、細胞特異的CREトランスジェニックマウス(非特許文献3)を使用して、アストロサイトでのウイルスDNA組換えを特異的に可能にし、続いてCRE組換えカプシドバリアントを回収することが伴っていた。両手法は成功であったことが証明され、標的細胞集団への形質導入が増強された幾つかのカプシドバリアントの単離が可能だった。
上述のおよび他の目的、特徴、および利点は、添付の図面に例示されているように、本開示の特定の実施形態に関する以下の説明から明らかになるであろう。図面は必ずしも縮尺通りではなく、むしろ、本開示の種々の実施形態の原理を例示することに重点が置かれている。
一実施形態では、本開示のAAV粒子はssAAVである。
AAV粒子を産生および/または修飾するための方法は、シュードタイプAAVベクターなど、当技術分野において開示されている(国際公開第200028004号パンフレット;国際公開第200123001号パンフレット;国際公開第2004112727号パンフレット;国際公開第2005005610号パンフレット、および国際公開第2005072364号パンフレット。これらの文献の各々の内容は全体が参照により本明細書に援用される)。
本開示のAAV粒子は、任意の天然または組換えAAV血清型を含んでいてもよく、またはそれに由来してもよい。AAV血清型は、これらに限定されないが、パッケージング、向性、形質導入、および免疫原性プロファイルなどの特質が異なる場合がある。理論により束縛されることは望まないが、AAVカプシドタンパク質は、特定の組織に対するAAV粒子向性を駆動させるものであるとみなされることが多い。
別の実施形態では、親AAVカプシドヌクレオチド配列は、配列番号1のK449Rバリアントであり、このバリアントでは、アミノ酸配列(ヌクレオチド1345~1347)の449位にリジン(例えば、AAAまたはAAG)をコードするコドンが、アルギニン(CGT、CGC、CGA、CGG、AGA、AGG)をコードするものと交換されている。K449Rバリアントは、野生型AAV9と同じ機能を有する。
別の実施形態では、親AAVカプシドアミノ酸配列は、配列番号3に示されている通りである。
親AAV血清型および関連カプシド配列は、当技術分野で公知のもののいずれであってもよい。そのようなAAV血清型の非限定的な例としては、以下のものが挙げられる:AAV9、AAV9 K449R(またはK449R AAV9)、AAV1、AAVrh10、AAV-DJ、AAV-DJ8、AAV5、AAVPHP.B(PHP.B)、AAVPHP.A(PHP.A)、AAVG2B-26、AAVG2B-13、AAVTH1.1-32、AAVTH1.1-35、AAVPHP.B2(PHP.B2)、AAVPHP.B3(PHP.B3)、AAVPHP.N/PHP.B-DGT、AAVPHP.B-EST、AAVPHP.B-GGT、AAVPHP.B-ATP、AAVPHP.B-ATT-T、AAVPHP.B-DGT-T、AAVPHP.B-GGT-T、AAVPHP.B-SGS、AAVPHP.B-AQP、AAVPHP.B-QQP、AAVPHP.B-SNP(3)、AAVPHP.B-SNP、AAVPHP.B-QGT、AAVPHP.B-NQT、AAVPHP.B-EGS、AAVPHP.B-SGN、AAVPHP.B-EGT、AAVPHP.B-DST、AAVPHP.B-DST、AAVPHP.B-STP、AAVPHP.B-PQP、AAVPHP.B-SQP、AAVPHP.B-QLP、AAVPHP.B-TMP、AAVPHP.B-TTP、AAVPHP.S/G2A12、AAVG2A15/G2A3(G2A3)、AAVG2B4(G2B4)、AAVG2B5(G2B5)、PHP.S、AAV2、AAV2G9、AAV3、AAV3a、AAV3b、AAV3-3、AAV4、AAV4-4、AAV6、AAV6.1、AAV6.2、AAV6.1.2、AAV7、AAV7.2、AAV8、AAV9.11、AAV9.13、AAV9.16、AAV9.24、AAV9.45、AAV9.47、AAV9.61、AAV9.68、AAV9.84、AAV9.9、AAV10、AAV11、AAV12、AAV16.3、AAV24.1、AAV27.3、AAV42.12、AAV42-1b、AAV42-2、AAV42-3a、AAV42-3b、AAV42-4、AAV42-5a、AAV42-5b、AAV42-6b、AAV42-8、AAV42-10、AAV42-11、AAV42-12、AAV42-13、AAV42-15、AAV42-aa、AAV43-1、AAV43-12、AAV43-20、AAV43-21、AAV43-23、AAV43-25、AAV43-5、AAV44.1、AAV44.2、AAV44.5、AAV223.1、AAV223.2、AAV223.4、AAV223.5、AAV223.6、AAV223.7、AAV1-7/rh.48、AAV1-8/rh.49、AAV2-15/rh.62、AAV2-3/rh.61、AAV2-4/rh.50、AAV2-5/rh.51、AAV3.1/hu.6、AAV3.1/hu.9、AAV3-9/rh.52、AAV3-11/rh.53、AAV4-8/r11.64、AAV4-9/rh.54、AAV4-19/rh.55、AAV5-3/rh.57、AAV5-22/rh.58、AAV7.3/hu.7、AAV16.8/hu.10、AAV16.12/hu.11、AAV29.3/bb.1、AAV29.5/bb.2、AAV106.1/hu.37、AAV114.3/hu.40、AAV127.2/hu.41、AAV127.5/hu.42、AAV128.3/hu.44、AAV130.4/hu.48、AAV145.1/hu.53、AAV145.5/hu.54、AAV145.6/hu.55、AAV161.10/hu.60、AAV161.6/hu.61、AAV33.12/hu.17、AAV33.4/hu.15、AAV33.8/hu.16、AAV52/hu.19、AAV52.1/hu.20、AAV58.2/hu.25、AAVA3.3、AAVA3.4、AAVA3.5、AAVA3.7、AAVC1、AAVC2、AAVC5、AAVF3、AAVF5、AAVH2、AAVrh.72、AAVhu.8、AAVrh.68、AAVrh.70、AAVpi.1、AAVpi.3、AAVpi.2、AAVrh.60、AAVrh.44、AAVrh.65、AAVrh.55、AAVrh.47、AAVrh.69、AAVrh.45、AAVrh.59、AAVhu.12、AAVH6、AAVH-1/hu.1、AAVH-5/hu.3、AAVLG-10/rh.40、AAVLG-4/rh.38、AAVLG-9/hu.39、AAVN721-8/rh.43、AAVCh.5、AAVCh.5R1、AAVcy.2、AAVcy.3、AAVcy.4、AAVcy.5、AAVCy.5R1、AAVCy.5R2、AAVCy.5R3、AAVCy.5R4、AAVcy.6、AAVhu.1、AAVhu.2、AAVhu.3、AAVhu.4、AAVhu.5、AAVhu.6、AAVhu.7、AAVhu.9、AAVhu.10、AAVhu.11、AAVhu.13、AAVhu.15、AAVhu.16、AAVhu.17、AAVhu.18、AAVhu.20、AAVhu.21、AAVhu.22、AAVhu.23.2、AAVhu.24、AAVhu.25、AAVhu.27、AAVhu.28、AAVhu.29、AAVhu.29R、AAVhu.31、AAVhu.32、AAVhu.34、AAVhu.35、AAVhu.37、AAVhu.39、AAVhu.40、AAVhu.41、AAVhu.42、AAVhu.43、AAVhu.44、AAVhu.44R1、AAVhu.44R2、AAVhu.44R3、AAVhu.45、AAVhu.46、AAVhu.47、AAVhu.48、AAVhu.48R1、AAVhu.48R2、AAVhu.48R3、AAVhu.49、AAVhu.51、AAVhu.52、AAVhu.54、AAVhu.55、AAVhu.56、AAVhu.57、AAVhu.58、AAVhu.60、AAVhu.61、AAVhu.63、AAVhu.64、AAVhu.66、AAVhu.67、AAVhu.14/9、AAVhu.t 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一実施形態では、親AAVカプシド配列は、K449R AAV9配列を含む。
一実施形態では、親AAVカプシド配列は、AAVDJ配列を含む。
一実施形態では、親AAVカプシド配列は、AAVrh10配列を含む。
一実施形態では、親AAVカプシド配列は、AAV1配列を含む。
理論により束縛されることは望まないが、親AAVカプシド配列は、VP1領域を含むことが理解される。一実施形態では、親AAVカプシド配列は、VP1、VP2、および/もしくはVP3領域、またはそれらの任意の組合せを含む。親VP1配列は、親AAVカプシド配列と同義であるとみなすことができる。
本明細書には、標的組織(例えば、CNSまたはPNSの細胞)の形質導入を増強または向上させるための標的指向性ペプチド、および1つまたは複数の標的指向性ペプチドインサートを有するカプシドタンパク質を含む関連AAV粒子が開示されている。
標的指向性ペプチドは、静脈内投与後にAAV粒子をPNS(例えば、DRG)に向けることができる。
一実施形態では、標的指向性ペプチドライブラリーは、3つの突然変異アミノ酸を有する標的指向性ペプチドを含む。一実施形態では、こうした3つの突然変異アミノ酸は、連続アミノ酸である。別の実施形態では、こうした3つの突然変異アミノ酸は、不連続アミノ酸である。一実施形態では、親標的指向性ペプチドは7量体である。別の実施形態では、親ペプチドは9量体である。
一実施形態では、標的指向性ペプチドは、表2に示されている通りの配列を含んでいてもよい。表2において、「_1」は、AまたはCが3番目の位置に存在するNNMコドンを指し、「_2」は、GまたはTが3番目の位置に存在するNNKコドンを指す。加えて、MetまたはTrpは、それぞれコドンATGおよびTGGでしかコードすることができないため、NNMコドンは、アミノ酸のレパートリー全体を網羅することはできない。したがって、一部の「NNM」配列は、Gで終わる一部のコドンも含有する。
標的指向性ペプチドは、独立したペプチドであってもよく、または親配列へと挿入されているかもしくはコンジュゲートされていてもよい。一実施形態では、標的指向性ペプチドは、AAV粒子のカプシドタンパク質へと挿入されている。
標的指向性ペプチドは、完全な機能性AAV粒子をもたらす任意の位置において親AAVカプシド配列へと挿入されてもよい。標的指向性ペプチドは、VP1、VP2、および/またはVP3に挿入してもよい。アミノ酸残基の付番は、AAV血清型にわたって異なるため、標的指向性ペプチド挿入の正確なアミノ酸位置は重要ではない場合がある。本明細書で使用される場合、親AAVカプシド配列のアミノ酸位置は、AAV9(配列番号2)を参照として使用して記載されている。
本明細書で開示されているウイルス産生では、標的細胞と接触させてペイロードを送達するために使用することができるAAV粒子(標的組織に対する向性が増強、向上、および/または増加されている)を産生するためのプロセスおよび方法が記載される。
本開示は、ヒト対象を含む哺乳動物対象の疾患、障害、および/または状態を治療するための方法であって、本開示により規定される新規カプシド(「TRACER AAV粒子」)を含む本明細書に記載のAAV粒子を対象に投与する工程、または本明細書に記載の医薬組成物を含む本記載の組成物のいずれかを対象に投与する工程を含む方法を提供する。
一部の実施形態では、本開示のTRACER AAV粒子は、タウオパシーを治療、予防、緩和、または改善するための医学分野に有用である。
一部の実施形態では、本開示のTRACER AAV粒子は、フリードライヒ運動失調症、またはフラタキシンタンパク質の喪失もしくは部分的喪失がその根幹にある任意の疾患を治療、予防、緩和、または改善するための医学分野に有用である。
一部の実施形態では、本開示のTRACER AAV粒子は、筋萎縮性側索硬化症を治療、予防、緩和、または改善するための医学分野に有用である。
一部の実施形態では、本開示のTRACER AAV粒子は、神経障害性疼痛を治療、予防、緩和、または改善するための医学分野に有用である。
一部の実施形態では、本開示のTRACER AAV粒子は、末梢神経系に関連付けられる疾患を治療、予防、緩和、または改善するための医学分野に有用である。
本明細書で使用される場合、中枢神経系または末梢神経系およびそれらの成分(例えば、ニューロン)に関連付けられる任意の疾患は、「神経学的疾患」とみなすことができる。
タンパク質ペイロードをコードするTRACER AAV粒子
本開示では、本開示のTRACER AAV粒子を細胞へと導入するための方法であって、ベクターのいずれかを、標的mRNAおよびタンパク質の産生の増加が生じるのに十分な量で前記細胞へと導入する工程を備える方法が提供される。一部の態様では、細胞は、これらに限定されないが、運動ニューロン、海馬ニューロン、嗅内ニューロン、視床ニューロン、皮質ニューロン、感覚ニューロン、交感神経ニューロン、または副交感神経ニューロンなどのニューロン、ならびにアストロサイト、ミクログリア、および/またはオリゴデンドロサイトなどのグリア細胞であってもよい。
一部の実施形態では、本開示のTRACER AAV粒子を含む組成物は、対象の中枢神経系へと投与される。他の実施形態では、本開示のTRACER AAV粒子を含む組成物は、対象のCNS組織(例えば、対象の被殻、視床、または皮質)へと投与される。
一実施形態では、本開示のTRACER AAV粒子は、これらに限定されないが、視床ニューロン、海馬ニューロン、嗅内ニューロン、皮質ニューロン、運動ニューロン、感覚ニューロン、興奮性ニューロン、抑制性ニューロン、交感神経ニューロン、もしくは副交感神経ニューロン;オリゴデンドロサイト、アストロサイト、およびミクログリアを含むグリア細胞;ならびに/またはT細胞などのニューロンを取り囲む他の細胞を含む、特定のタイプの標的とされている細胞へと送達することができる。
一部の実施形態では、本開示のTRACER AAV粒子は、神経学的疾患の療法として使用することができる。
一部の実施形態では、本開示のTRACER AAV粒子は、アルツハイマー病の療法として使用することができる。
一部の実施形態では、本開示のTRACER AAV粒子は、ハンチントン病の療法として使用することができる。
一部の実施形態では、本開示のTRACER AAV粒子は、フリードライヒ運動失調症の療法として使用することができる。
一実施形態では、本明細書に記載のTRACER AAV粒子の対象への投与は、対象の標的タンパク質レベルを増加させることができる。標的タンパク質レベルは、これらに限定されないが、対象のCNS、CNSの領域、またはCNSの特定の細胞など、対象において、約30%、40%、50%、60%、70%、80%、85%、90%、95%、および100%、または少なくとも20~30%、20~40%、20~50%、20~60%、20~70%、20~80%、20~90%、20~95%、20~100%、30~40%、30~50%、30~60%、30~70%、30~80%、30~90%、30~95%、30~100%、40~50%、40~60%、40~70%、40~80%、40~90%、40~95%、40~100%、50~60%、50~70%、50~80%、50~90%、50~95%、50~100%、60~70%、60~80%、60~90%、60~95%、60~100%、70~80%、70~90%、70~95%、70~100%、80~90%、80~95%、80~100%、90~95%、90~100%、もしくは95~100%増加させることができる。非限定的な例として、TRACER AAV粒子は、標的タンパク質のタンパク質レベルを少なくとも50%増加させることができる。非限定的な例として、TRACER AAV粒子は、標的タンパク質のタンパク質レベルを少なくとも40%増加させることができる。非限定的な例として、対象は、標的タンパク質の10%増加を示すことができる。非限定的な例として、TRACER AAV粒子は、標的タンパク質のタンパク質レベルを、基線からの倍増で増加させることができる。一実施形態では、TRACER AAV粒子は、5~6倍のより高いレベルの標的タンパク質に結び付く。
標的タンパク質をコードするTRACER AAV粒子は、1つまたは複数の他の療法剤と組み合わせて使用してもよい。「と組み合わせて」は、その作用剤が同じ時点で投与されなければならないこと、および/または一緒に送達されるように製剤化されていなければならないことを示唆するものではないが、そうした送達方法は本開示の範囲内にある。組成物は、1つまたは複数の他の所望の治療薬または医学的手順と同時に、その前に、またはその後に投与することができる。一般に、各作用剤は、その作用剤について決定された用量および/またはタイムスケジュールで投与されることになる。
RNAi剤または調節性ポリヌクレオチドを含むTRACER AAV粒子
本開示には、1つまたは複数のsiRNA分子をコードする核酸配列を有するウイルスゲノムを含む本開示のTRACER AAV粒子を細胞へと導入するための方法であって、ベクターのいずれかを標的mRNAの分解が生じるのに十分な量で前記細胞へと導入して、それにより細胞での標的特異的RNAiを活性化する工程を備える方法が提供される。一部の態様では、細胞は、これらに限定されないが、運動ニューロン、海馬ニューロン、嗅内ニューロン、視床ニューロン、皮質ニューロン、感覚ニューロン、交感神経ニューロン、または副交感神経ニューロンなどのニューロン、ならびにアストロサイト、ミクログリア、および/またはオリゴデンドロサイトなどのグリア細胞であってもよい。
1つまたは複数のsiRNA分子をコードする核酸配列を有するウイルスゲノムを含むTRACER AAV粒子は、1つまたは複数の他の療法剤と組み合わせて使用することができる。「と組み合わせて」は、その作用剤が同じ時点で投与されなければならないこと、および/または一緒に送達されるように製剤化されていなければならないことを示唆するものではないが、そうした送達方法は本開示の範囲内にある。組成物は、1つまたは複数の他の所望の治療薬または医学的手順と同時に、その前に、またはその後に投与することができる。一般に、各作用剤は、その作用剤について決定された用量および/またはタイムスケジュールで投与されることになる。
アデノ随伴ウイルス:本明細書で使用される場合、「アデノ随伴ウイルス」または「AAV」という用語は、任意の粒子、配列、遺伝子、タンパク質、またはそれらに由来する成分を含むディペンドウイルス属のメンバーを指す。
改善:本明細書で使用される場合、「改善」または「改善する」という用語は、状態または疾患の少なくとも1つの指標の重症度を軽減することを指す。例えば、神経変性障害の状況では、改善は、ニューロン喪失の低減を含む。
相補的および実質的に相補的:本明細書で使用される場合、「相補的」という用語は、ポリヌクレオチドが互いに塩基対を形成する能力を指す。塩基対は、典型的には、逆平行ポリヌクレオチド鎖におけるヌクレオチド単位間の水素結合により形成される。相補的ポリヌクレオチド鎖は、ワトソン-クリック様式で(例えば、A対T、A対U、C対G)、または二重鎖の形成を可能にする任意の他の様式で塩基対を形成することができる。当業者であれば認識しているように、DNAではなくRNAが使用される場合、チミンではなくウラシルが、アデニンに対して相補的であるとみなされる塩基である。しかしながら、本開示の状況でUが明示されている場合、別様の明記がない限り、Tを置換する能力が示唆されている。完全な相補性または100%相補性は、1つのポリヌクレオチド鎖の各ヌクレオチド単位が、第2のポリヌクレオチド鎖のヌクレオチド単位と水素結合を形成することができる状況を指す。完全ではない相補性は、2つの鎖のすべてではないものの一部のヌクレオチド単位が互いに水素結合を形成することができる状況を指す。例えば、2つの20量体では、各鎖の2つの塩基対のみが互いに水素結合を形成することができる場合、このポリヌクレオチド鎖は10%の相補性を呈する。同じ例において、各鎖の18個の塩基対が互いに水素結合を形成することができる場合、このポリヌクレオチド鎖は90%相補性を呈する。本明細書で使用される場合、「実質的に相補的」という用語は、siRNAが、所望の標的mRNAに結合し、標的mRNAのRNAサイレンシングの引き金を引くのに十分な配列(例えば、アンチセンス鎖における)を有することを意味する。
エレメント:本明細書で使用される場合、「エレメント」という用語は、実体の別個の部分を指す。一部の実施形態では、エレメントは、より長いポリヌクレオチド配列に組み込まれている、特定の目的を有するポリヌクレオチド配列であってもよい。
製剤:本明細書で使用される場合、「製剤」は、少なくとも1つのAAV粒子(有効成分)および賦形剤および/または不活性成分を含む。
機能的:本明細書で使用される場合、「機能的」な生物学的分子は、それが特徴付けられる特性および/または活性を呈する形態の生物学的分子である。
オープンリーディングフレーム:本明細書で使用される場合、「オープンリーディングフレーム」または「ORF」は、所与のリーディングフレーム中に終止コドンを含有しない配列を指す。
予防:本明細書で使用される場合、「予防」は、健康を維持し、疾患の広がりを防止するためにとられる措置を指す。
当業者であれば、本明細書に記載の本開示による具体的な実施形態には多くの均等物があることを認識することになるか、または日常的に過ぎない実験作業を用いて確かめることができるであろう。本開示の範囲は、上記の説明に限定されることは意図されておらず、むしろ添付の特許請求の範囲に示されている通りである。
(付記)
上記実施形態及び変更例から把握できる技術的思想について記載する。
[項目1]
バリアントAAVカプシドポリペプチドを生成するための方法であって、前記バリアントAAVカプシドポリペプチドが、親AAVカプシドポリペプチドと比べて、形質導入の向上または細胞もしくは組織特異性の増加の少なくとも1つを呈し、
(a)バリアントAAVカプシドポリペプチドのライブラリーを生成する工程であって、前記ライブラリーが、
(i)2、3、4、5、6、7、8、もしくは9つの連続アミノ酸のランダム化配列の領域を有する複数のカプシドポリペプチド、または
(ii)1つよりも多くの親AAVカプシドポリペプチドに由来する複数のカプシドポリペプチド
を含む工程と;
(b)ライブラリー(i)または(ii)の前記カプシドポリペプチドをAAVベクターへとクローニングすることによりAAVベクターライブラリーを生成する工程であって、前記AAVベクターが、第1のプロモーターおよび第2のプロモーターを含み、前記第2のプロモーターが、ヘルパーウイルス共感染の非存在下でカプシドmRNA発現を駆動させる工程とを備える方法。
[項目2]
前記第1のプロモーターが、AAV2 P40であり、前記第2のプロモーターが、ユビキタスプロモーターである、請求項1に記載の方法。
[項目3]
前記第1のプロモーターがAAV2 P40であり、前記第2のプロモーターが細胞タイプ特異的プロモーターである、請求項1に記載の方法。
[項目4]
前記プロモーターが、表3に列挙されているもののいずれかから選択される、請求項2または請求項3に記載の方法。
[項目5]
前記ユビキタスプロモーターまたは前記細胞特異的プロモーターが、前記カプシドポリペプチドをコードするRNAの発現を可能にする、請求項4に記載の方法。
[項目6]
前記カプシドポリペプチドをコードする前記RNAを回収する工程および前記カプシドポリペプチドを配列決定する工程をさらに備える、請求項5に記載の方法。
[項目7]
回収された前記カプシドポリペプチドが、親カプシドポリペプチドと比較して、標的細胞形質導入または標的細胞特異性(向性)の増加を呈する、請求項6に記載の方法。
[項目8]
前記標的細胞が、神経細胞、神経幹細胞、アストロサイト、オリゴデンドロサイト、ミクログリア細胞、網膜細胞、腫瘍細胞、造血幹細胞、インスリン産生ベータ細胞、肺上皮細胞、内皮細胞、肝臟細胞、骨格筋細胞、筋幹細胞、筋サテライト細胞、または心筋細胞である、請求項7に記載の方法。
[項目9]
前記AAVベクターが、第1のプロモーターおよび第2のプロモーターを含み、前記第2のプロモーターが、カプシド遺伝子の下流に位置し、ヘルパーウイルス共感染の非存在下でそのアンチセンスRNA発現を駆動させる、請求項1に記載の方法。
[項目10]
前記第1のプロモーターが、AAV2 P40であり、前記第2のプロモーターが、ユビキタスプロモーターである、請求項9に記載の方法。
[項目11]
前記第1のプロモーターが、AAV2 P40であり、前記第2のプロモーターが、細胞特異的プロモーターである、請求項9に記載の方法。
[項目12]
前記ユビキタスプロモーターまたは前記細胞特異的プロモーターが、バリアントAAVのカプシドポリペプチドをアンチセンス方向にコードする遺伝子の発現を可能にし、アンチセンスRNAをもたらす、請求項10または請求項11に記載の方法。
[項目13]
前記バリアントAAVカプシドポリペプチドの配列を決定するために使用される前記バリアントAAVカプシドポリペプチドをコードするRNAへと変換することができる前記アンチセンスRNAを回収する工程をさらに備える、請求項12に記載の方法。
[項目14]
前記バリアントAAVカプシドポリペプチドが、親カプシドポリペプチドと比較して、標的細胞形質導入または標的細胞特異性(向性)の増加を呈する、請求項13に記載の方法。
[項目15]
前記標的細胞が、神経細胞、神経幹細胞、アストロサイト、オリゴデンドロサイト、ミクログリア細胞、網膜細胞、腫瘍細胞、造血幹細胞、インスリン産生ベータ細胞、肺上皮細胞、内皮細胞、肝臟細胞、骨格筋細胞、筋幹細胞、筋サテライト細胞、または心筋細胞である、請求項14に記載の方法。
AAV9ペプチドディスプレイカプシドライブラリーをコードする遺伝子を、ニューロン特異的シナプシンプロモーター(SYN)またはアストロサイト特異的GFAPプロモーターのいずれかの制御下に置くことにより、概念実証実験を実行した。C57BL/6マウスに静脈内投与した後、脳組織からRNAを回収し、さらなるライブラリー進化のために使用した。次世代シーケンシング(NGS)は、わずか2ラウンドの選択後に動物間で配列収束を示した。興味深いことに、PHP.eBカプシドと高度に類似する幾つかのバリアントが回収された。これは、本発明者らの方法が、高性能カプシドの迅速な選択を可能にしたことを示唆する。高いCNS富化を示すペプチド配列を有するカプシドのサブセットを、さらなる研究のために選択した。所望の向性に応じて、任意のプロモーターを選択できることが理解される。そのようなプロモーターの例は、表3に見出される。
AAVカプシドライブラリーの細胞タイプ限定的および形質導入限定的in vivo進化を実施するため、カプシド突然変異体遺伝子を特定の細胞タイプにおいてヘルパーウイルスの非存在下で転写することができるカプシドライブラリー系を遺伝子操作した。野生型AAVウイルスでは、カプシドタンパク質VP1、VP2、およびVP3、ならびにAAPアクセサリータンパク質をコードするmRNAを、REPタンパク質ならびにヘルパーウイルス機能の存在下でのみ活性である、REP遺伝子の3’領域に位置するP40プロモーター(ベルンら(Berns et al.),1996)により発現させる(図1A)。動物組織または培養細胞にてカプシドmRNAの発現を可能にするためには、CAP遺伝子の上流または下流に別のプロモーターを挿入しなければならない。AAVカプシドのパッケージング容量は限定されているため、追加のプロモーター挿入を収容するためにREP遺伝子の部分を欠失させなければならず、ウイルス産生を可能にするためには、REP遺伝子を別のプラスミドによりトランスで提供しなければならない。AAV9のCAP遺伝子の上流の種々の位置にCMVプロモーターを導入することにより、高力価AAV産生に必要な最小ウイルス配列を決定した(図1B)。REPタンパク質は、EcoNIおよびClaIを使用してREP2-CAP2パッケージングベクターからCAP遺伝子を欠失させることにより得られたpREP2プラスミドによりトランスで提供した(配列番号4)。小規模ウイルス産生試験において、5%FBSおよび1×pen/strepが補充されたDMEM中で成長させたHEK-293T細胞に、15ugのpHelper(pFdelta6)プラスミド、10ugのpREP2プラスミド、および1ugのITR-CMV-CAPプラスミドを、リン酸カルシウムトランスフェクションを使用して共トランスフェクトし、15cm皿にプレーティングした。72時間後、細胞を擦過することにより回収し、短時間の遠心分離でペレット化し、10mM Trisおよび2mM MgCl2を含有する1mlの緩衝液に懸濁した。triton X-100を終濃度が0.1%になるように添加することにより細胞を溶解し、50Uのベンゾナーゼで1時間処理した。上清に由来するウイルスを、8%ポリエチレングリコールおよび0.5M NaClで沈殿させ、1mlの10mM TRIS-2mM MgCl2に懸濁し、細胞溶解物と組み合わせた。プールしたウイルスを、0.5M NaClになるように調整し、4,000×gで15分間遠心分離することにより清澄化し、15%、25%、40%、および60%の段階的イオジキサノール勾配で40,000prmで3時間分画した(ゾロトキンら(Zolotukhin et al.),1999)。精製したAAV粒子を含有する40%画分を回収し、すべての構築物で共有されているREPの3’末端に特異的なTaqmanプライマー/プローブミックスを使用したリアルタイムPCRによりウイルス力価を測定した。ウイルス収量は、参照として使用した完全野生型ITR-REP2-CAP9-ITRよりも有意に低かったが(1.7%~8.8%)、CMV-BstEII構築物は、3つすべてのCMV構築物の中で最も高い収量を可能にした。図2を参照されたい。P40プロモーター配列のほとんどが欠失されているCMV-HindIII構築物は、最も低い収量をもたらした(wtAAV9の1.7%)。これは、強力なCMVプロモーターでさえ、ウイルス収量の深刻な低下を引き起こさずにP40プロモーターに取って代わることができないことを示す。こうした観察に従って、最小P40配列およびCAP mRNAスプライスドナーが保存されているBstEIIアーキテクチャ(配列番号5)を、すべてのさらなる実験で使用した。
実施例3.AAVベクター構成
RNA発現を増加させてライブラリー回収を最大化するために、種々のベクター構成を探究した。CMVプロモーターを、ハイブリッドCMVエンハンサー/ニワトリベータアクチンプロモーター配列に置き換え(ニワら(Niwa et al.),1991)、イントロンは、mRNAのプロセシングおよび安定性を増加させることが示されているため(パウエルら(Powell et al.),2015)、AAV-MCSクローニングベクター(Stratagene)に由来する強力なサイトメガロウイルスベータグロビンハイブリッドイントロンを、プロモーター配列とカプシド遺伝子との間に挿入した。これにより、構築物CAG9(配列番号10)、SYNG9(配列番号11)、およびGFAPG(配列番号12)がもたらされた。
RNA調製物中に存在する残留DNAの増幅を回避するために、スプライス特異的PCR増幅を試験した。CMV/グロビンエクソン間接合部と重複する2つの候補PCRプライマーを設計し、cDNA(スプライシング)またはプラスミドDNA(依然としてイントロン配列を含有する)の増幅を試験した。図5Eに示されているように、GloSpliceF6プライマー(配列番号13)は、検出可能なアンプリコンをプラスミドDNA配列から産生することなく、cDNAからの完全に特異的な増幅を可能にした。このプライマーを、その後のアッセイに使用して、夾雑DNAによる増幅が存在しないことを確認した。
7つの連続したランダム化アミノ酸を、AAV5、AAV6、またはAAV-DJ8カプシド(図13および図39)ならびにAAV9(図14)の表面露出超可変ループVIII領域へと挿入することにより、幾つかのペプチドディスプレイカプシドライブラリーを生成した。AAV9ライブラリーの場合、2つの追加のライブラリーは、高度に神経組織栄養性であるPHP.eBベクター(チャンら(Chan et al.),2018)のフランキング配列と一致するように、インサートの-2位、-1位、および+1位の残基が修飾されていた。種々のループの挿入を容易にし、野生型のカプシドによる夾雑を防止するために、ループVIIIと終止コドンとの間に含まれているカプシド遺伝子のC末端領域が欠失されており、固有のBsrGI制限部位に置き換えられていた欠損シャトルベクターを生成した(図15A、B)。すべてのアミノ酸をコードすることができるランダム化NNK(K=TまたはG)配列を含有する縮重プライマーはIDTが合成し、それらを使用し、gBlock(IDT)二本鎖線形DNAを鋳型として使用して、欠けているカプシド断片を増幅した(配列番号14、15、16、17)。PCR反応でのプラスミド持ち越し夾雑の可能性を完全に防止するためには、プラスミドよりも線形PCR鋳型が好ましかった。ランダムライブラリー配列(500ng)を含有するアンプリコンを、100ulのNEBuilder HiFi DNAアセンブリマスターミックス(NEB)を使用して50℃で30分間にわたってBsrGI(2ug)により線形化したシャトルプラスミドに挿入した。5ulのT5エキソヌクレアーゼを反応物に添加し、37℃で30分間消化することにより、アセンブリされなかった線形鋳型を消失させた。反応全体を、DNA Clean and Concentrator-5で精製し、nanodropで定量化して、アセンブリの効率を推定した。この方法は、0.5~1ugのアセンブリ材料の回収を日常的に可能にする。
アセンブリされたライブラリーDNAのコンピテント細菌への形質転換は、高度にコンピテントな菌株でさえ、1形質転換当たり1e7~1e8個のコロニーを超えることは希であるため、ライブラリー多様性における主なボトルネックを表す。比較すると、100ナノグラムの6キロベースのプラスミドは、1.5e10個のDNA分子を含有する。したがって、細菌形質転換は、所与のプール内の99%よりも多くのDNA種を無作為に消失させる。したがって、細菌形質転換のボトルネックを迂回しつつ、ギブソンアセンブリDNAの>100倍の増幅を可能にするクローニングフリー法を作出した(図16)。ローリングサークル増幅に基づくプロトコールを最適化し、それにより、環状DNA鋳型の無バイアスの指数関数的増幅が、極めて低いエラー率で可能になった(ハッチンソンら(Hutchinson et al.),2005)。ローリングサークル増幅の1つ問題は、効率的な細胞トランスフェクションのためには単量体へと切断しなければならない非常に大きな(平均で約70キロベースの)重度分岐コンカテマーが産生されることである。このプロセスは、幾つかの方法により、例えば、制限酵素を使用してオープンエンド線形鋳型を生成することにより(ハッチンソンら(Hutchinson et al.),2005、フオビネン(Huovinen),2012)、またはCRE-Lox組換えを使用して自己ライゲートした環状鋳型を生成することにより(フオビネンら(Huovinen et al.),2011)、成し遂げることができる。しかしながら、オープンエンドDNAは、細胞質エキソヌクレアーゼによる分解に感受性であり、CRE組換え法は、比較的低い効率性を示した(本発明者らの未発表の観察)。したがって、哺乳動物細胞トランスフェクションに高度に適したクローズドエンド線形「dogbone」DNA単量体(ハインリッヒら(Heinrich et al.),2002)の形成を触媒する酵素であるTelNプロテロメラーゼ(リブキンら(Rybchin et al.),1999)の使用に基づく代替的な単量体分解法を選択した。
別の実施形態では、環境夾雑物または自然感染霊長動物組織から回収される可能性がある野生型ウイルスによるAAV9ライブラリーの夾雑を完全に防止することを目的としたプライマー/ベクター系を作出した。これは、ライブラリー挿入部位を取り囲む配列、ならびにPCR増幅に使用されるCAP終止コドン直前の配列に、最大数のサイレント突然変異を導入することにより達成した(図17)。こうしたライブラリーでは、NGSによる野生型AAV9検出数が極めて低いことが示された(5e7個の総リート当たり<2つのAAV9リード)。これは、ライブラリー増幅およびクローニング部位を取り囲むコドンの変更が、環境的または実験的な夾雑物からライブラリーを保存するための非常に効率的な様式であることを示唆する。
次いで、マウスモデルにおける脳形質導入を増加させるためのRNA駆動性ライブラリー選択を開発した。上記に記載の通りに生成したAAV9ライブラリーを、1マウス当たり2e12VGの用量で雄C57BL/6マウスに静脈内注射した。2つの群のマウスに、野生型AAV9フランキング配列に由来する単一のSYN駆動性またはGFAP駆動性ライブラリーを注射し、2つの他の群は、野生型およびPHP.eB由来のフランキング配列を含有するプールされたライブラリーを受け取った(図18)。1か月後に、RNeasy Universal Plus手順(Qiagen)を使用して、半球全体に対応する200mgの脳組織からRNAを抽出した。試料採取下におけるRNAの可能性を最小限に抑えるため、Oligotexビーズ(Qiagen)を製造業者の推奨の通りに使用して、RNA調製物全体(約200ug)をmRNA富化に供した。次いで、富化mRNAの調製物全体(約5ug、全RNAの2%に相当)を、以下の配列:
次いで、完全長カプシドアンプリコンを、NGSライブラリー生成のための鋳型として使用し、ならびに次のラウンドのバイオパニングのために、まったく同じアセンブリおよびクローニングフリー手順を使用してP1 DNAライブラリーへとクローニングした。PCRアンプリコンに対して実施されたNGS分析は、Syn駆動性ライブラリーおよびGFAP駆動性ライブラリーの両方で、第1ラウンドのバイオパニング後に、ライブラリー多様性が約25分の1に(1e7から4e5へと)低下したことを示した(図21)。回収した第1継代バリアント(P1)の数は多過ぎて、この時点では有意な配列収束性を一切示さず、個々の動物から回収したプールの組成間には重複がほとんど存在しなかった。したがって、第2ラウンドの選択を実施した。第2のバイオパニング(P2)後、固有なバリアントの総数は、さらに4分の1~5分の1低下し、<1e5個のペプチドへと減少した。重要なことには、第1ラウンドのバイオパニング後に回収した一部のライブラリーは、おそらく環境夾雑物に由来する著しい計数の野生型AAV9配列およびAAV-PHP.eB配列を示した。これらは、後に第2ラウンドの富化における有用なベンチマークとなった。
個々のバリアントを等モルライブラリーにプールすることによる最終多重化in vivoスクリーニングのために、有望な特性(これらに限定されないが、1匹よりも多くのマウスにおける富化係数、肝臓標的解除、高計数など)を有するバリアントの部分集団を、図26に示されている通りに選択することができ、次いで7量体をすべてコードする等モルのプライマープールを合成することができる(マイクロチップ固相合成、1チップ当たり最大3,800個のプライマー)。これらに限定されないが、PHP.N、PHP.B、野生型AAV9(wtAAV9)、および/または本明細書で教示されているものを含む任意の他の血清型などの内部対照を含む限定的多様性ライブラリーを産生することができる。マウスに注射し、次いでRNA富化を、当技術分野で公知であり、本明細書に記載されているバーコード付与研究と同様の様式で内部対照と比較する。
コドンバリアントを使用して、合成したライブラリーを使用する場合のデータ強度を向上させることができる。種々のアミノ酸のNNKコドン、NNMコドン、および哺乳動物において最も好ましいNNMコドンのリストは、表6に提供されている。表6では、*は、NNMコドンが利用可能ではないことを意味し、**は、「可能であればホモポリマー的な伸長を回避する」ことを意味する。
親AAV9と比べて性能の増強を示したSYN駆動性ライブラリーおよびGFAP駆動性ライブラリーに由来する上位330個のペプチドバリアントを選択した。330個のペプチド配列すべてに加えてAAV9、AAV-PHP.B、およびAAV-PHP.eB対照のプールされたプライマー合成によるde novoライブラリーを生成した(表7)。DNA配列に起因する潜在的なアーティファクトを排除し、アッセイのロバストネスを増加させるために、各ペプチドバリアントを、2つの異なるDNA配列によりコードし、1つでは、すべてのアミノ酸をNNKコドンでコードし(元のライブラリーと同一)、もう1つでは、可能な限りNNMコドン(M=CまたはA、表6)を使用した。
ペプチド配列の系統発生的グループ化は、配列相同性クラスターとカプシド表現型との間に明白な相関性があることを示した(図37)。例えば、配列DGTxxxPFK/R(配列番号1181)を有する9量体バリアントは、PHP.eBカプシドと同様の挙動を提示したが(ニューロンおよびアストロサイトの形質導入が両方とも高い)、配列DGTxxxYDS/A(配列番号1182)を内包するバリアントは、ニューロン形質導入に対して優先性を示した。対照的に、コンセンサスDGTxxxxGW(配列番号1183)またはCGTxxxPPR/K(配列番号1184)を有するペプチドは、アストロサイトに対してより高い向性を提示した。
別個の配列クラスターを表すカプシドバリアント(図37Bにて強調されている)を、C57BL/6マウスでの個々の形質導入分析のために選択した。各カプシドを、ユビキタスプロモーターにより駆動される自己相補的EGFP導入遺伝子をパッケージングする組換えAAVとして産生した(図49A、B)。マウス群(N=3)に、6e10VGを静脈内注射し、1か月後に、脳組織、脊髄組織、および肝臓組織でのEGFP mRNAを定量化することにより形質導入効率を評価した。マウスTBPをハウスキーピング遺伝子として使用してEGFP mRNA発現を正規化し、DNA生体内分布を単一コピーマウスTfR遺伝子に対して正規化した(図50A~図50C)。逆転写は、Quantitectキットを使用して実施し、DNA除去処理を含んでいた。すべてのカプシドバリアントが、親AAV9カプシドと比較して、脳mRNA発現および脊髄mRNA発現の有意な向上を示し、7つのバリアントのうち3つ(9P16、9P31、および9P35)は、PHP.eBベンチマークカプシドと同様のまたはそれよりも高い形質導入を示した(図49C、表10)。ウイルスDNA生体内分布は、脳および脊髄に対する9P31および9P35の非常に強力な向性を示したが、すべてのバリアントが、AAV9と比較して40~260倍の生体内分布の増加を示した(図49D、表10)。
333個のカプシドバリアントのCNS形質導入の有効性を、他のげっ歯動物系統または種で試験した(図47)。C57BL/6マウス、BALB/Cマウス、およびラットにおけるニューロンおよびアストロサイトの形質導入の対照比較は、複数バリアントの富化スコアに2つのマウス系統間で大きな違いがあり、マウスとラットとの間にはさらにより顕著な違いがあることを示した(図48A~図48C)。驚くべきことに、ラット脳形質導入に最も効率的なカプシドは親AAV9だった。これは、指向性進化「ボトルネック」カプシドバリアントが、野生型AAVカプシドの多用途性とは対照的に、1つの所与の種において性能が高いことを示唆する。
実施例14.完全長カプシドバリアントのNGS駆動性選択系の遺伝子操作
バーコード系を遺伝子操作して、完全カプシド長修飾による富化研究を可能にした。ここに記載されるTRACERプラットフォームは、初期には、ペプチドディスプレイライブラリーを使用するために開発されたものであり、ランダム化ペプチド配列それ自体は、そのサイズが短いためIllumina NGS分析に使用することができるが、Illumina配列決定技法は、典型的には300個よりも多くの連続した塩基の配列決定が可能ではなく、したがって、本発明者らのプラットフォームは、DNAシャッフリング技法またはエラープローンPCRにより生成されたものなど、完全長カプシドバリアントのNGS分析に使用することができない。
Claims (32)
- バリアントアデノ随伴ウイルス(AAV)カプシドポリペプチドをコードするAAVベクターライブラリーを生成するための方法であって、
(a)第1の核酸および第2の核酸を提供する工程であって、前記第1の核酸が、P40プロモーターと、ヘルパーウイルス共感染の非存在下でカプシドmRNA発現を駆動させる細胞タイプ特異的プロモーターとを含み、前記第2の核酸が、2、3、4、5、6、7、8、もしくは9つの連続アミノ酸のランダム化配列の領域を有する複数のカプシドポリペプチドをコードする、工程と;
(b)前記第1の核酸および第2の核酸を、前記AAVベクターライブラリーを生成するために適した条件下でクローニングする工程
を備える方法。 - 前記細胞タイプ特異的プロモーターが、血液細胞特異的プロモーター、目特異的プロモーター、心臓特異的プロモーター、筋肉特異的プロモーター、腎臓特異的プロモーター、肺特異的プロモーター、脾臓特異的プロモーター、脈管構造特異的プロモーター、ニューロン特異的プロモーター、またはアストロサイト特異的プロモーターである、請求項1に記載の方法。
- 前記細胞タイプ特異的プロモーターが、シナプシンプロモーターである、請求項1または2に記載の方法。
- 前記細胞タイプ特異的プロモーターが、GFAPプロモーターである、請求項1または2に記載の方法。
- 前記P40プロモーターおよび前記細胞タイプ特異的プロモーターが、前記バリアントAAVカプシドポリペプチドをコードする導入遺伝子の上流に位置する、請求項1~4のいずれか一項に記載の方法。
- 前記ランダム化配列の領域が、4、5、6、7、8、または9つの連続アミノ酸のペプチドインサートを含む、請求項1~5のいずれか一項に記載の方法。
- 前記インサートが、親AAVカプシドポリペプチドの超可変領域に存在する、請求項6に記載の方法。
- 前記インサートが、親AAVカプシドポリペプチドのループIV、ループVIII、またはループIVおよびループVIIIの両方に存在する、請求項6または7に記載の方法。
- 前記インサートが、
(i)親配列の452~458位から選択された位置の直後;および/または
(ii)親配列の586~592位から選択された位置の直後
に存在する、請求項6~8のいずれか一項に記載の方法。 - 親AAVカプシドポリペプチドが、AAV9カプシドポリペプチド、またはAAV5カプシドポリペプチドを含む、請求項1~9のいずれか一項に記載の方法。
- 前記方法が、
(c)前記AAVベクターライブラリーを含む複数のAAV粒子を生成する工程をさらに含む、請求項1~10のいずれか一項に記載の方法。 - 前記方法が、
(d)前記AAV粒子を、マウスまたは非ヒト霊長類(NHP)に投与する工程をさらに含む、請求項11に記載の方法。 - 前記粒子が静脈内投与される、
請求項12に記載の方法。 - 前記方法が、
(e)前記マウスまたはNHPから、標的細胞または組織をコレクションおよび/または単離する工程をさらに含む、請求項12または13に記載の方法。 - 前記標的細胞または組織が、前記粒子の投与の4週間後にコレクションされる、請求項14に記載の方法。
- 前記方法が、
(f)前記バリアントAAVカプシドポリペプチドをコードするRNAおよび/またはアンチセンスRNAを前記標的細胞または組織から回収する工程をさらに含む、請求項15に記載の方法。 - 前記バリアントAAVカプシドポリペプチドをコードする前記RNAが、富化および/またはcDNAに逆転写される、請求項16に記載の方法。
- 前記cDNAが、増幅される、請求項17に記載の方法。
- 前記方法が、
(g)前記バリアントAAVカプシドポリペプチドの配列を決定する工程をさらに備える、請求項16~18のいずれか一項に記載の方法。 - 前記方法が、
(h)標的細胞または組織における前記バリアントAAVカプシドポリペプチドをコードするDNAの量、または前記バリアントAAVカプシドポリペプチドをコードするRNAの量を決定する工程をさらに含む、請求項19に記載の方法。 - 前記方法が、工程(a)~(h)をさらに繰り返す、請求項20に記載の方法。
- 前記コードされた前記バリアントAAVカプシドポリペプチドが、以下の特性:
(i)親カプシドポリペプチドと比較して、中枢神経系(CNS)の細胞に対する標的細胞形質導入または標的細胞特異性が増加する特性;
(ii)親カプシドポリペプチドと比較して、脳の形質導入が増加する特性であって、前記形質導入のレベルが、前記親カプシドポリペプチドよりも、少なくとも10倍高い、特性;
(iii)親カプシドポリペプチドと比較して、脊髄の形質導入が増加する特性であって、前記形質導入のレベルが、前記親カプシドポリペプチドよりも、少なくとも10倍高い、特性;
(iv)親カプシドポリペプチドと比較して、脳へのウイルスゲノムの送達レベルが増加する特性であって、前記ウイルスゲノムのレベルが、前記親カプシドポリペプチドよりも、少なくとも40倍増加する、特性;および/または
(v)親カプシドポリペプチドと比較して、脊髄へのウイルスゲノムの送達レベルが増加する特性であって、前記ウイルスゲノムのレベルが、前記親カプシドポリペプチドよりも、少なくとも35倍増加する、特性、
の1つ、2つ、3つ、4つ、またはすべてを示す、請求項1~21のいずれか一項に記載の方法。 - 前記標的細胞が、神経細胞、神経幹細胞、アストロサイト、オリゴデンドロサイト、ミクログリア細胞、網膜細胞、腫瘍細胞、造血幹細胞、インスリン産生ベータ細胞、肺上皮細胞、内皮細胞、肝臟細胞、骨格筋細胞、筋幹細胞、筋サテライト細胞、および/または心筋細胞である、請求項14~22のいずれか一項に記載の方法。
- 前記標的組織が、CNS組織、末梢神経系(PNS)組織、および/または末梢組織である、請求項14~22のいずれか一項に記載の方法。
- 前記CNS組織が、脳組織、脊髄組織、および/または後根神経節組織である、請求項24に記載の方法。
- 前記脳組織が、皮質組織、前頭皮質組織、頭頂皮質組織、後頭皮質組織、側頭皮質組織、視床組織、視床下部組織、線条体組織、被殻組織、尾状核組織、海馬組織、嗅内組織皮質組織、大脳基底核組織、および/または深部小脳核組織である、請求項25に記載の方法。
- 前記末梢組織が、筋肉組織、肝臓組織、心臓組織、腓腹筋組織、ヒラメ筋組織、膵臓組織、腎臓組織、脾臓組織、肺組織、副腎組織、胃組織、坐骨神経組織、伏在神経組織、甲状腺組織、目組織、下垂体組織、骨格筋組織、結腸組織、十二指腸組織、回腸組織、空腸組織、脚の皮膚組織、上頸神経節組織、膀胱組織、卵巣組織、子宮組織、前立腺組織、および/または精巣組織である、請求項24に記載の方法。
- 前記AAVベクターライブラリーのベクターが、順に、
(i)第1の逆位末端反復配列(ITR)、
(ii)前記細胞タイプ特異的プロモーター、
(iii)前記P40プロモーター、
(iv)前記2、3、4、5、6、7、8、もしくは9つの連続アミノ酸のランダム化配列の領域を含む前記バリアントAAVカプシドポリペプチドをコードする導入遺伝子、
(v)ポリアデニル化(ポリA)配列領域、および
(vi)第2のITR
を含む、請求項1~27のいずれか一項に記載の方法。 - アデノ随伴ウイルス(AAV)ベクターライブラリーであって、前記ライブラリーの各ベクターが、
(a)P40プロモーターと、ヘルパーウイルス共感染の非存在下でカプシドmRNA発現を駆動させる細胞タイプまたは組織特異的なプロモーターとを含むとともに、
(b)2、3、4、5、6、7、8、もしくは9つの連続アミノ酸のランダム化配列の領域を有するカプシドポリペプチドをコードする、AAVベクターライブラリー。 - 複数のバリアントアデノ随伴ウイルス(AAV)カプシドポリペプチドを生成するための方法であって、
(a)AAVベクターライブラリーを含む複数のAAV粒子を提供する工程であって、前記AAVベクターライブラリーが、P40プロモーターと細胞タイプ特異的プロモーターとを含む核酸を含み、前記核酸が、2、3、4、5、6、7、8、もしくは9つの連続アミノ酸のランダム化配列の領域を有する複数のカプシドポリペプチドをコードする、工程;
(b)前記AAV粒子を、マウスまたは非ヒト霊長類(NHP)に静脈内投与する工程;
(c)標的細胞または組織から前記バリアントAAVカプシドポリペプチドをコードするRNAおよび/またはアンチセンスRNAを回収する工程;
(d)前記バリアントAAVカプシドポリペプチドの配列を決定する工程;および
(e)標的細胞または組織における前記バリアントAAVカプシドポリペプチドをコードするDNAの量、または前記バリアントAAVカプシドポリペプチドをコードするRNAの量を決定する工程;
を含み、
前記方法が、ヘルパーウイルスの非存在下で行われ、
それにより、前記複数のバリアントAAVカプシドポリペプチドを生成する、方法。 - 前記細胞タイプ特異的プロモーターが、シナプシンプロモーターもしくはGFAPプロモーターである、請求項30に記載の方法。
- 前記P40プロモーターが、前記バリアントAAVカプシドポリペプチドをコードする導入遺伝子の上流に位置し、前記細胞タイプ特異的プロモーターが、前記バリアントAAVカプシドポリペプチドをコードする前記導入遺伝子の下流に位置する、請求項1に記載の方法。
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