JPH0463675B2 - - Google Patents
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- JPH0463675B2 JPH0463675B2 JP5673187A JP5673187A JPH0463675B2 JP H0463675 B2 JPH0463675 B2 JP H0463675B2 JP 5673187 A JP5673187 A JP 5673187A JP 5673187 A JP5673187 A JP 5673187A JP H0463675 B2 JPH0463675 B2 JP H0463675B2
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- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Description
〔産業上の利用分野〕
本発明はα−ヒドロキシカルボン酸の製造法に
関し、詳しくは特定の微生物を利用してα−ヒド
ロキシニトリルからα−ヒドロキシカルボン酸を
製造する方法に関する。 〔従来の技術、発明が解決しようとする問題点〕 微生物を利用してα−ヒドロキシニトリルから
α−ヒドロキシカルボン酸を製造する方法は既に
知られており、たとえば微生物としてパチルス
属、パクテリジウム属、ミクロコツカス属、ブレ
ビバクテリウム属に属する細菌を用いる方法（特
公昭58−15120号）；コリネバクテリウム属に属す
る細菌を用いる方法（特開昭61−56086号）；コリ
ネバクテリウム属、ノカルデイア属、パチルス
属、バクテリジウム属、ミクロコツカス属、プレ
ビバクテリウム属に属する細菌を用いる方法（特
開昭61−162191号）などがある。 しかし、これらの方法は目的とするα−ヒドロ
キシカルボン酸を安定的に製造することにおいて
必ずしも満足しうるものでなく、また製造効率の
立場からも改善の余地がある等の問題点を有して
いる。 〔問題点を解決するための手段〕 そこで本発明者は、α−ヒドロキシカルボン酸
の効率的な製造法を確立すべく、使用する微生物
について検討したところ、前記刊行物に記載され
た微生物以外の特定の微生物を選択して用いるこ
とにより目的を達成できることを見出し、本発明
を完成するに至つた。 すなわち本発明は、シユードモナス
（Pseudomonas）属、アースロバクター
（Arthrobacter）属、アスベルギルス
（Aspergillus）属、ペニシリウム（Penicillium）
属、コクリオボラス（Cochliobolus）属およびフ
ザリウム（Fusarium）属のうちのいずれかに属
し、α−ヒドロキシニトリルを加水分解する能力
を有する微生物の１種または２種以上をα−ヒド
ロキシニトリルと接触させることを特徴とするα
−ヒドロキシカルボン酸の製造法に関する。 本発明に使用できる微生物は、上記各種の属に
属し、α−ヒドロキシニトリルを加水分解してα
−ヒドロキシカルボン酸を生成する能力を有する
ものであればよく、具体的にはシユードモナス・
エスピー（Pseusomonas sp.）MY−１（FERM
Ｐ−9174）、アースロバクター・アウレセンス
（Arthrobacter aurescens）（IAM 12340）、アス
ペルギルス・ニガー（Aspergillus niger）（JCM
1925およびJCM 2261）、ペニシリウム・クリソ
ゲナム（Penicillium crysogenum）（IFO
5473）、コクリオボラス・キヤベアヌス
（Cochlioboius miyabeanus）（OUT 2074）、フ
ザリウム・エスピー（Fusarium sp.）MY−２
（FERM Ｐ−9187）、フザリウム。エスビー
（Fusarium sp.）MY−３（FERM Ｐ−9188）な
どを挙げることができ、これらを単独でもしくは
２種以上を組合せて用いることができる。なお、
上記微生物のうちシユードモナス属およびフザリ
ウム属に属するものは発明者により単離された新
菌株である。以下に、これらの微生物の菌学的性
質を示す。 シユードモナス・エスピーMY−１ (1) 形態 細胞の形及び大きさ 短 桿菌 0.7〜0.9×0.8〜1.4μm 細胞の多形性の有無 なし 胞子の有無 なし グラム染色性 陰性 運動性 有り 鞭毛 極鞭毛(1) (2) 培地における生育状態 肉汁寒天平板培養大きさ ４〜4.5mm 円
形全縁、円滑、不透明で光沢を有する 肉汁寒天斜面培養生育良好、表面円滑、半透明
で光沢あり 肉汁液体培養 濁り強く、甘味臭あり リトマスミルク アルカリ化 (3) 生理学的性質 生育条件 温度（最適温度） ５〜40℃（20〜37） PH（最適PH） 4.5〜9.5（4.5〜9.0） 酸素に対する態度 絶対好気性 無機窒源の利用性 アンモニウム塩、硝酸塩 カタラーゼ ＋ オキシダーゼ Ｏ−Ｆテスト 反応せず ゼラチンの加水分解 − デンプンの加水分解 − カゼインの加水分解 ＋ セルロースの加水分解 − インドールの生成 − VRテスト − MRテスト − H2の生成 − 糖から酸及びガス 生成 キシロース − アラビノース − グルコース 酸 フラクトース − マンノース − ガラクトース − スクロース − ラクトース − マルトース − トレハロース − マンニトール − ソルトービス − イノシトール − クエン酸の利用性 − 硝酸塩還元 − 脱窒反応 − 色素の生成黄（King Ａ培地、King Ｂ培地） 以上のように、本菌は極鞭毛を有する桿菌であ
つて、グラム陰性、絶対好気性、カタラーゼとオ
キシダーゼに陽性であることからシユードモナス
属に属する細菌であると同定した。本菌は工業技
術院微生物工業技術研究所に寄託されており、そ
の受託番号はFERM Ｐ−9174である。
関し、詳しくは特定の微生物を利用してα−ヒド
ロキシニトリルからα−ヒドロキシカルボン酸を
製造する方法に関する。 〔従来の技術、発明が解決しようとする問題点〕 微生物を利用してα−ヒドロキシニトリルから
α−ヒドロキシカルボン酸を製造する方法は既に
知られており、たとえば微生物としてパチルス
属、パクテリジウム属、ミクロコツカス属、ブレ
ビバクテリウム属に属する細菌を用いる方法（特
公昭58−15120号）；コリネバクテリウム属に属す
る細菌を用いる方法（特開昭61−56086号）；コリ
ネバクテリウム属、ノカルデイア属、パチルス
属、バクテリジウム属、ミクロコツカス属、プレ
ビバクテリウム属に属する細菌を用いる方法（特
開昭61−162191号）などがある。 しかし、これらの方法は目的とするα−ヒドロ
キシカルボン酸を安定的に製造することにおいて
必ずしも満足しうるものでなく、また製造効率の
立場からも改善の余地がある等の問題点を有して
いる。 〔問題点を解決するための手段〕 そこで本発明者は、α−ヒドロキシカルボン酸
の効率的な製造法を確立すべく、使用する微生物
について検討したところ、前記刊行物に記載され
た微生物以外の特定の微生物を選択して用いるこ
とにより目的を達成できることを見出し、本発明
を完成するに至つた。 すなわち本発明は、シユードモナス
（Pseudomonas）属、アースロバクター
（Arthrobacter）属、アスベルギルス
（Aspergillus）属、ペニシリウム（Penicillium）
属、コクリオボラス（Cochliobolus）属およびフ
ザリウム（Fusarium）属のうちのいずれかに属
し、α−ヒドロキシニトリルを加水分解する能力
を有する微生物の１種または２種以上をα−ヒド
ロキシニトリルと接触させることを特徴とするα
−ヒドロキシカルボン酸の製造法に関する。 本発明に使用できる微生物は、上記各種の属に
属し、α−ヒドロキシニトリルを加水分解してα
−ヒドロキシカルボン酸を生成する能力を有する
ものであればよく、具体的にはシユードモナス・
エスピー（Pseusomonas sp.）MY−１（FERM
Ｐ−9174）、アースロバクター・アウレセンス
（Arthrobacter aurescens）（IAM 12340）、アス
ペルギルス・ニガー（Aspergillus niger）（JCM
1925およびJCM 2261）、ペニシリウム・クリソ
ゲナム（Penicillium crysogenum）（IFO
5473）、コクリオボラス・キヤベアヌス
（Cochlioboius miyabeanus）（OUT 2074）、フ
ザリウム・エスピー（Fusarium sp.）MY−２
（FERM Ｐ−9187）、フザリウム。エスビー
（Fusarium sp.）MY−３（FERM Ｐ−9188）な
どを挙げることができ、これらを単独でもしくは
２種以上を組合せて用いることができる。なお、
上記微生物のうちシユードモナス属およびフザリ
ウム属に属するものは発明者により単離された新
菌株である。以下に、これらの微生物の菌学的性
質を示す。 シユードモナス・エスピーMY−１ (1) 形態 細胞の形及び大きさ 短 桿菌 0.7〜0.9×0.8〜1.4μm 細胞の多形性の有無 なし 胞子の有無 なし グラム染色性 陰性 運動性 有り 鞭毛 極鞭毛(1) (2) 培地における生育状態 肉汁寒天平板培養大きさ ４〜4.5mm 円
形全縁、円滑、不透明で光沢を有する 肉汁寒天斜面培養生育良好、表面円滑、半透明
で光沢あり 肉汁液体培養 濁り強く、甘味臭あり リトマスミルク アルカリ化 (3) 生理学的性質 生育条件 温度（最適温度） ５〜40℃（20〜37） PH（最適PH） 4.5〜9.5（4.5〜9.0） 酸素に対する態度 絶対好気性 無機窒源の利用性 アンモニウム塩、硝酸塩 カタラーゼ ＋ オキシダーゼ Ｏ−Ｆテスト 反応せず ゼラチンの加水分解 − デンプンの加水分解 − カゼインの加水分解 ＋ セルロースの加水分解 − インドールの生成 − VRテスト − MRテスト − H2の生成 − 糖から酸及びガス 生成 キシロース − アラビノース − グルコース 酸 フラクトース − マンノース − ガラクトース − スクロース − ラクトース − マルトース − トレハロース − マンニトール − ソルトービス − イノシトール − クエン酸の利用性 − 硝酸塩還元 − 脱窒反応 − 色素の生成黄（King Ａ培地、King Ｂ培地） 以上のように、本菌は極鞭毛を有する桿菌であ
つて、グラム陰性、絶対好気性、カタラーゼとオ
キシダーゼに陽性であることからシユードモナス
属に属する細菌であると同定した。本菌は工業技
術院微生物工業技術研究所に寄託されており、そ
の受託番号はFERM Ｐ−9174である。
【表】
(2) 顕微鏡的特徴
栄養菌糸のサイズ 幅１〜3μ
隔壁 有
かすがい連結 なし
菌核 なし
分生子 有
分生子形成の型 フイアロ型
大分生子形 新月型
大分生子サイズ ３〜5μ×20〜35μ
大分生子隔壁数 ３〜５隔壁
小分生子形 長ダ円形
小分生子サイズ ２〜3μ×５〜7μ
小分生子隔壁数 なし
厚膜胞子形 球状形 厚膜胞子サイズ ３〜4μ
CA培地 23℃７日間培養
スライド培養法
(3) 生育環境
生育温度範囲 15℃〜39℃
生育不適温度 10℃以下および42℃以上
最適生育温度 23℃〜25℃
生育 PH温度 PH２〜PH10 最適生育 PH PH５以上
MPG培地 ７日間培養
(4) フエノールオキシダーゼ反応 菌株名 SI−８
フエノール・オキシダーゼ反応a) 陰性
ラツカーゼの分泌b) 陽性 チロシナーゼの分泌c) 陰性
ａ MPG培地＋0.1％タンニン酸
ｂ ジヤガイモ寒天＋0.0005M ナフトール
ｃ ジヤガイモ寒天＋0.1％クレゾール
次に、本発明を実施例により詳しく説明する。
実施例 １
シユードモナス・エスピーMY−１（FERM Ｐ
−9174）をグリセリン5g／ｌ、アセトニトリル
5g／ｌ、KH2PO40.5g／ｌ、Na2HPO4・12H2
O5g／ｌ、MgSO4・7H2O0.2g／ｌ、CaCl2・2H2
O0.01g／ｌ、FeSO4、7H2O0.001g／ｌ、酵母エ
キス0.05g／ｌ、コーンステイープ・リカー
0.05g／ｌを含む培地100mlに植菌し、72時間培養
した。 培養終了後、集菌し、洗浄した。得られた菌体
をpH8の1/15Ｍリン酸緩衝液３mlに懸濁し、これ
にラクトニトリル300mgを添加した。22℃で、２
時間反応させた後、ガスクロマトグラフイー（カ
ラム；Thermon3000Shimalite TP、カラム温度
160℃）で定量した。その結果、乳酸の生産量は
100g／ｌであつた。 実施例 ２ 実施例１においてラクトニトリルの代りにアセ
ンシアンヒドリン150mg、リン酸緩衝液３mlの代
りに同緩衝液15mlを用いたこと以外は実施例１と
同様に培養、反応を行つた。定量はガスクロマト
グラフイー（カラム；Thermon 3000celite545，
カラム温度150℃）で行つた。αーヒドロキシイ
ソ酪酸の生産量は8g／ｌであつた。 実施例 ３ 実施例１においてラクトニトリルの代りにα−
ヒドロキシ−α−フエニルプロピオニトリル（た
だし、不安定なため原料を用いた。すなわち、ア
セトフエノン4g／ｌ、青酸カリウム2.2g／ｌにな
るようにしたアセトフエノンと青酸カリウムの水
溶液）を添加したこと以外は実施例１と同様に培
養、反応を行つた。定量はガスクロマトグラフイ
ー（カラム；Thermon 3000celite 545、カラム
温度200℃）で行つた。α−ヒドロキシ−α−フ
エニルプロピオン酸の生産量は2g／ｌであつた。 実施例 ４ 実施例１においてアセトニトリルの代りにマン
デルアミド1g／ｌ、ラクトニトリルの代りにマ
ンデロニトリル5g／ｌ、リン酸緩衝液３mlの代
りに同緩衝液15mlを用いたこと以外は実施例１と
同様に培養、反応させた。定量はガスクロマトグ
ラフスー（カラム；Thermon 3000 Celite545、
カラム温度245℃）で行つた。マンデル酸の生産
量は0.3g／ｌであつた。 実施例 ５ 実施例１においてシユードモナス・エスピ−
MY−１（FERM Ｐ−9174）の代りにフザリウ
ム・エスピ−MY−２（FERM Ｐ−9187）を用い
て実施例１と同様に培養した。培養終了後、集菌
し、1/15Ｍリン酸緩衝液（PH８）で洗浄した。得
られた菌体を15mlの1/15Ｍリン酸緩衝液（PH８）
に懸濁し、150mgのラクトニトリルを添加して２
時間反応を行つた。反応終了後、実施例１と同様
の方法で定量した結果、10.5g／ｌの乳酸が得ら
れた。 実施例 ６ 実施例１においてシユードモナス・エスピ−
MY−１（FERM Ｐ−9174）の代りにフザリウ
ム・エスピ−MY−２（FERM Ｐ−9187）を用い
て実施例１と同様に培養した。培養終了後、集菌
し、1/15Ｍリン酸緩衝液（PH８）で洗浄した。得
られた菌体を15mlの1/15Ｍリン酸緩衝液（PH８）
に懸濁し、75mgのアセトンシアンヒドリン75mgを
添加し２時間反応を行つた。反応終了後、ガスク
ロマトグラフイー（カラム；Thermon
3000celite545、カラム温度150℃）で定量を行つ
た。α−ヒドロキシイソ酪酸の生産量は4.2g／ｌ
であつた。 実施例 ７ 実施例１においてシユードモナス・エスピー
MY−１（FERMP−9174）の代りにフザリウ
ム・エスピーMY−３（FERM Ｐ−9188）を用い
て実施例１と同様に培養した。培養終了後、集菌
し、1/15Ｍリン酸緩衝液（PH８）で洗浄した。得
られた菌体を15mlの1/15Ｍリン酸緩衝液（PH８）
に懸濁し、150mgのラクトニトリルを添加して２
時間反応を行つた。反応終了後、実施例１と同様
に定量した結果、乳酸の生産量は1.2g／ｌであつ
た。 実施例 ８ アースロバクター・アウレセンス（IAM
12340）をグルコース5g／ｌ、アセトニトリル
3g／ｌ、KH2PO41.5g／ｌ、Na2HPO4・12H2
O1.5g／ｌ、MgSO4・7H2O0.2g／ｌ、CaCl2・
2H2O0.01g／ｌ、FeSO4・7H2O0.001g／ｌ、酵
母エキス0.03g／ｌ、コーン・ステイープ・リカ
ー0.03g／ｌを含む培地10mlに植菌し、24時間培
養した。培養終了後、集菌、洗浄し、２mlのPH８
の1/15Ｍリン酸緩衝液に懸濁後、ラクトニトリル
10mgを添加し２時間反応を行つた。反応終了後、
実施例１と同様にして定量したところ、乳酸の生
産量は1.5g／ｌであつた。 実施例 ９ アスペルギルス・ニガー（JCK 1925）をアセ
トニトリル3g／ｌを含むツアペツク培地10mlに
植菌し６日間培養した。培養終了後、遠心分離に
より集菌、洗浄後、pH8の1/15Ｍリン酸緩衝液２
mlに懸濁し、ラクトニトリル10mgを添加し反応を
行つた。反応終了後、実施例１と同様に定量した
ところ、乳酸の生産量は2.5g／ｌであつた。 実施例 10 実施例４においてアスペルギルス・ニガー
（JCM1925）の代りにアスペルギルス・ニガー
（JCM2261）を用いたこと以外は実施例４と同様
に培養、反応を行つた。生成物の定量を実施例１
と同様にして行つたところ、乳酸の生産量は
0.4g／ｌであつた。 実施例 11 実施例９においてアスペルギルス・ニガー
（JCM1925）の代りにペニシリウム・クリソゲナ
ム（IFO5473）を用いたこと以外は実施例９と同
様に培養、反応を行つた。反応終了後、生成物の
定量を実施例１と同様に行つたところ、乳酸の生
産量は0.1g／ｌであつた。 実施例 12 実施例９においてアスペルギルス・ニガー
（JCM1925）の代りにコクリオボラス・ミヤベア
ヌス（OUT1925）の代りにコクリオボラス・ミ
ヤベアヌス（OUT2074）を用いたこと以外は実
施例９と同様に培養・反応を行つた。反応終了
後、実施例１と同様にして定量したところ、乳酸
の生産量は0.8g／ｌであつた。 〔発明の効果〕 本発明によれば、特定の微生物を利用してα−
ヒドロキシニトリルを加水分解することによりα
−ヒドロキシカルボン酸を効率よく製造すること
ができる。このα−ヒトロキシカルボン酸は食
品，農薬・医療原料、有機合成原料などして有用
である。
−9174）をグリセリン5g／ｌ、アセトニトリル
5g／ｌ、KH2PO40.5g／ｌ、Na2HPO4・12H2
O5g／ｌ、MgSO4・7H2O0.2g／ｌ、CaCl2・2H2
O0.01g／ｌ、FeSO4、7H2O0.001g／ｌ、酵母エ
キス0.05g／ｌ、コーンステイープ・リカー
0.05g／ｌを含む培地100mlに植菌し、72時間培養
した。 培養終了後、集菌し、洗浄した。得られた菌体
をpH8の1/15Ｍリン酸緩衝液３mlに懸濁し、これ
にラクトニトリル300mgを添加した。22℃で、２
時間反応させた後、ガスクロマトグラフイー（カ
ラム；Thermon3000Shimalite TP、カラム温度
160℃）で定量した。その結果、乳酸の生産量は
100g／ｌであつた。 実施例 ２ 実施例１においてラクトニトリルの代りにアセ
ンシアンヒドリン150mg、リン酸緩衝液３mlの代
りに同緩衝液15mlを用いたこと以外は実施例１と
同様に培養、反応を行つた。定量はガスクロマト
グラフイー（カラム；Thermon 3000celite545，
カラム温度150℃）で行つた。αーヒドロキシイ
ソ酪酸の生産量は8g／ｌであつた。 実施例 ３ 実施例１においてラクトニトリルの代りにα−
ヒドロキシ−α−フエニルプロピオニトリル（た
だし、不安定なため原料を用いた。すなわち、ア
セトフエノン4g／ｌ、青酸カリウム2.2g／ｌにな
るようにしたアセトフエノンと青酸カリウムの水
溶液）を添加したこと以外は実施例１と同様に培
養、反応を行つた。定量はガスクロマトグラフイ
ー（カラム；Thermon 3000celite 545、カラム
温度200℃）で行つた。α−ヒドロキシ−α−フ
エニルプロピオン酸の生産量は2g／ｌであつた。 実施例 ４ 実施例１においてアセトニトリルの代りにマン
デルアミド1g／ｌ、ラクトニトリルの代りにマ
ンデロニトリル5g／ｌ、リン酸緩衝液３mlの代
りに同緩衝液15mlを用いたこと以外は実施例１と
同様に培養、反応させた。定量はガスクロマトグ
ラフスー（カラム；Thermon 3000 Celite545、
カラム温度245℃）で行つた。マンデル酸の生産
量は0.3g／ｌであつた。 実施例 ５ 実施例１においてシユードモナス・エスピ−
MY−１（FERM Ｐ−9174）の代りにフザリウ
ム・エスピ−MY−２（FERM Ｐ−9187）を用い
て実施例１と同様に培養した。培養終了後、集菌
し、1/15Ｍリン酸緩衝液（PH８）で洗浄した。得
られた菌体を15mlの1/15Ｍリン酸緩衝液（PH８）
に懸濁し、150mgのラクトニトリルを添加して２
時間反応を行つた。反応終了後、実施例１と同様
の方法で定量した結果、10.5g／ｌの乳酸が得ら
れた。 実施例 ６ 実施例１においてシユードモナス・エスピ−
MY−１（FERM Ｐ−9174）の代りにフザリウ
ム・エスピ−MY−２（FERM Ｐ−9187）を用い
て実施例１と同様に培養した。培養終了後、集菌
し、1/15Ｍリン酸緩衝液（PH８）で洗浄した。得
られた菌体を15mlの1/15Ｍリン酸緩衝液（PH８）
に懸濁し、75mgのアセトンシアンヒドリン75mgを
添加し２時間反応を行つた。反応終了後、ガスク
ロマトグラフイー（カラム；Thermon
3000celite545、カラム温度150℃）で定量を行つ
た。α−ヒドロキシイソ酪酸の生産量は4.2g／ｌ
であつた。 実施例 ７ 実施例１においてシユードモナス・エスピー
MY−１（FERMP−9174）の代りにフザリウ
ム・エスピーMY−３（FERM Ｐ−9188）を用い
て実施例１と同様に培養した。培養終了後、集菌
し、1/15Ｍリン酸緩衝液（PH８）で洗浄した。得
られた菌体を15mlの1/15Ｍリン酸緩衝液（PH８）
に懸濁し、150mgのラクトニトリルを添加して２
時間反応を行つた。反応終了後、実施例１と同様
に定量した結果、乳酸の生産量は1.2g／ｌであつ
た。 実施例 ８ アースロバクター・アウレセンス（IAM
12340）をグルコース5g／ｌ、アセトニトリル
3g／ｌ、KH2PO41.5g／ｌ、Na2HPO4・12H2
O1.5g／ｌ、MgSO4・7H2O0.2g／ｌ、CaCl2・
2H2O0.01g／ｌ、FeSO4・7H2O0.001g／ｌ、酵
母エキス0.03g／ｌ、コーン・ステイープ・リカ
ー0.03g／ｌを含む培地10mlに植菌し、24時間培
養した。培養終了後、集菌、洗浄し、２mlのPH８
の1/15Ｍリン酸緩衝液に懸濁後、ラクトニトリル
10mgを添加し２時間反応を行つた。反応終了後、
実施例１と同様にして定量したところ、乳酸の生
産量は1.5g／ｌであつた。 実施例 ９ アスペルギルス・ニガー（JCK 1925）をアセ
トニトリル3g／ｌを含むツアペツク培地10mlに
植菌し６日間培養した。培養終了後、遠心分離に
より集菌、洗浄後、pH8の1/15Ｍリン酸緩衝液２
mlに懸濁し、ラクトニトリル10mgを添加し反応を
行つた。反応終了後、実施例１と同様に定量した
ところ、乳酸の生産量は2.5g／ｌであつた。 実施例 10 実施例４においてアスペルギルス・ニガー
（JCM1925）の代りにアスペルギルス・ニガー
（JCM2261）を用いたこと以外は実施例４と同様
に培養、反応を行つた。生成物の定量を実施例１
と同様にして行つたところ、乳酸の生産量は
0.4g／ｌであつた。 実施例 11 実施例９においてアスペルギルス・ニガー
（JCM1925）の代りにペニシリウム・クリソゲナ
ム（IFO5473）を用いたこと以外は実施例９と同
様に培養、反応を行つた。反応終了後、生成物の
定量を実施例１と同様に行つたところ、乳酸の生
産量は0.1g／ｌであつた。 実施例 12 実施例９においてアスペルギルス・ニガー
（JCM1925）の代りにコクリオボラス・ミヤベア
ヌス（OUT1925）の代りにコクリオボラス・ミ
ヤベアヌス（OUT2074）を用いたこと以外は実
施例９と同様に培養・反応を行つた。反応終了
後、実施例１と同様にして定量したところ、乳酸
の生産量は0.8g／ｌであつた。 〔発明の効果〕 本発明によれば、特定の微生物を利用してα−
ヒドロキシニトリルを加水分解することによりα
−ヒドロキシカルボン酸を効率よく製造すること
ができる。このα−ヒトロキシカルボン酸は食
品，農薬・医療原料、有機合成原料などして有用
である。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 １ シユードモナス（Pseudomonas）属、アー
スロバクター（Arthrobacter）属、アスペルギ
ルス（Aspergillus）属、ペニシリウム
（Penicillium）属、コクリオボラス
（Cochliobolus）属およびフザリウム
（Fusarium）属のうちのいずれかに属し、α−ヒ
ドロキシニトリルを加水分解する能力を有する微
生物の１種または２種以上をα−ヒドロキシニト
リルと接触させることを特徴とするα−ヒドロキ
シカルボン酸の製造法。 ２ 微生物が増殖期の菌体、休止期の菌体、固定
化菌体および菌体抽出処理物のうちのいずれかで
ある特許請求の範囲第１項記載の方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP5673187A JPS63222696A (ja) | 1987-03-13 | 1987-03-13 | α−ヒドロキシカルボン酸の製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP5673187A JPS63222696A (ja) | 1987-03-13 | 1987-03-13 | α−ヒドロキシカルボン酸の製造法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS63222696A JPS63222696A (ja) | 1988-09-16 |
| JPH0463675B2 true JPH0463675B2 (ja) | 1992-10-12 |
Family
ID=13035652
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP5673187A Granted JPS63222696A (ja) | 1987-03-13 | 1987-03-13 | α−ヒドロキシカルボン酸の製造法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS63222696A (ja) |
Families Citing this family (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2974737B2 (ja) * | 1990-08-16 | 1999-11-10 | 三菱レイヨン株式会社 | 光学活性乳酸の製造法 |
| JP3354688B2 (ja) * | 1994-01-28 | 2002-12-09 | 三菱レイヨン株式会社 | 微生物によるα−ヒドロキシ酸またはα−ヒドロキシアミドの製造法 |
| DE69737696T2 (de) * | 1996-02-29 | 2008-01-10 | Nippon Soda Co. Ltd. | Prozess für die herstellung von alpha-hydroxysäuren mit hilfe eines mikroorganismus und eines neuen mikroorganismus. |
| US6037155A (en) * | 1997-02-27 | 2000-03-14 | Nippon Soda Co., Ltd. | Process for preparing α-hydroxy acids using microorganism and novel microorganism |
| WO2010071019A1 (ja) * | 2008-12-17 | 2010-06-24 | 国立大学法人九州工業大学 | ２－ヒドロキシイソ酪酸ポリマーの製造方法及び解重合方法 |
-
1987
- 1987-03-13 JP JP5673187A patent/JPS63222696A/ja active Granted
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS63222696A (ja) | 1988-09-16 |
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