JPS6231916B2 - - Google Patents
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- JPS6231916B2 JPS6231916B2 JP14051183A JP14051183A JPS6231916B2 JP S6231916 B2 JPS6231916 B2 JP S6231916B2 JP 14051183 A JP14051183 A JP 14051183A JP 14051183 A JP14051183 A JP 14051183A JP S6231916 B2 JPS6231916 B2 JP S6231916B2
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- JP
- Japan
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- tryptophan
- hydroxy
- acid
- culture
- hydroxyanthranilic
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired
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- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Description
技術分野
本発明は5−ヒドロキシアンスラニル酸耐性で
5−ヒドロキシ−L−トリプトフアン生産能を有
する微生物を用いた5−ヒドロキシ−L−トリプ
トフアンの製造法に関する。
従来技術
5−ヒドロキシ−L−トリプトフアンは生理活
性アミンであるセロトニンの前駆物質として、ま
たトリプトフン同族体として医薬及び化学工業原
料として重要な化合物であり、従来種々の化学的
又は微生物学的合成方法が提唱されている。
このような5−ヒドロキシ−L−トリプトフア
ンの微生物学的合成方法としては、例えば、5−
ヒドロキシインドールとセリンとから合成する方
法(特開昭46−10955号公報)、5−ヒドロキシイ
ンドールとセリン(又はピルビン酸とアンモニ
ア)とから合成する方法(特開昭49−81590号公
報)、5−ヒドロキシインドールとβ−ハロゲノ
アラニンとから合成する方法(特開昭50−95484
号公報)、5−ヒドロキシインドールとX−CH2
−CH(NH2)−COOH(X:低級アルコキシ基、
ベンジルオキシ基、チオベンジル基)とから合成
する方法(特開昭51−121597号公報)、5−ヒド
ロキシインドールとセリンとから合成する方法
(特開昭57−83288号公報)及びL−トリプトフン
又はω−N−アシル−L−トリプトフアンから製
造する方法(特開昭48−44489号公報)などが知
られている。しかしながら、これらの方法は原料
化合物が高価であつたり、入手し難かつたりする
という問題があり、安価な製造法の開発が実用上
望まれている。
発明の目的及び構成
本発明者等もかかる5−ヒドロキシ−L−トリ
プトフアンの微生物学的製造法の現状に鑑み鋭意
研究を進め、その結果比較的高濃度の5−ヒドロ
キシアンスラニル酸を含む培地において5−ヒド
ロキシ−L−トリプトフアンを効率良く製造する
ことのできる微生物を見出し、本発明をするに至
つた。
即ち、本発明に従えば、5−ヒドロキシアンス
ラニル酸に耐性を有しかつ5−ヒドロキシ−L−
トリプトフアン生産能を有するバチルス・ズブチ
ルスSD−51を5−ヒドロキシアンスラニル酸又
はその塩を添加した培地で培養して培養物中に5
−ヒドロキシ−L−トリプトフアンを生成せし
め、これを採取することから成る5−ヒドロキシ
−L−トリプトフアンの製造法が提供される。
発明の構成及び効果の説明
本発明者等は5−ヒドロキシアンスラニル酸又
はその塩を添加した培地中に5−ヒドロキシ−L
−トリプトフアンを生成蓄積する能力を有する微
生物を得るため、アンスラニル酸→L−トリプト
フアンを生成する酵素系を有する微生物が5−ヒ
ドロキシアンスラニル酸→5−ヒドロキシ−L−
トリプトフアンを生成するかも知れないという推
定のもとに、先ず原株としてL−トリプトフアン
生産能を有する公知の菌株からバチルス・ズブチ
ルIAM1026を選び、その微生物固有のL−トリ
プトフアンによるフイードバツク制御機構を解除
するため、トリプトフアンのアナログ体である5
−フルオロトリプトフアン(5−FT)耐性を附
与する目的で、常法に従つて、前記微生物にN−
メチル−N′−ニトロ−N−ニトロソグアニジン
(NTG)を使用して人工突然変異誘発処理し、こ
の変異処理株を最低阻止濃度(MIC)以上に5−
フルオロトリプトフアンを含んだ寒天平板培地
(スピサイゼン培地)に撒き、生育したコロニー
を純粋分離し、5−フルオロトリプトフアン耐性
株を下記組成の培地に分注した綿栓付試験管に接
種し35℃で30時間振盪培養し、生成5−ヒドロキ
シ−L−トリプトフアンを定量した。
培地組成
硫安2g、K2HPO4 14g、KH2PO4 6g、ク
エン酸ナトリウム・2H2O 1g、MgSO4・7H2O
0.2g、FeSO4・7H2O 1mg、MnSO4・4〜
6H2O 1mg、ブドウ糖50g、及び蒸留水900mlを
115℃で20分間滅菌し、これに5−ヒドロキシア
ンスラニル酸0.1g及び蒸留水100mlを0.45μのフ
イルターで濾過除去したものを添加したもの。
約2000株の前記5−フルオロトリプトフアン耐
性株について上記の方法で5−ヒドロキシ−L−
トリプトフアン生産能の比較を行い、最も生産性
の高い菌株SD−51を選択した。この菌株は昭和
58年7月4日に工業技術院微生物工業技術研究所
に微工研菌寄第7136号として寄託した。
この菌の菌学的性質は原株バチルス・ズブチル
スIAM1026と5−ヒドロキシアンスラニル酸か
ら5−ヒドロキシ−L−トリプトフアンを合成す
る能力が高いこと及び5−FT耐性(L−トリプ
トフアンによるフイードバツク制御機構の解除)
の点で相違する以外は原株の菌学的性質と同じで
あつた。
本発明において使用するバチルス・ズブチリス
SD−51とその原株バチリス・ズブチリス
1AM1026の主な菌学的性質は以下に示す通りで
ある。
Technical Field The present invention relates to a method for producing 5-hydroxy-L-tryptophan using a microorganism resistant to 5-hydroxyanthranilic acid and capable of producing 5-hydroxy-L-tryptophan. Prior Art 5-Hydroxy-L-tryptophan is an important compound as a precursor of the physiologically active amine serotonin and as a tryptophan homolog as a raw material for medicine and the chemical industry. It has been proposed. As a method for microbiologically synthesizing 5-hydroxy-L-tryptophan, for example, 5-hydroxy-L-tryptophan
A method for synthesizing from hydroxyindole and serine (Japanese Patent Application Laid-open No. 10955/1982), a method for synthesizing from 5-hydroxyindole and serine (or pyruvic acid and ammonia) (Japanese Patent Application Laid-open No. 81590/1982), 5 - Method of synthesis from hydroxyindole and β-halogenoalanine (Japanese Patent Application Laid-Open No. 50-95484
5-hydroxyindole and X-CH2
-CH(NH2)-COOH (X: lower alkoxy group,
benzyloxy group, thiobenzyl group) (JP-A-51-121597), method of synthesis from 5-hydroxyindole and serine (JP-A-57-83288), and L-tryptophan or ω. A method for producing it from -N-acyl-L-tryptophan (Japanese Unexamined Patent Publication No. 48-44489) is known. However, these methods have problems in that the raw material compounds are expensive or difficult to obtain, and there is a practical need for the development of inexpensive production methods. Purpose and Structure of the Invention The present inventors have also conducted extensive research in view of the current state of the microbiological production method of 5-hydroxy-L-tryptophan, and as a result, in a medium containing a relatively high concentration of 5-hydroxyanthranilic acid. A microorganism capable of efficiently producing 5-hydroxy-L-tryptophan was discovered, and the present invention was accomplished. That is, according to the present invention, it has resistance to 5-hydroxyanthranilic acid and 5-hydroxy-L-
Bacillus subtilis SD-51, which has the ability to produce tryptophan, is cultured in a medium supplemented with 5-hydroxyanthranilic acid or its salt, and 5-hydroxyanthranilic acid or its salt is added to the culture.
A method for producing 5-hydroxy-L-tryptophan is provided, which comprises producing and collecting 5-hydroxy-L-tryptophan. Description of Structure and Effects of the Invention The present inventors have discovered that 5-hydroxy-L
- In order to obtain a microorganism that has the ability to produce and accumulate tryptophan, microorganisms that have an enzyme system that produces anthranilic acid → L-tryptophan are used to produce 5-hydroxyanthranilic acid → 5-hydroxy-L-
Based on the assumption that it may produce tryptophan, we first selected Bacillus subtilis IAM1026 as an original strain from known strains that have the ability to produce L-tryptophan, and released the feedback control mechanism by L-tryptophan that is unique to this microorganism. Therefore, 5, which is an analogue of tryptophan,
- For the purpose of imparting resistance to fluorotryptophan (5-FT), the microorganism is treated with N-
Artificial mutagenesis was performed using methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine (NTG), and the mutagenized strain was 5- or more than the minimum inhibitory concentration (MIC).
Spread on an agar plate medium containing fluorotryptophan (Spicaizen medium), isolate the grown colonies, and inoculate 5-fluorotryptophan-resistant strains into test tubes with cotton plugs dispensed into a medium with the following composition. After culturing with shaking at 35°C for 30 hours, the amount of 5-hydroxy-L-tryptophan produced was quantified. Medium composition Ammonium sulfate 2g, K2HPO4 14g, KH2PO4 6g, sodium citrate/2H2O 1g, MgSO4/7H2O
0.2g, FeSO4・7H2O 1mg, MnSO4・4~
6H2O 1mg, glucose 50g, and distilled water 900ml
Sterilized at 115°C for 20 minutes, to which was added 0.1g of 5-hydroxyanthranilic acid and 100ml of distilled water filtered through a 0.45μ filter. Approximately 2,000 5-fluorotryptophan-resistant strains were treated with 5-hydroxy-L-
We compared the tryptophan production ability and selected the strain SD-51 with the highest productivity. This strain is from the Showa era.
It was deposited with the Institute of Microbial Technology, Agency of Industrial Science and Technology on July 4, 1958, as Microtechnology Research Institute Deposit No. 7136. The mycological properties of this bacterium include a high ability to synthesize 5-hydroxy-L-tryptophan from the original strain Bacillus subtilis IAM1026 and 5-hydroxyanthranilic acid, and 5-FT resistance (feedback control mechanism by L-tryptophan). Cancellation)
The mycological properties were the same as those of the original strain, except for the difference in the following points. Bacillus subtilis used in the present invention
SD-51 and its original strain B. subtilis
The main mycological properties of 1AM1026 are as shown below.
【表】
集合形態 単一或いは連鎖状 同 左
[Table] Aggregation form Single or chain Same as left
【表】
円形、 周縁は波状 円形、 周縁は波状
肉汁寒天 生育良好、 灰白色 生育良好、 灰白色
斜面 拡布状 拡布状
[Table] Circular, wavy edges Circular, wavy edges Juicy agar Good growth, grayish white Good growth, grayish white slope Spreading Spreading
【表】
ミルク ペプトン化 ペプトン化
[Table] Milk Peptonization Peptonization
【表】【table】
【表】【table】
【表】
本発明に従つて5−ヒドロキシ−L−トリプト
フアンを製造するには、バチルス・スブチルス
SD−5を5−ヒドロキシアンスラニル酸又はそ
の塩を添加した培地中で培養することにより実施
する。栄養培地中の5−ヒドロキシアンスラニル
酸又はその塩の濃度には特に限定はないが、目的
5−ヒドロキシ−L−トリプトフアンの収量、培
養条件及び経済的観点から一般には0.1〜1000
mg/、好ましくは50〜300mg/の濃度とす
る。
本発明方法において使用することのできる培地
としては、前記微生物が培養により増殖し得るも
のであれば任意のものでもよく、例えば炭素源と
してはブドウ糖、糖蜜、蔗糖、デン粉、デン粉糖
化液、セルロース分解物などの糖類、酢酸、エタ
ノール等が用いられる。蓄素源としてはアンモニ
ア、硫安、塩安、硝安、燐安などのアンモニウム
塩や尿素、硝酸塩等が適宜用いられる。無機塩と
しては燐酸、カリウム、マグネシウム、マンガン
等の塩類、例えば燐酸アンモニウム、燐酸カリ、
燐酸ソーダ、硫酸マグネシウム、硫酸第一鉄、硫
酸マンガン、苛性カリ等の通常の工業用薬品で良
く、他に微量元素としてカルシウム、亜鉛、硼
素、銅、コバルト、モリブデン等の塩類を加えて
も良い。また微量有機栄養素としてビタミン、ア
ミノ酸、核酸関連物質等は菌の生育上は特別に必
要とするものではないが、これらを添加したり、
コーンスチープリカー、肉エキス、酵母エキス、
ペプトン等の有機物を加えても良い。5−ヒドロ
キシアンスラニル酸はそのまま又はメタノール、
エタノール、酢酸等の有機溶媒の溶液で使用して
もよいが、ナトリウム、カリウム、アンモニウム
などのアルカリ塩や硫酸、塩酸、酢酸等の酸塩の
水溶液として使用するのが好ましく、硫酸、塩
酸、酢酸等の酸塩の水溶液として使用するのが特
に好ましい。
本発明方法における培養は好気的条件下に、例
えば通気撹拌や往復振盪方法によつて培養するこ
とができる。培養条件は、特に限定はないが、一
般的に言えば、温度30〜40℃、PH6.0〜8.0及び18
〜72時間程度の条件で実施する。
培養液又は培養物からの目的の5−ヒドロキシ
−L−トリプトフアンの採取方法は慣用方法に従
つて行うことができる。例えば、遠心分離により
菌体部を除いた培養液上清からイオン交換樹脂処
理法、活性炭処理法等の操作を適宜組み合せて5
−ヒドロキシ−L−トリプトフアンを単離晶析す
ることができる。
本発明に従えば、
(1) 培養開始前に培地中に5−ヒドロキシアンス
ラニル酸を添加した状態で菌株を接種できる、
(2) 大量培養時に発酵槽内での添加5−ヒドロキ
シアンスラニル酸の濃度分布が局在することが
あつても菌は影響を受けない、
(3) 5−ヒドロキシアンスラニル酸感受性菌で
は、5−ヒドロキシアンスラニル酸の供給時に
過供給を避けるために5−ヒドロキシアンスラ
ニル酸供給不足になる場合もあるが、本発明の
菌の場合には常に過供給培養を行うことが可能
であるため5−ヒドロキシアンスラニル酸の供
給不足を解消することができる、
という優れた効果を達成することができる。
実施例
以下に本発明の実施例を説明するが、本発明の
範囲をこれらの実施例に限定するものではないこ
とはいうまでもない。
例 1
(5−ヒドロキシ−L−トリプトフアンの製造
例)
グルコース5%、硫安0.2%、K2HPO4 1.4
%、KH2PO4 0.6%、クエン酸ナトリウム・
2H2O 1g、MgSO4・7H2O 0.02%、FeSO4・
7H2O 1ppm及びMnSO4・4〜6H2O 1ppmの液
体培地(PH7.0)50mlを含む三角フラスコにバチ
ルス・ズブチルスSD−51を接種し35℃で振盪培
養した。接種後、5−ヒドロキシアンスラニル酸
塩酸塩を25mg添加し、48時間振盪培養を行つた結
果、目的の5−ヒドロキシ−L−トリプトフアン
が315ppmの濃度に生成蓄積していた。
例 2
(5−ヒドロキシ−L−トリプトフアン製造
例)
下記組成の液体培地2を5のジヤーフアー
メンターに入れ、次いで例2の培地にて35℃で18
時間予め振盪培養したバチルス・ズブチルスSD
−51を上記ジヤーフアーメンターに5%接種して
35℃で溶存酸素量を0.5pm以上に保ち、かつPHを
PHコントローラで1N苛性ソーダを用いて7.0±0.2
に保ちながら通気撹拌培養を行なつた。
液体培地組成
グルコース10%、硫安0.3%、Na2HPO4・
12H2O0.5%、KH2O4 0.2%、MgSO4・7H2O
0.05%、FeSO4・7H2O 5ppm、MnSO4・4〜
6H2O 1ppm及び5−ヒドロキシアンスラニル酸
0.05%
培養開始10時間以後、5−ヒドロキシアンスラ
ニル酸塩酸塩を1時間1gの割合でフアーメンタ
ーに添加した。培養開始34時間までに5−ヒドロ
キシアンスラニル酸25gを添加し、以後6時間培
養を続けた。40時間培養した培養液中の5−ヒド
ロキシ−L−トリプトフアン濃度は14.3g/で
あつた。この時のトリプトフアン濃度は0.55gで
あつた。培養液を遠心分離して菌体部を除いた上
清1.8を塩酸にてPH2.5に下げ、強酸性陽イオン
交換樹脂のカラム(30×500mm)にかけ5−ヒド
ロキシ−L−トリプトフアンを吸着せしめ、1
の純水で水洗後、3%のアンモニアで溶離した。
5−ヒドロキシトリプトフアンの画分を集め、活
性炭に吸着せしめ、熱エタノールで溶出し、減圧
濃縮し、5−ヒドロキシトリプトフアンの結晶を
回収した。
得られた5−ヒドロキシトリプトフアン結晶の
収量は7.5gであり、この結晶の旋光度を測定し
たところ〔α〕20 D=−32.1であり、この値から生
成した5−ヒドロキシトリプトフアンがL体であ
ることが判明した。[Table] To produce 5-hydroxy-L-tryptophan according to the present invention, Bacillus subtilis
This is carried out by culturing SD-5 in a medium supplemented with 5-hydroxyanthranilic acid or its salt. There is no particular limitation on the concentration of 5-hydroxyanthranilic acid or its salt in the nutrient medium, but it is generally 0.1 to 1000 from the viewpoint of the desired yield of 5-hydroxy-L-tryptophan, culture conditions, and economics.
mg/, preferably 50 to 300 mg/. The medium that can be used in the method of the present invention may be any medium as long as the microorganisms can be grown by culturing.For example, carbon sources include glucose, molasses, sucrose, starch, starch saccharified solution, Saccharides such as cellulose decomposition products, acetic acid, ethanol, etc. are used. As the storage source, ammonium salts such as ammonia, ammonium sulfate, ammonium chloride, ammonium nitrate, ammonium phosphorus, urea, nitrates, etc. are used as appropriate. Examples of inorganic salts include salts of phosphoric acid, potassium, magnesium, manganese, etc., such as ammonium phosphate, potassium phosphate,
Usual industrial chemicals such as sodium phosphate, magnesium sulfate, ferrous sulfate, manganese sulfate, and caustic potassium may be used, and trace elements such as salts such as calcium, zinc, boron, copper, cobalt, and molybdenum may also be added. In addition, trace organic nutrients such as vitamins, amino acids, and nucleic acid-related substances are not particularly required for the growth of bacteria, but they can be added to
Corn steep liquor, meat extract, yeast extract,
Organic substances such as peptone may be added. 5-hydroxyanthranilic acid as it is or with methanol,
Although it may be used as a solution in an organic solvent such as ethanol or acetic acid, it is preferably used as an aqueous solution of an alkali salt such as sodium, potassium, or ammonium or an acid salt such as sulfuric acid, hydrochloric acid, or acetic acid. It is particularly preferable to use the acid salt as an aqueous solution. Culture in the method of the present invention can be carried out under aerobic conditions, for example, by aerated stirring or reciprocating shaking. Culture conditions are not particularly limited, but generally speaking, temperature is 30-40℃, pH 6.0-8.0 and 18
It will be carried out for about 72 hours. The desired 5-hydroxy-L-tryptophan can be collected from the culture solution or culture according to a conventional method. For example, the culture supernatant after removing bacterial cells by centrifugation may be treated with ion exchange resin, activated carbon, etc., as appropriate.
-Hydroxy-L-tryptophan can be isolated and crystallized. According to the present invention, (1) the strain can be inoculated with 5-hydroxyanthranilic acid added to the medium before the start of culture, (2) 5-hydroxyanthranilic acid can be added in the fermenter during mass culture. (3) In 5-hydroxyanthranilic acid-sensitive bacteria, 5-hydroxyanthranilic acid is Although there may be a shortage of anthranilic acid supply, in the case of the bacteria of the present invention, oversupply culture can always be performed, so the shortage of 5-hydroxyanthranilic acid can be resolved. effect can be achieved. Examples Examples of the present invention will be described below, but it goes without saying that the scope of the present invention is not limited to these examples. Example 1 (Production example of 5-hydroxy-L-tryptophan) Glucose 5%, ammonium sulfate 0.2%, K2HPO4 1.4
%, KH2PO4 0.6%, sodium citrate.
2H2O 1g, MgSO4・7H2O 0.02%, FeSO4・
Bacillus subtilis SD-51 was inoculated into an Erlenmeyer flask containing 50 ml of a liquid medium (PH7.0) containing 1 ppm of 7H2O and 1 ppm of MnSO4.4 to 6H2O and cultured with shaking at 35°C. After inoculation, 25 mg of 5-hydroxyanthranilic hydrochloride was added and cultured with shaking for 48 hours. As a result, the desired 5-hydroxy-L-tryptophan was produced and accumulated at a concentration of 315 ppm. Example 2 (Production example of 5-hydroxy-L-tryptophan) Put liquid medium 2 with the following composition into the jar fermenter No. 5, and then use the medium of Example 2 at 35°C for 18
Bacillus subtilis SD pre-shaking cultured for an hour
-51 was inoculated into the above Jiahua Armentor at 5%.
Maintain the amount of dissolved oxygen above 0.5pm at 35℃, and maintain the pH level.
7.0±0.2 using 1N caustic soda with PH controller
Aerated agitation culture was performed while maintaining the temperature. Liquid medium composition Glucose 10%, Ammonium sulfate 0.3%, Na2HPO4・
12H2O0.5%, KH2O4 0.2%, MgSO4・7H2O
0.05%, FeSO4・7H2O 5ppm, MnSO4・4~
6H2O 1ppm and 5-hydroxyanthranilic acid
0.05% 10 hours after the start of the culture, 5-hydroxyanthranilic hydrochloride was added to the fermenter at a rate of 1 g for 1 hour. 25 g of 5-hydroxyanthranilic acid was added 34 hours after the start of the culture, and the culture was continued for 6 hours. The concentration of 5-hydroxy-L-tryptophan in the culture solution after culturing for 40 hours was 14.3 g/. The tryptophan concentration at this time was 0.55 g. After centrifuging the culture solution and removing the bacterial cells, the supernatant 1.8 was lowered to pH 2.5 with hydrochloric acid and applied to a strongly acidic cation exchange resin column (30 x 500 mm) to adsorb 5-hydroxy-L-tryptophan. ,1
After washing with pure water, it was eluted with 3% ammonia.
Fractions of 5-hydroxytryptophan were collected, adsorbed on activated carbon, eluted with hot ethanol, and concentrated under reduced pressure to recover crystals of 5-hydroxytryptophan. The yield of the obtained 5-hydroxytryptophan crystal was 7.5 g, and when the optical rotation of this crystal was measured, [α] 20 D = -32.1, and from this value, the produced 5-hydroxytryptophan was It turned out to be L-form.
Claims (1)
有しかつ5−ヒドロキシ−L−トリプトフアン生
産能を有するバチルス・ズブチルスSD−51を5
−ヒドロキシアンスラニル酸又はその塩を添加し
た培地で培養して培養物中に5−ヒドロキシ−L
−トリプトフアンを生成せしめ、これを採取する
ことを特徴とする5−ヒドロキシ−L−トリプト
フアンの製造法。1 Bacillus subtilis SD-51, which is resistant to 1,5-hydroxyanthranilic acid and has the ability to produce 5-hydroxy-L-tryptophan, was
- 5-hydroxy-L in the culture by culturing in a medium supplemented with hydroxyanthranilic acid or its salt.
- A method for producing 5-hydroxy-L-tryptophan, which comprises producing tryptophan and collecting it.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP14051183A JPS6034195A (en) | 1983-08-02 | 1983-08-02 | Preparation of 5-hydroxy-l-tryptophan |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP14051183A JPS6034195A (en) | 1983-08-02 | 1983-08-02 | Preparation of 5-hydroxy-l-tryptophan |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS6034195A JPS6034195A (en) | 1985-02-21 |
| JPS6231916B2 true JPS6231916B2 (en) | 1987-07-10 |
Family
ID=15270345
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP14051183A Granted JPS6034195A (en) | 1983-08-02 | 1983-08-02 | Preparation of 5-hydroxy-l-tryptophan |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS6034195A (en) |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN103145602A (en) * | 2013-02-27 | 2013-06-12 | 李玉山 | Novel extraction and purification technology for 5-hydroxytryptophan |
-
1983
- 1983-08-02 JP JP14051183A patent/JPS6034195A/en active Granted
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS6034195A (en) | 1985-02-21 |
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