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JPS6312480B2 - - Google Patents
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JPS6312480B2 - - Google Patents

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Publication number
JPS6312480B2
JPS6312480B2 JP56175030A JP17503081A JPS6312480B2 JP S6312480 B2 JPS6312480 B2 JP S6312480B2 JP 56175030 A JP56175030 A JP 56175030A JP 17503081 A JP17503081 A JP 17503081A JP S6312480 B2 JPS6312480 B2 JP S6312480B2
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JP
Japan
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insulin
reaction
protecting group
compound
group
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Application number
JP56175030A
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Japanese (ja)
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JPS57155997A (en
Inventor
Kazuyuki Morihara
Tatsu Oka
Hiroshige Tsuzuki
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Shionogi and Co Ltd
Original Assignee
Shionogi and Co Ltd
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Publication date
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    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02PCLIMATE CHANGE MITIGATION TECHNOLOGIES IN THE PRODUCTION OR PROCESSING OF GOODS
    • Y02P20/00Technologies relating to chemical industry
    • Y02P20/50Improvements relating to the production of bulk chemicals
    • Y02P20/55Design of synthesis routes, e.g. reducing the use of auxiliary or protecting groups

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Description

【発明の詳細な説明】 本発明はインシユリン誘導体に関するものであ
る。本発明者らはトリプシンまたはカルボニル側
塩基性アミノ酸残基に特異性を示すトリプシン様
酵素の作用によりデス―B30―インシユリンに1
〜100倍モル量のスレオニン誘導体を反応させて、
ついで得られる縮合物から保護基を除去してイン
シユリンを得る方法を発見した。
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION The present invention relates to insulin derivatives. The present inventors have demonstrated that des-B30-insulin can be synthesized by the action of trypsin or a trypsin-like enzyme that has specificity for basic amino acid residues on the carbonyl side.
~100 times the molar amount of threonine derivative is reacted,
They then discovered a method to obtain insulin by removing the protecting group from the resulting condensate.

インシユリンは糖尿病の治療薬として代替品の
ない貴重な薬物であり、現在主として牛インシユ
リンおよび豚インシユリンが治療に用いられてい
る。しかし、これらのインシユリンは構成アミノ
酸の一部が人インシユリンと異なつているため、
体内で抗体が産生されることがあり、抗体が産生
されるとそれ以後のインシユリンの治療効果が著
しく低下するなどの問題を生じる。したがつて、
工業的規模で行ないうる人インシユリンの合成方
法の確立が強く希まれている。
Insulin is a valuable drug with no substitutes for the treatment of diabetes, and currently bovine insulin and porcine insulin are mainly used for treatment. However, some of the constituent amino acids of these insulins are different from human insulin, so
Antibodies may be produced in the body, and the production of antibodies causes problems such as a marked decrease in the therapeutic effect of insulin. Therefore,
There is a strong desire to establish a method for synthesizing human insulin that can be carried out on an industrial scale.

本発明者らの方法によれば、人インシユリンと
B鎖30位のアミノ酸のみが異なる豚インシユリン
を原料に用いて人インシユリンを容易に合成する
ことができる。このようにして得られる人インシ
ユリンが理想的な治療用インシユリンであること
は論を俟たない。
According to the method of the present inventors, human insulin can be easily synthesized using pig insulin, which differs from human insulin only in the amino acid at position 30 of the B chain, as a raw material. There is no doubt that the human insulin obtained in this way is an ideal therapeutic insulin.

豚デスオクタペプチドインシユリンと人インシ
ユリンオクタペプチドから人インシユリンを得る
試みは、エム・エー・ルツテンベルグ(M.A・
Ruttenberg)がサイエンス(Science)177巻623
頁(1972年)に、およびアール・オーベルマイヤ
ー(R.Obermeier)らがサイツシユリフト・フユ
ア・ヒジオロジツシエ・ヘミー(Zeitschrift fu¨r
Physiologische Chemie)357巻759頁(1976年)
に発表しているように既になされているが、何れ
も化学的手段によるものであり、前者においては
工程の最後にアルカリ処理を含み、これに伴う副
反応がさけられない。また後者の場合は反応が非
特異的で多くの副反応で生じるため、精製が複雑
かつ困難となり収率も著しく低い。従つて、工業
的規模では到底行ない得ない。
Attempts to obtain human insulin from pig desoctapeptide insulin and human insulin octapeptide were conducted by M.A. Ruthtenberg (M.A.
Ruttenberg) Science vol. 177 623
(1972) and R. Obermeier et al.
Physiologische Chemie) Volume 357, Page 759 (1976)
Both methods are based on chemical means, and the former involves an alkali treatment at the end of the process, and accompanying side reactions are unavoidable. In the latter case, the reaction is non-specific and involves many side reactions, making purification complicated and difficult and resulting in extremely low yields. Therefore, it cannot be carried out on an industrial scale.

一方、本発明者らの方法はデス―B30―インシ
ユリンとL―スレオニン誘導体とを酵素反応によ
り縮合させてインシユリンを得る方法で、公知の
化学的手段による方法とは異なり、反応が特異的
で副反応も生ぜず、ラセミ化も起きず、未反応原
料を損なわずに回収できる、等の利点を有する。
On the other hand, the method of the present inventors obtains insulin by condensing des-B30-insulin and an L-threonine derivative through an enzymatic reaction. It has advantages such as no reaction, no racemization, and the ability to recover unreacted raw materials without damaging them.

さらに同方法では、1〜100倍モル量のL―ス
レオニン誘導体を用いることにより、通常の酵素
反応では当然起きるB鎖22位のアルギニンのカル
ボニル側切断が防止され、したがつて通常の酵素
反応では必須であるアルギニン側鎖への保護基導
入が不必要である。
Furthermore, in the same method, by using 1 to 100 times the molar amount of L-threonine derivatives, the carbonyl side cleavage of arginine at position 22 of the B chain, which naturally occurs in normal enzymatic reactions, is prevented; Introduction of a protecting group to the arginine side chain, which is essential, is unnecessary.

同方法は、トリプシンまたはカルボニル側塩基
性アミノ酸残基に特異性を示すトリプシン様酵素
の存在下に、B鎖30位のアミノ酸が欠けたデス―
B30―インシユリン(以下化合物と記す)に1
〜100倍モル量のL―スレオニン誘導体(以下化
合物と記す)を反応させ、ついで得られる縮合
物から保護基を除去することよりなる。化合物
は下記の一般式で表わされる。
This method uses trypsin or a trypsin-like enzyme that has specificity for basic amino acid residues on the carbonyl side.
1 for B30-insulin (hereinafter referred to as compound)
It consists of reacting an L-threonine derivative (hereinafter referred to as compound) in a molar amount of ~100 times, and then removing the protecting group from the resulting condensate. The compound is represented by the general formula below.

(式中、R1は水素またはヒドロキシ基の保護
基、R2はカルボキシル基の保護基をそれぞれ表
わす。) 上記の化合物は豚起源のインシユリンにカル
ボキシペプチダーゼAを作用させることにより得
られ、例えば、イ・ダブリユー・シユミツト(E.
W.Schmitt)らがホツペーセイラーズ・サイトシ
ユリフト・フユア・ヒジオロジツシエ・ヘミー
(Hoppe―Seyler′sZeitschrift fu¨r
Physiologische Chemie)359巻799頁(1978年)
に記載している方法により製造できる。またアク
ロモバクター・リテイカス(Achromobacter
lyticus)が産生するリジンに特異性を有し、リ
ジンのカルボニル側を切断する酵素を用いても容
易に製造することができる。同酵素の分離および
性状については、正木らがアグリカルチユラル・
アンド・バイオロジカル・ケミストリー
(Agricultural and Biological Chemistry)42巻
1443頁(1978年)に発表しており、同論文におい
ては上記性状を有する酵素をプロテアーゼと称
している。
(In the formula, R 1 represents hydrogen or a hydroxy group-protecting group, and R 2 represents a carboxyl group-protecting group.) The above compound is obtained by treating insulin of pig origin with carboxypeptidase A, and for example, E.D.
Hoppe-Seyler's Zeitschrift fu¨r
Physiologische Chemie) Volume 359, Page 799 (1978)
It can be manufactured by the method described in . Also, Achromobacter liteicus
lyticus), and can be easily produced using an enzyme that cleaves the carbonyl side of lysine. Regarding the isolation and properties of the enzyme, Masaki et al.
Agricultural and Biological Chemistry Volume 42
1443 (1978), in which the enzyme with the above properties is called protease.

化合物は、その側鎖官能基であるヒドロキシ
基が保護されていなくとも反応に供しうるが、保
護基を導入するならば、ペプチド合成反応で通常
利用される保護基、例えば、t―ブチル、ベンジ
ル、アセチルなどを用いるとよい。また、化合物
のカルボキシル基は保護されていることが必要
で、通常用いられるカルボキシル基の保護基を使
用すればよい。例えば、t―ブチル、ベンジルな
どのアルキルおよびアラルキルエステルの形で修
飾する。
A compound can be subjected to a reaction even if its side chain functional group, hydroxy group, is not protected, but if a protecting group is introduced, a protecting group commonly used in peptide synthesis reactions, such as t-butyl, benzyl , acetyl, etc. may be used. Further, the carboxyl group of the compound needs to be protected, and a commonly used protecting group for carboxyl groups may be used. For example, modification in the form of alkyl and aralkyl esters such as t-butyl, benzyl, etc.

上記の保護基の選択においては、それらの保護
基の導入または除去処理において、インシユリン
を変性したり失活したりしないものを選択するよ
う考慮すべきである。ペプチド合成に用いる保護
基については、エム・ボダンスツキー(M.
Bodanszky)らがペプチド・シンセシス
(Peptide Synthesis)第2版(1976年)(ジヨ
ン・ウイリー・アンド・サンズ(John Wiley&
Sons))に詳しく記載している。
When selecting the above-mentioned protecting groups, consideration should be given to selecting those that do not denature or deactivate insulin during the introduction or removal treatment of the protecting groups. Regarding protecting groups used in peptide synthesis, M. Bodansudsky (M.
Peptide Synthesis, 2nd edition (1976) (John Wiley & Sons)
Sons)).

なお、保護基の選択においては、一回の保護基
脱離操作により同時に除去できるものを選ぶのが
好ましいことは論を俟たない。
It goes without saying that when selecting a protecting group, it is preferable to select one that can be simultaneously removed by a single protecting group removal operation.

同方法で使用する酵素は、トリプシンまたは各
種動植物および微生物起源のカルボキシル側塩基
性アミノ酸に特異性を示すトリプシン様酵素など
を含む。トリプシン様酵素としては、例えば、ス
トレプトマイセス属菌から抽出分離された酵素が
ある。同酵素については森原らがアーキバス・オ
ブ・バイオケミストリー・アンド・バイオフイジ
クス(Arch.Biochem.Biophys.)126巻971頁
(1968年)に、吉田らがエフイービーエス・レタ
ーズ(FEBS Lett.)15巻129頁(1971年)に記載
している。使用する酵素は混在するキモトリプシ
ンまたはキモトリプシン様の活性を除去する目的
でトシル―L―フエニルアラニンクロロメチルケ
トン(TPCK)などで処理するとよい。
Enzymes used in the method include trypsin or trypsin-like enzymes that exhibit specificity for carboxyl-side basic amino acids derived from various animals, plants, and microorganisms. Examples of trypsin-like enzymes include enzymes extracted and separated from Streptomyces bacteria. Regarding the enzyme, Morihara et al. published Arch.Biochem.Biophys., Vol. 126, p. 971 (1968), and Yoshida et al. published FEBS Letters, Vol. 15. It is described on page 129 (1971). The enzyme used may be treated with tosyl-L-phenylalanine chloromethyl ketone (TPCK) or the like for the purpose of removing contaminating chymotrypsin or chymotrypsin-like activity.

化合物と化合物の縮合反応は上記の酵素の
ペプチド結合形成反応に適した条件で行なわれ
る。PHは5〜8、特に6〜7付近が好ましく、反
応温度は0〜50℃、とくに20〜40℃がよい。化合
物と化合物の濃度は可能なかぎり高いことが
のぞましい。さらに化合物と化合物は1:1
〜100:1のモル比で反応させるのがよく、とく
に20:1〜100:1付近がよい。反応液には水と
混合しうる適当な有機溶媒を加える。有機溶媒の
添加は、反応液中の水の濃度を下げて、逆反応で
ある加水分解反応を抑えるだけでなく、化合物
および化合物の溶解性を著しく高める点で効果
がある。有機溶媒としては、例えば、メタノー
ル、エタノール、ジメチルホルムアミド、ジメチ
ルスルホキシド、グリセリンなどを単独でまたは
組合せて用いる。とくに0〜65%、とくに40〜60
%の濃度で用いるとよい。一般に、有機溶媒を用
いる場合は、原料の溶解度、酵素の変性や加水分
解反応などを考慮して水に対する割合を決定す
る。反応液の緩衝剤としては、トリスヒドロキシ
メチルアミノメタン(トリス)や炭酸塩などが用
いられる。
The condensation reaction between the compounds is carried out under conditions suitable for the peptide bond forming reaction of the enzyme described above. The pH is preferably 5 to 8, particularly around 6 to 7, and the reaction temperature is preferably 0 to 50°C, particularly 20 to 40°C. It is desirable that the compound and compound concentrations be as high as possible. Furthermore, the ratio of compound to compound is 1:1
It is preferable to carry out the reaction at a molar ratio of ~100:1, particularly around 20:1~100:1. A suitable organic solvent miscible with water is added to the reaction solution. Addition of an organic solvent is effective not only in reducing the concentration of water in the reaction solution and suppressing the hydrolysis reaction, which is a reverse reaction, but also in significantly increasing the solubility of the compound and the compound. As the organic solvent, for example, methanol, ethanol, dimethylformamide, dimethyl sulfoxide, glycerin, etc. are used alone or in combination. Especially 0-65%, especially 40-60
It is recommended to use it at a concentration of %. Generally, when using an organic solvent, the ratio to water is determined by considering the solubility of raw materials, denaturation of enzymes, hydrolysis reaction, etc. As a buffer for the reaction solution, trishydroxymethylaminomethane (Tris), carbonate, or the like is used.

反応液の酵素濃度は基質濃度や酵素の活性で異
なつてくるが、市販結晶トリプシンを用いる場合
は1mg/ml〜10mg/ml付近がよい。酵素はそのま
ま用いてもよいし、適当な不溶性担体に結合又は
包含させた固定化酵素として用いてもよい。
The enzyme concentration in the reaction solution varies depending on the substrate concentration and enzyme activity, but when using commercially available crystalline trypsin, it is preferably around 1 mg/ml to 10 mg/ml. The enzyme may be used as it is, or may be used as an immobilized enzyme bound to or included in a suitable insoluble carrier.

反応時間は、反応条件により異なるが、通常は
酵素反応が平衡に達するに要する時間をとればよ
く、通常3〜72時間、多くの場合6〜24時間程度
である。
Although the reaction time varies depending on the reaction conditions, it is usually sufficient to allow the time required for the enzyme reaction to reach equilibrium, which is usually about 3 to 72 hours, and in most cases about 6 to 24 hours.

反応終了後はペプチドの分離法として通常用い
られる方法を組合せて利用し、B鎖30位スレオニ
ンがカルボキシル基に保護基を有しかつヒドロキ
シ基に保護基を有していてもよい人インシユリン
を得、ついで目的とする人インシユリンを得る。
After the reaction, a combination of methods commonly used for separating peptides was used to obtain human insulin, in which the threonine at position 30 of the B chain has a protecting group on the carboxyl group and may have a protecting group on the hydroxyl group. , then the intended person gets insulin.

例えば、反応終了後反応液をゲル過にかけ、
未反応の化合物および酵素を単離回収する。回
収した化合物および酵素はそのまま再使用が可
能である。残部を適当なクロマトグラフイーに付
し、生成したB鎖30位スレオニンがカルボキシル
基に保護基を有しかつヒドロキシ基に保護基を有
していてもよい人インシユリンと未反応デス―
B30―インシユリンを分離する。後者は化合物
として再使用できる。前者は更に保護基脱離反応
に付し、人インシユリンとする。
For example, after the reaction is completed, the reaction solution is subjected to gel filtration,
Unreacted compounds and enzymes are isolated and recovered. The recovered compounds and enzymes can be reused as they are. The remainder is subjected to appropriate chromatography, and the generated threonine at position 30 of the B chain has a protecting group on the carboxyl group and human insulin which may have a protecting group on the hydroxyl group and unreacted des-
B30 - Separates insulin. The latter can be reused as a compound. The former is further subjected to a protecting group elimination reaction to produce human insulin.

保護基の脱離方法は用いる保護基によつて異な
るが、通常の脱離方法に準じて行えばよく、例え
ば、ヒドロキシ基やカルボキシル基の保護基とし
て使用されるt―ブチル基は、カチオン捕捉剤
(例えばアニソール)の存在下トリフルオロ酢酸
で処理すると脱離する。前記のように単一の脱離
処理で除去できる保護基をスレオニンの側鎖官能
基およびカルボキシル基の保護に用いると、脱離
処理が簡単で収率も向上する。カルボキシル末端
がその他のエステルになつている場合も適当な加
水分解処理により保護基を除去できる。
The method for removing the protecting group differs depending on the protecting group used, but it can be carried out according to the usual method. It is eliminated upon treatment with trifluoroacetic acid in the presence of agents such as anisole. When a protecting group that can be removed by a single elimination treatment as described above is used to protect the side chain functional group and carboxyl group of threonine, the elimination treatment is simple and the yield is improved. Even when the carboxyl terminal is converted to another ester, the protecting group can be removed by appropriate hydrolysis treatment.

本発明のB鎖30位スレオニンがカルボキシル基
に保護基を有しかつヒドロキシ基に保護基を有し
ていてもよい人インシユリンから得られるインシ
ユリンは先に記載したように血糖降下作用を有す
る糖尿病治療薬としてまたは試薬として有用であ
る。本発明者らの方法で豚インシユリンより合成
した人インシユリンはマウスに対する血糖降下作
用試験において牛インシユリンと同等の効果を示
した。
The insulin obtained from human insulin, in which the threonine at position 30 of the B chain of the present invention has a protective group on the carboxyl group and may have a protective group on the hydroxyl group, has a hypoglycemic effect as described above for the treatment of diabetes. Useful as a medicine or reagent. Human insulin synthesized from pig insulin by the method of the present inventors showed an effect equivalent to that of bovine insulin in a hypoglycemic test on mice.

本発明化合物より合成した人インシユリンは、
市販の豚インシユリンや牛インシユリンと同様に
製剤化し、人に投与される。すなわち、塩化亜鉛
などを加えて亜鉛複合体にしたり、リン酸水素ナ
トリウムや酢酸ナトリウム等の緩衝剤を加えたり
等張液とするため塩化ナトリウムを加えるなど、
さらに、クレゾール、フエノール、パラオキシ安
息香酸アルキルエステル(例えば、メチル、エチ
ル、プロピル、ブチルエステルなど)などの防腐
剤を加えるなどの市販インシユリン製剤に用いら
れる調製法を利用し、注射剤を製造する。かかる
注射剤の投与量は患者の症状に応じて異なるが、
市販のインシユリン製剤の投与と同様に行えばよ
く、成人1日約1〜100単位を投与するようにす
るとよい。
Human insulin synthesized from the compound of the present invention is
It is formulated and administered to humans in the same way as commercially available swine and bovine insulin. That is, adding zinc chloride etc. to make a zinc complex, adding buffers such as sodium hydrogen phosphate or sodium acetate, and adding sodium chloride to make it an isotonic solution.
Furthermore, an injection is manufactured using a preparation method used for commercially available insulin preparations, such as adding a preservative such as cresol, phenol, or alkyl ester of paraoxybenzoic acid (eg, methyl, ethyl, propyl, butyl ester, etc.). The dosage of such injections varies depending on the patient's symptoms, but
It may be administered in the same manner as commercially available insulin preparations, and it is recommended that adults administer about 1 to 100 units per day.

以下に実施例において、本発明化合物の製造例
を示すが、実施例は本発明を何ら限定するもので
ない。
In the Examples below, production examples of the compounds of the present invention are shown, but the Examples are not intended to limit the present invention in any way.

なお、実施例で用いる略号は下記の意味を表わ
す。
In addition, the abbreviations used in the examples represent the following meanings.

Ala アラニン Ile イソロイシン Arg アルギニン Leu ロイシン Asn アスパラギン Lys リジン Asp アスパラギン酸
Phe フエニルアラニン CySO3H システイン酸 Pro プロリン Glu グルタミン酸 Ser セリン Gln グルタミン Thr スレオニン Gly グリシン Tyr チロシン His ヒスチジン Val バリン OBut t―ブチルエステル残基 また、デス―B30―インシユリンとはインシユ
リンB鎖の30位アミノ酸が欠損しているインシユ
リン、例えば、豚インシユリンではアラニンが欠
損しているインシユリンをいう。
Ala Alanine Ile Isoleucine Arg Arginine Leu Leucine Asn Asparagine Lys Lysine Asp Aspartic acid
Phe Phenylalanine CySO 3 H Cysteinic acid Pro Proline Glu Glutamic acid Ser Serine Gln Glutamine Thr Threonine Gly Glycine Tyr Tyrosine His Histidine Val Valine OBu t t-Butyl ester residue Des-B30-insulin is the 30th position of insulin B chain It refers to insulin that is deficient in amino acids, such as porcine insulin, which is deficient in alanine.

実施例 1 (1) デス―B30―インシユリン(豚型) 豚インシユリン500mgを0.1M炭酸水素アンモニ
ウム(PH8.3)100mlに溶解し、結晶カルボキシペ
プチダーゼA(ワーシングトン社製、ジイソプロ
ピルフルオロホスヘート処理、49u/mg)5mgを
添加して室温で8時間反応させる。アラニンの生
成量が0.77M/1Mインシユリンのときに反応を
止め、反応物を凍結乾燥後、0.5M酢酸に溶解し
超微細粒のセフアデツクスG50のカラム(3.5×
95cm)に吸着させ、0.5M酢酸で1フラクシヨン
あたり11.5mlで溶出する。フラクシヨンの40〜60
番を集め凍結乾燥し標起化合物460mgを得る。収
率92%。
Example 1 (1) Des-B30-insulin (pig type) 500 mg of porcine insulin was dissolved in 100 ml of 0.1 M ammonium bicarbonate (PH8.3), and crystalline carboxypeptidase A (manufactured by Worthington Co., Ltd., treated with diisopropyl fluorophosphate, 49 u /mg) and react at room temperature for 8 hours. The reaction was stopped when the amount of alanine produced was 0.77M/1M insulin, and the reaction product was lyophilized, dissolved in 0.5M acetic acid, and added to a column of ultrafine Sephadex G50 (3.5
95cm) and elute with 0.5M acetic acid at 11.5ml per fraction. 40-60 of fraction
The sample was collected and lyophilized to obtain 460 mg of the labeled compound. Yield 92%.

生成物を酸加水分解(6M塩酸、110℃、24時
間)に付して得たアミノ酸分析値は下記のとおり
である。括弧内の数値は理論値を示す。以下にお
いても同様。
The amino acid analysis values obtained by subjecting the product to acid hydrolysis (6M hydrochloric acid, 110°C, 24 hours) are as follows. Values in parentheses indicate theoretical values. The same applies to the following.

Lys 1.00(1), His 1.91(2), Arg 0.95(1), Asp 3.21(3), Thr 2.09(2), Ser 2.97(3), Glu 7.35(7), Gly 4.29(4), Ala 1.26(1), CySO3H 5.94(6), Val 3.86(4), Ile 1.55(2) Leu 6.53(6), Tyr 4.08(4) Phe 3.22(3), Pro 1.2(1)。Lys 1.00(1), His 1.91(2), Arg 0.95(1), Asp 3.21(3), Thr 2.09(2), Ser 2.97(3), Glu 7.35(7), Gly 4.29(4), Ala 1.26 (1), CySO 3 H 5.94(6), Val 3.86(4), Ile 1.55(2) Leu 6.53(6), Tyr 4.08(4) Phe 3.22(3), Pro 1.2(1).

(2) 〔B30―Thr―OBut〕―インシユリン(豚
型) (1)の生成物100mg(10mM)とL―スレオニン
―t―ブチルエステル154mg(500mM)をエタノ
ール/ジメチルホルムアミド混液(1:1)1.05
mlに溶解し、結晶トリプシン(ワーシングトン社
製、3回再結晶)4mgを含有する0.5M硼酸塩緩
衝液(PH6.5)0.75mlと混合する。なお、この混
合液にはトシル―L―フエニルアラニンクロロメ
チルケトン(以下TPCKと記す)が最終濃度
0.01mMで含有されるようにしておく。同混合液
を37℃で1晩保つ。高速液体クロマトグラフイー
により目的化合物の生成を確認し収率を求めると
75%であつた。混合液を氷酢酸で酸性としたのち
超微細粒のセフアデツクスG50のカラム(4.2×
130cm)でゲル過を行い、トリプシン含有分画、
標記インシユリン誘導体を含有する分画、L―ス
レオニン―t―ブチルエステル含有分画に分け
る。酵素活性およびニンヒドリン反応を測定し、
トリプシンおよびスレオニンt―ブチルエステル
は各々50%回収されることが確認された。インシ
ユリン誘導体を含有する分画を凍結乾燥し、標記
化合物の粗粉末89mgを得る。
(2) [B30-Thr-OBu t ]-Insulin (pig type) 100 mg (10 mM) of the product from (1) and 154 mg (500 mM) of L-threonine-t-butyl ester were mixed in an ethanol/dimethylformamide mixture (1:1). ) 1.05
ml and mixed with 0.75 ml of 0.5 M borate buffer (PH 6.5) containing 4 mg of crystalline trypsin (Worthington, recrystallized three times). This mixed solution contains tosyl-L-phenylalanine chloromethyl ketone (hereinafter referred to as TPCK) at a final concentration of
Keep it contained at 0.01mM. The mixture was kept at 37°C overnight. After confirming the production of the target compound using high performance liquid chromatography and determining the yield,
It was 75%. After making the mixture acidic with glacial acetic acid, it was added to a column of ultra-fine particle Cephadex G50 (4.2×
Perform gel filtration with 130 cm) to separate the trypsin-containing fraction,
Separate into a fraction containing the title insulin derivative and a fraction containing L-threonine-t-butyl ester. Measure enzyme activity and ninhydrin reaction,
It was confirmed that trypsin and threonine t-butyl ester were each recovered at 50%. The fraction containing the insulin derivative is lyophilized to obtain 89 mg of a crude powder of the title compound.

次いで、0.01Mトリス緩衝液(PH7.6)と7M尿
素で緩衝化したDEAE―セフアデツクスA25のカ
ラム(1.9×24.5cm)に上記生成物を4℃でかけ、
上記緩衝液を800ml流したのち食塩濃度0.3Mまで
直線的に濃度勾配をつけた溶出を行い、0.08〜
0.09M濃度付近の分画Aと0.13〜0.14濃度付近の
分画Bを順次得る。各分画を直ちに3〜4日間冷
所で0.01M酢酸アンモニウム溶液に対して透析し
た後凍結乾燥し、分画Aより粉末35mgを、分画B
より27mgを得る。高速液体クロマトグラフイーお
よびポリアクリルアミドゲル電気泳動により、前
者が標記化合物であり後者がデス―B30―インシ
ユリン(豚型)と標記化合物の混合物であること
が確認された。
The above product was then applied to a column (1.9 x 24.5 cm) of DEAE-Sephadex A25 buffered with 0.01M Tris buffer (PH7.6) and 7M urea at 4°C.
After flowing 800 ml of the above buffer, elution was performed with a linear concentration gradient up to a salt concentration of 0.3M, and
Fraction A with a concentration around 0.09M and fraction B with a concentration around 0.13 to 0.14 are sequentially obtained. Each fraction was immediately dialyzed against 0.01M ammonium acetate solution in a cold place for 3 to 4 days, and then freeze-dried.35mg of powder was obtained from fraction A and fraction B.
Get more than 27mg. High performance liquid chromatography and polyacrylamide gel electrophoresis confirmed that the former was the title compound and the latter was a mixture of des-B30-insulin (porcine type) and the title compound.

標記化合物の高速液体クロマトグラフイーおよ
びポリアクリルアミドゲル電気泳動による測定値
を以下に示す。
The values measured by high performance liquid chromatography and polyacrylamide gel electrophoresis of the title compound are shown below.

ポリアクリルアミドゲル電気泳動(PH8;10%
ゲル;18.1mA/cm2;泳動時間100分):移動距離
4.3cm。
Polyacrylamide gel electrophoresis (PH8; 10%
Gel; 18.1mA/cm 2 ; Electrophoresis time 100 minutes): Travel distance
4.3cm.

高速液体クロマトグラフイー[ヌクレオシル
(Nucleosil)7C18(Macherey―Nagel社製);4
mm×50mm(プレカラム)および4mm×250mm(メ
インカラム);32%アセトニトリル―バツフアー
溶液(2mMリン酸、5mM・n―ブチルスルホン
酸ナトリウム、50mM硫酸ナトリウム、PH3.0);
流速:毎分2ml]:保持時間13.2分。
High performance liquid chromatography [Nucleosil 7C 18 (Macherey-Nagel); 4
mm x 50 mm (pre-column) and 4 mm x 250 mm (main column); 32% acetonitrile-buffer solution (2mM phosphoric acid, 5mM sodium n-butylsulfonate, 50mM sodium sulfate, PH3.0);
Flow rate: 2 ml per minute]: Retention time 13.2 minutes.

参考例 人インシユリン アニソール0.2mlを含むトリフルオロ酢酸2ml
を上記(2)で得た化合物30mgに加え、室温で30分保
つ。窒素気流中でトリフルオロ酢酸を除き、1N
酢酸2mlの存在下、エーテル15mlでアニソールを
抽出した後、酢酸部を凍結乾燥し標記化合物28mg
を得る。原料の純度を77%とすると収率43%であ
る。
Reference example Human insulin: 2 ml of trifluoroacetic acid containing 0.2 ml of anisole
Add to 30 mg of the compound obtained in (2) above and keep at room temperature for 30 minutes. Remove trifluoroacetic acid and 1N in a nitrogen stream.
After extracting anisole with 15 ml of ether in the presence of 2 ml of acetic acid, the acetic acid portion was lyophilized to yield 28 mg of the title compound.
get. If the purity of the raw material is 77%, the yield is 43%.

本品はアミノ酸分析値、スラブゲル電気泳動、
高速液体クロマトグラムにより標記化合物と同定
した。
This product has amino acid analysis values, slab gel electrophoresis,
It was identified as the title compound by high performance liquid chromatogram.

(1)と同様の条件で行つたアミノ酸分析の結果は
下記のとおりである。
The results of amino acid analysis conducted under the same conditions as (1) are as follows.

LyS 1.00(1), His 1.89(2), Arg 0.87(1), Asp 3.32(3), Thr 3.16(3), Ser 2.99(3), Glu 7.35(7), Pro 1.29(1), Gly 4.39(4), Ala 1.26(1), CySO3H 4.6(6), Val 3.93(4), Ile 1.61(2), Leu 6.51(6), Tyr 3.68(4), Phe 3.19(3)。LyS 1.00(1), His 1.89(2), Arg 0.87(1), Asp 3.32(3), Thr 3.16(3), Ser 2.99(3), Glu 7.35(7), Pro 1.29(1), Gly 4.39 (4), Ala 1.26(1), CySO 3 H 4.6(6), Val 3.93(4), Ile 1.61(2), Leu 6.51(6), Tyr 3.68(4), Phe 3.19(3).

スラブゲル電気泳動(PH8;10%ゲル;
18.1mA/cm2;泳動時間100分):移動距離6.0cm。
高速液体クロマトグラフイー〔ヌクレオシル
(Nucleosil)7C18(Macherey―Nagel社製);4
mm×50mm(プレカラム)および4mm×250mm(メ
インカラム);32%アセトニトリル―バツフアー
溶液(5mMリン酸、5mM・n―ブチルスルホン
酸ナトリウム、50mM硫酸ナトリウム、PH3.0);
流速:毎分2ml〕:保持時間4.97分。
Slab gel electrophoresis (PH8; 10% gel;
18.1mA/cm 2 ; migration time 100 minutes): moving distance 6.0cm.
High performance liquid chromatography [Nucleosil 7C 18 (Macherey-Nagel); 4
mm x 50 mm (pre-column) and 4 mm x 250 mm (main column); 32% acetonitrile-buffer solution (5mM phosphoric acid, 5mM sodium n-butylsulfonate, 50mM sodium sulfate, PH3.0);
Flow rate: 2 ml per minute]: Retention time 4.97 minutes.

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1 B鎖30位スレオニンがカルボキシル基に保護
基を有しかつヒドロキシ基に保護基を有していて
もよい人インシユリン。 2 カルボキシル基の保護基がアルキルである特
許請求の範囲1の人インシユリン。 3 ヒドロキシ基に保護基を有さない特許請求の
範囲1の人インシユリン。 4 ヒドロキシ基に保護基を有さない特許請求の
範囲2の人インシユリン。
[Scope of Claims] 1. Human insulin in which the threonine at position 30 of the B chain has a protecting group on the carboxyl group and may have a protecting group on the hydroxyl group. 2. The human insulin of claim 1, wherein the carboxyl group protecting group is alkyl. 3. The human insulin according to claim 1, which does not have a protecting group on the hydroxyl group. 4. Human insulin according to claim 2, which does not have a protecting group on the hydroxyl group.
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