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JPS6119236B2 - - Google Patents
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JPS6119236B2 - - Google Patents

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Publication number
JPS6119236B2
JPS6119236B2 JP4833977A JP4833977A JPS6119236B2 JP S6119236 B2 JPS6119236 B2 JP S6119236B2 JP 4833977 A JP4833977 A JP 4833977A JP 4833977 A JP4833977 A JP 4833977A JP S6119236 B2 JPS6119236 B2 JP S6119236B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
valine
fermentation
strain
assimilation source
production
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired
Application number
JP4833977A
Other languages
Japanese (ja)
Other versions
JPS52130986A (en
Inventor
Kon Deyuku Nyuen
Bowarie Moniku
Ranjuru Karuru
Jozefu Hon Bunoa
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
LES PRODUITS ORGANIQUES
Original Assignee
LES PRODUITS ORGANIQUES
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Filing date
Publication date
Application filed by LES PRODUITS ORGANIQUES filed Critical LES PRODUITS ORGANIQUES
Publication of JPS52130986A publication Critical patent/JPS52130986A/en
Publication of JPS6119236B2 publication Critical patent/JPS6119236B2/ja
Granted legal-status Critical Current

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Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P13/00Preparation of nitrogen-containing organic compounds
    • C12P13/04Alpha- or beta- amino acids
    • C12P13/08Lysine; Diaminopimelic acid; Threonine; Valine

Landscapes

  • Organic Chemistry (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

【発明の詳細な説明】[Detailed description of the invention]

本発明は発酵によるL−バリンの生産方法に関
する。L−バリンの多数の生産方法が提案されて
いる。最善の結果は、その発育にイソロイシンを
必要とするブレビバクテリウム突然変異体とコリ
ネバクテリウム突然変異体を用いて得られてい
る。更に最近では、チアゾールアラニンに対する
耐性を主な特徴とするブレビバクテリウム突然変
異体とコリネバクテリウム突然変異体によるL−
バリンの生物学的生産方法が味の素(株)により発表
されている。しかし、この方法により生産される
L−バリンの量は少く、又多くは多量の他アミノ
酸(例えばL−スレオニン)の存在下で生産され
るので抽出コスト、精製コストが増加することが
発見されている。 L−バリンは人間及び他動物にとり不可欠であ
り、それゆえ、人間用医薬、獣医薬中に幅広く使
用できる。しかし、その用途を薬学分野に限定し
ないようにするためには、L−バリンを経済的に
かつ十分な純度で得なければならない。 今や、その発酵を追つて述べる新規微生物によ
り実施するならばかなりの量のL−バリンを発酵
液中に得ることができることが発見された。更
に、相当量のL−バリンを得るためには発酵培地
中の主要窒素源としてアンモニウムを酢酸塩の形
で使用することがかなり重要であることも発見さ
れた。以上に述べた本発明の特徴と利点とは、以
下の記載により一層明らかになるであろう。 本発明の目的は、その発育がシステイン酸とL
−スレオニンンの混合物、又はシステイン酸とL
−バリンとの混合物による共同阻止作用に服する
ことを特徴とするコリネバクテリウム グルタミ
カム(Corynebacterium glutamicum)菌株を使
用することにより達成される。これら菌株は、既
知の突然変異誘発剤を使用しての通常の突然変異
誘発法によりL−グルタミン酸生産菌株から得ら
れる。共同阻止作用とは、上記化合物、即ちシス
テイン酸、L−バリン、L−スレオニンの各々は
該突然変異菌株の発育に対してほんのわずかな悪
影響しか持たず、かつこの影響力はその親菌株に
対するのと類似しているにもかかわらず、該菌株
がシステイン酸とL−バリンとの混合物、又はシ
ステイン酸とL−スレオニンとの混合物の存在下
では実際上は全く発育を示さないことを意味す
る。 該共同阻止現象は実施例1で例示する。 本発明で使用される菌株の別の特徴は、酢酸ア
ンモニウムが主要窒素源として使用されるならば
L−バリンの生産が非常に好ましい影響を受ける
ということである。 L−バリンの生産に対する酢酸アンモニウムの
非常に好ましい影響は実施例2に例示する。実施
例2には、L−バリンの生産量を高めるためには
少くとも25g/の酢酸アンモニウムを培地に導
入する必要があることが示されている。 酢酸アンモニウムは単独ででも、又は他の通常
の窒素源(例えば他アンモニウム塩、尿素、精糖
工業で得られる糖密、コーン浸液、ペプトン、イ
ーストエキス、ミートエキス、様々な水解物等)
と混合しても使用できる。 更に詳細には、本発明の目的は、前記特性の全
てを示す変異株の解離により得られるコリネバク
テリウム グルタミカムI−026菌株(工業技術
院微生物工業技術研究所寄託番号4035)の使用に
より達成される。 コリネバクテリウム グルタミカム菌株は、次
の方法によりグルタミン酸生産菌株をN−メチ
ル、N′−ニトロ−N−ニトロソグアニジン
(NTG)により突然変異させて得られる菌株を栄
養培地+L−バリンで変異させて単離された。
The present invention relates to a method for producing L-valine by fermentation. A number of methods for producing L-valine have been proposed. The best results have been obtained using Brevibacterium and Corynebacterium mutants that require isoleucine for their development. More recently, L-
Ajinomoto Co., Inc. has announced a biological production method for valine. However, it has been discovered that the amount of L-valine produced by this method is small, and that it is often produced in the presence of large amounts of other amino acids (such as L-threonine), which increases extraction and purification costs. There is. L-valine is essential for humans and other animals and therefore has wide use in human and veterinary medicine. However, in order not to limit its use to the pharmaceutical field, L-valine must be obtained economically and with sufficient purity. It has now been discovered that significant amounts of L-valine can be obtained in the fermentation broth if the fermentation is carried out with the new microorganisms described below. Furthermore, it has also been discovered that in order to obtain significant amounts of L-valine it is of considerable importance to use ammonium in the form of acetate as the main nitrogen source in the fermentation medium. The features and advantages of the present invention described above will become clearer from the following description. The object of the present invention is that the growth of cysteic acid and L
- mixture of threonine or cysteic acid and L
- achieved by using a Corynebacterium glutamicum strain, which is characterized by being subject to a co-inhibitory effect by a mixture with valine. These strains are obtained from L-glutamic acid producing strains by conventional mutagenesis methods using known mutagenic agents. Co-inhibitory action means that each of the above compounds, namely cysteic acid, L-valine, and L-threonine, has only a slight negative effect on the growth of the mutant strain, and that this influence is greater than that of the parent strain. This means that the strain shows virtually no growth in the presence of a mixture of cysteic acid and L-valine, or a mixture of cysteic acid and L-threonine. The co-inhibition phenomenon is illustrated in Example 1. Another feature of the strain used in the present invention is that the production of L-valine is very favorably influenced if ammonium acetate is used as the main nitrogen source. The highly favorable influence of ammonium acetate on the production of L-valine is illustrated in Example 2. Example 2 shows that in order to increase the production of L-valine it is necessary to introduce at least 25 g/ammonium acetate into the medium. Ammonium acetate can be used alone or in combination with other common nitrogen sources (e.g. other ammonium salts, urea, molasses from the sugar industry, corn infusion, peptone, yeast extract, meat extract, various hydrolysates, etc.)
It can also be used in combination with More specifically, the object of the present invention is achieved by the use of Corynebacterium glutamicum I-026 strain (National Institute of Microbial Technology, Agency of Industrial Science and Technology, deposit number 4035) obtained by dissociation of a mutant strain exhibiting all of the above characteristics. Ru. The Corynebacterium glutamicum strain is obtained by mutating a glutamic acid producing strain with N-methyl, N'-nitro-N-nitrosoguanidine (NTG) using a nutrient medium + L-valine, using the following method. Separated.

【表】 ↓
コリネバクテリウム グルタミカム I−026
初めのグルタミン酸生産菌株の特徴と比較して
のI−026菌株の特徴を表1に示す。この2菌株
の特徴的相異は、アセトイン生産テスト即ちホゲ
ス・プロスカウエルテストに対する反応にある。 炭素源としては炭水化物、グルコース、フルク
トース、マンノース、ガラクトース、シユクロー
ス、糖密等を単独で、又は混合して使用できる。 添加される無機化合物は、硫酸マグネシウム、
リン酸二水素カリウム、リン酸−水素カリウム、
硫酸鉄その他の普通に用いられる塩の様な必須無
機塩;マンガン、カルシウム等である。 ビタミンを加えることも、培地が全くの合成で
ある場合には特に必要である。 本発明の発酵は普通の好気性条件下で、例えば
撹拌し、滅菌空気を導入し、25〜37℃の、好まし
くは25〜33℃の温度で実施する。PHは5〜9、好
ましくは7〜8.5に維持する。培養中にPHが低下
する傾向があるので、例えばアンモニアを導入し
て調整する。 培養は一般には2〜5日間続ける。この間に相
当量のL−バリンが発酵液中に蓄積する。他のア
ミノ酸も見い出されるが、L−バリンの生産量に
比較すれば無視できる量である。 以下の実施例は、本発明の実施方法をより十分
に理解できるようにするための例示である。 実施例 1 母菌株とその突然変異I−026菌株とを試験管
内での発育比較テストに付した。各管には5mlの
培地を含めた。塩溶液で一度洗つた菌株浮遊液を
接種した。 培地を回転撹拌機上で24時間30℃で培養させ
た。 10倍に希釈した後にベツクマン分光光度計
(UV24、10mmバツト)でその光学的濃密(650n
m)を読み取つた。
[Table] ↓
Corynebacterium glutamicum I−026
Table 1 shows the characteristics of the I-026 strain compared to the characteristics of the original glutamic acid-producing strain. The characteristic difference between these two strains lies in their response to the acetoin production test, ie, the Hoges-Proskauer test. As the carbon source, carbohydrates, glucose, fructose, mannose, galactose, sucrose, molasses, etc. can be used alone or in combination. The inorganic compounds added are magnesium sulfate,
Potassium dihydrogen phosphate, potassium hydrogen phosphate,
Essential inorganic salts such as iron sulfate and other commonly used salts; manganese, calcium, etc. Addition of vitamins is also necessary, especially if the medium is completely synthetic. The fermentation according to the invention is carried out under normal aerobic conditions, for example with stirring and introduction of sterile air, at a temperature of 25-37°C, preferably 25-33°C. The PH is maintained between 5 and 9, preferably between 7 and 8.5. Since pH tends to decrease during culture, adjust it by introducing ammonia, for example. Cultivation is generally continued for 2 to 5 days. During this time, a considerable amount of L-valine accumulates in the fermentation liquid. Other amino acids are also found, but in negligible amounts compared to the amount of L-valine produced. The following examples are illustrative so that the manner in which the invention may be practiced may be more fully understood. Example 1 The mother strain and its mutant strain I-026 were subjected to an in vitro growth comparison test. Each tube contained 5 ml of medium. A suspension of bacterial strains washed once with a salt solution was inoculated. The medium was incubated at 30°C for 24 hours on a rotary stirrer. After dilution 10 times, its optical density (650n
m) was read.

【表】【table】

【表】【table】

【表】 実施例 2 L−バリンの実験室生産 使用した炭水化物源=糖密 傾斜栄養ゲロースで24時間、30℃で培養させた
I−026菌株を使用した。このゲロースの培養後
に、次の組成を持つ、予め培養した培地に接種し
た。
[Table] Example 2 Laboratory production of L-valine Carbohydrate source used = molasses Strain I-026 cultured at 30°C for 24 hours on gradient gelose was used. After culturing this gelose, it was inoculated into a previously cultured medium having the following composition.

【表】【table】

【表】 200r.p.m.の回転撹拌機上で30℃で8時間培養
後に次の生産培地に接種(接種割合6%)した。
[Table] After culturing at 30°C for 8 hours on a rotary stirrer at 200 rpm, the following production medium was inoculated (inoculation rate: 6%).

【表】【table】

【表】 200r.p.mの回転撹拌機上で30℃で72時間発酵
させた後に18.5g/のL−バリンを得た。 実施例 3 使用される窒素源がL−バリンの生産に及ぼす
影響 再びI−026菌株を使用した。方法は、予備培
養段階までは実施例2の方法と同一だつた。生物
学的生産段階での方法も実施例2のものと同一だ
つた。使用した培地は、L−バリンの生産に対す
るその影響を調べた窒素源を除けば同一だつた。 72時間の培養後に得られたL−バリンの量は使
用した窒素源に依存した。その結果を次表に示
す。
Table: 18.5 g/L-valine was obtained after fermentation for 72 hours at 30° C. on a rotary stirrer at 200 rpm. Example 3 Effect of the nitrogen source used on the production of L-valine The I-026 strain was again used. The method was the same as that of Example 2 up to the pre-culture stage. The method at the biological production stage was also the same as in Example 2. The medium used was the same except for the nitrogen source, whose effect on L-valine production was investigated. The amount of L-valine obtained after 72 hours of cultivation was dependent on the nitrogen source used. The results are shown in the table below.

【表】 実施例 4 実験条件は実施例2に記載のものと同様だつ
た。しかし、今回使用した窒素源はアンモニウム
塩の混合物、即ち酢酸塩と硫酸塩、であつた。次
表に酢酸塩と硫酸塩の各々の使用量に依存して得
られたL−バリンの量を示す(アンモニアの割合
は一定)。
[Table] Example 4 Experimental conditions were similar to those described in Example 2. However, the nitrogen source used this time was a mixture of ammonium salts, namely acetate and sulfate. The following table shows the amount of L-valine obtained depending on the amount of acetate and sulfate used (the proportion of ammonia is constant).

【表】 実施例 5 予備培養段階までは実施例2と同一の方法を適
用した。生物学的生産も実施例2と同様に行つた
が、培地は次の組成のものを使用した。
[Table] Example 5 The same method as in Example 2 was applied up to the preculture stage. Biological production was also carried out in the same manner as in Example 2, but the medium used had the following composition.

【表】 72時間後に13g/のL−バリンが得られた。 実施例 6 L−バリンの半工業的生産 (1) 接種物の調製 コリネバクテリウムI−026菌株を傾斜栄養
ゲロースで24時間、30℃で培養した。6三角
コルベンに1の脱塩水当たり次の組成を持つ
1.5の培地に2本分の該ゲロースを接種し
た。
[Table] After 72 hours, 13 g/L-valine was obtained. Example 6 Semi-industrial production of L-valine (1) Preparation of inoculum Corynebacterium I-026 strain was cultured at 30° C. in nutrient gelose gradient for 24 hours. 6 triangular kolben has the following composition per 1 demineralized water
Two bottles of the gelose were inoculated into 1.5 medium.

【表】 30℃で18時間、回転撹拌機上で培養させた。 (2) 予備培養 4の脱塩水を含む10バツト中に、次表に
示す成分を溶解ないし懸濁させた。
[Table] Cultured on a rotary stirrer for 18 hours at 30°C. (2) Preliminary culture The components shown in the following table were dissolved or suspended in 10 vats containing the demineralized water from Step 4.

【表】 培地を125℃で30分間オートクレーブ滅菌し
た。滅菌後のPHは5.70であり、これをアンモニ
アで7.80に調整した。 ついで320mlの前記接種物を接種した。PHは
7に等しくなつた。培養を600r.p.mで撹拌し
ながら、又1v/v・分で通気しながら約14時
間行つた。PHは徐々に変化して、培養終了時に
は5.40に達した。 (3) 生産 生産培地は、1の脱塩水当たり次の組成を
持つていた。
[Table] The culture medium was sterilized by autoclaving at 125°C for 30 minutes. The pH after sterilization was 5.70, which was adjusted to 7.80 with ammonia. Then 320 ml of the above inoculum was inoculated. The PH became equal to 7. The culture was carried out for about 14 hours with stirring at 600 rpm and aeration at 1 v/v min. The pH gradually changed and reached 5.40 at the end of the culture. (3) Production The production medium had the following composition per 1 part demineralized water.

【表】【table】

【表】 小さな14発酵機をこの工程では使用した。 成分を7の水に溶解した。PHは7.20であつ
た。オートクレーブ滅菌を123℃で30分間行つ
た。滅菌後のPHは6.75だつた。これに700mlの
予備培養物を接種した。PHは7.30に上昇した。
培養を30℃で64時間行つた(撹拌=600r.p.m.
、通気=1v/v・分)。PHは7.30から8(即ち
それに調整すべき値)に自然に上昇した。培養
中には糖密を供給して、3%という残留糖の割
合を維持した。その供給を停止して、発酵終了
時の残留糖の割合を1%未満とした。シリコー
ンをベースとした消泡剤を必要に応じて加え
た。 64時間後に373gのL−バリン、即ち発酵液
1当たり36.4gのL−バリンを得た。糖導入
量に対する割合として表される収率は約19%だ
つた。小量(発酵液1当たり合計で3.76g。
その約50%は糖密によりもたらされた)のロイ
シンとイソロイシンとが発見された。
[Table] A small 14 fermenter was used in this process. The ingredients were dissolved in 7 parts of water. The pH was 7.20. Autoclave sterilization was performed at 123°C for 30 minutes. The pH after sterilization was 6.75. This was inoculated with 700 ml of preculture. PH rose to 7.30.
Cultivation was carried out at 30°C for 64 hours (stirring = 600 r.pm).
, ventilation = 1v/v・min). The PH rose naturally from 7.30 to 8 (ie the value to be adjusted to). Molecule was supplied during the culture to maintain a residual sugar percentage of 3%. The feed was stopped so that the percentage of residual sugar at the end of fermentation was less than 1%. A silicone-based antifoam agent was added as needed. After 64 hours, 373 g of L-valine, ie 36.4 g of L-valine per fermentation liquid, was obtained. The yield expressed as a percentage of the amount of sugar introduced was about 19%. Small amount (3.76g in total per fermentation liquid).
Leucine and isoleucine (about 50% of which was derived from glycosylation) were discovered.

【表】【table】

【表】 当然に、本発明は例示目的のみで示されたその
態様に決つして限定されるものではない。
TABLE Naturally, the invention is in no way limited to the embodiments thereof shown for illustrative purposes only.

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1 発酵によるL−バリンの生産方法において、
その発育がシステイン酸とL−バリンとの相乗作
用混合物、又はシステイン酸とL−スレオニンと
の相乗作用混合物により阻止されるコリネバクテ
リウムグルタミカム突然変異株を、その発育に必
要な少くとも1種の炭素資化源、少くとも1種の
窒素資化源、有機栄養成分及び無機栄養成分を含
む発酵培地で培養させることを特徴とする方法。 2 使用微生物が工業技術院微生物工業技術研究
所に寄託番号4035で寄託されているコリネバクテ
リウムグルタミカム菌である、特許請求の範囲第
1項記載の方法。 3 炭素資化源として炭水化物を使用する、特許
請求の範囲第1項記載の方法。 4 炭素資化源として糖密を使用する、特許請求
の範囲第1項記載の方法。 5 窒素資化源として酢酸アンモニウムを使用す
る、特許請求の範囲第1項記載の方法。 6 酢酸アンモニウムの使用量が発酵培地の1
当たり20〜35gを占める、特許請求の範囲第5項
記載の方法。 7 発酵を5〜9のPH、25〜37℃の温度で行う、
特許請求の範囲第1項記載の方法。 8 発酵を7〜8.5のPH、30〜33℃の温度で行
う、特許請求の範囲第1項記載の方法。
[Claims] 1. A method for producing L-valine by fermentation,
at least one mutant strain of Corynebacterium glutamicum, the growth of which is inhibited by a synergistic mixture of cysteic acid and L-valine or a synergistic mixture of cysteic acid and L-threonine; A method characterized by culturing in a fermentation medium containing a carbon assimilation source, at least one nitrogen assimilation source, an organic nutrient component, and an inorganic nutrient component. 2. The method according to claim 1, wherein the microorganism used is Corynebacterium glutamicum, which has been deposited with the Institute of Microbial Technology, Agency of Industrial Science and Technology under deposit number 4035. 3. The method according to claim 1, which uses carbohydrates as a carbon assimilation source. 4. The method according to claim 1, which uses molasses as a carbon assimilation source. 5. The method according to claim 1, wherein ammonium acetate is used as a nitrogen assimilation source. 6 The amount of ammonium acetate used is 1 of the fermentation medium.
6. The method according to claim 5, comprising 20 to 35 g per serving. 7. Fermentation is carried out at a pH of 5 to 9 and a temperature of 25 to 37°C.
A method according to claim 1. 8. The method according to claim 1, wherein the fermentation is carried out at a pH of 7 to 8.5 and a temperature of 30 to 33°C.
JP4833977A 1976-04-26 1977-04-26 Production of llvaline by fermentation Granted JPS52130986A (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
FR7612326A FR2349651A1 (en) 1976-04-26 1976-04-26 L-VALINE FERMENTATION PRODUCTION PROCESS

Publications (2)

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JPS52130986A JPS52130986A (en) 1977-11-02
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DE (1) DE2718281A1 (en)
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IT1075096B (en) 1985-04-22
ES458192A1 (en) 1978-04-01
NL7704551A (en) 1977-10-28
JPS52130986A (en) 1977-11-02
DE2718281C2 (en) 1987-09-24
DE2718281A1 (en) 1977-11-10
FR2349651B1 (en) 1978-08-25
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