JP7633309B2 - ヒト細胞を若返らせるためのzscan4の使用方法 - Google Patents
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Description
本願は2013年3月15日に出願された米国特許仮出願第61/800668番の利益を請求するものであり、その仮特許出願の全体を参照によりここに援用する。
次のASCIIテキストファイルの提出物であるコンピューター読み込み可能形式(CRF)の配列表(ファイル名:699442000840SEQLIST.TXT、登録日:2014年3月11日、サイズ:104KB)の内容全体が参照によって本明細書に援用される。
本開示は、例えば1つ以上のヒト細胞においてZscan4の発現を上昇させる薬剤と前記1つ以上のヒト細胞を接触させることにより1つ以上のヒト細胞においてテロメア長を増加させるための方法、及び/又は1つ以上のヒト細胞のゲノム安定性を向上させるための方法に関する。本開示は、例えばZscan4の発現を上昇させる薬剤と対象中の1つ以上のヒト細胞を接触させることにより、又は必要な対象にZscan4の発現を上昇させる薬剤を投与することによりテロメア延長を必要とする対象を処置する方法、ゲノム異常及び/又は染色体異常に関連する疾患又は健康状態を治療する方法、1つ以上のヒト細胞を若返らせる方法、組織又は器官を若返らせる方法、及び若返りを必要とする対象を若返らせる方法をさらに提供する。
テロメアは、各染色体の末端にキャップをし、且つ、各細胞周期において絶え間ない分解から各染色体の末端を守ることによって染色体完全性を確保及び保障するタンパク質が付随している反復DNA配列である。テロメア短縮はゲノム不安定性に寄与することによって癌を引き起こすこともあり得(Raynaudら、Crit. Rev Oncol Hematol誌、第66巻:99~117頁、2008年)、老化及び細胞老化と関連付けられている(Yang、Cytogenet Genome Res誌、第122巻:211~218頁、2008年)。テロメアは正常な老化の経過の中で徐々に短くなることが充分に立証されている。各回のDNA複製に付き最大で200塩基対のテロメアDNAが失われることが報告されている。例えば、ヒト新生児では末梢血リンパ球は各染色体の両端におよそ10kbのテロメアDNAを有し、70歳までにおよそ6kbにまで徐々に短くなる。環境要因と生活習慣要因がテロメア短縮を加速し得ることもわかっている。そのようなテロメア短縮は加齢性の細胞衰微と関連していると考えられる。テロメア短縮によって細胞分裂の回数が限定され、それによって究極的にはヒトの寿命が限定されることになるとも考えられる。ヒトは様々な長さのテロメアを有して生まれてくることもわかっている。例えば、およそ8kbのテロメアから始まるヒトもいれば、およそ12kbのテロメアから始まるヒトもいる。よって、より短いテロメアを有するヒトはより長いテロメアを有するヒトよりも早い年齢である特定の加齢性の病的状態を発症しやすい場合があり得る。そのような病的状態には、例えば、免疫不全、慢性潰瘍、アテローム性硬化症、網膜色素上皮細胞の増殖性の減退に起因する加齢性盲目症、及び癌が含まれる。
概観
上で考察されたように、マウス胚性幹細胞におけるマウスZscan4の発現がテロメア伸長と関連することがこれまでに示されている。マウスゲノムが6種類のZscan4遺伝子と3種類のZscan4偽遺伝子を含み、一方でヒトゲノムが1種類のZscan4遺伝子を含むだけであることを考慮すると、当業者はマウス細胞におけるZscan4発現の結果からヒト細胞における結果を推定することはできなかっただろう。しかしながら、下の実施例8において開示されるように、申請者は完全に分化したヒト成体線維芽細胞におけるヒトZSCAN4の発現によってそれらの線維芽細胞においてテロメア長が約40%増加することを初めて示した。また、申請者はファンコーニ貧血を有する患者より単離されたヒト線維芽細胞におけるZscan4の発現によってそれらの線維芽細胞においてテロメア長が約160%増加することを示した。Zscan4発現はファンコーニ貧血を有する患者より単離されたヒト線維芽細胞においてテロメア長を増加させるのにそれだけで充分であることが示されたので、これらの結果は驚くべきことにZscan4はテロメア伸長の下流作用因子というよりもむしろ上流エフェクターであることを示している。したがって、細胞におけるZscan4の発現活性化又は発現上昇はファンコーニ貧血又は他のあらゆるテロメア短縮に関連する疾患又は健康状態の有効な治療法であり得る。さらに、下の実施例15において開示されるように、申請者はZscan4発現がゲノム安定性を単に促進するだけではないことも初めて示した。21番染色体トリソミーを有するヒト線維芽細胞集団におけるZscan4発現によってそれらの細胞のおよそ55%において21番染色体トリソミー異常の修正が誘導される。よって、Zscan4の発現活性化又は発現上昇を用いて細胞内の異数性を治療することができ、並びに、若返りによって、及び/又は卵母細胞及び受精卵母細胞における染色体異常、例えば、異数性の修正によって高齢の女性において体外受精(IVF)の成功率を上昇させることができ、妊娠の成功を増加させることができる。
ジンクフィンガー及びSCANドメイン含有4 (Zinc finger and SCAN domain containing 4)(Zscan4)遺伝子は2細胞期特異的発現及びES細胞特異的発現を示すものとしてこれまでに特定された一群の遺伝子を表す(PCT出願国際公開第2008/118957号)。Zscan4遺伝子は、大規模cDNAシーケンシングプロジェクト(Koら、Development誌、第127巻:1737~1749頁、2000年;Sharovら、PLoS Biol誌、第1巻:E74、2003年)とDNAマイクロアレイ分析(Hamataniら、Dev Cell誌、第6巻:117~131頁、2004年)を用いるマウス胚の全ての着床前期の発現プロファイリングによって特定された。マウスでは「Zscan4」という用語は3種類の偽遺伝子(Zscan4-ps1、Zscan4-ps2及びZscan4-ps3)と6種類の発現遺伝子(Zscan4a、Zscan4b、Zscan4c、Zscan4d、Zscan4e及びZscan4f)を含む一団の遺伝子を指す。それらの6種類のパラログの中でZscan4c、Zscan4d、及びZscan4fのオープンリーディングフレームは、タンパク質間相互作用に介在すると予測されているSCANドメイン並びにそれらのパラログの転写因子としての潜在的役割を示唆する4つのジンクフィンガードメインをコードしている。マウスと対照的にヒトゲノムはたった1コピーのZscan4を含む。Zscan4はZscan4ポリペプチドを指すことができ、Zscan4はそれらのZscan4ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを指すことができる。
本開示のある特定の態様は1つ以上のヒト細胞においてZscan4発現(例えば、Zscan4タンパク質発現)を増加させる薬剤を利用することによる、限定されないが、ヒト成体細胞をはじめとする1つ以上のヒト細胞におけるテロメア長の増加に関する。ある特定の実施形態では前記1つ以上のヒト細胞はテロメア延長を必要とする対象、又はテロメア異常に関連する疾患又は健康状態を患っている対象、又はテロメア異常に関連する疾患又は健康状態を有していると診断された対象の中の細胞である。
本開示のある特定の態様はヒト細胞においてテロメア長を増加させるための前記ヒト細胞におけるZscan4発現(例えば、Zscan4タンパク質発現)を増加させる薬剤の利用に関する。薬剤はあらゆる核酸分子、タンパク質、化合物、小分子、有機化合物、無機化合物、又は目的の他の分子を指すことができる。幾つかの実施形態ではその薬剤は、内在性Zscan4遺伝子(あらゆる上流調節性配列又は下流調節性配列を含む)との直接的相互作用又はZscan4発現の誘導を引き起こす遺伝子及び/又はタンパク質との相互作用のどちらかによってZscan4の発現を上昇させるあらゆる薬剤である。幾つかの実施形態ではその薬剤は、限定されないが、合成mRNA及び、限定されないが、センダイウイルスベクターなどのウイルスベクターをはじめとする発現ベクターを含むZscan4をコードする核酸分子であり得る。他の実施形態ではその薬剤は、Zscan4タンパク質又はZscan4-ΔCなどのZscan4タンパク質の機能部分を含むポリペプチドであり得る。幾つかの実施形態ではその薬剤はレチノイド、又は酸化ストレスを誘発する薬剤であり得る。
幾つかの実施形態では、Zscan4の発現を上昇させる本開示の薬剤は、Zscan4タンパク質をコードする核酸配列を含む核酸分子である。ポリヌクレオチドはあらゆる長さの核酸配列(例えば、直鎖状配列)を指すことができる。したがって、ポリヌクレオチドはオリゴヌクレオチドを含み、且つ、染色体中に見出される遺伝子配列も含む。オリゴヌクレオチドは本来のホスホジエステル結合によって結合した複数の連結ヌクレオチドである。オリゴヌクレオチドは6ヌクレオチドと300ヌクレオチドの間の長さのポリヌクレオチドである。オリゴヌクレオチド類似体はオリゴヌクレオチドと同様に機能するが、非天然部分を有する部分を指す。例えば、オリゴヌクレオチド類似体は非天然部分、変化した糖部分又は糖間結合、例えば、ホスホロチオエートオリゴデオキシヌクレオチドを含み得る。天然ポリヌクレオチドの機能類似体はRNA又はDNAに結合することができ、且つ、ペプチド核酸(PNA)分子を含む。
幾つかの実施形態ではZscan4ポリヌクレオチドはヒト細胞に導入される。細胞への核酸分子又はタンパク質の導入はその核酸分子又はタンパク質をその細胞に送達するためのあらゆる手段を包含する。例えば、核酸分子は細胞に形質移入、形質導入、又は電気穿孔導入され得る。細胞へのタンパク質の送達は、例えば、そのタンパク質の細胞透過性ペプチド、例えば、タンパク質導入ドメインを有するペプチド(例えば、HIV-1 Tat)、又はポリアルギニンペプチドタグ(Fuchs及びRaines、Protein Science誌、第14巻:1538~1544頁、2005年)との融合によって達成され得る。タンパク質導入ドメインは、古典的なエンドサイトーシスと無関係の機序によってより大きな分子(タンパク質、核酸分子等)の細胞への侵入を促進する陽イオン性小ペプチドを指すことができる。ポリアルギニンペプチドタグはより大きな分子(タンパク質及び核酸分子等)の細胞への送達を容易にするアルギニン残基から構成される短鎖ペプチド(概ね7~11残基)を指すことができる(例えば、Fuchs及びRaines、Protein Science誌、第14巻:1538~1544頁、2005年を参照のこと)。
異種性ポリペプチドをコードする核酸配列(レポーター遺伝子等)に対して機能的に結合したZscan4プロモーター配列を含む発現ベクターが、Zscan4を発現する細胞を特定するために使用され得る。レポーター遺伝子の発現を検出する方法はレポーター遺伝子の種類に応じて様々であり、且つ、当技術分野においてよく知られている。例えば、蛍光性レポーターが使用されるとき、発現の検出はFACS又は蛍光顕微鏡法によって達成され得る。Zscan4を発現するヒト細胞の特定は、限定されないが、Zscan4に特異的な抗体を使用する方法、又はインサイチュハイブリダイゼーションによる方法をはじめとする代替的方法によって達成され得る。
幾つかの実施形態では本開示の方法において使用されるベクターはウイルスベクターである。様々なウイルスベクターが当技術分野において知られており、且つ、本明細書に記載されている。
幾つかの例では、例えば宿主細胞ゲノムへの組込みを回避するために非ウイルスベクターを使用することが望ましい。したがって、1種類以上のプラスミドベクターを使用してZscan4コードポリヌクレオチドをヒト細胞に送達することができる。プラスミドベクターはエピソームとして維持され、概して短期間の遺伝子発現を示す(Laiら、J Assist Reprod Genet誌、第28巻(第4号):291~301頁、2011年)。一例として、Okitaら(Science誌、第322巻:949~953頁、2008年)は体細胞におけるタンパク質の発現用のCAGプロモーターを含有するpCXプラスミドの使用について記載している。
ゲノムの組込み部位からの外来性ポリヌクレオチドの切除が望ましい場合があり得る。CreloxP組換えとpiggyBacトランスポジションの2種類の切除系方法がこれまでに説明されている。Soldnerら(Cell誌、第136巻:964~977頁、2009年)はCre-loxシステムの使用法について記載している。この戦略は、リプログラミング因子の発現を引き起こすDox誘導性最小CMVプロモーターを含むレンチウイルスベクターの3’LTRにloxP部位を配置することを含んだ。プロフイルス複製中にloxPは5’LTRに複製され、その結果、2つのloxP部位によって挟み込まれたリプログラミング因子のゲノム組込が生じた。Creリコンビネースの一時的発現によってloxPで挟み込まれたリプログラミング因子の切除が生じた。
ヒト細胞へZscan4を導入するための別の戦略はZscan4をコードする合成mRNAの送達によるものである。細胞へ特定のタンパク質をコードする合成mRNAを形質移入することによってそのタンパク質を効率的に産生させることができることが示されている(Warrenら、Cell Stem Cell誌、第7巻(第5号):618~630頁、2010年)。Warrenらによる研究ではそのmRNAは自然抗ウイルス応答を克服するために修飾された。mRNAは細胞内で急速に分解されるので、この方法の一時性を補うために最大で数週間にわたってmRNAの形質移入を一日に1回反復して実施した。この特定の特徴は、所望の効果(すなわち、テロメアの延長とゲノム安定性の向上)を達成するために短時間(例えば、数時間から数日の程度)だけ発現が必要とされるZscan4にとっては有利であり得る。ある特定の実施形態ではZscan4をコードする合成mRNAはウイルスエンベロープ内に封入される。好ましくはそのウイルスエンベロープ外被は細胞表面受容体を認識するエンベロープタンパク質を含み、したがって、細胞への合成Zscan4 mRNAの送達効率を上昇させる。ある特定の実施形態ではZscan4をコードする合成mRNAはウイルスエンベロープタンパク質で被覆されたナノ粒子又はリポソーム内に封入される。当技術分野において知られているあらゆる適切なウイルスエンベロープを使用することができる。幾つかの実施形態ではそのウイルスエンベロープはセンダイウイルスエンベロープである。ウイルスエンベロープ又はウイルスエンベロープタンパク質内に合成mRNAなどのポリヌクレオチドを封入する方法が当技術分野においてよく知られている。
本明細書に記載されるZscan4核酸分子又はZscan4含有ベクターを含む単離細胞が本明細書においてさらに提供される。幾つかの実施形態ではその細胞はヒト細胞である。そのヒト細胞の起源はあらゆる適切な種に由来し得る。そのヒト細胞は本明細書に記載されるあらゆる種類のヒト細胞を含み得る。
ある特定の実施形態ではZscan4の発現を上昇させる本開示の薬剤はZscan4ポリペプチドである。ポリペプチドは単量体がアミド結合によって連結されているアミノ酸残基である高分子を指すことができる。それらのアミノ酸がα-アミノ酸であるとき、L-光学異性体又はD-光学異性体のどちらかを使用することができ、L-異性体が好ましい。「ポリペプチド」又は「タンパク質」という用語はあらゆるアミノ酸配列を包含し、且つ、糖タンパク質などの修飾型配列を内包するものとする。「ポリペプチド」という用語は具体的には天然タンパク質並びに組換え的又は合成的に産生されるタンパク質を含むものとする。
本明細書に記載されるZscan4ポリペプチドを含む単離細胞が本明細書においてさらに提供される。幾つかの実施形態ではその細胞はヒト細胞である。そのヒト細胞の起源はあらゆる適切な種に由来し得る。そのヒト細胞は本明細書に記載されるあらゆる種類のヒト細胞を含み得る。
改変型Zscan4タンパク質であって、そのタンパク質の活性が調節可能(すなわち、誘導可能又は抑制可能)であるように改変されたタンパク質をコードする単離核酸分子が本明細書において提供される。例えば、そのZscan4タンパク質は誘導性の受容体又はリガンド結合ドメインを含む融合タンパク質であり得る。当技術分野において知られているあらゆる誘導性の受容体及び/又はリガンド結合ドメインを使用することができる。幾つかの実施形態ではその誘導性の受容体及び/又はリガンド結合ドメインは、限定されないが、エストロゲン受容体(ER);タモキシフェン又はタモキシフェンの代謝物である4-ヒドロキシ-タモキシフェン(4OHT)に感受性を有する変異型エストロゲン受容体、例えば、ERT又はERT2;ミフェプリストン(MIFEPREX)に対して感受性を有するグルココルチコイド受容体であるグルココルチコイド受容体(GR);薬剤調節可能リガンド結合ドメイン;及びステロイド誘導性受容体、例えば、エクダイソン誘導性受容体を含み得る。
C末端短縮を有するZscan4タンパク質(本明細書においてZscan4-ΔCと呼ぶ)をコードする単離核酸分子も本明細書において提供される。そのC末端短縮型Zscan4は少なくとも1つのジンクフィンガードメインの欠失を含む。したがって、幾つかの実施形態ではZscan4-ΔCタンパク質は1つ、2つ、3つ又は4つのジンクフィンガードメインの欠失を有する。
それぞれのタンパク質をヒト細胞などの細胞へ直接的に送達することによってZscan4ポリペプチドを導入することが可能である。例えば、標準的方法に従って電気穿孔法、顕微注入、陽イオン性脂質又はナノ粒子を用いてタンパク質送達を達成することができる。あるいは、細胞透過性ペプチド(CPP)との融合によりそれらのタンパク質を改変して細胞へのタンパク質の侵入を促進することができる。CPP及びナノ粒子の使用については本明細書においてさらに詳細に考察する。
CPPは、膜を横断するタンパク質、核酸又は他の化合物の導入を受容体と無関係に促進するポリペプチドのファミリーである(Wadia及びDowdy、Curr. Protein Pept. Sci.誌、第4巻(第2号):97~104頁、2003年)。典型的には、CPPは、CPPが結合している化合物の細胞エンドソームへの細胞取込を促進することができる短鎖ポリカチオン性配列である。CPPの例にはポリアルギニンタグ及びタンパク質導入ドメインが挙げられる。当技術分野において知られているあらゆるタンパク質導入ドメインを使用することができる。適切なタンパク質導入ドメインの例には、限定されないが、HIV Tat、HIV Vpr、HIV Vp22、ホメオドメイン(HD)含有タンパク質のHD、及び合成タンパク質導入ドメインが挙げられる。
ナノ粒子は、急速放出又は制御放出のどちらかに適した合成小分子ベース、タンパク質ベース、ペプチドベース、細胞ベース及び核酸ベースの生物学的治療薬などの封入化薬品を運搬することができるサブミクロン(約1000nm未満)サイズの薬品送達担体である。当技術分野においてよく知られている処理法を用いて様々な分子(例えば、タンパク質、ペプチド及び核酸分子)を効率的にナノ粒子に封入することができる。ナノ粒子に封入された分子は、ナノ粒子内に含有されているか、又はナノ粒子の表面に結合されているかのどちらかである分子、又はそれらの組合せの分子(Zscan4核酸又はタンパク質等)を指すことができる。
ある特定の実施形態ではZscan4の発現を上昇させる本開示の薬剤はレチノイドである。レチノイドは、ビタミンAに化学的に関連する化合物の一分類を指すことができる。レチノイドは、主に上皮細胞の増殖を調節する仕様のために医療において使用されている。レチノイドは、視覚における役割、細胞増殖と分化の調節、骨組織の増殖、免疫機能、及び腫瘍抑制遺伝子の活性化をはじめとする身体中の多数の重要で多様な機能を有する。レチノイドの例には全トランス型レチノイン酸(atRA)、9-cisレチノイン酸(9-cisRA)、13-cisRA及びビタミンA(レチノール)が挙げられるが、これらに限定されない。
ある特定の実施形態ではZscan4の発現を上昇させる本開示の薬剤は酸化ストレスを誘発する薬剤である。酸化ストレスは、反応性酸素種の産生と反応性中間産物を直ぐに無毒化する生体システムの能力との間の不均衡、又は反応性酸素種の産生とそれらの反応性中間産物によって生じた損傷を修復する生体システムの能力との間の不均衡を指すことができる。組織の正常な酸化還元状態の妨害が、タンパク質、脂質、及びDNAをはじめとする細胞の全ての構成成分に損傷を与える過酸化物とフリーラジカルの産生を介する毒性効果の原因になり得る。本開示の方法の幾つかの実施形態では酸化ストレスを誘発する薬剤は過酸化水素(H2O2)である。
本開示のある特定の態様は、例えば1つ以上のヒト細胞においてZscan4の発現(例えば、タンパク質発現)を上昇させる薬剤と前記1つ以上のヒト細胞を接触させることによって1つ以上のヒト細胞においてテロメア長を増加させる方法及び/又はゲノム安定性を向上させる方法に関する。本明細書において開示されるように、発現の一時的上昇及び/又はわずかに短期間(例えば、約1時間から約23時間まで、又は約1日から約10日まで)の発現上昇がヒト細胞におけるテロメア長の増加及び/又はゲノム安定性の向上に充分である。また、幾つかの実施形態ではヒト細胞におけるZscan4発現の一時的上昇の反復によってZscan4の発現上昇の効果が増強される。ある特定の実施形態ではZscan4発現の一時的上昇は4時間毎、8時間毎、12時間毎、16時間毎、24時間毎、32時間毎、40時間毎、48時間毎、3日毎、4日毎、5日毎、6日毎、1週間毎、2週間毎、3週間毎、4週間毎、1か月毎、2か月毎、3か月毎、4か月毎、6か月毎、7か月毎、8か月毎、9か月毎、10か月毎、11か月毎、1年毎、2年毎、3年毎、4年毎、5年毎、6年毎、7年毎、8年毎、9年毎、10年毎、11年毎、12年毎、13年毎、14年毎、15年毎、16年毎、17年毎、18年毎、19年毎、20年毎、21年毎、22年毎、23年毎、24年毎、25年毎、26年毎、27年毎、28年毎、29年毎、30年毎、35年毎、40年毎、45年毎、又は50年毎に繰り返される。
幾つかの実施形態ではゲノム安定性はヒト細胞においてZscan4の発現を上昇させる本開示の薬剤と接触した1つ以上のヒト細胞において、例えばZscan4の発現を上昇させる前記薬剤と接触していない対応するヒト細胞と比べて少なくとも20%、少なくとも40%、少なくとも50%、少なくとも60%、少なくとも75%、少なくとも80%、少なくとも90%、少なくとも95%、又は少なくとも98%向上する。
Zscan4の発現によってテロメア長が増加し、ゲノム安定性が向上し、ゲノム異常及び/又は染色体異常が修正され、DNA損傷から細胞が保護され、且つ/又はDNA修復が増強されることが本明細書において開示される。DNA修復は、細胞がその細胞のゲノムをコードするDNA分子に対する損傷を特定し、修正する一群の過程を指すことができる。したがって、ヒト細胞においてゲノム安定性を向上させるための、DNA損傷から細胞を保護するための、DNA修復を増強するための、及びテロメア長を増加させるためのヒト細胞におけるZscan4の発現上昇に関連する方法が本明細書において提供される。
この実施例は、Zscan4をコードする合成mRNA又はZscan4を発現するセンダイウイルスベクターのどちらかによるZscan4の発現がマウス胚性幹(ES)において染色体異常を修正し得るという発見について説明する。この実施例はZscan4をコードする合成mRNAとZscan4を発現するセンダイウイルスベクターを治療的生物製剤として使用することができることも示す。
細胞培養
MC1ZEマウスES細胞株は以前に報告された(Amanoら、Nat Commun誌、2013年;第4号:1966頁)。MC1ZE細胞は長期培養(継代数33)のために貧弱な核型(すなわち、細胞のたった約20%が正倍数性を有する)と外来性遺伝子の組込みを示す典型的なマウスES細胞として使用された。以前に説明されたように完全ES培地(Amanoら、Nat Commun誌、2013年;第4号:1966頁):DMEM(Gibco)、15%FBS(Atlanta Biologicals)、1000U/ml白血病阻止因子(LIF)(ESGRO、Chemicon)、1mMピルビン酸ナトリウム、0.1mM非必須アミノ酸(NEAA)、2mM GlutaMAX、0.1mM β-メルカプトエタノール、及びペニシリン/ストレプトマイシン(50U/50μg/ml)の中で細胞を5%CO2中37℃で培養した。培地を毎日交換し、日常的に2~3日毎に細胞を継代処理した。
修飾型mRNAの合成のため、Warrenら(Warrenら、Cell Stem Cell誌、2010年11月5日;第7巻(第5号):618~30頁)によって以前に報告されているようにmRNA合成を実施した。Warrenらのこれらのプロトコルを使用して、哺乳類細胞におけるRNA安定性並びに翻訳効率を上昇させるために修飾型dNTP混合物を使用するヒトZSCAN4又は緑色蛍光タンパク質(GFP)をコードする鋳型DNAのインビトロ転写によりmRNAを合成した。次の修飾型dNTP、すなわち、3’-0-Me-m7G(5’)ppp(5’)G ARCAキャップ類似体、5-メチルシチジントリホスフェート、及びシュードウリジントリホスフェートを使用した。
マウスZscan4c(SeV18+mZscan4/ΔF)又はヒトZSCAN4(SeV18+hZSCAN4/ΔF)のどちらかを発現するセンダイウイルスベクターは、MBL(株式会社医学生物学研究所)によってカスタム作製された。これらのベクターを本明細書においてそれぞれ「SeVmZscan4」又は「SeVhZSCAN4」と呼ぶ。対照として同じセンダイベクターを使用したが、そのベクターはZscan4よりも緑色蛍光タンパク質変異体を発現した。これらのセンダイベクターはFタンパク質を欠いており、したがって、伝染性ではない(Inoueら、J Virol誌、第77巻:23238~3246頁、2003年)。
Amanoら、Nat Commun誌、2013年;第4号:1966頁に記載されるように実施したGバンド染色法により核型分析を実施した。
マウス又はヒトZSCAN4をコードする合成mRNAはマウス胚性幹細胞において染色体異常を修正する
図1Aは実験手順を示している。MC1ZEマウスES細胞(第33継代)を5×104細胞/ウェルの濃度で6ウェルディッシュに播種し、5μlのリポフェクタミン(RNAiMAX:ライフテクノロジーズ、カリフォルニア州、米国)を使用して1μgの合成GFP mRNA(対照)又は1μgの合成ヒトZSCAN4 mRNAのどちらかで形質移入した。GFP mRNAで形質移入された細胞に加えて非形質移入細胞も対照として使用した。細胞を2~3日毎に継代処理し、続いて合成mRNAで形質移入した。細胞の核型分析を第33継代の時点(1回目の形質移入から3日後)、第34継代の時点(3回目の形質移入から3日後)、第36継代の時点(4回目の形質移入から3日後)、及び第40継代の時点(7回目の形質移入から3日後)に実施した。
図2AはマウスZscan4c又はヒトZSCAN4のどちらかを発現するセンダイウイルスベクターでマウスES細胞を処理した後の核型分析のまとめを示している。MC1ZEマウスES細胞(第33継代又は第34継代)を5×104細胞/ウェルの濃度で6ウェルディッシュに播種し、図2Aに示されているMOIでSeVAG(対照)、SeVmZscan4、又はSeVhZSCAN4のいずれかを用いて処理した。追加の対照として何の処理も受けていないMC1ZE細胞を使用した。3日後に細胞の核型を分析した。図2Aに示されているように、SeVmZscan4又はSeVhZSCAN4との接触によってマウスES細胞の核型を劇的に改善することができる。興味深いことに、それらの結果はヒトZSCAN4がマウスZscan4cよりも好適に機能したことを示している。
マウスゲノムに組み込まれたプラスミドベクターからの外来性マウスZscan4cの強制発現によってTmem92遺伝子、Stra8遺伝子、及び内在性Zscan4遺伝子を含むユニークな遺伝子セットの発現が誘導されることがこれまでに示されている(Amanoら、Nat Commun誌、2013年;第4号:1966頁)。
細胞培養
MC1マウス胚性幹(ES)細胞株は、マウスゲノムに組み込まれている外部より導入されたZscan4c遺伝子の機能を示すために典型的なマウス多能性幹細胞として以前に使用された(Amanoら、Nat Commun誌、2013年;第4号:1966頁)。以前に説明された完全ES培地(Amanoら、Nat Commun誌、2013年;第4号:1966頁):DMEM(Gibco)、15%FBS(Atlanta Biologicals)、1000U/ml白血病阻止因子(LIF)(ESGRO、Chemicon)、1mMピルビン酸ナトリウム、0.1mM非必須アミノ酸(NEAA)、2mM GlutaMAX、0.1mM β-メルカプトエタノール、及びペニシリン/ストレプトマイシン(50U/50μg/ml)の中でMC1細胞を5%CO2中37℃で培養した。培地を毎日交換し、日常的に2~3日毎に細胞を継代処理した。
修飾型mRNAの合成のため、Warrenら(Warrenら、Cell Stem Cell誌、2010年11月5日;第7巻(第5号):618~30頁)によって以前に報告されているようにmRNA合成を実施した。Warrenらのこれらのプロトコルを使用して、哺乳類細胞におけるRNA安定性並びに翻訳効率を上昇させるために修飾型dNTP混合物を使用するヒトZSCAN4又は緑色蛍光タンパク質(GFP)をコードする鋳型DNAのインビトロ転写によりmRNAを合成した。次の修飾型dNTP、すなわち、3’-0-Me-m7G(5’)ppp(5’)G ARCAキャップ類似体、5-メチルシチジントリホスフェート、及びシュードウリジントリホスフェートを使用した。
マウスZscan4c(SeV18+mZscan4/ΔF)又はヒトZSCAN4(SeV18+hZSCAN4/ΔF)のどちらかを発現するセンダイウイルスベクターは、MBL(株式会社医学生物学研究所)によってカスタム作製された。これらのベクターを本明細書においてそれぞれ「SeVmZscan4」又は「SeVhZSCAN4」と呼ぶ。対照として同じセンダイを使用したが、そのベクターはZscan4よりも緑色蛍光タンパク質変異体を発現した。これらのセンダイベクターはFタンパク質を欠いており、したがって、伝染性ではない(Inoueら、J Virol誌、第77巻:23238~3246頁、2003年)。
図4Aは合成mRNAでのMC1マウスES細胞の形質移入の後にTmem92遺伝子、Stra8遺伝子、Actb(β-アクチン対照)遺伝子、及び内在性Zscan4遺伝子の発現レベルをモニターするqRT-PCR分析の結果を示している。GFP mRNAで形質移入された対照細胞と比較して、ヒトZSCAN4 mRNAは内在性マウスZscan4遺伝子の発現を上昇させた。
遺伝子SERPINB4、DNMT3L、及びDUX4は、マウスZscan4c遺伝子又はヒトZSCAN4遺伝子が導入遺伝子ベースの遺伝子発現システムによって過剰発現すると発現上昇するマーカー遺伝子として特定されている。
細胞培養
ヒト包皮線維芽細胞由来人工多能性幹(hiPS)細胞(システムバイオサイエンス、カリフォルニア州、米国)を、有糸分裂不活化マウス胚性線維芽細胞(MEF)と製造業者の指示に従って20%ノックアウト血清代替品と10ng/mlのbFGF(ライフテクノロジーズ、カリフォルニア州、米国)を添加した培地の上で培養した。培地を毎日交換し、7日毎にアキュターゼを使用して細胞を継代処理した。
修飾型mRNAの合成のため、Warrenら(Warrenら、Cell Stem Cell誌、2010年11月5日;第7巻(第5号):618~30頁)によって以前に報告されているようにmRNA合成を実施した。Warrenらのこれらのプロトコルを使用して、哺乳類細胞におけるRNA安定性並びに翻訳効率を上昇させるために修飾型dNTP混合物を使用するマウスZscan4c、ヒトZSCAN4、又は緑色蛍光タンパク質(GFP)をコードする鋳型DNAのインビトロ転写によりmRNAを合成した。次の修飾型dNTP、すなわち、3’-0-Me-m7G(5’)ppp(5’)G ARCAキャップ類似体、5-メチルシチジントリホスフェート、及びシュードウリジントリホスフェートを使用した。
マウスZscan4c(SeV18+mZscan4/ΔF)又はヒトZSCAN4(SeV18+hZSCAN4/ΔF)のどちらかを発現するセンダイウイルスベクターは、MBL(株式会社医学生物学研究所)によってカスタム作製された。これらのベクターを本明細書においてそれぞれ「SeVmZscan4」又は「SeVhZSCAN4」と呼ぶ。対照として同じセンダイベクターを使用したが、そのベクターはZscan4よりも緑色蛍光タンパク質変異体を発現した。これらのセンダイベクターはFタンパク質を欠いており、したがって、伝染性ではない(Inoueら、J Virol誌、第77巻:23238~3246頁、2003年)。
図5AはヒトZSCAN4をコードする合成mRNAがSERPINB4の発現を誘導することができることを示している。図5BはSeVmZscan4、SeVhZSCAN4、SeVmZERT2(Tmx+条件)、及びSeVhZERT2(Tmx+条件)がSERPINB4の発現を誘導することができ、DNMT3LとDUX4の発現をある程度誘導することができることを示している。同様に、マウスZscan4c又はヒトZSCAN4のどちらかを発現する温度感受性センダイベクターはDNMT3Lの発現を誘導することができる(図5C)。
この実施例は、Zscan4生物製剤(例えば、Zscan4をコードする合成mRNA又はZscan4を発現するセンダイウイルスベクターのどちらかによるZscan4の発現)を活用して1つ以上の染色体異常を修正し、且つ、1つ以上のエピジェネティックエラーを修正することによってZscan4生物製剤はヒト胚性幹(ES)細胞及び人工多能性幹(iPS)細胞を含むがこれらに限定されないヒト多能性幹細胞の品質を改善することができるという発見について説明する。とりわけ、Zscan4生物製剤は他の方法では脱メチル化することが難しい幾つかのDNA領域を一時的に脱メチル化することによってヒトiPS細胞における誤ったDNAメチル化パターンを修正することができることが示される。例えば、DNAメチル化パターンがヒトiPS細胞とヒトES細胞の間で異なるゲノム中の領域が存在する。したがって、ヒトiPS細胞におけるそのような誤ったDNAメチル化パターンを修正することが重要である。単にヒトiPS細胞をZscan4生物製剤に曝露することによりDNAメチル化問題を修正するZscan4生物製剤の能力は、治療に使用するためにヒトiPS細胞の安全性を改善する重要な技術であり得ると考えられる。ヒトiPS細胞においてDNAメチル化問題を修正するZscan4生物製剤の能力は既存のヒトiPS細胞の改善も可能にする。
この実施例はZscan4をコードする合成mRNA又はZscan4を発現するセンダイウイルスベクターのどちらかによるヒトZSCAN4の発現がヒト先天性角化不全症線維芽細胞の寿命の延長を誘導し、ヒト先天性角化不全症線維芽細胞のテロメア長の伸長も誘導するという発見について説明する。この実施例はヒトZSCAN4をコードする合成mRNAとヒトZSCAN4を発現するセンダイウイルスベクターを治療的生物製剤として使用することができることも示す。
細胞培養
先天性角化不全症(DKC:X連鎖性)を有する患者から単離された線維芽細胞をコリエル細胞レポジトリーから購入した(カタログID:AG04646)。コリエルカタログ情報によるとその細胞のドナーである11歳の白人男性は罹患しており、皮膚発疹、貧血症、爪ジストロフィー及び食道異常を提示している。家族歴は陰性である。生検試料を未発症の皮膚から生存中に採取した。細かく切り刻んだ組織からなる外植片を使用して1981年2月21日に培養を開始した。細胞形態は線維芽細胞様である。細胞分裂レベル(PDL)は凍結時に5.41であり、継代数は5であった。
修飾型mRNAの合成のため、Warrenら(Warrenら、Cell Stem Cell誌、2010年11月5日;第7巻(第5号):618~30頁)によって以前に報告されているようにmRNA合成を実施した。Warrenらのこれらのプロトコルを使用して、哺乳類細胞におけるRNA安定性並びに翻訳効率を上昇させるために修飾型dNTP混合物を使用するヒトZSCAN4又は緑色蛍光タンパク質(GFP)をコードする鋳型DNAのインビトロ転写によりmRNAを合成した。次の修飾型dNTP、すなわち、3’-0-Me-m7G(5’)ppp(5’)G ARCAキャップ類似体、5-メチルシチジントリホスフェート、及びシュードウリジントリホスフェートを使用した。
ヒトZSCAN4(SeV18+hZSCAN4/ΔF)を発現するセンダイベクターはMBL(株式会社医学生物学研究所)によってカスタム作製された。そのベクターを本明細書において「SeVhZSCAN4」と呼ぶ。このセンダイベクターはFタンパク質を欠いており、したがって、非伝染性である(Inoueら、J Virol誌、第77巻:3238~3246頁、2003年)。実験に10のMOI(感染多重度)を使用した。
製造業者の指示に従ってTeloTAGGGテロメア長アッセイキット(ロッシュ・アプライド・サイエンス、インディアナ州、米国)を使用してサザンブロット分析により細胞のテロメア長を測定した。
ヒトZSCAN4をコードする合成mRNAはヒト先天性角化不全症線維芽細胞の寿命を延長する
DKC細胞を5×104細胞/ウェルの濃度で6ウェルディッシュに播種し、その後に5μlのリポフェクタミン(RNAiMAX:ライフテクノロジーズ、カリフォルニア州、米国)を使用して1μgの合成mRNAで形質移入した。次の日に培地を交換した。毎週、細胞を1:2の比率で継代処理し、50ng/mlのB18R(I型IFN阻害剤:eBiosciences社、カリフォルニア州、米国)の存在下において合成mRNAで形質移入した。試料を三組調製した。自動化細胞計数装置Moxi Z(ORFLO Technologies、アイダホ州、米国)を使用して細胞数を数えた。細胞数をPDL=0から始まるPDL(細胞分裂レベル)に変換した(コリエル細胞レポジトリー由来の情報によるとPDL=9にほぼ等しい第9継代から正規化された)。
DKC細胞を5×104細胞/ウェルの濃度で6ウェルディッシュに播種し、6時間後にそれらの細胞をSeVhZSCAN4ベクターと10のMOIで24時間接触させた。対照として2つ目のDKC細胞の試料を、同じ方法だがSeVhZSCAN4ベクターへの曝露を含まない方法で培養した。1週間毎、又は2週間ごとに細胞を継代処理した。自動化細胞計数装置Moxi Z(ORFLO Technologies、アイダホ州、米国)を使用して細胞数を数えた。細胞数をPDL=0から始まるPDL(細胞分裂レベル)に変換した(コリエル細胞レポジトリー由来の情報によるとPDL=9にほぼ等しい第9継代から正規化された)。
図8Aは実験の手順を示している。DKC細胞を1×105細胞/10cm培養ディッシュの濃度で10cm培養ディッシュに播種した。その後、25μlのリポフェクタミン(RNAiMAX:ライフテクノロジーズ、カリフォルニア州、米国)を使用して5μgの合成mRNAで各10cmディッシュ中の細胞を形質移入した。次の日に培地を交換した。1枚のディッシュの細胞を第7日に回収し、ゲノムDNAを抽出した。別のディッシュの細胞を1:2の比率で継代処理し、その後に25μlのリポフェクタミンを使用して5μgの合成mRNAで形質移入した。細胞を第15日に回収し、ゲノムDNAを抽出した。その後、そのゲノムDNAをテロメア長アッセイの対象とした。
WS患者は早期老化の出現を特徴とする。培養中のWS患者の細胞は高い割合の染色体切断、転座及び欠失を示す。したがって、WS患者はゲノム安定性及び/又は染色体安定性を向上させることができる処理を必要とする。
細胞培養
ウェルナー症候群(WS)を有する患者から単離された線維芽細胞をコリエル細胞レポジトリーから購入した(カタログID:AG03141)。コリエルカタログ情報によると「ドナーは30歳の白人女性であり、色素沈着し、且つ、萎縮した皮膚、白内障及びタイプV高脂血症といった早期老化の特徴を有した。生検試料を生存中に1978年9月20日に採取した。細かく切り刻んだ皮膚組織からなる外植片を使用して培養を開始した。細胞形態は線維芽細胞様である。核型は検査した細胞の80%で46本、XXであり、ランダムな染色体異常を示す。748番において終止コドンが生じる{Gln748TER(Q748X)}WRN遺伝子のヌクレオチド2476におけるCからTへの変移(2476C>T)についてホモ接合性である。累積細胞分裂レベル(PDL)は凍結時に17.97であり、継代数は11であった。」コリエル細胞レポジトリーからWS細胞を受領した後にそれらの細胞をさらに数継代にわたって培養した。コリエル細胞レポジトリーによって推奨される条件、すなわち、15%ウシ胎児血清(不活化されていない)を添加されたアール塩アール塩を含むイーグル最小必須培地:ダルベッコ改変MEMの中でそれらの細胞を培養した。
修飾型mRNAの合成のため、Warrenら(Warrenら、Cell Stem Cell誌、2010年11月5日;第7巻(第5号):618~30頁)によって以前に報告されているようにmRNA合成を実施した。Warrenらのこれらのプロトコルを使用して、哺乳類細胞におけるRNA安定性並びに翻訳効率を上昇させるために修飾型dNTP混合物を使用するヒトZSCAN4又は緑色蛍光タンパク質(GFP)をコードする鋳型DNAのインビトロ転写によりmRNAを合成した。次の修飾型dNTP、すなわち、3’-0-Me-m7G(5’)ppp(5’)G ARCAキャップ類似体、5-メチルシチジントリホスフェート、及びシュードウリジントリホスフェートを使用した。
WS細胞を5×104細胞/ウェルの濃度で6ウェルディッシュに播種し、その後に第0日に5μlのリポフェクタミン(RNAiMAX:ライフテクノロジーズ、カリフォルニア州、米国)を使用して1μgの合成mRNAで形質移入した。次の日に培地を交換した。同じmRNAを用いる2回目の形質移入を第3日に実施した。それらの細胞の成長に応じて1週間毎又は2週間毎に細胞を1:2の比率で継代処理した。試料を三組調製した。細胞数を0のPDLから始まるPDLに変換した(コリエル細胞レポジトリー由来の情報によると、細胞老化に近い19の累積PDLにほぼ等しい)。
図10はZscan4を使用する1つの処理モードを例示している。この手法は骨髄機能不全と白血病を有する患者を治療するために病院で日常的に行われている骨髄移植法と非常に類似している。骨髄は造血幹細胞と間葉系幹細胞を含んでおり、その骨髄が患者から吸引され、その直後にZscan4(例えば、ヒトZSCAN4を担持するセンダイベクター)に曝露される。このZscan4への曝露は一時的で短時間のものである。理論に捉われることを望むものではないが、それらの骨髄細胞を前記患者に投与して戻すとZscan4の発現が消失すると考えられる。あるいは、温度を切り替えることによってZscan4の発現を止めることができるので、温度感受性センダイベクターを使用することができる。あるいは、融合タンパク質hZSCAN4-ERT2を担持するセンダイベクターを使用することができ、タモキシフェンの添加によってその融合タンパク質をオン状態にすることができ、タモキシフェンの除去によってオフ状態にすることができる。あるいは、合成mRNAの限定的な半減期のためにZSCAN4タンパク質の産生は一時的であるので、hZSCAN4-mRNAなどの合成mRNAを使用することができる。その後、そのようにしてZscan4により若返らされた骨髄細胞が患者の骨髄及び造血コンパートメントに再定植する。この一時的なZscan4接触の長期効果に基づくと、理論に捉われることを望むものではないが、この手法はたった1回必要とされるか、又は長い間隔の時間(例えば、数年)の後に定期的に必要とされると考えられる。理論に捉われることを望むものではないが、Zscan4により若返らされた骨髄細胞は病気の骨髄細胞との競争に勝ち、そうしてそれらの病気の骨髄細胞に置き換わると考えられる。以上より、標準的骨髄移植時に実施されている病気の骨髄細胞を排除するための骨髄への放射線照射が必要ではなくなると考えられる。
この実施例はZscan4過剰発現によってヒト線維芽細胞においてテロメア延長が誘導されるという発見について説明する。
細胞培養
成人の皮膚(約30歳)から単離された初代ヒト成人皮膚線維芽細胞(HDFa)をライフテクノロジーズ(カタログ番号:C-013-5C)から購入した。ファンコーニ貧血相補群A(FANCA)患者から単離された線維芽細胞(GM01309)をコリエル細胞レポジトリーから購入した。標準的培養条件下で、すなわち、10%ウシ胎児血清を添加されたDMEM(ダルベッコ改変イーグル培地)でこれらの細胞を維持した。
以前に記載された方法(Cawthon, R.M.、Nucleic Acids Res.誌、2002年5月15日;第30巻(第10号):e47;及びCallicott, RJら、Comparative Medicine誌、2006年)を用いてqPCRによるテロメア定量を実施した。DNeasy血液及び組織キット(Qiagen)を用いて5×105細胞を越える線維芽細胞からゲノムDNAを抽出した。ナノドロップを使用してgDNA試料の品質を評価した。テロメア長を決定するqPCR用に1.8を超えるA260/280吸光度比と約2のA260/230吸光度比を有するゲノムDNA試料を使用した。
tel1b:5’-CGGTTT(GTTTGG)5GTT-3’(配列番号41);及び
tel2b:5’-GGCTTG(CCTTAC)5CCT-3’(配列番号42)
各プライマーを300nMの終濃度で使用した。
36B4u:5’-CAGCAAGTGGGAAGGTGTAATCC-3’(配列番号43);及び
36B4d:5’-CCCATTCTATCATCAACGGGTACAA-3’(配列番号44)
36B4uプライマーを300nMの終濃度で使用し、36B4dプライマーを500nMの終濃度で使用した。
ヒトZSCAN4(SeV18+hZSCAN4/ΔF)を発現するセンダイベクターはMBL(株式会社医学生物学研究所)によってカスタム作製された。このセンダイベクターはFタンパク質を欠いており、したがって、非伝染性である(Inoueら、J Virol誌、第77巻:3238~3246頁、2003年)。
ヒトZSCAN4の過剰発現は正常なヒト成体線維芽細胞においてテロメア長を急速に増加させる
ヒト成体皮膚線維芽細胞(HDFa)を標準的培養条件下で培養した。細胞を継代処理した翌日に1つの細胞試料をゲノムDNA抽出(未処理対照)用に回収した。2つ目の細胞試料にSvhZSCAN4センダイウイルスベクターを形質導入した。
FANCA患者から単離されたGM01309線維芽細胞を標準的培養条件下で培養した。細胞を継代処理した翌日に1つの細胞試料をゲノムDNA抽出(未処理対照)用に回収した。2つ目の細胞試料にSvhZSCAN4センダイウイルスベクターを形質導入した。
この実施例はヒトZSCAN4をコードする合成mRNAが健康な成人から単離された皮膚線維芽細胞の寿命を延長することができるという発見について説明する。この実施例はヒトZSCAN4をコードする合成mRNAを治療的生物製剤として使用することができることも示す。
細胞培養
成人の皮膚から単離された初代ヒト皮膚線維芽細胞(HDFa)をライフテクノロジーズから購入した。製造業者の情報によると、それらのHDFa細胞は少なくとも12回細胞分裂(PDL)することができる。製造業者の指示に従ってHDFa細胞を培養した。それらのHDFa細胞を受領した後にそれらの細胞が指数関数的に増殖しないように、且つ、細胞老化に近づくように数継代にわたってそれらの細胞を培養した。
修飾型mRNAの合成のため、Warrenら(Warrenら、Cell Stem Cell誌、2010年11月5日;第7巻(第5号):618~30頁)によって以前に報告されているようにmRNA合成を実施した。Warrenらのこれらのプロトコルを使用して、哺乳類細胞におけるRNA安定性並びに翻訳効率を上昇させるために修飾型dNTP混合物を使用するヒトZSCAN4又は緑色蛍光タンパク質(GFP)をコードする鋳型DNAのインビトロ転写によりmRNAを合成した。次の修飾型dNTP、すなわち、3’-0-Me-m7G(5’)ppp(5’)G ARCAキャップ類似体、5-メチルシチジントリホスフェート、及びシュードウリジントリホスフェートを使用した。
細胞老化に近いステージのHDFa細胞を1×105細胞/ウェルの濃度で6ウェルディッシュに播種し、その後に第0日に5μlのリポフェクタミン(RNAiMAX:ライフテクノロジーズ、カリフォルニア州、米国)を使用して1μgの合成mRNAで形質移入した。次の日に培地を交換した。同じmRNAを用いる2回目の形質移入を第3日に実施した。それらの細胞の成長に応じて1週間毎又は2週間毎に細胞を1:2の比率で継代処理した。試料を三組調製した。細胞数を0のPDLから始まるPDLに変換した。
この実施例はヒトZSCAN4を発現する温度感受性センダイウイルスベクターがヒト間葉系幹(MS)細胞においてテロメア長を伸長することができるという発見について説明する。この実施例は、骨髄移植を含むがこれに限定されない成体幹細胞療法を改善するための生物製剤としてヒトZSCAN4を発現するセンダイウイルスベクターを使用することができることも示す。
細胞培養
ヒト脂肪組織由来間葉系幹細胞(MSC)をライフテクノロジーズ(カリフォルニア州、米国)から購入した。製造業者の情報によるとADSCは骨髄由来間葉系幹細胞と非常に類似した表現型特徴と機能特徴を示した。ヒト脂肪組織由来間葉系幹細胞があらゆる可能な表現型に成長又は分化する能力を失う前にそれらの細胞を4~5継代まで増殖させることができる。製造業者に推奨される条件でそれらの細胞を培養した。
マウスZscan4(SeV18+mZscan4/TS15ΔF)又はヒトZSCAN4(SeV18+hZSCAN4/TS15ΔF)のどちらかを発現する温度感受性センダイベクターは、MBL(株式会社医学生物学研究所)によってカスタム作製された。これらのベクターを本明細書においてそれぞれ「SeVmZscan4-TS15」又は「SeVhZSCAN4-TS15」と呼ぶ。これらのセンダイベクターは35℃で機能的であり、37℃で不活性である(Banら、Proc Natl Acad Sci USA誌、2011年;第108巻(第34号):14234~14239頁)。対照として同じ温度感受性センダイベクターを使用したが、そのベクターはZscan4よりも緑色蛍光タンパク質変異体を発現した。このベクターを本明細書において「SeVAG-TS15」と呼ぶ。これらのセンダイベクターもFタンパク質を欠いており、したがって、伝染性ではない(Inoueら、J Virol誌、第77巻:23238~3246頁、2003年)。
製造業者の指示に従ってTeloTAGGGテロメア長アッセイキット(ロッシュ・アプライド・サイエンス、インディアナ州、米国)を使用してサザンブロット分析により細胞のテロメア長を測定した。
第2継代のヒト脂肪組織由来間葉系幹細胞(MSC)を1.5×105細胞の密度で10cmディッシュに播種し、(第0日に)10のMOIで温度感受性センダイベクターと接触させた。10μMのH2O2を含む培地の中で細胞を培養し、35℃で3日間にわたって維持し、続いて37℃で培養した。第7日に細胞を1:2の比率で継代処理した。第10日の別の継代処理の後に細胞を再度10のMOIで前記温度感受性センダイベクターと接触させ、35℃で3日間培養し、続いて37℃で培養した。その後、第14日(第3継代)、第20日、第27日、第42日、及び第62日(第7継代)に細胞を継代処理した。典型的な細胞培養条件下よりも速くテロメア長が短くなるように10μMのH2O2を含む培地の中で細胞を培養した。
組織専属性幹細胞(すなわち、ヒト身体の器官及び/又は組織に内在する組織幹細胞)における1つ以上の欠損によって引き起こされる多数の疾患が存在する。例えば、デュシェンヌ型筋ジストロフィーは筋幹細胞(筋衛星細胞)の早期老化と関連することが知られている。Zscan4生物製剤(例えば、Zscan4をコードする合成mRNA又はZscan4を発現するセンダイウイルスベクターのどちらかによるZscan4の発現)は組織幹細胞を若返らせることができるという本明細書に記載される結果に基づくと、組織専属性幹細胞におけるZscan4発現によってそれらの細胞における疾患関連欠陥を修正することができると考えられる。デュシェンヌ型筋ジストロフィーの事例では、筋細胞の早期劣化を防止するためにデュシェンヌ型筋ジストロフィーを有する患者の筋細胞、特に筋幹細胞にZscan4生物製剤を投与することによってZscan4発現を用いてデュシェンヌ型筋ジストロフィーを有する患者を治療することができると考えられる。
ヒトZSCAN4はヒト膵臓中の幾つかの組織幹細胞においてまれにではあるが自然に発現していることが示されている。Zscan4生物製剤(例えば、Zscan4をコードする合成mRNA又はZscan4を発現するセンダイウイルスベクターのどちらかによるZscan4の発現)は組織幹細胞と最終分化細胞を若返らせることができるという本明細書に記載される結果に基づくと、膵臓細胞がさらに劣化することを防止し、それによってβ細胞の産生を促進するために糖尿病を有する患者の膵臓細胞、特に内在性膵臓組織幹細胞にZscan4生物製剤を投与することによってZSCAN4発現を用いて糖尿病を有する患者を治療することができると考えられる。
Zscan4生物製剤(例えば、Zscan4をコードする合成mRNA又はZscan4を発現するセンダイウイルスベクターのどちらかによるZscan4の発現)は組織幹細胞と最終分化細胞を若返らせることができるという本明細書に記載される結果に基づくと、皮膚組織幹細胞と皮膚細胞がさらに劣化することを防止し、それによって新しい皮膚組織幹細胞と皮膚細胞の産生を促進するためにアトピー性皮膚炎又は他の皮膚損傷を有する患者の皮膚、特に内在性皮膚組織幹細胞に(例えば、局所投与により)Zscan4生物製剤を曝露することによってZscan4発現を用いてアトピー性皮膚炎又は他の皮膚損傷を有する患者を治療することができると考えられる。
ヒト身体中のほとんど全ての器官及び組織は身体のそれらの器官及び組織に内在する組織専属性幹細胞によって維持されると考えられる。例えば、腸は腸陰窩に内在する腸管幹細胞に由来する成熟細胞と分化細胞の連続産生により維持される。同様に、皮膚は皮膚幹細胞に由来する皮膚上皮の連続産生により維持され、一方で毛髪は毛包幹細胞によって維持される。比較的に速い速度で老化及び劣化する完全分化細胞と比較して、組織幹細胞は例えばテロメア長を維持することによってそれらの質と若さを維持する傾向がある(図15)。しかしながら、組織幹細胞さえもそれらの若さを徐々に失う(図15)。したがって、全般的な老化、及び若々しい外観と機能の漸進的な喪失は組織専属性幹細胞の老化と劣化の結果と考えられ得る。
この実施例はZscan4をコードする合成mRNA又はZscan4を発現するセンダイウイルスベクターのどちらかによるヒトZSCAN4の発現によってダウン症患者より単離された線維芽細胞の21番染色体トリソミー核型を修正することができるという発見について説明する。この実施例はヒトZSCAN4をコードする合成mRNAとヒトZSCAN4を発現するセンダイウイルスベクターを治療的生物製剤として使用することができることも示す。
細胞培養
ダウン症(DS、21番染色体トリソミー)を有する患者から単離された線維芽細胞をコリエル細胞レポジトリーから購入した(カタログID:AG06872)。コリエルカタログ情報によるとドナーは1歳の白人女性であった。そのドナーはダウン症(21番染色体トリソミー)の典型的な特徴を有した。死後、皮膚生検試料を1983年5月19日に採取した。細かく切り刻んだ皮膚組織からなる外植片を使用して培養を開始した。核型は47本、XX、+21である。細胞形態は線維芽細胞様である。累積細胞分裂レベル(PDL)は凍結時に10.5であり、継代数は5であった。コリエル細胞レポジトリーからDS細胞を受領した後にそれらの細胞をさらに数継代にわたって培養した。コリエル細胞レポジトリーによって推奨される条件下で、すなわち、10%ウシ胎児血清(不活化されていない)を添加されたアール塩及び非必須アミノ酸を有するイーグル最小必須培地でそれらの細胞を培養した。
修飾型mRNAの合成のため、Warrenら(Warrenら、Cell Stem Cell誌、2010年11月5日;第7巻(第5号):618~30頁)によって以前に報告されているようにmRNA合成を実施した。Warrenらのこれらのプロトコルを使用して、哺乳類細胞におけるRNA安定性並びに翻訳効率を上昇させるために修飾型dNTP混合物を使用するヒトZSCAN4又は緑色蛍光タンパク質(GFP)をコードする鋳型DNAのインビトロ転写によりmRNAを合成した。次の修飾型dNTP、すなわち、3’-0-Me-m7G(5’)ppp(5’)G ARCAキャップ類似体、5-メチルシチジントリホスフェート、及びシュードウリジントリホスフェートを使用した。
ヒトZSCAN4(SeV18+hZSCAN4/ΔF)を発現するセンダイベクターはMBL(株式会社医学生物学研究所)によってカスタム作製された。そのベクターを本明細書において「SeVhZSCAN4」と呼ぶ。このセンダイベクターはFタンパク質を欠いており、したがって、非伝染性である(Inoueら、J Virol誌、第77巻:3238~3246頁、2003年)。実験に10のMOI(感染多重度)を使用した。
Gバンド染色法による通常の核型分析に加えて21番染色体のセントロメア領域に特異的にハイブリダイズするプローブ(CHR21-10-GR:Empire Genomics、ニューヨーク州、米国)を使用する蛍光インサイチュハイブリダイゼーション(FISH)により各培養細胞に存在する21番染色体のコピーを計数した。間期細胞核において3つの蛍光ドットの検出は21番染色体トリソミー(ダウン症)を表し、一方で2つの蛍光ドットの検出は21番染色体の正常なコピー数(正常)を表す。
ヒトZSCAN4をコードする合成mRNAはダウン症患者より単離された線維芽細胞(21番染色体トリソミー)において染色体異常を修正する
第7継代のダウン症(DS)線維芽細胞を5×105細胞/ウェルの濃度で10cm培養ディッシュに播種し、その後に25μlのリポフェクタミン(RNAiMAX:ライフテクノロジーズ、カリフォルニア州、米国)を使用して5μgの合成mRNA(hZSCAN4又はGFP)で形質移入した。GFP mRNAで形質移入された細胞に加えて非形質移入細胞も対照として使用した。1つの実験(1回の形質移入)では第5日に全ての細胞を継代処理し、その後に第10日(第9継代)に核型を分析した。別の実験(2回の形質移入)では第5日に細胞を継代処理した後にGFP mRNA又はhZSCAN4 mRNAのどちらかによる2回目の形質移入を実施し、その後に第10日(第9継代)に核型を分析した。
図17Aは実験手順を示している。ダウン症線維芽細胞(DS)細胞を第8継代(第0日)において5×104細胞/ウェルの濃度で6ウェルディッシュに播種した。1日後に細胞を25のMOIでSeVhZSCAN4-TS15により処理し、35℃で3日間保持した。その後、そのディッシュを37℃に移し、その実験の残りの期間に37℃で保持した。第9日、第12日、及び第15日に細胞を継代処理した。第15日の継代処理後に細胞を10のMOでSeVhZSCAN4により処理した。その後、第18日及び第21日に細胞を継代処理した。第21日の継代処理後に細胞を10のMOIでSeVhZSCAN4により処理した。第24日にFISHにより核型分析を実施した(図17B)。第30日の継代処理後に細胞を10のMOIでSeVhZSCAN4により処理した。第39日の継代処理後に細胞を10のMOIでSeVhZSCAN4により処理した。第42日にFISHにより核型分析を実施した(図17C)。センダイウイルスベクターと接触することなく並行して培養された細胞(未処理)、又は並行して培養され、且つ、GFP変異体を発現する対照センダイベクターと接触した細胞を対照として使用した。2人の経験豊かな研究者が独立してFISH像を採点した。2つの蛍光ドット(2本の21番染色体:正常);3つの蛍光ドット(3本の21番染色体:21番染色体トリソミー、ダウン症)。
母親の加齢時に受精に成功する卵母細胞の能力が劇的に低下し、流産と先天異常の危険性が増加する。近年の研究により母親の加齢性流産と先天異常は主に卵母細胞における染色体分配の誤りが原因であることが明らかになった。この時点では染色体分配の誤りを防止又は修正することにより老化した卵母細胞の能力の反転させることができるという報告は存在していない。
卵母細胞採取
高齢マウス(すなわち、45週齢を越えるマウス)と若齢マウス(8週齢)をジャクソン研究所から購入する。卵核胞状態の卵母細胞(GV卵母細胞)を高齢マウスと若齢マウスから採取する。若齢マウスに由来する卵母細胞を対照として使用する。
修飾型mRNAの合成のため、Warrenら(Warrenら、Cell Stem Cell誌、2010年11月5日;第7巻(第5号):618~30頁)によって以前に報告されているようにmRNA合成を実施する。Warrenらのプロトコルを使用して、哺乳類細胞におけるRNA安定性並びに翻訳効率を上昇させるために修飾型dNTP混合物を使用するマウスZscan4c、ヒトZSCAN4、又は緑色蛍光タンパク質(GFP)をコードする鋳型DNAのインビトロ転写によりmRNAを合成する。次の修飾型dNTP、すなわち、3’-0-Me-m7G(5’)ppp(5’)G ARCAキャップ類似体、5-メチルシチジントリホスフェート、及びシュードウリジントリホスフェートを使用した。
マウスZscan4c(SeV18+mZscan4/ΔF)又はヒトZSCAN4(SeV18+hZSCAN4/ΔF)のどちらかを発現するセンダイベクターは、MBL(株式会社医学生物学研究所)によってカスタム作製される。これらのベクターを本明細書においてそれぞれ「SeVmZscan4」又は「SeVhZSCAN4」と呼ぶ。対照として同じセンダイベクターを使用するが、そのベクターはZscan4よりも緑色蛍光タンパク質変異体を発現した。これらのセンダイベクターはFタンパク質を欠いており、したがって、伝染性ではない(Inoueら、J Virol誌、第77巻:23238~3246頁、2003年)。
卵核胞状態の卵母細胞(GV卵母細胞)を採取し、その後に第I減数分裂と第II減数分裂に向かって進ませるためにインビトロ成熟(IVM)の対象とする。IVM時に卵母細胞をZscan4生物製剤(例えば、Zscan4をコードする合成mRNA又はZscan4を発現するセンダイウイルスベクターのどちらか)と接触させ、その後に精子でインビトロ受精させる。あるいは、受精卵母細胞/1細胞(接合子)期と胚盤胞期の間の着床前胚をZscan4生物製剤(例えば、Zscan4をコードする合成mRNA又はZscan4を発現するセンダイウイルスベクターのどちらか)と接触させる。接触方法は合成Zscan4 mRNAの標準的リポフェクタミン形質移入、Zscan4を発現するセンダイウイルスベクターのウイルス感染、及びマイクロマニピュレーターによるZscan4生物製剤の細胞質内注入を含み得る。
この実施例はマウスZscan4又はヒトZSCAN4のどちらかを発現する温度感受性センダイウイルスベクターによって癌細胞の増殖を抑制することができるという発見について説明する。この実施例はZscan4を発現するセンダイウイルスベクターを治療的生物製剤として使用することができることも示す。
細胞培養
HCT116ヒト大腸癌細胞を米国培養細胞系統保存機関(ATCC)から購入した。HCT116細胞はヒト成人男性の大腸癌に由来する。ATCCによると「その基幹系統の染色体数は二倍体に近く、形式上の数は45(62%)であり、多倍数体が6.8%の割合で生じる。この株はras癌原遺伝子のコドン13に突然変異を有する。」ATCCの推奨に従ってHCT116細胞を培養した。
マウスZscan4(SeV18+mZscan4/TS15ΔF)又はヒトZSCAN4(SeV18+hZSCAN4/TS15ΔF)のどちらかを発現する温度感受性センダイベクターは、MBL(株式会社医学生物学研究所)によってカスタム作製された。これらのベクターを本明細書においてそれぞれ「SeVmZscan4-TS15」又は「SeVhZSCAN4-TS15」と呼ぶ。これらのセンダイベクターは35℃で機能的であり、37℃で不活性である(Banら、Proc Natl Acad Sci USA誌、2011年;第108巻(第34号):14234~14239頁)。対照として同じ温度感受性センダイベクターを使用したが、そのベクターはZscan4よりも緑色蛍光タンパク質変異体を発現した。このベクターを本明細書において「SeVAG-TS15」と呼ぶ。これらのセンダイベクターはFタンパク質を欠いており、したがって、伝染性ではない(Inoueら、J Virol誌、第77巻:23238~3246頁、2003年)。
HCT116細胞(第9継代)試料を8×104細胞/ウェルの濃度で培養した。細胞試料を20のMOIで次のセンダイベクター、すなわち、SeVAG-TS15(対照)、SeVmZscan4-TS15、又はSeVhZSCAN4-TS15のうちの1つを用いて処理し、35℃で培養した(第0日)。それら3種類の処理試料のそれぞれを三組調製した。第3日に各処理試料を継代処理し、同じセンダイベクターで処理した。自動化細胞計数装置Moxi Z(ORFLO Technologies、アイダホ州、米国)を使用して細胞数を数えた。第7日に各処理試料を継代処理し、同じセンダイベクターで処理した。細胞数を数えた(第7日)。第10日に各処理試料を継代処理し、同じセンダイベクターで処理した。細胞数を数えた(第10日)。第14日に各処理試料を継代処理し、同じセンダイベクターで処理した。細胞数を数えた(第14日)。それらの実験を通して細胞を35℃で培養した。細胞数を第0日について0のPDLから始まるPDLに変換した。
この実施例はZscan4生物製剤によってヒト細胞のDNA修復能が向上し得るという発見について説明する。マイトマイシンC又はシスプラチンなどの遺伝毒性物質は用量依存的にヒト細胞を殺滅することが知られている。遺伝毒性物質に曝露され、その後にZscan4生物製剤(例えば、Zscan4をコードする合成mRNA又はZscan4を発現するセンダイウイルスベクターのどちらかによるZscan4の発現)で処理される細胞はその遺伝毒性物質に対して抵抗性になる。そのZscan4生物製剤による遺伝毒性物質に対する抵抗性はそれらの細胞におけるZscan4発現により誘導されたDNA修復能の強化に起因することがわかっている。したがって、(1)DNA修復欠損に関連する疾患を有する患者のDNA修復能を改善するため、(2)癌治療薬などの遺伝毒性物質によって損傷を受けることから生殖腺などの特定の組織及び/又は器官を保護するため、及び(3)毒性化学物質又は放射性降下物の存在などの有害環境から組織、器官、及び/又は個体を保護するためにZscan4生物製剤を使用することができる。
癌組織(例えば、腫瘍)は癌幹細胞を含み、癌幹細胞は活発に増殖しておらず、且つ、癌化学療法(例えば、シスプラチンなどの毒性薬剤を用いる治療)に対して抵抗性を有することが知られている。癌幹細胞は化学療法による治療を生き延びることができ、それでその治療の後にその癌の再発が起こると考えられる。Zscan4の存在によって細胞に遺伝毒性物質に対する抵抗性を提供することができるので、内在性Zscan4の発現がある特定の癌幹細胞において起こり、それでそれらの細胞に遺伝毒性物質からの保護が提供されると考えられる。したがって、癌を有する患者の癌幹細胞を処理するためにZscan4に特異的なsiRNA又はshRNAなどの内在性Zscan4の発現を低下させる薬剤を使用してそれらの癌幹細胞における遺伝毒性物質に対する抵抗性を低下させて、又は除去して癌治療に対する患者の応答を改善することができると考えられる。
[1] 1つ以上のヒト細胞においてテロメア長を増加させる方法であって、前記ヒト細
胞においてZscan4の発現を上昇させる薬剤と前記1つ以上のヒト細胞を接触させる
ことを含み、前記薬剤と接触していない1つ以上の対応するヒト細胞と比較するとZsc
an4の発現上昇によって前記1つ以上のヒト細胞においてテロメア延長が誘導される、
前記方法。
[2] テロメア延長を必要とする対象を処置する方法であって、前記対象中の1つ以上
のヒト細胞においてZscan4の発現を上昇させる薬剤と前記1つ以上のヒト細胞を接
触させることを含み、Zscan4の発現上昇によって前記1つ以上のヒト細胞において
テロメア延長を誘導する、前記方法。
[3] テロメア延長を必要とする対象を処置する方法であって、
(i)前記対象よりテロメア延長を必要とする1つ以上のヒト細胞を単離すること、
(ii)前記1つ以上のヒト細胞においてZscan4の発現を上昇させる薬剤と前記
1つ以上のヒト細胞を接触させ、Zscan4の発現上昇によって前記1つ以上のヒト細
胞においてテロメア延長を誘導すること、及び
(iii)前記接触済みの1つ以上のヒト細胞を前記対象に投与すること
を含む、前記方法。
[4] テロメア異常に関連する疾患又は健康状態を治療する方法であって、治療を必要
とする対象中の1つ以上のヒト細胞においてZscan4の発現を上昇させる薬剤を前記
対象に投与することを含み、Zscan4の発現上昇によって前記1つ以上のヒト細胞に
おいてテロメア延長を誘導してテロメア異常に関連する前記疾患又は健康状態を治療する
、前記方法。
[5] テロメア異常に関連する疾患又は健康状態を治療する方法であって、
(i)テロメア異常に関連する疾患又は健康状態を患う対象より1つ以上のヒト細胞を
単離すること、
(ii)前記1つ以上のヒト細胞においてZscan4の発現を上昇させる薬剤と前記
1つ以上のヒト細胞を接触させ、Zscan4の発現上昇によって前記1つ以上のヒト細
胞においてテロメア延長を誘導すること、及び
(iii)前記接触済みの1つ以上のヒト細胞を前記対象に投与してテロメア異常に関
連する前記疾患又は健康状態を治療すること
を含む、前記方法。
[6] 染色体異常に関連する疾患又は健康状態を治療する方法であって、治療を必要と
する対象中の1つ以上のヒト細胞においてZscan4の発現を上昇させる薬剤を前記対
象に投与することを含み、Zscan4の発現上昇によって前記1つ以上のヒト細胞にお
いて前記染色体異常の修正を誘導して染色体異常に関連する前記疾患又は健康状態を治療
する、前記方法。
[7] 染色体異常に関連する疾患又は健康状態を治療する方法であって、
(i)染色体異常に関連する疾患又は健康状態を患う対象より1つ以上のヒト細胞を単離
すること、
(ii)前記1つ以上のヒト細胞においてZscan4の発現を上昇させる薬剤と前記1
つ以上のヒト細胞を接触させ、Zscan4の発現上昇によって前記1つ以上のヒト細胞
において前記染色体異常の修正を誘導すること、及び
(iii)前記接触済みの1つ以上のヒト細胞を前記対象に投与して染色体異常に関連す
る前記疾患又は健康状態を治療すること
を含む、前記方法。
[8] 核型異常に関連する疾患又は健康状態を治療する方法であって、治療を必要とす
る対象中の1つ以上のヒト細胞においてZscan4の発現を上昇させる薬剤を前記対象
に投与することを含み、Zscan4の発現上昇によって前記1つ以上のヒト細胞におい
て前記核型異常の修正を誘導して核型異常に関連する前記疾患又は健康状態を治療する、
前記方法。
[9] 核型異常に関連する疾患又は健康状態を治療する方法であって、
(i)核型異常に関連する疾患又は健康状態を患う対象より1つ以上のヒト細胞を単離す
ること、
(ii)前記1つ以上のヒト細胞においてZscan4の発現を上昇させる薬剤と前記1
つ以上のヒト細胞を接触させ、Zscan4の発現上昇によって前記1つ以上のヒト細胞
において前記核型異常の修正を誘導すること、及び
(iii)前記接触済みの1つ以上のヒト細胞を前記対象に投与して核型異常に関連する
前記疾患又は健康状態を治療すること
を含む、前記方法。
[10] 前記核型異常が染色体ヌリソミー、染色体モノソミー、染色体トリソミー、染
色体テトラソミー、及び染色体ペンタソミーからなる群より選択される、項目8又は項目
9に記載の方法。
[11] 前記核型異常が21番染色体トリソミー、16番染色体トリソミー、18番染
色体トリソミー、13番染色体トリソミー、X染色体モノソミー、XXX異数性、XXY
異数性、XYY異数性、及び1p36領域重複からなる群より選択される、項目8又は項
目9に記載の方法。
[12] 核型異常に関連する前記疾患又は健康状態が17番染色体(p11.2p11
.2)領域重複症候群、ペリツェウス・メルツバッハー病、22番染色体(q11.2q
11.2)領域重複症候群、ネコ眼症候群、ネコなき症候群、ウォルフ・ヒルシュホーン
、ウィリアムス・ボイレン症候群、シャルコー・マリー・トゥース病、遺伝性圧脆弱性ニ
ューロパチー、スミス・マゲニス症候群、神経線維腫症、アラジール症候群、口蓋心臓顔
面症候群、ディジョージ症候群、ステロイドスルファターゼ欠損、カルマン症候群、線型
皮膚欠陥症の小眼症、副腎低形成、グリセロールキナーゼ欠損、ペリツェウス・メルツバ
ッハー病、Y染色体上の精巣決定因子、無精子症(a因子)、無精子症(b因子)、無精
子症(c因子)、及び1p36領域欠失からなる群より選択される、項目8又は項目9に
記載の方法。
[13] 前記疾患又は健康状態がテロメア短縮疾患、骨髄機能不全症候群、加齢性テロ
メア短縮疾患又は障害、及び早期老化疾患又は障害からなる群より選択される1つ以上の
疾患又は健康状態である、項目4~12のいずれか一項に記載の方法。
[14] 前記疾患又は健康状態が先天性角化不全症、ホイエラール・レイダーソン症候
群、レーヴェース症候群、コーツプラス症候群、特発性肺性線維症、肝硬変、膵臓線維症
、アルツハイマー病、及び骨関節炎からなる群より選択されるテロメア短縮疾患である、
項目4~9のいずれか一項に記載の方法。
[15] 前記疾患又は健康状態がファンコーニ貧血、無巨核球性血小板減少症、再生不
良性貧血、ダイアモンド・ブラックファン貧血、先天性角化不全症、発作性夜間ヘモグロ
ビン尿症(PNH)、ピアソン症候群、シュバッハマン・ダイアモンド症候群、血小板減
少症、及び骨髄異型性症候群からなる群より選択される骨髄機能不全症候群である、項目
4~9のいずれか一項に記載の方法。
[16] 前記疾患又は健康状態がウェルナー症候群、ブルーム症候群、ハッチソン・ギ
ルフォード早老症候群、コケイン症候群、色素性乾皮症、毛細管拡張性運動失調症、ロス
モンド・トムソン症候群、硫黄欠乏性毛髪発育異常症、ジュバーグ・マルシジ症候群、及
びダウン症からなる群より選択される加齢性テロメア短縮疾患又は障害、早期老化疾患又
は障害、又はそれらの両方である、項目4~9のいずれか一項に記載の方法。
[17] 前記疾患又は健康状態が免疫不全、自己免疫疾患、自己免疫障害、慢性潰瘍、
アテローム性硬化症、癌、神経損傷、変性障害、神経変性障害、創傷治癒、筋肉修復、心
筋修復、軟骨置換、関節炎、骨関節炎、歯科再生、盲目症、網膜色素上皮細胞の増殖性の
減退に起因する加齢性盲目症、難聴、骨髄機能不全、骨髄移植、糖尿病、筋ジストロフィ
ー、デュシェンヌ型筋ジストロフィー、遺伝病、遺伝子変異、及びDNA損傷からなる群
より選択される1つ以上の疾患又は健康状態である、項目4~9のいずれか一項に記載の
方法。
[18] 前記疾患又は健康状態が心臓の癌(例えば、血管肉腫、繊維肉腫、横紋筋肉腫
、脂肪肉腫、粘液腫、横紋筋腫、繊維腫、脂肪腫及び奇形腫);肺癌(例えば、気管支原
性癌(鱗状細胞、未分化小細胞、未分化大細胞、腺癌)、肺胞上皮(細気管支)癌、気管
支腺腫、肉腫、リンパ腫、軟骨性過誤腫、中皮腫);胃腸管癌(例えば、食道(扁平上皮
癌、腺癌、平滑筋肉腫、リンパ腫);胃癌(上皮癌、リンパ腫、平滑筋肉腫);膵臓癌(
膵管腺癌、インスリノーマ、グルカゴノーマ、ガストリノーマ、カルチノイド腫瘍、ビポ
ーマ);小腸癌(腺癌、リンパ腫、カルチノイド腫瘍、カポジ肉腫、平滑筋腫、血管腫、
脂肪腫、神経繊維腫、繊維腫);大腸癌(腺癌、管状腺腫、絨毛腺腫、過誤腫、平滑筋腫
);泌尿生殖路癌(例えば、腎臓(腺癌、ウィルムス腫瘍、腎芽腫、リンパ腫、白血病)
;膀胱癌及び尿道癌(扁平上皮癌、移行上皮癌、腺癌);前立腺癌(腺癌、肉腫);精巣
癌(精上皮腫、奇形腫、胎生期癌、奇形癌腫、絨毛癌、肉腫、間質細胞癌、繊維腫、繊維
腺腫、類腺腫瘍、脂肪腫);肝臓癌(例えば、肝癌(肝細胞癌)、胆管癌、肝芽腫、血管
肉腫、肝細胞腺腫、血管腫);骨癌(例えば、骨原性肉腫(骨肉腫)、繊維肉腫、悪性線
維性組織球腫、軟骨肉腫、ユーイング肉腫、悪性リンパ腫(細網肉腫)、多発性骨髄腫、
悪性巨細胞腫、脊索腫、骨軟骨腫(骨軟骨性外骨症)、良性軟骨腫、軟骨芽細胞腫、軟骨
粘液繊維腫、類骨骨腫及び巨細胞腫);神経系癌(例えば、頭骨(骨腫、血管腫、肉芽腫
、黄色腫、変形性骨炎)、髄膜(髄膜腫、髄膜肉腫、神経膠腫症)、脳(星状細胞腫、髄
芽腫、神経膠腫、上衣腫、胚細胞腫、松果体腫、多形神経膠芽腫、希突起神経膠腫、シュ
ワン細胞腫、網膜芽細胞腫、先天性腫瘍)、脊髄(神経繊維腫、髄膜腫、神経膠腫、肉腫
));婦人科癌(例えば、子宮(子宮内膜癌)、子宮頸部(子宮頸癌、腫瘍前子宮頸部異
形成症)、卵巣(卵巣癌、漿液性嚢胞腺癌、粘液性嚢胞腺癌、類内膜性腫瘍、ブレナー腫
瘍、明細胞癌、非分類癌、顆粒膜/莢膜細胞腫、セルトリ・ライディッヒ細胞腫、未分化
胚細胞腫、悪性奇形腫)、陰門(扁平上皮癌、上皮内癌、腺癌、繊維肉腫、黒色腫)、膣
(明細胞癌、扁平上皮癌、ブドウ状肉腫、胎児型横紋筋肉腫、卵管(癌));血液癌(例
えば、血液(骨髄性白血病(急性及び慢性)、急性リンパ芽球性白血病、慢性リンパ性白
血病、骨髄増殖性疾患、多発性骨髄腫、骨髄異型性症候群)、ホジキン病、非ホジキンリ
ンパ腫(悪性リンパ腫));皮膚癌(例えば、悪性黒色腫、基底細胞癌、扁平上皮癌、カ
ポジ肉腫、黒子、異型性母斑、脂肪腫、血管腫、皮膚繊維腫、ケロイド、乾癬);及び副
腎癌(例えば、神経芽細胞腫)からなる群より選択される癌である、項目4~9のいずれ
か一項に記載の方法。
[19] 前記疾患又は健康状態が甲状腺炎、グッドパスチャー病、リウマチ性関節炎、
若年性少関節炎、コラーゲン誘発関節炎、アジュバント誘発関節炎、シェーグレン症候群
、多発性硬化症、実験的自己免疫性脳脊髄炎、炎症性腸疾患、クローン病、潰瘍性大腸炎
、自己免疫性胃萎縮、尋常性天疱瘡、乾癬、尋常性白斑、1型糖尿病、非肥満糖尿病、重
症筋無力症、グレーブス病、橋本甲状腺炎、硬化性胆管炎、硬化性唾液腺炎、全身性エリ
テマトーデス、自己免疫性血小板減少性紫斑症、アジソン病、全身性硬化症、多発性筋炎
、皮膚筋炎、自己免疫性溶血性貧血、及び悪性貧血からなる群より選択される自己免疫疾
患である、項目4~9のいずれか一項に記載の方法。
[20] 前記疾患又は健康状態が副腎白質ジストロフィー(ALD)、アルコール中毒
症、アレキサンダー病、アルパーズ病、アルツハイマー病、筋委縮性側索硬化症、ルー・
ゲーリッグ病、毛細管拡張性運動失調症、バッテン病、シュピールマイヤー・フォクト・
シェーグレン・バッテン病、牛海綿状脳症(BSE)、カナバン病、脳性麻痺、コケイン
症候群、大脳皮質基底核変性症、クロイツフェルト・ヤコブ病、致死性家族性不眠症、前
頭側頭葉変性症、ハンチントン病、HIV関連認知症、ケネディ病、クラッベ病、レビー
小体型認知症、神経ボレリア症、マシャド・ジョセフ病、脊髄小脳失調症3型、多系統委
縮症、多発性硬化症、ナルコレプシー、ニーマンピック病、パーキンソン病、ペリツェウ
ス・メルツバッハー病、ピック病、原発性側索硬化症、プリオン病、進行性核上性麻痺、
レフサム病、サンドホフ病、シルダー病、亜急性連合性脊髄変性症併発性悪性貧血、シュ
ピールマイヤー・フォクト・シェーグレン・バッテン病、バッテン病、脊髄小脳失調症、
脊髄性筋委縮症、スティール・リチャードソン・オルゼウスキー病、脊髄癆、及び中毒性
脳症からなる群より選択される神経変性疾患である、項目4~9のいずれか一項に記載の
方法。
[21] 癌を治療する方法であって、治療を必要とする対象中の1つ以上の癌細胞にお
いてZscan4の発現を上昇させる薬剤を前記対象に投与することを含み、Zscan
4の発現上昇によって前記1つ以上の癌細胞の増殖を抑制することで前記癌を治療する、
前記方法。
[22] 癌患者における化学療法に対する応答性を改善する方法であって、応答性の改
善を必要とする対象に前記対象中の1つ以上の癌幹細胞における内在性ZSCAN4の発
現を低下させる薬剤を投与することを含み、内在性ZSCAN4の発現低下によって前記
1つ以上の癌幹細胞における1つ以上の化学療法剤に対する抵抗性を低下させ、又は除去
し、それによって前記対象において前記1つ以上の化学療法剤に対する応答性を改善する
、前記方法。
[23] 内在性ZSCAN4の発現を低下させる前記薬剤がZSCAN4に特異的なs
iRNA又はshRNAである、項目22に記載の方法。
[24] 前記癌が心臓の癌(例えば、血管肉腫、繊維肉腫、横紋筋肉腫、脂肪肉腫、粘
液腫、横紋筋腫、繊維腫、脂肪腫及び奇形腫);肺癌(例えば、気管支原性癌(鱗状細胞
、未分化小細胞、未分化大細胞、腺癌)、肺胞上皮(細気管支)癌、気管支腺腫、肉腫、
リンパ腫、軟骨性過誤腫、中皮腫);胃腸管癌(例えば、食道(扁平上皮癌、腺癌、平滑
筋肉腫、リンパ腫);胃癌(上皮癌、リンパ腫、平滑筋肉腫);膵臓癌(膵管腺癌、イン
スリノーマ、グルカゴノーマ、ガストリノーマ、カルチノイド腫瘍、ビポーマ);小腸癌
(腺癌、リンパ腫、カルチノイド腫瘍、カポジ肉腫、平滑筋腫、血管腫、脂肪腫、神経繊
維腫、繊維腫);大腸癌(腺癌、管状腺腫、絨毛腺腫、過誤腫、平滑筋腫);泌尿生殖路
癌(例えば、腎臓(腺癌、ウィルムス腫瘍、腎芽腫、リンパ腫、白血病);膀胱癌及び尿
道癌(扁平上皮癌、移行上皮癌、腺癌);前立腺癌(腺癌、肉腫);精巣癌(精上皮腫、
奇形腫、胎生期癌、奇形癌腫、絨毛癌、肉腫、間質細胞癌、繊維腫、繊維腺腫、類腺腫瘍
、脂肪腫);肝臓癌(例えば、肝癌(肝細胞癌)、胆管癌、肝芽腫、血管肉腫、肝細胞腺
腫、血管腫);骨癌(例えば、骨原性肉腫(骨肉腫)、繊維肉腫、悪性線維性組織球腫、
軟骨肉腫、ユーイング肉腫、悪性リンパ腫(細網肉腫)、多発性骨髄腫、悪性巨細胞腫、
脊索腫、骨軟骨腫(骨軟骨性外骨症)、良性軟骨腫、軟骨芽細胞腫、軟骨粘液繊維腫、類
骨骨腫及び巨細胞腫);神経系癌(例えば、頭骨(骨腫、血管腫、肉芽腫、黄色腫、変形
性骨炎)、髄膜(髄膜腫、髄膜肉腫、神経膠腫症)、脳(星状細胞腫、髄芽腫、神経膠腫
、上衣腫、胚細胞腫、松果体腫、多形神経膠芽腫、希突起神経膠腫、シュワン細胞腫、網
膜芽細胞腫、先天性腫瘍)、脊髄(神経繊維腫、髄膜腫、神経膠腫、肉腫));婦人科癌
(例えば、子宮(子宮内膜癌)、子宮頸部(子宮頸癌、腫瘍前子宮頸部異形成症)、卵巣
(卵巣癌、漿液性嚢胞腺癌、粘液性嚢胞腺癌、類内膜性腫瘍、ブレナー腫瘍、明細胞癌、
非分類癌、顆粒膜/莢膜細胞腫、セルトリ・ライディッヒ細胞腫、未分化胚細胞腫、悪性
奇形腫)、陰門(扁平上皮癌、上皮内癌、腺癌、繊維肉腫、黒色腫)、膣(明細胞癌、扁
平上皮癌、ブドウ状肉腫、胎児型横紋筋肉腫、卵管(癌));血液癌(例えば、血液(骨
髄性白血病(急性及び慢性)、急性リンパ芽球性白血病、慢性リンパ性白血病、骨髄増殖
性疾患、多発性骨髄腫、骨髄異型性症候群)、ホジキン病、非ホジキンリンパ腫(悪性リ
ンパ腫));皮膚癌(例えば、悪性黒色腫、基底細胞癌、扁平上皮癌、カポジ肉腫、黒子
、異型性母斑、脂肪腫、血管腫、皮膚繊維腫、ケロイド、乾癬);及び副腎癌(例えば、
神経芽細胞腫)からなる群より選択される、項目21~23のいずれか一項に記載の方法
。
[25] 1つ以上のヒト細胞のゲノム安定性を向上させる方法であって、前記1つ以上
のヒト細胞においてZscan4の発現を上昇させる薬剤と前記1つ以上のヒト細胞を接
触させることを含み、前記薬剤と接触していない1つ以上の対応するヒト細胞と比較する
とZscan4の発現上昇によって前記1つ以上のヒト細胞においてゲノム安定性が向上
する、前記方法。
[26] 1つ以上のヒト細胞のDNA修復能を向上させる方法であって、前記1つ以上
のヒト細胞においてZscan4の発現を上昇させる薬剤と前記1つ以上のヒト細胞を接
触させることを含み、前記薬剤と接触していない1つ以上の対応するヒト細胞と比較する
とZscan4の発現上昇によって前記1つ以上のヒト細胞におけるDNA修復能が向上
する、前記方法。
[27] 1つ以上のヒト細胞を若返らせる方法であって、前記1つ以上のヒト細胞にお
いてZscan4の発現を上昇させる薬剤と前記1つ以上のヒト細胞を接触させることを
含み、前記薬剤と接触していない1つ以上の対応するヒト細胞と比較するとZscan4
の発現上昇によって前記1つ以上のヒト細胞が若返る、前記方法。
[28] 皮膚を若返らせる方法、アトピー性皮膚炎を治療する方法、及び/又は皮膚損
傷を治療する方法であって、それらを必要とする対象の皮膚にZscan4の発現を上昇
させる薬剤を局所投与することを含む、前記方法。
[29] 脱毛を治療する方法であって、治療を必要とする対象の頭皮にZscan4の
発現を上昇させる薬剤を局所投与することを含む、前記方法。
[30] 白髪化を防止する方法、白髪化を治療する方法、又は両方の方法であって、そ
れらを必要とする対象の1つ以上の毛包にZscan4の発現を上昇させる薬剤を投与す
ることを含む、前記方法。
[31] 角膜を若返らせる方法であって、角膜の若返りを必要とする対象の角膜にZs
can4の発現を上昇させる薬剤を投与することを含む、前記方法。
[32] ドライアイを治療する方法であって、治療を必要とする対象の角膜にZsca
n4の発現を上昇させる薬剤を投与することを含む、前記方法。
[33] 特発性肺性線維症を治療する方法であって、治療を必要とする対象の肺にZs
can4の発現を上昇させる薬剤を投与することを含む、前記方法。
[34] アテローム性硬化症、冠動脈疾患、又はそれらの両方を治療する方法であって
、治療を必要とする対象の血流にZscan4の発現を上昇させる薬剤を投与することを
含む、前記方法。
[35] 1つ以上のヒト細胞において1種類以上の遺伝毒性物質に対する抵抗性を提供
する方法であって、前記1つ以上のヒト細胞においてZscan4の発現を上昇させる薬
剤と前記1つ以上のヒト細胞を接触させることを含み、前記薬剤と接触していない1つ以
上の対応するヒト細胞と比較するとZscan4の発現上昇によって前記1つ以上のヒト
細胞において1種類以上の遺伝毒性物質に対する抵抗性が上昇する、前記方法。
[36] 前記遺伝毒性物質がマイトマイシンC又はシスプラチンである、項目35に記
載の方法。
[37] 前記1つ以上のヒト細胞がヒト成体細胞である、項目1~36のいずれか一項
に記載の方法。
[38] 前記1つ以上のヒト細胞が成体幹細胞、組織幹細胞、始原細胞、又は人工多能
性幹細胞である、項目1~36のいずれか一項に記載の方法。
[39] 前記1つ以上のヒト細胞が造血幹細胞、間葉系幹細胞、脂肪幹細胞、神経幹細
胞、及び生殖幹細胞からなる群より選択される1つ以上の成体幹細胞、組織幹細胞、又は
始原細胞である、項目1~36のいずれか一項に記載の方法。
[40] 前記1つ以上のヒト細胞が体細胞、成熟細胞、又は分化細胞である、項目1~
36のいずれか一項に記載の方法。
[41] 前記1つ以上のヒト細胞が表皮細胞、線維芽細胞、リンパ球、肝細胞、上皮細
胞、筋細胞、軟骨細胞、骨細胞、脂肪細胞、心筋細胞、膵臓β細胞、ケラチノサイト、赤
血球、末梢血液細胞、神経細胞、星状細胞、生殖細胞、精細胞、及び卵母細胞からなる群
より選択される1つ以上の体細胞、成熟細胞、又は分化細胞である、項目1~36のいず
れか一項に記載の方法。
[42] 1つ以上のヒト人工多能性幹(iPS)細胞においてヒト胚性幹細胞様DNA
メチル化パターンを誘導するための方法であって、前記1つ以上のヒトiPS細胞におい
てZscan4の発現を上昇させる薬剤と前記1つ以上のヒトiPS細胞を接触させるこ
とを含み、前記薬剤と接触していない1つ以上の対応するヒトiPS細胞と比較するとZ
scan4の発現上昇によって前記1つ以上のヒトiPS細胞においてヒト胚性幹細胞様
DNAメチル化パターンが誘導される、前記方法。
[43] 1つ以上のヒト卵母細胞を若返らせる方法であって、前記1つ以上のヒト卵母
細胞においてZscan4の発現を上昇させる薬剤と前記1つ以上のヒト卵母細胞を接触
させることを含み、前記薬剤と接触していない1つ以上の対応するヒト卵母細胞と比較す
るとZscan4の発現上昇によって前記1つ以上のヒト卵母細胞が若返る、前記方法。
[44] 1つ以上のヒト卵母細胞のゲノム安定性を向上させる方法であって、前記1つ
以上のヒト卵母細胞においてZscan4の発現を上昇させる薬剤と前記1つ以上のヒト
卵母細胞を接触させることを含み、前記薬剤と接触していない1つ以上の対応するヒト卵
母細胞と比較するとZscan4の発現上昇によって前記1つ以上のヒト卵母細胞におけ
るゲノム安定性が向上する、前記方法。
[45] 1つ以上のヒト卵母細胞において1つ以上の核型異常を修正する方法であって
、前記1つ以上のヒト卵母細胞においてZscan4の発現を上昇させる薬剤と前記1つ
以上のヒト卵母細胞を接触させることを含み、前記薬剤と接触していない1つ以上の対応
するヒト卵母細胞と比較するとZscan4の発現上昇によって前記1つ以上のヒト卵母
細胞において前記1つ以上の核型異常の修正が誘導される、前記方法。
[46] 前記1つ以上のヒト卵母細胞がZscan4の発現を上昇させる前記薬剤との
接触前に対象から単離される、項目43~45のいずれか一項に記載の方法。
[47] Zscan4の発現を上昇させる前記薬剤との接触後に前記1つ以上のヒト卵
母細胞が体外受精を受ける、項目43~46のいずれか一項に記載の方法。
[48] 1つ以上のヒト受精卵母細胞のゲノム安定性を向上させるインビトロ方法であ
って、前記1つ以上のヒト受精卵母細胞においてZscan4の発現を上昇させる薬剤と
前記1つ以上のヒト受精卵母細胞を接触させることを含み、前記薬剤と接触していない1
つ以上の対応するヒト受精卵母細胞と比較するとZscan4の発現上昇によって前記1
つ以上のヒト受精卵母細胞においてゲノム安定性が向上する、前記方法。
[49] 1つ以上のヒト受精卵母細胞における1つ以上の核型異常を修正するインビト
ロ方法であって、前記1つ以上のヒト受精卵母細胞においてZscan4の発現を上昇さ
せる薬剤と前記1つ以上のヒト受精卵母細胞を接触させることを含み、前記薬剤と接触し
ていない1つ以上の対応するヒト受精卵母細胞と比較するとZscan4の発現上昇によ
って前記1つ以上のヒト受精卵母細胞において前記1つ以上の核型異常の修正が誘導され
る、前記方法。
[50] 前記1つ以上のヒト受精卵母細胞が体外受精によって受精した、項目48又は
項目49に記載の方法。
[51] 受精させられる前に前記1つ以上のヒト卵母細胞が対象から単離された、項目
50に記載の方法。
[52] 前記1つ以上の受精卵母細胞が1細胞期と胚盤胞期の間の胚である、項目48
~51のいずれか一項に記載の方法。
[53] テロメア異常に関連する疾患又は健康状態を治療する方法であって、
(i)テロメア異常に関連する疾患又は健康状態を患う対象よりヒト骨髄細胞を単離す
ること、
(ii)前記ヒト骨髄細胞においてZscan4の発現を上昇させる薬剤と前記ヒト骨
髄細胞を接触させ、Zscan4の発現上昇によって前記ヒト骨髄細胞においてテロメア
延長を誘導すること、及び
(iii)前記接触済みヒト骨髄細胞を前記対象に移植してテロメア異常に関連する前
記疾患又は健康状態を治療すること
を含む、前記方法。
[54] 染色体異常に関連する疾患又は健康状態を治療する方法であって、
(i)染色体異常に関連する疾患又は健康状態を患う対象よりヒト骨髄細胞を単離するこ
と、
(ii)前記ヒト骨髄細胞においてZscan4の発現を上昇させる薬剤と前記ヒト骨髄
細胞を接触させ、Zscan4の発現上昇によって前記ヒト骨髄細胞において前記染色体
異常の修正を誘導すること、及び
(iii)前記接触済みヒト骨髄細胞を前記対象に移植して染色体異常に関連する前記疾
患又は健康状態を治療すること
を含む、前記方法。
[55] 前記疾患又は健康状態がテロメア短縮疾患、骨髄機能不全症候群、加齢性テロ
メア短縮疾患又は障害、及び早期老化疾患又は障害からなる群より選択される1つ以上の
疾患又は健康状態である、項目53又は項目54に記載の方法。
[56] 前記疾患又は健康状態が先天性角化不全症、ホイエラール・レイダーソン症候
群、レーヴェース症候群、コーツプラス症候群、特発性肺性線維症、肝硬変、膵臓線維症
、アルツハイマー病、及び骨関節炎からなる群より選択されるテロメア短縮疾患である、
項目53又は項目54に記載の方法。
[57] 前記疾患又は健康状態がファンコーニ貧血、無巨核球性血小板減少症、再生不
良性貧血、ダイアモンド・ブラックファン貧血、先天性角化不全症、発作性夜間ヘモグロ
ビン尿症(PNH)、ピアソン症候群、シュバッハマン・ダイアモンド症候群、血小板減
少症、及び骨髄異型性症候群からなる群より選択される骨髄機能不全症候群である、項目
53又は項目54に記載の方法。
[58] 前記疾患又は健康状態がウェルナー症候群、ブルーム症候群、ハッチソン・ギ
ルフォード早老症候群、コケイン症候群、色素性乾皮症、毛細管拡張性運動失調症、ロス
モンド・トムソン症候群、硫黄欠乏性毛髪発育異常症、ジュバーグ・マルシジ症候群、及
びダウン症からなる群より選択される加齢性テロメア短縮疾患又は疾患、早期老化疾患又
は疾患、又はそれらの両方である、項目53又は項目54に記載の方法。
[59] 対象内の組織又は器官を若返らせる方法であって、組織又は器官の若返りを必
要とする対象に前記組織又は器官においてZscan4の発現を上昇させる薬剤を投与す
ることを含み、Zscan4の発現上昇によって前記組織又は器官を若返らせる、前記方
法。
[60] 若返りを必要とする対象を若返らせる方法であって、前記対象にZscan4
の発現を上昇させる薬剤を投与することを含み、Zscan4の発現上昇によって前記対
象を若返らせる、前記方法。
[61] 1つ以上のヒト細胞の寿命を延長する方法であって、前記対象中の1つ以上の
ヒト細胞においてZscan4の発現を上昇させる薬剤と前記1つ以上のヒト細胞を接触
させることを含み、前記薬剤と接触していない1つ以上の対応するヒト細胞と比較すると
Zscan4の発現上昇によって前記1つ以上のヒト細胞の寿命が延長される、前記方法
。
[62] 対象内の組織又は器官の寿命を延長する方法であって、組織又は器官の寿命の
延長を必要とする対象に前記組織又は器官においてZscan4の発現を上昇させる薬剤
を投与することを含み、Zscan4の発現上昇によって前記組織又は器官の寿命を延長
する、前記方法。
[63] 対象の寿命を延長する方法であって、寿命の延長を必要とする対象中の1つ以
上のヒト細胞においてZscan4の発現を上昇させる薬剤を前記対象に投与することを
含み、Zscan4の発現上昇によって前記1つ以上のヒト細胞の寿命を延長し、それに
よって前記対象の寿命を延長する、前記方法。
[64] 寿命の延長を必要とする対象の寿命を延長する方法であって、
(i)前記対象より1つ以上のヒト細胞を単離すること、
(ii)前記1つ以上のヒト細胞においてZscan4の発現を上昇させる薬剤と前記
1つ以上のヒト細胞を接触させ、Zscan4の発現上昇によって前記1つ以上のヒト細
胞の寿命を延長すること、及び
(iii)前記接触済みの1つ以上のヒト細胞を前記対象に投与して前記対象の寿命を
延長すること
を含む、前記方法。
[65] 1つ以上のヒト細胞において1つ以上のZscan4誘導性作用を測定するた
めの方法であって、
(i)1つ以上のヒト細胞においてZscan4の発現を上昇させる薬剤と前記1つ以上
のヒト細胞を接触させること、
(ii)前記1つ以上のヒト細胞におけるSERPINB4、DNMT3L、及び/又は
DUX4の発現レベルを測定すること、及び
(iii)前記1つ以上のヒト細胞におけるSERPINB4、DNMT3L、及び/又
はDUX4の発現レベルを前記薬剤と接触していない1つ以上の対応するヒト細胞におけ
るSERPINB4、DNMT3L、及び/又はDUX4の発現レベルと比較し、前記1
つ以上のヒト細胞におけるSERPINB4、DNMT3L、及び/又はDUX4の発現
レベルの上昇によって前記1つ以上のヒト細胞における1つ以上のZscan4誘導性作
用の存在を示すこと
を含む、前記方法。
[66] 前記Zscan4の発現上昇が一時的なものである、項目1~65のいずれか
一項に記載の方法。
[67] 前記薬剤がZscan4発現を約1時間~約23時間にわたって上昇させる、
項目1~66のいずれか一項に記載の方法。
[68] 前記薬剤がZscan4発現を約1日~約10日にわたって上昇させる、項目
1~66のいずれか一項に記載の方法。
[69] 前記薬剤が内在性Zscan4と直接的に相互作用してZscan4の発現を
上昇させる、項目1~68のいずれか一項に記載の方法。
[70] 前記薬剤がZscan4をコードする単離核酸分子である、項目1~68のい
ずれか一項に記載の方法。
[71] 前記単離核酸分子が合成mRNAである、項目70に記載の方法。
[72] 前記単離核酸分子がベクターを含む、項目70に記載の方法。
[73] 前記ベクターがウイルスベクターである、項目72に記載の方法。
[74] 前記ウイルスベクターがパラミクソウイルスベクター、レトロウイルスベクタ
ー、レンチウイルスベクター、又はアデノウイルスベクターである、項目73に記載の方
法。
[75] 前記ウイルスベクターがパラミクソウイルスベクターである、項目73に記載
の方法。
[76] 前記パラミクソウイルスベクターがセンダイウイルスベクターである、項目7
5に記載の方法。
[77] 前記ベクターがプラスミドベクターである、項目72に記載の方法。
[78] 前記ベクターがプロモーターに機能的に結合しているZscan4をコードす
る、項目72~77のいずれか一項に記載の方法。
[79] 前記プロモーターが構成的プロモーターである、項目78に記載の方法。
[80] 前記プロモーターが誘導性プロモーターである、項目78に記載の方法。
[81] 前記Zscan4がZscan4-ERT2融合タンパク質である、項目70
~80のいずれか一項に記載の方法。
[82] 前記Zscan4がZscan4-ΔCタンパク質である、項目70~80の
いずれか一項に記載の方法。
[83] 前記Zscan4-ΔCタンパク質が少なくとも1つのジンクフィンガードメ
インの欠失を含む、項目82に記載の方法。
[84] 前記Zscan4がマウスZscan4、ヒトZSCAN4、又はそれらのホ
モログである、項目70~83のいずれか一項に記載の方法。
[85] 前記Zscan4がZscan4a、Zscan4b、Zscan4c、Zs
can4d、Zscan4e、及びZscan4fからなる群より選択される、項目70
~83のいずれか一項に記載の方法。
[86] 前記単離核酸分子が配列番号1~10及び21~30からなる群より選択され
るヌクレオチド配列に対して少なくとも70%、少なくとも75%、少なくとも80%、
少なくとも85%、少なくとも86%、少なくとも87%、少なくとも88%、少なくと
も89%、少なくとも90%、少なくとも91%、少なくとも92%、少なくとも93%
、少なくとも94%、少なくとも95%、少なくとも96%、少なくとも97%、少なく
とも98%、少なくとも99%、又は100%同一であるヌクレオチド配列を含む、項目
70~83のいずれか一項に記載の方法。
[87] 前記Zscan4がヒトZSCAN4である、項目70~83のいずれか一項
に記載の方法。
[88] 前記単離核酸分子が配列番号7に対して少なくとも70%、少なくとも75%
、少なくとも80%、少なくとも85%、少なくとも86%、少なくとも87%、少なく
とも88%、少なくとも89%、少なくとも90%、少なくとも91%、少なくとも92
%、少なくとも93%、少なくとも94%、少なくとも95%、少なくとも96%、少な
くとも97%、少なくとも98%、少なくとも99%、又は100%同一であるヌクレオ
チド配列を含む、項目70~83のいずれか一項に記載の方法。
[89] 前記薬剤がZscan4タンパク質である、項目1~68のいずれか一項に記
載の方法。
[90] 前記Zscan4タンパク質が細胞透過性ペプチドに融合されている、項目8
9に記載の方法。
[91] 前記細胞透過性ペプチドがタンパク質導入ドメインを含む、項目90に記載の
方法。
[92] 前記細胞透過性ペプチドがポリアルギニンペプチドタグを含む、項目90又は
項目91に記載の方法。
[93] 前記Zscan4タンパク質がナノ粒子内に封入される、項目89に記載の方
法。
[94] 前記Zscan4タンパク質がマウスZscan4タンパク質、ヒトZSCA
N4タンパク質、又はそれらのホモログである、項目89~93のいずれか一項に記載の
方法。
[95] 前記Zscan4タンパク質がZscan4aタンパク質、Zscan4bタ
ンパク質、Zscan4cタンパク質、Zscan4dタンパク質、Zscan4eタン
パク質、及びZscan4fタンパク質からなる群より選択される、項目89~93のい
ずれか一項に記載の方法。
[96] 前記Zscan4タンパク質が配列番号11~20及び31~40からなる群
より選択されるアミノ酸配列に対して少なくとも70%、少なくとも75%、少なくとも
80%、少なくとも85%、少なくとも86%、少なくとも87%、少なくとも88%、
少なくとも89%、少なくとも90%、少なくとも91%、少なくとも92%、少なくと
も93%、少なくとも94%、少なくとも95%、少なくとも96%、少なくとも97%
、少なくとも98%、少なくとも99%、又は100%同一であるアミノ酸配列を含む、
項目89~93のいずれか一項に記載の方法。
[97] 前記Zscan4タンパク質がヒトZSCAN4タンパク質である、項目89
~93のいずれか一項に記載の方法。
[98] 前記Zscan4タンパク質が配列番号17に対して少なくとも70%、少な
くとも75%、少なくとも80%、少なくとも85%、少なくとも86%、少なくとも8
7%、少なくとも88%、少なくとも89%、少なくとも90%、少なくとも91%、少
なくとも92%、少なくとも93%、少なくとも94%、少なくとも95%、少なくとも
96%、少なくとも97%、少なくとも98%、少なくとも99%、又は100%同一で
あるアミノ酸配列を含む、項目89~93のいずれか一項に記載の方法。
[99] 前記Zscan4タンパク質がZscan4-ERT2融合タンパク質である
、項目89~98のいずれか一項に記載の方法。
[100] 前記Zscan4タンパク質がZscan4-ΔCタンパク質である、項目
89~93のいずれか一項に記載の方法。
[101] 前記Zscan4-ΔCタンパク質がマウスZscan4タンパク質、ヒト
ZSCAN4タンパク質、又はそれらのホモログを含み、前記Zscan4タンパク質が
少なくとも1つのジンクフィンガードメインの欠失を含む、項目100に記載の方法。
[102] 前記Zscan4-ΔCタンパク質がZscan4aタンパク質、Zsca
n4bタンパク質、Zscan4cタンパク質、Zscan4dタンパク質、Zscan
4eタンパク質、及びZscan4fタンパク質からなる群より選択されるZscan4
タンパク質を含み、前記Zscan4タンパク質が少なくとも1つのジンクフィンガード
メインの欠失を含む、項目100に記載の方法。
[103] 前記Zscan4-ΔCタンパク質がヒトZSCAN4タンパク質を含み、
前記ZSCAN4タンパク質が少なくとも1つのジンクフィンガードメインの欠失を含む
、項目100に記載の方法。
[104] 前記薬剤がレチノイド又は酸化ストレスを誘発する薬剤である、項目1~6
8のいずれか一項に記載の方法。
Claims (10)
- ヒト対象から単離された1つ以上のヒト骨髄細胞または血液細胞においてテロメア長を増加させる方法であって、前記1つ以上のヒト骨髄細胞または血液細胞に、ヒトZscan4をコードする単離された核酸分子をインビトロで導入することを含み、ここで、ヒトZscan4をコードする単離された核酸分子の導入は、前記単離された核酸と接触さ
れていないヒト骨髄細胞または血液細胞と比較して、前記1つ以上のヒト骨髄細胞または血液細胞においてテロメアの伸長を誘導し、そしてここで、前記単離された核酸分子は、合成mRNAまたはセンダイウイルスベクター中に構成される、前記方法。 - ヒトZscan4をコードする前記単離された核酸分子の導入が、Zscan4活性を一過性に増加させる、請求項1に記載の方法。
- 前記ヒト骨髄細胞または血液細胞が造血幹細胞を含む、請求項1または2に記載の方法。
- 前記ヒト骨髄細胞または血液細胞が造血幹細胞および間葉系幹細胞を含む、請求項1または2に記載の方法。
- 前記単離された核酸分子が合成mRNA中に構成される、請求項1~4のいずれか1項に記載の方法。
- 前記合成mRNAが、前記ヒトZscan4タンパク質をコードするDNA鋳型から、5-メチルシチジントリホスフェート及びシュードウリジントリホスフェートの存在下でin vitro転写により産生される、請求項5に記載の方法。
- 前記単離された核酸分子がセンダイウイルスベクターに構成される、請求項1~4のいずれか1項に記載の方法。
- 前記センダイウイルスベクターが温度感受性センダイウイルスベクターである、請求項7に記載の方法。
- 前記ヒト骨髄細胞または血液細胞がテロメア異常を有さない、請求項1~8のいずれか1項に記載の方法。
- 前記ヒト骨髄細胞または血液細胞が核型異常を有さない、請求項1~8のいずれか1項に記載の方法。
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