JPS6231702B2 - - Google Patents
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- JPS6231702B2 JPS6231702B2 JP53078627A JP7862778A JPS6231702B2 JP S6231702 B2 JPS6231702 B2 JP S6231702B2 JP 53078627 A JP53078627 A JP 53078627A JP 7862778 A JP7862778 A JP 7862778A JP S6231702 B2 JPS6231702 B2 JP S6231702B2
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Description
本発明は活性型ビタミンD3類の製造法に関す
る。
更に詳しくは、温血動物のカルシウム代謝を調
節するに有用な活性型ビタミンD3類を、高収率
で製造する工業的に極めて価値ある方法を提供す
るものである。
従来、例えば、活性型ビタミンD3の1つであ
る1α−ヒドロキシコレカルシフエロールの製造
法としては、特開昭48−62750号公報に記載され
ている通り、コレステロールより出発して17工程
以上の数多くの工程を経て製造する方法が知られ
ており、また、特開昭51−110554号公報にもコレ
ステロールより出発する全く別異の方法であるが
1α−ヒドロキシコレカルシフエロールを製造す
る方法が知られている。そして、これらのいずれ
の方法も、1α,3β−ジアセトキシコレスタ−
5,7−ジエンに紫外線を照射し、1α,3β−
ジアセトキシプレビタミンD3とし、次いでこれ
を1α,3β−ジアセトキシビタミンD3に変換
する工程を最終工程として記載している。
しかるに、例えば、特開昭48−62750号公報の
実施例に記載されている通り、1α,3β−ジア
セトキシコレスタ−5,7−ジエン600μgに紫
外線を照射し製造される1α,3β−ジアセトキ
シプレビタミンD3の収量は120μg(収率20%)
にすぎず、また、特開昭51−110554号公報の例3
にも記載されている通り、1α,3β−ジアセト
キシコレスタ−5,7−ジエン135mgから13mgの
1α−ヒドロキシコレカルシフエロールと8mgの
1α−ヒドロキシプレビタミンD3が得られてい
るにすぎない。
これら2つの1α−ヒドロキシコレカルシフエ
ロールの製造法に関する先駆者の特許出願および
その後に発表されたそれ以外の特許出願あるいは
文献発表からしても1α−ヒドロキシコレカルシ
フエロール等のいわゆる活性型ビタミンD3を製
造する方法としては、相当する1α,3β−ジヒ
ドロキシコレスタ−5,7−ジエン類もしくはそ
の水酸基保護誘導体に紫外線を照射してプレビタ
ミンD3を製造する反応工程は、工業的な活性型
ビタミンD3の製造工程として極めて重要な意味
を有していると考えられる。
しかしながら、前記した例から明らかな通り、
活性型ビタミンD3を製造する全工程数は極めて
多く、それ故全収率は当然に低下するが、とりわ
け最終工程に近い上記紫外線照射の工程における
収率向上は、直接目的物である活性型ビタミン
D3の収率向上に寄与するため、工業的に極めて
重要な意味を有している。
かかる観点から、本発明者らは、1α,3β−
ジヒドロキシコレスタ−5,7−ジエン類に紫外
線を照射して相当するプレビタミンD3を製造す
る工程の種々の反応条件について研究を加えた結
果、極めて多くの新しい事実を究明した。
従来、例えば、エルゴステロールに紫外線照射
を行つた場合の照射時間に対するエルゴステロー
ルの減少、生成するプレビタミンD2および相当
するタキステロールの挙動を明らかにした結果が
報告されており、エルゴステロールの場合にはプ
レビタミンD2の生成は、照射時間約2時間程度
で飽和量約25%程度に到達し、相当するタキステ
ロールの生成は照射時間とともに増加することが
わかつている(「ビタミン」475号(5月)187〜
200(1973)参照)。
しかしながら、本発明者の研究によれば、1
α,3β−ジヒドロキシコレスタ−5,7−ジエ
ン類の場合には、確かに、相当するプレビタミン
D3およびタキステロールも生成するが、それ以
外に種々の副生成物が生成し、反応は極めて複雑
であつて、それ故、例えば、プレビタミンD3の
生成量を増加せしめようとして1α,3β−ジヒ
ドロキシコレスタ−5,7−ジエン類の転化率を
あげた場合には、タキステロールの生成が増加す
るだけでなく、プレビタミンD3またはビタミン
D3とは分離しがたい更に種々の副生成物が蓄積
され、目的物である活性型ビタミンD3の収率が
さほど向上しないだけでなく、却つて不純となる
傾向が認められ望ましくないことが明らかとなつ
た。
しかして、本発明方法によれば、1α,3β−
ジヒドロキシコレスタ−5,7−ジエン類より最
適な条件下においては80〜90%あるいはそれ以上
の高収率で活性型ビタミンD3類が製造される。
すなわち、本発明は、活性型ビタミンD3の前
駆体である下記式[−a]
〔式中、R1,R2は同一もしくは異なり水素原
子または水酸基の保護基であり、Rは6−メチル
ヘプチル−2−イル基又は水酸基、保護された水
酸基、オキソ基、保護されたオキソ基、ハロゲン
原子により置換されている相当する基。〕
で表わされる1α,3β−ジヒドロキシコレスタ
−5,7−ジエン類に紫外線を照射して、下記式
[−a]
[式中、R1,R2およびRの定義は前記に同
じ。]
で表わされるプレビタミンD3類に変換し、引く
つづいて該プレビタミンD3類を熱エネルギーに
より異性化させて生成する下記式[−a]
[式中、R1,R2およびRの定義は前記に同
じ。]
で表わされる活性型ビタミンD3類の製造法にお
いて、反応系内に存在する1α,3β−ジヒドロ
キシコレスタ−5,7−ジエン類1重量部に対
し、反応系内に生成する式[−a]のプレビタ
ミンD3類および/または式[−a]の活性型
ビタミンD3類が0.03〜0.4重量部になるまで反応
せしめ、次いで、反応混合物より、式[−a]
のプレビタミンD3類および/または式[−
a]の活性型ビタミンD3類を分離するととも
に、未反応の式[−a]の1α,3β−ジヒド
ロキシコレスタ−5,7−ジエン類を上記紫外線
照射のための前駆体として循環使用することを特
徴とする活性型ビタミンD3類の製造法である。
本発明方法は上記の如く2つの工程を主たる工
程とするものである。1つは活性型ビタミンD3
類の前駆体である1α,3β−ジヒドロキシコレ
スタ−5,7−ジエン類に紫外線を照射する工程
(第1の工程)であり、もう1つの工程は、紫外
線を照射した後に得られる反応混合物より活性型
ビタミンD3類および/またはそれらの相当する
プレビタミンD3類を分離し、未反応の1α,3
β−ジヒドロキシコレスタ−5,7−ジエン類を
前記第1の工程の前駆体として循環せしめる工程
である。
第1の工程によれば、その反応自体既に公知で
あり、前記式[−a]の1α,3β−ジヒドロ
キシコレスタ−5,7−ジエン類は紫外線照射を
受け、9,10位の単結合が開裂を受け相当する前
記[−a]プレビタミンD3類が生成する。
本発明方法の原料として用いられる活性型ビタ
ミンD3の前駆体とは上記の通り、1α−位に水
酸基もしくは保護された水酸基を有するコレステ
ロール骨格を有する化合物であるが、とりわけ下
記式〔〕
〔式中、R1,R2は同一もしくは異なり水素原
子または水酸基の保護基である。R3,R4,R5は
同一もしくは異なり水素原子、水酸基もしくは保
護された水酸基であり、R3とR4は一緒になつて
カルボニル基または保護されたカルボニル基を形
成していてもよい。
で表わされる化合物が好ましく用いられる。
上記式〔〕中、R1,R2,R3,R4およびR5を
表わす水酸基の保護基とは、前記式[−a]又
は後述する式〔〕で表わされる活性型ビタミン
D3類の構造を変化せしめることなく水酸基に転
換しうる保護基であり、例えば下記の如き基をあ
げることができる。
(1) アシル基;
例えばアセチル基、プロパノイル基、ブタノ
イル基、ペンタノイル基、ピバロイル基、カプ
ロニル基、シクロヘキサノイル基、クロロアセ
チル基、ブロモアセチル基、ベンゾイル基、p
−ブロモベンゾイル基、p−ニトロベンゾイル
基、エチルベンゾイル基、トルイル基等の炭素
数1〜12の脂肪族又は芳香族カルボン酸残基又
はそれらのニトロ、ハロゲン、アルコキシ置換
誘導体等が好ましく用いられる。
これらの内、特に好ましくはアセチル基、ベ
ンゾイル基、プロパノイル基等である。
(2) ヒドロキシル基とエーテル結合を形成する
基;
例えばt−ブチル基、ベンジル基、トリフエ
ニルメチル基等のトリアリルメチル基、テトラ
ヒドロピラニル基、メトキシメチル基、トリメ
チルシリル基等のアルキル置換シリル基等をあ
げることができる。
上記保護基のうち(1)のアシル基が特に好ましく
用いられるが本発明は特にこれらに限定されるも
のではない。
しかして、前記式[−a]もしくは上記式
〔〕で表わされる1α,3β−ジヒドロキシコ
レスタ−5,7−ジエン類の具体例としては、例
えば1α,3β−ジヒドロキシコレスタ−5,7
−ジエン,1α,3β−25−トリヒドロキシコレ
スタ−5,7−ジエン,1α,3β,24−トリヒ
ドロキシコレスタ−5,7−ジエン,1α,3
β,24(S)−トリヒドロキシコレスタ−5,7
−ジエン,1α,3β,24(R)−トリヒドロキ
シコレスタ−5,7−ジエン,1α,3β,24,
25−テトラヒドロキシコレスタ−5,7−ジエ
ン,1α,3β−ジヒドロキシ−24−オキソコレ
スタ−5,7−ジエン,24(24)−エチレンジオ
キシ−1α,3β−ジヒドロキシコレスタ−5,
7−ジエンおよび例えば、1α,3β−ジアセト
キシコレスタ−5,7−ジエン,1α,3β−ジ
ピバロイルオキシコレスター5,7−ジエン,1
α,3β−ジ(トリメチルシリルオキシ)コレス
ター5,7−ジエンの如き1α,3β−ジヒドロ
キシコレスタ−5,7−ジエンの水酸基保護誘導
体をあげることができる。もちろん、上記の如き
その他の1α,3β−ジヒドロキシコレスタ−
5,7−ジエン類についても相当する上記の如き
保護誘導体が例示されるが、具体例はそれ自体明
らかなので一々の例示はしない。
第1の工程は、上記の如き反応であるが、反応
は不活性有機溶媒中で紫外線を照射することによ
り行なわれる。
この際用いる紫外線としては、約200〜360nm
の波長範囲のものとして知られているものであ
り、本発明方法では特に260〜310nmの範囲の波
長のものが好ましく用いられる。
また、不活性有機溶媒としては、例えば、ヘキ
サン、ヘプタン、シクロヘキサン、リグロイン、
ベンゼン、トルエン、キシレン、ブロムベンゼ
ン、クロルベンゼン、ニトロベンゼン、四塩化炭
素、1,2−ジクロルエタン、1,2−ジブロモ
エタン等の炭化水素、ハロゲン化炭化水素、更に
はジエチルエーテル、テトラヒドロフラン、ジオ
キサン、メチルセロソルブ、フエニルセロソルブ
等のエーテル系溶媒、メタノール、エタノール、
プロパノール、ヘキサノール、シクロヘキサノー
ル等のアルコール系溶媒等が好適なものとしてよ
く用いられる。
特に、例えばベンゼン、トルエン、ジエチルエ
ーテル、メタノール、エタノール等の単独又は混
合溶媒が好ましく、かかる溶媒を用いると紫外線
照射した後、同一の溶媒中で後述する異性化を行
うことができる。
紫外線照射の際の温度は−20℃〜80℃、特に−
10℃〜20℃の範囲が好適である。また、アルゴン
あるいは窒素雰囲気等の酸素の存在しない不活性
雰囲気で行うのが好ましい。
かくして紫外線照射によれば、上記式[−
a]で表わされる1α,3β−ジヒドロキシコレ
スタ−5,7−ジエン類の9,10位単結合が開裂
して、上記式[−a]で表わされるプレビタミ
ンD3類が生成される。
生成したプレビタミンD3類は、熱エネルギー
により異性化され相当する活性型ビタミンD3類
に変換される。この熱エネルギーによる異性化反
応は、温度に依存する平衡値および速度を有する
反応であり、低温度であるほどプレビタミンD3
類の占める割合が多くなる平衡値を示し、一方、
高温度であるほどプレビタミンD3類より活性型
ビタミンD3類への変換速度が大となる。
それ故、上記の如くして紫外線照射を受けて生
成したプレビタミンD3類は、紫外線照射工程中
において、既に活性型ビタミンD3類に徐々に異
性化することになる。
主としてプレビタミンD3類を製造しようとす
る場合には、この第1の工程の紫外線照射を異性
化速度が小さい低温、且つ短時間とするのが望ま
しく、また、主としてビタミンD3類を製造しよ
うとする場合には紫外線照射温度、時間の寄与も
さることながら、紫外線照射後において、好適な
温度に一定時間保持する(例えば、80℃で2〜3
時間など)ことにより異性化を積極的に行なわし
め、次いで、第2の工程の分離工程を実施するの
が望ましい。
本発明方法の最大の特徴は、この第1の工程に
おける紫外線照射反応を、生成したプレビタミン
D3類および/またはこれらが熱エネルギーによ
つて異性化されて生成する活性型ビタミンD3類
の生成量が、そのとき反応系内に存在する未反応
1α,3β−ジヒドロキシコレスタ−5,7−ジ
エン類1重量部に対し、0.03〜0.4重量部になる
まで、更に好ましくは0.15〜0.35重量部になるま
でつづけ、それを超えてまで紫外線照射をつづけ
ない点にある。
本発明者の研究によれば、活性型ビタミンD3
の前駆体である1α,3β−ジヒドロキシコレス
タ−5,7−ジエン類に紫外線を照射し、それら
の9,10位の単結合を開裂する反応においては、
単にタキステロールのみならず、少くともその他
に2種類の副生成物が生成し、これらは原料であ
る5,7−ジエン類の消費量の増加とともに生成
量が増加しまた、更に別異の副生成物に変換する
と推察するに十分な事実が認められた。
それ故、生成するプレビタミンD3類および/
またはこれより生成する活性型ビタミンD3類の
量が、未反応の1α,3β−ジヒドロキシコレス
タ−5,7−ジエン類に対して、上記上限を超え
る場合には、第2の工程における反応混合物から
のプレビタミンD3類および/または活性型ビタ
ミンD3類の分離が純度良く行なわれ難く、ま
た、未反応の1α,3β−ジヒドロキシコレスタ
−5,7−ジエン類が回収して使用しうるほどの
十分な量で存在するにもかかわらず、これをその
まま循環使用する場合には、次第に、反応系内に
数多くの副生成物およびその副生量が蓄積され、
結局、未反応1α,3β−ジヒドロキシコレスタ
−5,7−ジエン類を再度利用する工業的な方法
を達成し得ないことが明らかとなつたのである。
もちろん、上記生成量の下限値0.03は、それより
低い値の場合には、循環回数および循環量が多量
にすぎ望ましくないとして定められたものであ
る。
かくして、第1の工程を経て、反応混合物は第
2の工程で分離され、未反応の1α,3β−ジヒ
ドロキシコレスタ−5,7−ジエン類は第1の工
程の前駆体である原料として使用される。
前述した通り、第1の工程で得られた反応混合
物は、プレビタミンD3類および/または活性型
ビタミンD3類を含んでいる。そして、プレビタ
ミンD3類を製造しようとする場合には、第1の
工程を比較的低温且つ短時間で行うことが望まし
いことも前述した。しかして、活性型ビタミン
D3類を製造しようとする場合には、第1の工程
で得られた反応混合物を更に異性化反応が十分に
進行するまで、保持したのち、第2の工程に付し
ていてもよいが、更に、第2の工程で分離したプ
レビタミンD3類を、熱エネルギーによる異性化
反応に付してもよい。
前述した通り、プレビタミンD3類より活性型
ビタミンD3類への変換は、温度に依存してその
平衡値および速度を異にする。
従つて、平衡値および変換速度を考慮して、温
度を定めることができ、かかる意味において温度
は反応自体の進行には本質的に重要なものではな
い。
実際的にはこのような点を考慮して、通常異性
化温度として10〜120℃、好ましくは40〜100℃が
採用される。
その際異性化は、通常不活性有機溶媒中で行う
ことが望ましく、前述した好適な溶媒を用いれ
ば、前記紫外線照射の際使用したと同一の溶媒を
用いることができる。
かくして、熱エネルギーによる異性化反応によ
れば、上記式[−a]で表わされるプレビタミ
ンD3類より、前述の下記式[−a]
[式中、.R1,R2およびRの定義は前記に同
じ。]
および下記式〔〕
[式中、R1,R2,R3,R4およびR5の定義は前
記に同じ。]
で表わされる活性型ビタミンD3類が形成され
る。
しかして、本発明の研究によれば、第2の工程
を行うに際して、分離に付す上記反応混合物は、
もちろん、反応系内に存在する1α−ヒドロキシ
コレスタ−5,7−ジエン類1重量部に対し0.03
〜0.4重量部でプレビタミンD3類および活性型ビ
タミンD3類を含むが、それが主として活性型ビ
タミンD3類である場合には、恐らく、プレビタ
ミンD3と活性型ビタミンD3との本質的な安定性
の差と思われるが、分離が極めて容易に行なわれ
うることが明らかとなつた。
第2の工程における反応混合物からのプレビタ
ミンD3類および/または活性型ビタミンD3類の
分離は、カラムクロマトグラフイー、プレパラテ
イブ薄層クロマトグラフイー、高速液体クロマト
グラフイー、再結晶法等によつて行うことができ
る。また、非金属性銀を吸着した二酸化硅素
(SiO2)含有担体、例えば、硝酸銀含有シリカゲ
ルを用いるクロマトグラフイーを用いることもで
きる。
また、これらの分離・精製法の2つ又はそれ以
上を組合せることにより、更に高純度のプレビタ
ミンD3類および/または活性型ビタミンD3類を
製造することができる。
本発明者の研究によれば、上記分離方法の内で
も、とりわけ高速液体クロマトグラフイーによる
分離方法は、特に、シリカゲルを担体の主成分と
する高速液体クロマトグラフイーによる分離方法
は、分離収率を特に高める点において極めて好ま
しいことが明らかとなつた。
上記分離により、プレビタミンD3類の水酸基
保護誘導体もしくは活性型ビタミンD3類の水酸
基保護誘導体が得られた場合、その保護基がアシ
ル基の時は、通常、アルカリ性のメタノール、エ
タノールの如きアルコール溶液中で分解する方法
あるいはエーテル等の溶媒中LiAlH4等による還
元的に分解し脱アシル化せしめる方法等により行
なわれる。脱アシル化反応は−10℃〜50℃の温度
で行うのが好ましい。
また保護基がヒドロキシ基とエーテル結合して
いる場合、その一部は、還元的に除去するか、酸
又はアルカリと接触させることにより容易に除去
することができる。
かくして、脱保護基反応に付して得られたプレ
ビタミンD3類もしくは活性型ビタミンD3類の精
製には、上記第2の工程での分離手段がそのまま
用いられる。
以上詳述した通り、本発明方法によれば、極め
て高い収率、例えば80〜90%の高収率で1α,3
β−ジヒドロキシコレスタ−5,7−ジエン類よ
り、温血動物のカルシウム代謝を調節するのに有
効な活性型ビタミンD3類を製造しうるというす
ぐれた効果を奏することができる。
以下、実施例により本発明を更に詳細に説明す
る。
実施例 1
(a) 1回目の反応:
1α,3β−ジアセトキシコレスタ−5,7−
ジエン2.660gを無水ベンゼン3,3に溶解
し、これに200Wの高圧水銀ランプ(Hanovia製
654−A型)を用い、バイコールフイルターを通
して、アルゴンガス雰囲気中で4分間紫外線を照
射した。得られた紫外線照射混合物を、No.25−4
とする。この1部をサンプリングし、液体クロマ
トグラフイー[HLCという。カラム:シリカゲ
ル(Zorbax SIL)25cm×2.1mmφ溶離液;
CH2Cl2/n−ヘキサン=1/3,検出;254mμ
に於ける吸収(UV−254検出器)]により分析し
た。結果を表−1に示した。次に、このNo.25−4
を2つに等分した。そのうちの一方をNo.25−4U
とする。又、もう一方は80℃で2時間、アルゴン
雰囲気中でリフラツクスさせた。この熱異性化混
合物をNo.25−4Hとする。このNo.25−4Hの1部を
サンプリングし、上記と同じ条件下にHCL分析
をした。結果を表−1に示した。No.25−4Hおよ
びNo.25−4Uのそれぞれを別個に、減圧下に30℃
以下で濃縮乾固した。それぞれの濃縮乾固物の全
量を、別個にシリカゲル80gを充填したカラムを
用いクロマトグラフイーにより分離した。展開溶
媒として、ベンゼン−ヘキサン、ベンゼン更にベ
ンゼン−酢酸エチルに順次変えて用いた。結果を
表−2に示した。
(b) 2回目の反応:
上記No.25−4UおよびNo.25−4Hそれぞれよりカ
ラムクロマトグラフイーにより得られた1α,3
β−ジアセトキシコレスタ−5,7−ジエンを含
む留分の全量を、それぞれ別個に上記1回目の反
応と同様な条件下に、但し、紫外線照射時間を7
分間とし、紫外線照射を行つた。得られた紫外線
照射混合物のうちNo.25−4Uより得られたもの
を、No.26−7Uとする。一方、No.25−4Hより得ら
れた紫外線照射物を、上記第1回目の反応と同じ
条件下に熱異性化せしめた。この熱異性化混合物
をNo.26−7Hとする。
これら2つのNo.26−7UとNo.26−7Hとの1部を
とり、上記と同様にしてHLC分析を行い、ま
た、上記と同様にして、それぞれの全量をカラム
クロマトグラフイーにより分離した。結果をそれ
ぞれ表−1および表−2に示した。
(c) 3回目〜5回目の反応:
上記No.26−7Uおよび26−7Hそれぞれよりカラ
ムクロマトグラフイーにより得られた1α,3β
−ジアセトキシコレスタ−5,7−ジエンを含む
留分の全量を、それぞれ別個に、上記2回目の反
応と同様に繰返し行つた。同様にして、第4回目
および第5回目の反応を繰返した。但し、第3回
目〜第5回目の紫外線照射の際の濃度はいずれも
第1回目および第2回目の場合の濃度と異なり、
25%減の濃度で行つた。また、紫外線照射時間
は、第3回目、第4回目はいずれも5分間であ
り、第5回目は、第4回目から回収した原料が減
少したため紫外線照射効率を考慮し、3分間とし
た。結果を表−1および表−2に示した。
なお、表中、No.27−5UはNo.26−7Uより回収さ
れた原料を用いた紫外線照射混合物を意味してお
り、No.27−5H、No.28−5H、およびNo.29−3Hはそ
れぞれNo.26−7H、No.27−5HおよびNo.28−5Hより
回収された原料を用いた熱異性化混合物を意味し
ている。
表−1の結果より明らかな通り、本発明方法に
よれば、循環回収使用した原料を用いて繰返し反
応を行うことにより、平均94%を超える選択率
で、1α,3β−ジアセトキシコレスタ−5,7
−ジエンより1α,3β−ジアセトキシビタミン
D3および1α,3β−ジアセトキシプレビタミ
ンD3を製造しうることがわかる。
The present invention relates to a method for producing active vitamin D 3 . More specifically, the present invention provides an industrially extremely valuable method for producing active vitamin D 3 useful for regulating calcium metabolism in warm-blooded animals in high yield. Conventionally, for example, the method for producing 1α-hydroxycholecalciferol, which is one of the active forms of vitamin D3 , has been described in JP-A-48-62750, which involves 17 or more steps starting from cholesterol. A method for producing 1α-hydroxycholecalciferol is known, and JP-A-51-110554 also describes a completely different method for producing 1α-hydroxycholecalciferol starting from cholesterol. It has been known. In both of these methods, 1α,3β-diacetoxycholesterol
By irradiating 5,7-diene with ultraviolet light, 1α,3β-
The final step is described as diacetoxyprevitamin D 3 and then converting it to 1α,3β-diacetoxyvitamin D 3 . However, for example, as described in the example of JP-A-48-62750, 1α,3β-diacetoxycholester-5,7-diene produced by irradiating 600 μg of 1α,3β-diacetoxycholester-5,7-diene with ultraviolet light is The yield of acetoxy previtamin D 3 is 120 μg (yield 20%)
Moreover, Example 3 of JP-A No. 51-110554
As described in 135 mg of 1α,3β-diacetoxycholester-5,7-diene, 13 mg of 1α-hydroxycholecalciferol and 8 mg of 1α-hydroxy previtamin D 3 were obtained. do not have. Based on the patent applications of the pioneers regarding the manufacturing method of these two 1α-hydroxycholecalciferols, as well as other patent applications and literature publications published after that, it is clear that so-called active vitamins such as 1α-hydroxycholecalciferol As a method for producing D 3 , the reaction process of producing previtamin D 3 by irradiating the corresponding 1α,3β-dihydroxycholester-5,7-dienes or their hydroxyl-protected derivatives with ultraviolet rays is an industrial method. It is considered to have extremely important meaning as a manufacturing process for active vitamin D3 . However, as is clear from the above example,
The total number of steps to produce active vitamin D 3 is extremely large, and therefore the overall yield naturally decreases. However, the yield improvement in the ultraviolet irradiation step, which is close to the final step, is due to the direct target product, the active form. vitamin
It has extremely important industrial significance because it contributes to improving the yield of D 3 . From this point of view, the present inventors have determined that 1α,3β-
As a result of researching various reaction conditions in the process of producing previtamin D 3 by irradiating dihydroxycholester-5,7-dienes with ultraviolet light, we have discovered a large number of new facts. Previously, for example, results have been reported that clarified the decrease in ergosterol with respect to the irradiation time when ergosterol is irradiated with ultraviolet rays, and the behavior of the generated previtamin D 2 and the corresponding tachysterol. It is known that the production of previtamin D 2 reaches about 25% saturation after about 2 hours of irradiation, and that the production of the corresponding tachysterol increases with the irradiation time (``vitamin'' 47 5 Issue (May) 187~
200 (1973)). However, according to the research of the present inventor, 1
In the case of α,3β-dihydroxycholester-5,7-dienes, it is certainly the case that the corresponding previtamins
D 3 and tachysterol are also produced, but the reaction is extremely complex, with various other by-products produced, and therefore, for example, in order to increase the production of previtamin D 3 -Increasing the conversion of dihydroxycholester-5,7-dienes not only increases the production of taxerol, but also increases the production of previtamin D3 or vitamin D3.
Furthermore, various by-products that are difficult to separate from D 3 accumulate, which not only does not significantly improve the yield of the target active vitamin D 3 , but also tends to become impure, which is undesirable. It became clear. According to the method of the present invention, 1α,3β-
Under optimal conditions, active vitamin D 3 can be produced from dihydroxycholester-5,7-dienes at a high yield of 80 to 90% or more. That is, the present invention provides the following formula [-a] which is a precursor of active vitamin D 3 [In the formula, R 1 and R 2 are the same or different and are a hydrogen atom or a protecting group for a hydroxyl group, and R is a 6-methylheptyl-2-yl group or a hydroxyl group, a protected hydroxyl group, an oxo group, a protected oxo group , the corresponding group substituted by a halogen atom. ] 1α,3β-dihydroxycholester-5,7-dienes represented by are irradiated with ultraviolet rays to form the following formula [-a] [In the formula, the definitions of R 1 , R 2 and R are the same as above. ] The following formula [-a] is produced by converting to previtamin D 3 represented by 3 and then isomerizing the previtamin D 3 using thermal energy. [In the formula, the definitions of R 1 , R 2 and R are the same as above. ] In the method for producing active vitamin D type 3 represented by the formula [- Previtamin D 3 of formula [-a] and/or active vitamin D 3 of formula [-a] are reacted until the amount becomes 0.03 to 0.4 parts by weight, and then from the reaction mixture, formula [-a]
Previtamin D type 3 and/or formula [-
While separating the active vitamin D type 3 of a], the unreacted 1α,3β-dihydroxycholester-5,7-dienes of formula [-a] are recycled and used as a precursor for the ultraviolet irradiation. This is a method for producing active vitamin D type 3 , which is characterized by the following. The method of the present invention has two main steps as described above. One is active vitamin D 3
The first step is to irradiate ultraviolet rays to 1α,3β-dihydroxycholester-5,7-dienes, which are precursors of 1α,3β-dihydroxycholester-5,7-dienes. The more active forms of vitamin D 3 and/or their corresponding previtamin D 3 are separated, and unreacted 1α, 3
This is a step in which β-dihydroxycholester-5,7-dienes are circulated as a precursor for the first step. According to the first step, the reaction itself is already known, and the 1α,3β-dihydroxycholest-5,7-dienes of the formula [-a] are irradiated with ultraviolet rays, and the single bonds at positions 9 and 10 are is cleaved and the corresponding [-a] previtamin D 3 is produced. As mentioned above, the active vitamin D 3 precursor used as a raw material in the method of the present invention is a compound having a cholesterol skeleton having a hydroxyl group or a protected hydroxyl group at the 1α-position, but especially the following formula [] [In the formula, R 1 and R 2 are the same or different and are a hydrogen atom or a hydroxyl group-protecting group. R 3 , R 4 and R 5 are the same or different and are a hydrogen atom, a hydroxyl group or a protected hydroxyl group, and R 3 and R 4 may be taken together to form a carbonyl group or a protected carbonyl group. A compound represented by is preferably used. In the above formula [], the hydroxyl protecting group representing R 1 , R 2 , R 3 , R 4 and R 5 is the active vitamin represented by the above formula [-a] or the below-mentioned formula [].
D It is a protecting group that can be converted into a hydroxyl group without changing the structure of Group 3 , and examples include the following groups. (1) Acyl group; For example, acetyl group, propanoyl group, butanoyl group, pentanoyl group, pivaloyl group, capronyl group, cyclohexanoyl group, chloroacetyl group, bromoacetyl group, benzoyl group, p
C1-C12 aliphatic or aromatic carboxylic acid residues such as -bromobenzoyl group, p-nitrobenzoyl group, ethylbenzoyl group, toluyl group, or their nitro-, halogen-, or alkoxy-substituted derivatives are preferably used. Among these, particularly preferred are acetyl group, benzoyl group, propanoyl group, and the like. (2) A group that forms an ether bond with a hydroxyl group; For example, a t-butyl group, a benzyl group, a triallylmethyl group such as a triphenylmethyl group, an alkyl-substituted silyl group such as a tetrahydropyranyl group, a methoxymethyl group, a trimethylsilyl group, etc. etc. can be given. Among the above protecting groups, the acyl group (1) is particularly preferably used, but the present invention is not particularly limited thereto. Specific examples of the 1α,3β-dihydroxycholester-5,7-dienes represented by the above formula [-a] or the above formula [] include, for example, 1α,3β-dihydroxycholester-5,7-dienes.
-diene, 1α,3β-25-trihydroxycholesta-5,7-diene, 1α,3β,24-trihydroxycholesta-5,7-diene, 1α,3
β,24(S)-trihydroxycholester-5,7
-diene, 1α,3β,24(R)-trihydroxycholesta-5,7-diene,1α,3β,24,
25-tetrahydroxycholesta-5,7-diene, 1α,3β-dihydroxy-24-oxocholesta-5,7-diene, 24(24)-ethylenedioxy-1α,3β-dihydroxycholesta-5,
7-diene and, for example, 1α,3β-diacetoxycholester-5,7-diene, 1α,3β-dipivaloyloxycholester 5,7-diene, 1
Hydroxyl-protected derivatives of 1α,3β-dihydroxycholester-5,7-diene such as α,3β-di(trimethylsilyloxy)cholester 5,7-diene can be mentioned. Of course, other 1α,3β-dihydroxycholesterols such as those mentioned above
Corresponding protected derivatives of 5,7-dienes as mentioned above are also exemplified, but since specific examples are obvious in themselves, no individual examples will be given. The first step is the reaction as described above, but the reaction is carried out in an inert organic solvent by irradiating it with ultraviolet light. The ultraviolet light used at this time is approximately 200 to 360 nm.
It is known to have a wavelength range of 260 to 310 nm, and in the method of the present invention, a wavelength range of 260 to 310 nm is particularly preferably used. In addition, examples of inert organic solvents include hexane, heptane, cyclohexane, ligroin,
Hydrocarbons such as benzene, toluene, xylene, bromobenzene, chlorobenzene, nitrobenzene, carbon tetrachloride, 1,2-dichloroethane, 1,2-dibromoethane, halogenated hydrocarbons, and diethyl ether, tetrahydrofuran, dioxane, methyl Ether solvents such as cellosolve, phenyl cellosolve, methanol, ethanol,
Alcohol solvents such as propanol, hexanol, and cyclohexanol are often used as suitable solvents. In particular, single or mixed solvents such as benzene, toluene, diethyl ether, methanol, and ethanol are preferred, and when such solvents are used, the isomerization described below can be performed in the same solvent after ultraviolet irradiation. The temperature during UV irradiation is -20℃ to 80℃, especially -
A range of 10°C to 20°C is preferred. Further, it is preferable to carry out the reaction in an inert atmosphere in which oxygen does not exist, such as an argon or nitrogen atmosphere. Thus, according to ultraviolet irradiation, the above formula [−
The single bonds at the 9 and 10 positions of the 1α,3β-dihydroxycholesta-5,7-diene represented by [a] are cleaved to produce previtamin D 3 represented by the above formula [-a]. The generated previtamin D 3 is isomerized by thermal energy and converted into the corresponding active vitamin D 3 . This isomerization reaction due to thermal energy is a reaction with an equilibrium value and rate that depend on temperature, and the lower the temperature, the lower the amount of previtamin D 3
It shows an equilibrium value in which the proportion of the class increases, and on the other hand,
The higher the temperature, the faster the conversion rate from pre-vitamin D 3 to active vitamin D 3 . Therefore, the pre-vitamin D 3 produced by ultraviolet irradiation as described above is already gradually isomerized into active vitamin D 3 during the ultraviolet irradiation process. When primarily producing pre-vitamin D 3 , it is desirable that the ultraviolet irradiation in this first step be performed at a low temperature and for a short period of time, where the isomerization rate is low . In this case, the UV irradiation temperature and time should be considered as well, and after UV irradiation, the temperature should be maintained at a suitable temperature for a certain period of time (e.g., 2 to 3 seconds at 80℃).
It is desirable to actively carry out isomerization depending on the amount of time (time, etc.), and then carry out the second separation step. The greatest feature of the method of the present invention is that the ultraviolet irradiation reaction in this first step
D 3 and/or the amount of active vitamin D 3 produced when these are isomerized by thermal energy is determined by the amount of unreacted 1α,3β-dihydroxycholester-5, The ultraviolet irradiation should be continued until the amount reaches 0.03 to 0.4 parts by weight, more preferably 0.15 to 0.35 parts by weight, and should not be continued until the amount reaches 0.15 to 0.35 parts by weight, per 1 part by weight of the 7-diene. According to the research of the present inventor, active vitamin D3
In the reaction of irradiating ultraviolet light to 1α,3β-dihydroxycholester-5,7-dienes, which are the precursors of
Not only tachysterol, but also at least two other by-products are produced, and the amount of these products increases as the consumption of 5,7-dienes, which are raw materials, increases. Sufficient facts were observed to infer that it was converted into a product. Therefore, the produced previtamin D 3 and/or
Alternatively, if the amount of active vitamin D 3 produced from this exceeds the above upper limit relative to unreacted 1α,3β-dihydroxycholester-5,7-dienes, the reaction in the second step It is difficult to separate previtamin D 3 and/or active vitamin D 3 from the mixture with good purity, and unreacted 1α,3β-dihydroxycholesta-5,7-dienes are collected and used. However, if these products are recycled as they are, many by-products and their amounts will gradually accumulate in the reaction system.
In the end, it became clear that an industrial method for reusing unreacted 1α,3β-dihydroxycholesta-5,7-dienes could not be achieved.
Of course, the lower limit value of 0.03 for the production amount is determined because a lower value would result in too large a number of circulations and an undesirable amount of circulation. Thus, after passing through the first step, the reaction mixture is separated in the second step, and the unreacted 1α,3β-dihydroxycholester-5,7-dienes are used as a precursor raw material for the first step. be done. As mentioned above, the reaction mixture obtained in the first step contains previtamin D 3 and/or active vitamin D 3 . It was also mentioned above that when attempting to produce previtamin D 3 , it is desirable to carry out the first step at a relatively low temperature and in a short period of time. However, active vitamin
When attempting to produce Type D 3 , the reaction mixture obtained in the first step may be held until the isomerization reaction has sufficiently proceeded, and then subjected to the second step. Furthermore, the previtamin D 3 separated in the second step may be subjected to an isomerization reaction using thermal energy. As mentioned above, the equilibrium value and rate of conversion of previtamin D 3 to active vitamin D 3 differ depending on temperature. Therefore, taking into account the equilibrium value and the conversion rate, the temperature can be determined, and in this sense the temperature is not essentially important for the progress of the reaction itself. Practically, taking these points into consideration, the isomerization temperature is usually 10 to 120°C, preferably 40 to 100°C. In this case, the isomerization is usually preferably carried out in an inert organic solvent, and if the above-mentioned suitable solvents are used, the same solvent as used in the ultraviolet irradiation can be used. Thus, according to the isomerization reaction by thermal energy, from the previtamin D 3 represented by the above formula [-a], the following formula [-a] [In the formula, . The definitions of R 1 , R 2 and R are the same as above. ] and the following formula [] [In the formula, the definitions of R 1 , R 2 , R 3 , R 4 and R 5 are the same as above. ] Three active forms of vitamin D are formed. According to the research of the present invention, when performing the second step, the above reaction mixture subjected to separation is
Of course, 0.03 parts by weight of 1α-hydroxycholester-5,7-dienes present in the reaction system.
~0.4 parts by weight of pre-vitamin D 3 and active vitamin D 3 , but if it is primarily active vitamin D 3 , it is probably a combination of pre-vitamin D 3 and active vitamin D 3 . Although this seems to be due to an essential difference in stability, it has become clear that separation can be carried out very easily. The separation of previtamin D 3 and/or active vitamin D 3 from the reaction mixture in the second step is carried out by column chromatography, preparative thin layer chromatography, high performance liquid chromatography, recrystallization method, etc. You can do it by leaning. It is also possible to use chromatography using a carrier containing silicon dioxide (SiO 2 ) adsorbing nonmetallic silver, such as silica gel containing silver nitrate. Furthermore, by combining two or more of these separation and purification methods, it is possible to produce even higher purity previtamin D 3 and/or active vitamin D 3 . According to the research of the present inventor, among the above separation methods, the separation method using high performance liquid chromatography, especially the separation method using high performance liquid chromatography using silica gel as the main component of the carrier, has a high separation yield. It has become clear that this is extremely preferable in terms of particularly increasing the . When a hydroxyl-protected derivative of previtamin D 3 or an active vitamin D 3 is obtained by the above separation, when the protecting group is an acyl group, it is usually treated with an alkaline alcohol such as methanol or ethanol. This is carried out by a method of decomposition in a solution or a method of deacylation by reductive decomposition with LiAlH 4 or the like in a solvent such as ether. The deacylation reaction is preferably carried out at a temperature of -10°C to 50°C. Further, when the protecting group has an ether bond with the hydroxy group, a part of it can be easily removed by reductive removal or by contacting with an acid or an alkali. Thus, the separation means used in the second step can be used as is to purify the previtamin D 3 or active vitamin D 3 obtained by the deprotection reaction. As detailed above, according to the method of the present invention, 1α, 3
From β-dihydroxycholester-5,7-dienes, it is possible to produce active vitamin D 3 , which is effective for regulating calcium metabolism in warm-blooded animals. Hereinafter, the present invention will be explained in more detail with reference to Examples. Example 1 (a) First reaction: 1α,3β-diacetoxycholester-5,7-
Dissolve 2.660 g of diene in 3.3 anhydrous benzene, and add a 200W high-pressure mercury lamp (manufactured by Hanovia) to the solution.
654-A), and was irradiated with ultraviolet rays for 4 minutes in an argon gas atmosphere through a Vycor filter. The obtained ultraviolet irradiation mixture was heated to No. 25-4.
shall be. A portion of this is sampled and subjected to liquid chromatography [HLC]. Column: Silica gel (Zorbax SIL) 25cm x 2.1mmφ eluent;
CH 2 Cl 2 /n-hexane = 1/3, detection; 254 mμ
(UV-254 detector)]. The results are shown in Table-1. Next, this No. 25-4
was divided into two equal parts. One of them is No.25−4U
shall be. The other side was refluxed at 80°C for 2 hours in an argon atmosphere. This thermal isomerization mixture is designated as No. 25-4H. A portion of this No. 25-4H was sampled and subjected to HCL analysis under the same conditions as above. The results are shown in Table-1. No. 25-4H and No. 25-4U were separately heated at 30°C under reduced pressure.
It was concentrated to dryness as follows. The total amount of each concentrated dry product was separated by chromatography using a column packed with 80 g of silica gel. The developing solvent used was sequentially changed to benzene-hexane, benzene, and then benzene-ethyl acetate. The results are shown in Table-2. (b) Second reaction: 1α, 3 obtained by column chromatography from the above No. 25-4U and No. 25-4H, respectively.
The total amount of the fraction containing β-diacetoxycholester-5,7-diene was treated separately under the same conditions as in the first reaction above, except that the UV irradiation time was 7 hours.
Ultraviolet irradiation was performed for a few minutes. Among the obtained ultraviolet irradiation mixtures, the one obtained from No. 25-4U is designated as No. 26-7U. On the other hand, the ultraviolet irradiated product obtained from No. 25-4H was thermally isomerized under the same conditions as the first reaction. This thermal isomerization mixture is designated as No. 26-7H. A portion of these two No. 26-7U and No. 26-7H was taken and subjected to HLC analysis in the same manner as above, and the total amount of each was separated by column chromatography in the same manner as above. . The results are shown in Table-1 and Table-2, respectively. (c) 3rd to 5th reactions: 1α and 3β obtained by column chromatography from the above Nos. 26-7U and 26-7H, respectively.
-Diacetoxycholester-5,7-diene-containing fractions were separately subjected to repeated reactions in the same manner as in the second reaction. The fourth and fifth reactions were repeated in the same manner. However, the concentrations during the third to fifth UV irradiations are different from those during the first and second times,
The concentration was reduced by 25%. In addition, the ultraviolet irradiation time was 5 minutes for both the third and fourth times, and the time for the fifth time was 3 minutes in consideration of the ultraviolet irradiation efficiency because the raw material recovered from the fourth time was reduced. The results are shown in Table-1 and Table-2. In addition, in the table, No. 27-5U means an ultraviolet irradiation mixture using the raw material recovered from No. 26-7U, and No. 27-5H, No. 28-5H, and No. 29- 3H means a thermal isomerization mixture using raw materials recovered from No. 26-7H, No. 27-5H, and No. 28-5H, respectively. As is clear from the results in Table 1, according to the method of the present invention, 1α,3β-diacetoxy cholesta 5,7
-1α,3β-diacetoxyvitamin from diene
It can be seen that D 3 and 1α,3β-diacetoxy previtamin D 3 can be produced.
【表】
表中、副生物を表わす2p,10p,12pとは、
HLCにより明確なピークとして確認されるもの
であり、2pとは目的物および原料より早い時間
で検出されるもので、10pおよび12pとはいずれ
も目的物および原料より遅い時間で検出されるも
のである。また、転化率とは、原料の消費割合
(%)であり、選択率とは消費された原料に対す
る目的物の生成割合(%)である。また、転化
率、選択率の平均値上段は、U系の平均値であ
り、下段はH系の平均値である。[Table] In the table, 2p, 10p, and 12p, which represent byproducts, are
It is confirmed as a clear peak by HLC, and 2p is detected earlier than the target substance and raw material, and 10p and 12p are both detected later than the target substance and raw material. be. Further, the conversion rate is the consumption rate (%) of the raw material, and the selectivity is the production rate (%) of the target product with respect to the consumed raw material. Moreover, the average values of conversion rate and selectivity in the upper row are the average values for the U system, and the lower rows are the average values for the H system.
【表】【table】
【表】
実施例 2
実施例1と同様にして、1α,3β−ジヒドロ
キシコレスタ−5,7−ジエンを出発物質にして
循環反応(紫外線照射および熱異性化)を5回繰
返し行つた。
各回の熱異性化混合物を実施例1と同様にして
HLC分析を行い(但し、溶離液として3%メタ
ノール含有CH2Cl2を用いた)、平均転化率21.3%
(生成目的物対未反応原料の重量比平均0.23)、平
均選択率86.2%の結果を得た。
実施例 3
実施例1と同様にして、1α,3β−ジピバロ
イルオキシコレスタ−5,7−ジエンを出発物質
にして循環反応を3回繰返し行つた。各回の熱異
性化混合物を実施例1と同様にしてHLC分析を
行い(但し、溶離液として2〜20%イソプロピル
アルコール含有イソオクタンを用いグラデイエン
ト法で行つた)、平均転化率23.6%(生成目的物
対未反応原料の重量比平均0.26)、平均選択率
92.5%の結果を得た。
実施例 4
実施例1と同様にして、1α,3β,24−トリ
ヒドロキシコレスタ−5,7−ジエンを出発物質
にして、循環反応を3回繰返し行つた。各回の熱
異性化混合物を実施例1と同様にしてHLC分析
を行い(但し、溶離液として1〜10%イソプロピ
ルアルコール含有n−ヘキサンを用いグラデイエ
ント法で行つた)、平均転化率22.7%(生成目的
物対未反応原料の重量比平均0.21)、平均選択率
84.7%の結果を得た。[Table] Example 2 In the same manner as in Example 1, the circulation reaction (ultraviolet irradiation and thermal isomerization) was repeated five times using 1α,3β-dihydroxycholesta-5,7-diene as the starting material. The thermal isomerization mixture of each time was prepared in the same manner as in Example 1.
HLC analysis was performed (however, CH 2 Cl 2 containing 3% methanol was used as the eluent), and the average conversion was 21.3%.
(The average weight ratio of the target product to the unreacted raw material was 0.23), and the average selectivity was 86.2%. Example 3 In the same manner as in Example 1, the cyclic reaction was repeated three times using 1α,3β-dipivaloyloxycholester-5,7-diene as the starting material. The thermal isomerization mixture of each round was subjected to HLC analysis in the same manner as in Example 1 (however, the gradient method was used using isooctane containing 2 to 20% isopropyl alcohol as the eluent), and the average conversion rate was 23.6% (produced target product). Average weight ratio to unreacted raw material: 0.26), average selectivity
Obtained a result of 92.5%. Example 4 In the same manner as in Example 1, the cyclic reaction was repeated three times using 1α,3β,24-trihydroxycholester-5,7-diene as the starting material. The thermal isomerization mixture of each round was subjected to HLC analysis in the same manner as in Example 1 (however, the gradient method was used using n-hexane containing 1 to 10% isopropyl alcohol as the eluent), and the average conversion rate was 22.7%. Average weight ratio of target product to unreacted raw material: 0.21), average selectivity
Obtained a result of 84.7%.
Claims (1)
[−a] 〔式中、R1,R2は同一もしくは異なり水素原
子または水酸基の保護基であり、Rは6−メチル
ヘプチル−2−イル基または水酸基、保護された
水酸基、オキソ基、保護されたオキソ基、ハロゲ
ン原子により置換されている相当する基。〕 で表わされる1α,3β−ジヒドロキシコレスタ
−5,7−ジエン類に紫外線を照射して、下記式
[−a] [式中、R1,R2およびRの定義は前記に同
じ。] で表わされるプレビタミンD3類に変換し、引き
つづいて該プレビタミンD3類を熱エネルギーに
より異性化させて生成する下記式[−a] [式中、R1,R2およびRの定義は前記に同
じ。] で表わされる活性型ビタミンD3類を製造する方
法において、反応系内に存在する未反応の式[
−a]の1α,3β−ジヒドロキシコレスタ−
5,7−ジエン類1重量部に対し、反応系内に生
成する式[−a]のプレビタミンD3類およ
び/または式[−a]の活性型ビタミンD3類
を0.03〜0.4重量部になるまで反応せしめ、次い
で反応混合物より式[−a]のプレビタミン
D3類および/または式[−a]の活性型ビタ
ミンD3類を分離するとともに、未反応の式[
−a]の1α,3β−ジヒドロキシコレスタ−
5,7−ジエン類を上記紫外線照射のための前駆
体として循環使用することを特徴とする活性型ビ
タミンD3類の製造法。 2 反応混合物より、プレビタミン類および/ま
たは活性型ビタミンD3類をシリカゲルを担体を
主成分とする高速液体クロマトグラフイーにより
分離する特許請求の範囲第1項に記載の活性型ビ
タミンD3類の製造法。 3 1α,3β−ジヒドロキシコレスタ−5,7
−ジエン類が下記式〔〕 〔式中、R1,R2は同一もしくは異なり水素原
子または水酸基の保護基である。R3,R4,R5は
同一もしくは異なり水素原子、水酸基もしくは保
護された水酸基であり、R3とR4は一緒になつて
カルボニル基または保護されたカルボニル基を形
成していてもよい。〕 で表わされる化合物である特許請求の範囲第1項
または第2項に記載の活性型ビタミンD3類の製
造法。 4 1α,3β−ジヒドロキシコレスタ−5,7
−ジエン類が、1α,3β−ジヒドロキシコレス
タ−5,7−ジエン,1α,3β,25−トリヒド
ロキシコレスタ−5,7−ジエン,1α,3β,
24−トリヒドロキシコレスタ−5,7−ジエン,
1α,3β,24,25−テトラヒドロキシコレスタ
−5,7−ジエン,1α,3β−ジヒドロキシ−
24−オキソコレスタ−5,7−ジエンおよびこれ
らの水酸基保護誘導体よりなる群から選ばれたい
ずれかの化合物である特許請求の範囲第1項〜第
3項のいずれかに記載の活性型ビタミンD3類の
製造法。[Claims] 1. The following formula [-a] which is a precursor of active vitamin D 3 [In the formula, R 1 and R 2 are the same or different and are a hydrogen atom or a protecting group for a hydroxyl group, and R is a 6-methylheptyl-2-yl group, a hydroxyl group, a protected hydroxyl group, an oxo group, a protected oxo group , the corresponding group substituted by a halogen atom. ] 1α,3β-dihydroxycholester-5,7-dienes represented by are irradiated with ultraviolet rays to form the following formula [-a] [In the formula, the definitions of R 1 , R 2 and R are the same as above. ] The following formula [-a] is produced by converting to previtamin D 3 represented by 3, and then isomerizing the previtamin D 3 with thermal energy. [In the formula, the definitions of R 1 , R 2 and R are the same as above. ] In the method for producing active vitamin D type 3 represented by [
-a] of 1α,3β-dihydroxycholesta-
0.03 to 0.4 parts by weight of previtamin D 3 of formula [-a] and/or active vitamin D 3 of formula [-a] generated in the reaction system per 1 part by weight of 5,7-dienes. The reaction mixture was then reacted until the previtamin of formula [-a]
D 3 and/or active vitamin D 3 of formula [-a] are separated, and unreacted formula [-a] is separated.
-a] of 1α,3β-dihydroxycholesta-
A method for producing active vitamin D 3 , characterized in that 5,7-dienes are recycled as a precursor for the ultraviolet irradiation. 2. Active vitamin D 3 according to claim 1, wherein previtamins and/or active vitamin D 3 are separated from the reaction mixture by high performance liquid chromatography using silica gel as a carrier. manufacturing method. 3 1α,3β-dihydroxycholesta-5,7
−The dienes have the following formula [] [In the formula, R 1 and R 2 are the same or different and are a hydrogen atom or a hydroxyl group-protecting group. R 3 , R 4 and R 5 are the same or different and are a hydrogen atom, a hydroxyl group or a protected hydroxyl group, and R 3 and R 4 may be taken together to form a carbonyl group or a protected carbonyl group. ] A method for producing active vitamin D 3 according to claim 1 or 2, which is a compound represented by: 4 1α,3β-dihydroxycholesta-5,7
- The dienes are 1α,3β-dihydroxycholester-5,7-diene, 1α,3β,25-trihydroxycholester-5,7-diene, 1α,3β,
24-trihydroxycholester-5,7-diene,
1α,3β,24,25-tetrahydroxycholester-5,7-diene, 1α,3β-dihydroxy-
The active vitamin D 3 according to any one of claims 1 to 3, which is any compound selected from the group consisting of 24-oxocholesta-5,7-diene and hydroxyl-protected derivatives thereof. manufacturing method of types.
Priority Applications (1)
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|---|---|---|---|
| JP7862778A JPS557215A (en) | 1978-06-30 | 1978-06-30 | Preparation of active vitamin d3 or its oh-protected derivative and/or its corresponding previtamin d3 or its oh-protected derivative |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP7862778A JPS557215A (en) | 1978-06-30 | 1978-06-30 | Preparation of active vitamin d3 or its oh-protected derivative and/or its corresponding previtamin d3 or its oh-protected derivative |
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| JPS6231702B2 true JPS6231702B2 (en) | 1987-07-09 |
Family
ID=13667110
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP7862778A Granted JPS557215A (en) | 1978-06-30 | 1978-06-30 | Preparation of active vitamin d3 or its oh-protected derivative and/or its corresponding previtamin d3 or its oh-protected derivative |
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- 1978-06-30 JP JP7862778A patent/JPS557215A/en active Granted
Also Published As
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| JPS557215A (en) | 1980-01-19 |
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