JPH0815428B2 - ナス科植物の土壌病害防除方法 - Google Patents
ナス科植物の土壌病害防除方法Info
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- JPH0815428B2 JPH0815428B2 JP62171055A JP17105587A JPH0815428B2 JP H0815428 B2 JPH0815428 B2 JP H0815428B2 JP 62171055 A JP62171055 A JP 62171055A JP 17105587 A JP17105587 A JP 17105587A JP H0815428 B2 JPH0815428 B2 JP H0815428B2
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Description
【発明の詳細な説明】 ［産業上の利用分野］ この発明は、植物病原細菌の一種であるシュードモナ
ス・ソラナセアラム（Pseudomonas solanacearum）
（以下、本細菌という）の寄生によって発生するナス科
植物の土壌病害の防除方法に関する。
ス・ソラナセアラム（Pseudomonas solanacearum）
（以下、本細菌という）の寄生によって発生するナス科
植物の土壌病害の防除方法に関する。
［従来の技術］ タバコやそれ以外のナス科植物、例えばナス、トマ
ト、ピーマン、ジャガイモ等では、土壌中に生存する本
細菌に感染して植物対が萎凋・枯死し、著しい被害を被
ることが多い。本細菌による病害、すなわちタバコ立枯
病またはナス科植物青枯病（以下、「本病」という）で
は、病原細菌が土壌中で長期間生存しやすいので、防除
がきわめて難しい。
ト、ピーマン、ジャガイモ等では、土壌中に生存する本
細菌に感染して植物対が萎凋・枯死し、著しい被害を被
ることが多い。本細菌による病害、すなわちタバコ立枯
病またはナス科植物青枯病（以下、「本病」という）で
は、病原細菌が土壌中で長期間生存しやすいので、防除
がきわめて難しい。
現在とられている本病の防除対策は、薬剤を利用する
方法のほか、抵抗性品種、有機物の施用、土壌の耕うん
等の耕種的方法が多い。しかし、薬剤を用いた防除は刺
激臭による公害や人畜毒性の問題および土壌中の有用な
微生物も殺してしまうという欠点があり、他の耕種的方
法については、安定した効果を示さないことが多い。し
たがって、安全で効果のより高い防除方法の開発が強く
望まれているところである。
方法のほか、抵抗性品種、有機物の施用、土壌の耕うん
等の耕種的方法が多い。しかし、薬剤を用いた防除は刺
激臭による公害や人畜毒性の問題および土壌中の有用な
微生物も殺してしまうという欠点があり、他の耕種的方
法については、安定した効果を示さないことが多い。し
たがって、安全で効果のより高い防除方法の開発が強く
望まれているところである。
一方、一般的に自然の土壌中では病原菌とともにそれ
に対して拮抗性を有する種々の微生物が存在し、お互い
に影響をおよぼし合いながら生態系を形成していること
が知られている。今日では、自然に生息する微生物のな
かで病原菌の活動を抑制する拮抗微生物を用いて病害の
発生を抑えようとする研究や非病原性あるいは弱病原性
の微生物を植物体に感染させてその後の病原菌の感染や
発病を抑制する研究が盛んになっている。
に対して拮抗性を有する種々の微生物が存在し、お互い
に影響をおよぼし合いながら生態系を形成していること
が知られている。今日では、自然に生息する微生物のな
かで病原菌の活動を抑制する拮抗微生物を用いて病害の
発生を抑えようとする研究や非病原性あるいは弱病原性
の微生物を植物体に感染させてその後の病原菌の感染や
発病を抑制する研究が盛んになっている。
上記の研究で本病防除に現在のところ最も有効なもの
としては、本細菌M4S菌株（以下、「M4S」という）が開
示（特開昭60−186230号）されている。
としては、本細菌M4S菌株（以下、「M4S」という）が開
示（特開昭60−186230号）されている。
［発明が解決しようとする問題点］ 前記M4Sの本病のほ場における防除効果やその安定性
は充分なものではなく、実用的な防除剤として利用する
ために本細菌を溶菌するバクテリオファージとM4Sとの
併用による本病防除方法（特願昭60−261354号）あるい
はM4Sを高分子物質を用いて固定化し、該固定化物を土
壌中に施用する本病防除方法（特願昭60−288013号）が
開示されているに至っている。
は充分なものではなく、実用的な防除剤として利用する
ために本細菌を溶菌するバクテリオファージとM4Sとの
併用による本病防除方法（特願昭60−261354号）あるい
はM4Sを高分子物質を用いて固定化し、該固定化物を土
壌中に施用する本病防除方法（特願昭60−288013号）が
開示されているに至っている。
本発明者らは、さらにこの分野の研究を進め、M4Sと
は異なる機作により本細菌に対して拮抗性を示す新たな
本細菌の菌株を突然変異により作出し、本発明を完成し
た。
は異なる機作により本細菌に対して拮抗性を示す新たな
本細菌の菌株を突然変異により作出し、本発明を完成し
た。
［問題点を解決するための手段］ 本発明では、従来のM4Sと異なる機作による本細菌に
対する拮抗性の高い菌株を選抜した。すなわち、本細菌
に対して「バクテリオシン」と称される抗菌物質を産生
する新規のシュードモナス・ソラナシアラムOM2菌株
（以下、「OM2」という）を以下に述べる方法により作
出したのである。ここでいう「バクテリオシン」とは、
ある種の微生物がそれと同種あるいは近縁の種の微生物
に対して産生する抗菌性物質である。
対する拮抗性の高い菌株を選抜した。すなわち、本細菌
に対して「バクテリオシン」と称される抗菌物質を産生
する新規のシュードモナス・ソラナシアラムOM2菌株
（以下、「OM2」という）を以下に述べる方法により作
出したのである。ここでいう「バクテリオシン」とは、
ある種の微生物がそれと同種あるいは近縁の種の微生物
に対して産生する抗菌性物質である。
本発明者らは、タバコ立枯病が発生した全国各地のタ
バコ畑から病原性の本細菌70菌株を分離した。そしてこ
の70菌株のうち自菌株以外の本細菌に対してバクテリオ
シンを産生する数菌株を選抜した。そのなかでもPs48菌
株は、抗菌範囲が著しく広くPs48金株以外の69菌株に対
してバクテリオシン活性を示した。このPs48菌株をもと
にしてOM2を作出した。すなわちPs48菌株を試験管内でT
YG培地（トリプトン10g、酵母エキス1g、ブドウ糖10g、
水１リットル:Journal of General Microbiology vol 7
6 pp.177−188（1973））を用いて暗黒下に35℃で７日
間静置培養した。これをTZC平板培地（カザミノ酸1g、
ブドウ糖5g、ペプトン10g、寒天18g、水１リットルに0.
005％の2,3,5−トリフェニル塩化テトラゾリウムを添
加:Phytopathology vol 44 PP.693−695（1954））上
に滅菌した白金耳を用いて画線培養した。培地上に形成
された個々の集落より10個の独立した集落が得られた。
バコ畑から病原性の本細菌70菌株を分離した。そしてこ
の70菌株のうち自菌株以外の本細菌に対してバクテリオ
シンを産生する数菌株を選抜した。そのなかでもPs48菌
株は、抗菌範囲が著しく広くPs48金株以外の69菌株に対
してバクテリオシン活性を示した。このPs48菌株をもと
にしてOM2を作出した。すなわちPs48菌株を試験管内でT
YG培地（トリプトン10g、酵母エキス1g、ブドウ糖10g、
水１リットル:Journal of General Microbiology vol 7
6 pp.177−188（1973））を用いて暗黒下に35℃で７日
間静置培養した。これをTZC平板培地（カザミノ酸1g、
ブドウ糖5g、ペプトン10g、寒天18g、水１リットルに0.
005％の2,3,5−トリフェニル塩化テトラゾリウムを添
加:Phytopathology vol 44 PP.693−695（1954））上
に滅菌した白金耳を用いて画線培養した。培地上に形成
された個々の集落より10個の独立した集落が得られた。
上記の10株の取得株についてその滅菌水懸濁液（濃
度:109個/ml）をタバコ（本葉12枚苗）の茎基部に針接
種した。その結果、病原性の本細菌とは異なり、いずれ
の菌株もタバコ株全葉の萎凋症状を起こさなかったが、
下位葉の２〜３枚に萎凋、黄化症状を示すものが多かっ
た。これら10菌株のうち１菌株のみが最下位葉以外に症
状を示さなかった。この最も病原性の低い菌株が本発明
に用いられるOM2である。またPs48株とOM2を用いて重層
培養法により、前記の本細菌69菌株に対するバクテリオ
シンの産生能を検討した結果、OM2はいずれの菌株に対
してもPs48株と同様に明瞭な阻止円を形成した。
度:109個/ml）をタバコ（本葉12枚苗）の茎基部に針接
種した。その結果、病原性の本細菌とは異なり、いずれ
の菌株もタバコ株全葉の萎凋症状を起こさなかったが、
下位葉の２〜３枚に萎凋、黄化症状を示すものが多かっ
た。これら10菌株のうち１菌株のみが最下位葉以外に症
状を示さなかった。この最も病原性の低い菌株が本発明
に用いられるOM2である。またPs48株とOM2を用いて重層
培養法により、前記の本細菌69菌株に対するバクテリオ
シンの産生能を検討した結果、OM2はいずれの菌株に対
してもPs48株と同様に明瞭な阻止円を形成した。
すなわちOM2は、上記のごとく病原性の本細菌に対
し、バクテリオシンを産生する能力を持ち、かつ病原性
が極めて弱いことから使用する場合の理想的な菌株であ
ることがわかる。また、他の特徴として、OM2は、親株
のPs48菌株と比べてTZC培地上での集落型が、明確に異
なり、親株では、不整円形、白〜淡紅色の流動性の集落
を示すのに対して、OM2は、円形、中高、バター状の流
動性のない集落である。
し、バクテリオシンを産生する能力を持ち、かつ病原性
が極めて弱いことから使用する場合の理想的な菌株であ
ることがわかる。また、他の特徴として、OM2は、親株
のPs48菌株と比べてTZC培地上での集落型が、明確に異
なり、親株では、不整円形、白〜淡紅色の流動性の集落
を示すのに対して、OM2は、円形、中高、バター状の流
動性のない集落である。
OM2の細菌学的性質をさらに詳細に説明すれば、以下
の通りである。
の通りである。
ａ）形態学的性質 グラム陰性稈菌 約0.5〜0.7μｍ×0.9〜1.8μｍ 単極毛を有する 胞子：形成しない 運動性：有り ｂ）生育状態 CPG培地 ２日後に円形、平滑、バター状の小コロニー PSA培地 上記と同様 ｃ）生理学的性質 バクテリオシンの産生 有り 酸素に対する態度 好気性 生育温度 15℃〜38℃ 生育好適温度 26℃〜35℃ 生育pH 4.5 〜8.5 OFテスト ０ 硝酸塩の還元 ＋ デンプンの分解 − ゼラチンの分解 − 炭素源 利用する：グルコース、シュークロース、ラクトース、
ガワクトース、グリセロール、イノシトール、マルトー
ス、フルクトース、セロビオース、マンニトール、ソル
ビトール、ズルシトール 利用しない：アラビノース、マロン酸塩 以上の性質は、Buchanan,R,E ＆ Gibbons,N,E,編 Be
rgey′s Manual of Determinative Bacteriology 8th e
d pp.231−233に掲載されている本細菌の性質と同一で
あり、同種細菌であることが確認される。またOM2は、M
4Sとはバクテリオシンを産生すること、イノシトールを
分解することから容易に区別される。
ガワクトース、グリセロール、イノシトール、マルトー
ス、フルクトース、セロビオース、マンニトール、ソル
ビトール、ズルシトール 利用しない：アラビノース、マロン酸塩 以上の性質は、Buchanan,R,E ＆ Gibbons,N,E,編 Be
rgey′s Manual of Determinative Bacteriology 8th e
d pp.231−233に掲載されている本細菌の性質と同一で
あり、同種細菌であることが確認される。またOM2は、M
4Sとはバクテリオシンを産生すること、イノシトールを
分解することから容易に区別される。
なお、この発明に使用されるOM2は、1987年６月５日
に工業技術院微生物工業研究所に寄託番号 微工研菌寄
第9399号（FERM P−9399）として寄託されている。
に工業技術院微生物工業研究所に寄託番号 微工研菌寄
第9399号（FERM P−9399）として寄託されている。
本発明のOM2の培養には、特別な条件はなく、炭素
源、窒素源、無機塩類を含む合成培地で好気的に培養さ
れる。培養は、振とう培養、通気かくはん培養等の好気
的条件下で行うが、25〜35℃好ましくは28〜32℃、pH5
〜８、好ましくは６〜７が適当である。
源、窒素源、無機塩類を含む合成培地で好気的に培養さ
れる。培養は、振とう培養、通気かくはん培養等の好気
的条件下で行うが、25〜35℃好ましくは28〜32℃、pH5
〜８、好ましくは６〜７が適当である。
この発明におけるOM2の培養物とは、OM2の培養懸濁
液、生菌、培養ろ液もしくはその抽出物をいう。この発
明の本病防除方法は、保護すべきナス科植物の根部にOM
2の培養物を導入することから成る。
液、生菌、培養ろ液もしくはその抽出物をいう。この発
明の本病防除方法は、保護すべきナス科植物の根部にOM
2の培養物を導入することから成る。
なお、この明細書において「根部」とは植物を栽培し
た場合に土壌中あるいは水耕液中にあって水分や栄養分
の吸収を行う部分である。また、根部への導入は、培養
物を散布あるいは潅注したり、培養物中に根部を浸漬す
ることによって容易に行うことができる。
た場合に土壌中あるいは水耕液中にあって水分や栄養分
の吸収を行う部分である。また、根部への導入は、培養
物を散布あるいは潅注したり、培養物中に根部を浸漬す
ることによって容易に行うことができる。
この発明によってナス科植物の防除剤として使用する
場合に、OM2生菌あるいは培養懸濁液を用いる場合は好
ましくはOM2が108〜109/mlの濃度で本畑移植時を含め移
植の５日前の間にこれらを根部に導入する。導入の一方
法として浸漬処理する場合に、その浸漬時間は30分ない
し３時間好ましくは１時間前後である。また、潅注、潅
水処理の場合は苗１株当たり20〜40mlが適当である。
場合に、OM2生菌あるいは培養懸濁液を用いる場合は好
ましくはOM2が108〜109/mlの濃度で本畑移植時を含め移
植の５日前の間にこれらを根部に導入する。導入の一方
法として浸漬処理する場合に、その浸漬時間は30分ない
し３時間好ましくは１時間前後である。また、潅注、潅
水処理の場合は苗１株当たり20〜40mlが適当である。
なおさらに高い効果を得るためには、本畑に移植の15
〜30日後、好ましくは、20〜25日後に上記懸濁液を株当
たり200mlずつの割合で株元に潅注することが望まし
い。
〜30日後、好ましくは、20〜25日後に上記懸濁液を株当
たり200mlずつの割合で株元に潅注することが望まし
い。
また培養ろ液あるいはその抽出物を用いる場合は、そ
のままあるいは農薬製剤上慣用の方法に従って各種の担
体、希釈剤、展着剤等と共に根部に導入する。
のままあるいは農薬製剤上慣用の方法に従って各種の担
体、希釈剤、展着剤等と共に根部に導入する。
［発明の作用、効果］ この方法によってナス科植物の本病が防除される機構
は、以下のように説明される。
は、以下のように説明される。
根部に導入されたOM2は、根の表面で高濃度で生存す
るとともに根から侵入し、植物体内で増殖して本細菌に
対して抗菌作用のあるバクテリオシンを産生する。した
がって、土壌注の本細菌は根部から侵入する時に物理的
あるいは抗菌物質による抑制作用を受けると同時に、植
物体に侵入後も同様な抑制作用を受ける。そのために、
OM2の防除効果は高い。
るとともに根から侵入し、植物体内で増殖して本細菌に
対して抗菌作用のあるバクテリオシンを産生する。した
がって、土壌注の本細菌は根部から侵入する時に物理的
あるいは抗菌物質による抑制作用を受けると同時に、植
物体に侵入後も同様な抑制作用を受ける。そのために、
OM2の防除効果は高い。
また、OM2を導入して所定の期間が経過した後にOM2を
さらに株元に潅注することによって導入すると、作物の
根を病原菌の新たな感染から保護することになり、本細
菌がさらに侵入しにくくなる。
さらに株元に潅注することによって導入すると、作物の
根を病原菌の新たな感染から保護することになり、本細
菌がさらに侵入しにくくなる。
さらにOM2によって産生されたバクテリオシンを含む
培養物を導入した場合には、その直接的な抗菌作用によ
り本細菌が死滅する。
培養物を導入した場合には、その直接的な抗菌作用によ
り本細菌が死滅する。
こうして本発明により、ナス科植物の本病による病害
が効果的に防除される。
が効果的に防除される。
［実施例］ 実施例１ 病原性のあるタバコ立枯病菌の蒸留水懸濁液を混合し
たCPG寒天培地（カザミノ酸1g、ブドウ糖5g、ペプトン1
0g、寒天18g、水１リットル）を直径9cmのシャーレに20
ml流し込んで平板培地とし、別にCPG液体培地で30℃48
時間振とう培養したOM2（本発明）およびM4Sの培養ろ液
をペーパーフィルターに含浸したのち、それぞれシャー
レの中央部において30℃で24時間後に形成される阻止円
を調べた。なお対照として、CPG液体培地のみの区を設
けそれぞれの区ごとに５枚のシャーレを用いた。結果を
第１表に示した。
たCPG寒天培地（カザミノ酸1g、ブドウ糖5g、ペプトン1
0g、寒天18g、水１リットル）を直径9cmのシャーレに20
ml流し込んで平板培地とし、別にCPG液体培地で30℃48
時間振とう培養したOM2（本発明）およびM4Sの培養ろ液
をペーパーフィルターに含浸したのち、それぞれシャー
レの中央部において30℃で24時間後に形成される阻止円
を調べた。なお対照として、CPG液体培地のみの区を設
けそれぞれの区ごとに５枚のシャーレを用いた。結果を
第１表に示した。
第１表の結果より対照区およびM4S区では阻止円の形
成が認められなかったが、OM2区ではいずれも明確な阻
止円が形成された。すなわちOM2はバクテリオシンを産
生する能力を持ち、その培養物にはバクテリオシン活性
があることが確認される。
成が認められなかったが、OM2区ではいずれも明確な阻
止円が形成された。すなわちOM2はバクテリオシンを産
生する能力を持ち、その培養物にはバクテリオシン活性
があることが確認される。
実施例２ 一辺が5cm角の塩化ビニール製ポット（25本植）で栽
培し、本畑に移植する大きさの苗（本葉９枚）のタバコ
苗（品種：ブライトイエロー４号）を各区とも15本ずつ
供試した。CPG培地でOM2を30℃40時間培養し、以下の区
別で培養物あるいは対照とした蒸留水の苗の根部を１時
間浸漬した。浸漬は、処理槽に各液を深さ3cmに入れ、
これに苗の根部を浸漬することによって行った。
培し、本畑に移植する大きさの苗（本葉９枚）のタバコ
苗（品種：ブライトイエロー４号）を各区とも15本ずつ
供試した。CPG培地でOM2を30℃40時間培養し、以下の区
別で培養物あるいは対照とした蒸留水の苗の根部を１時
間浸漬した。浸漬は、処理槽に各液を深さ3cmに入れ、
これに苗の根部を浸漬することによって行った。
（１）OM2培養ろ液区：培養懸濁液中のOM2をろ過したの
ちのろ液 （２）OM2生菌懸濁液区：培養懸濁液中のOM2を遠心集菌
したのち蒸留水中に再懸濁したもの（OM2濃度:109個/m
l） （３）OM2培養懸濁液区：（OM2濃度109個/ml） （４）対照区：蒸留水 処理したタバコ苗は病原性のあるタバコ立枯病菌の人
工汚染土壌（立枯病菌数1.5×106個/g乾土）を詰めた直
径12cmの素焼鉢に移植した。20日後に発病状況を観察し
た。発病程度は、第２表に示すように０から５までの６
段階とし、以下の式により平均罹病指数を求め、防除率
を算出した。結果を第３表に示した。
ちのろ液 （２）OM2生菌懸濁液区：培養懸濁液中のOM2を遠心集菌
したのち蒸留水中に再懸濁したもの（OM2濃度:109個/m
l） （３）OM2培養懸濁液区：（OM2濃度109個/ml） （４）対照区：蒸留水 処理したタバコ苗は病原性のあるタバコ立枯病菌の人
工汚染土壌（立枯病菌数1.5×106個/g乾土）を詰めた直
径12cmの素焼鉢に移植した。20日後に発病状況を観察し
た。発病程度は、第２表に示すように０から５までの６
段階とし、以下の式により平均罹病指数を求め、防除率
を算出した。結果を第３表に示した。
第３表の結果から明らかなように対照区よりもOM2の
培養物の処理区の方が発病率が低く、平均罹病指数も処
理区の方が有意（危険率１％）に低かった。また処理区
の中では生菌あるいは培養懸濁液処理の効果が最も高か
った。
培養物の処理区の方が発病率が低く、平均罹病指数も処
理区の方が有意（危険率１％）に低かった。また処理区
の中では生菌あるいは培養懸濁液処理の効果が最も高か
った。
実施例３ 実施例２と同様の方法で栽培したタバコ苗の20本ずつ
を以下の３種の液に１時間浸漬した。浸漬は、実施例２
と同様な方法で行った。
を以下の３種の液に１時間浸漬した。浸漬は、実施例２
と同様な方法で行った。
（１）OM2生菌懸濁液区：蒸留水中にOM2の生菌を109個/
ml含むもの（本発明） （２）M4S生菌懸濁液区：蒸留水中にM4Sの生菌を109個/
ml含むもの（従来発明） （３）対照区：蒸留水 それぞれ処理したタバコ苗を直径12cmの素焼鉢に移植
し、10日後に病原性のあるタバコ立枯病菌の濃度が106
個/mlである蒸留水懸濁液を調整し、上記計60本のタバ
コ苗の根にナイフを差し込んで傷をつけた直後にこの病
原菌懸濁液を10mlずつ潅注した。10日後に実施例２と同
様な方法で発病状態を観察した。結果を第４表に示し
た。
ml含むもの（本発明） （２）M4S生菌懸濁液区：蒸留水中にM4Sの生菌を109個/
ml含むもの（従来発明） （３）対照区：蒸留水 それぞれ処理したタバコ苗を直径12cmの素焼鉢に移植
し、10日後に病原性のあるタバコ立枯病菌の濃度が106
個/mlである蒸留水懸濁液を調整し、上記計60本のタバ
コ苗の根にナイフを差し込んで傷をつけた直後にこの病
原菌懸濁液を10mlずつ潅注した。10日後に実施例２と同
様な方法で発病状態を観察した。結果を第４表に示し
た。
第４表の結果から明らかなようにOM2の処理区が最も
発病抑制効果が高く、M4Sよりもさらに効果が高かっ
た。また、平均罹病指数も同様であり、その差は統計的
に有意（危険率５％）であった。
発病抑制効果が高く、M4Sよりもさらに効果が高かっ
た。また、平均罹病指数も同様であり、その差は統計的
に有意（危険率５％）であった。
実施例４ 実施例２と同様の方法でタバコを栽培し、同様の区別
で処理を行ったのち、病原性のあるタバコ立枯病菌の人
工汚染土壌（立枯病菌数3.0×106個/g乾土）を詰めた直
径12cmの素焼鉢に移植した。20日後に発病状況を観察
し、実施例２と同様な方法で防除効果を評価した。結果
を第５表に示した。
で処理を行ったのち、病原性のあるタバコ立枯病菌の人
工汚染土壌（立枯病菌数3.0×106個/g乾土）を詰めた直
径12cmの素焼鉢に移植した。20日後に発病状況を観察
し、実施例２と同様な方法で防除効果を評価した。結果
を第５表に示した。
第５表からわかるように対照区よりも処理区の方が発
病率が低く、平均罹病指数も処理区の方が統計的に有意
（危険率１％）に低かった。また、OM2処理区の方がM4S
処理区よりも発病率が低く、平均罹病指数も統計手に有
意（危険率５％）に低かった。
病率が低く、平均罹病指数も処理区の方が統計的に有意
（危険率１％）に低かった。また、OM2処理区の方がM4S
処理区よりも発病率が低く、平均罹病指数も統計手に有
意（危険率５％）に低かった。
実施例５ 実施例２で用いた塩化ビニール製ポットで播種後30日
を経過したトマト苗（品種：福寿100号）を各区とも20
本ずつ供試し、実施例２と同様の方法でトマト苗を処理
した。処理後は、実施例２と同様に人工汚染土壌（立枯
病菌数2.2×106個/g乾土）に移植し、20日後に発病率、
平均罹病指数および防除率を求めた。結果を第６表に示
した。
を経過したトマト苗（品種：福寿100号）を各区とも20
本ずつ供試し、実施例２と同様の方法でトマト苗を処理
した。処理後は、実施例２と同様に人工汚染土壌（立枯
病菌数2.2×106個/g乾土）に移植し、20日後に発病率、
平均罹病指数および防除率を求めた。結果を第６表に示
した。
いずれの処理区も対照区に比べて発病率、平均罹病指
数ともに低かった。特にOM2処理区は、M4S処理区よりも
発病率が低く、平均罹病指数も統計的に有意（危険率１
％）に低かった。
数ともに低かった。特にOM2処理区は、M4S処理区よりも
発病率が低く、平均罹病指数も統計的に有意（危険率１
％）に低かった。
実施例６ 塩化ビニール製のポットに播種後40日経過した本畑移
植期の大きさ（本葉７枚）のナス苗（品種：長岡長茄）
を供試し、実施例２と同様な方法で処理および移植を行
った。30日後に発病状態を観察し、実施例２と同様に防
除効果の評価を行った。その結果を第７表に示した。
植期の大きさ（本葉７枚）のナス苗（品種：長岡長茄）
を供試し、実施例２と同様な方法で処理および移植を行
った。30日後に発病状態を観察し、実施例２と同様に防
除効果の評価を行った。その結果を第７表に示した。
対照区よりも処理区の方が発病率が低く、平均罹病指
数も低かった。また、OM2処理区は、M4S処理区に比べ発
病率が著しく低下し、平均罹病指数も統計的に有意（危
険率１％）に低かった。
数も低かった。また、OM2処理区は、M4S処理区に比べ発
病率が著しく低下し、平均罹病指数も統計的に有意（危
険率１％）に低かった。
実施例７ 実施例２と同様の方法で栽培したタバコ苗（品種：ブ
ライトエロー４号）を１区につき10本供試し、以下の区
別でOM2の生菌懸濁液（濃度:109個/ml）をタバコ苗の根
部に導入処理した。なお対照区として蒸留水を浸漬処理
する区を設けた。
ライトエロー４号）を１区につき10本供試し、以下の区
別でOM2の生菌懸濁液（濃度:109個/ml）をタバコ苗の根
部に導入処理した。なお対照区として蒸留水を浸漬処理
する区を設けた。
（１）苗根部浸漬区:OM2の生菌懸濁液を根部に１時間浸
漬処理した（本発明）。
漬処理した（本発明）。
（２）潅水区：同懸濁液をじょうろで潅水した（本発
明）。
明）。
（３）潅注区：同懸濁液を株元に潅注した（本発明）。
（４）対照区：蒸留水に１時間浸漬処理した。
処理後の苗は、実施例２と同様に人工汚染土壌（立枯
病菌数2.2×106個/g乾土）に移植し、20日後に発病率、
平均罹病指数および防除率を求めた。結果を第８表に示
した。
病菌数2.2×106個/g乾土）に移植し、20日後に発病率、
平均罹病指数および防除率を求めた。結果を第８表に示
した。
第８表からわかるようにいずれの処理区でも立枯病の
発病抑制効果が認められ、処理区と対照区の平均罹病指
数の間には有意（危険率１％）な差が認められた。しか
し、処理区の中ではその効果に大きな差は認められなか
った。
発病抑制効果が認められ、処理区と対照区の平均罹病指
数の間には有意（危険率１％）な差が認められた。しか
し、処理区の中ではその効果に大きな差は認められなか
った。
実施例８ 実施例１と同様に栽培したタバコ苗（品種：ブライト
エロー４号）を１区につき72本ずつ供試した。実施例１
と同様にOM2の生菌懸濁液（濃度:109個/ml）にタバコ苗
の根部を30分間浸漬した。なお対照区は、何の処理も行
わなかった。浸漬処理後、直ちに立枯病の汚染畑（立枯
病菌数:2.9×103個/g乾土）に移植した。さらに別に移
植の25日後に浸漬処理の場合と同様の濃度のOM2の懸濁
液をタバコ株当たり200mlずつ株元に潅注する区を設け
た。７月７日に発病状態を調査した結果を第10表に示し
た。発病調査は、第９表の基準に基づいて行った。
エロー４号）を１区につき72本ずつ供試した。実施例１
と同様にOM2の生菌懸濁液（濃度:109個/ml）にタバコ苗
の根部を30分間浸漬した。なお対照区は、何の処理も行
わなかった。浸漬処理後、直ちに立枯病の汚染畑（立枯
病菌数:2.9×103個/g乾土）に移植した。さらに別に移
植の25日後に浸漬処理の場合と同様の濃度のOM2の懸濁
液をタバコ株当たり200mlずつ株元に潅注する区を設け
た。７月７日に発病状態を調査した結果を第10表に示し
た。発病調査は、第９表の基準に基づいて行った。
いずれの処理区も対照区に比べて発病率および平均罹
病指数ともに低下し、防除効果が認められた。また、OM
2の移植時浸漬処理と株元潅注の併用処理区は、浸漬の
みの区よりも効果が高まった。
病指数ともに低下し、防除効果が認められた。また、OM
2の移植時浸漬処理と株元潅注の併用処理区は、浸漬の
みの区よりも効果が高まった。
Claims (3)
- 【請求項１】バクテリオシンを産生する能力を持ち、か
つTZC培地上で円形、中高、バター状の流動性のない集
落をなすシュードモナス・ソラナシアラム・OM2菌株。 - 【請求項２】シュードモナス・ソラナシアラム・OM2菌
株を有効成分として含有することを特徴とするタバコ立
枯病及びナス科植物青枯病防除剤。 - 【請求項３】シュードモナス・ソラナシアラム・OM2菌
株をナス科植物の根部に導入することを特徴とするタバ
コ立枯病及びナス科植物青枯病防除方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP62171055A JPH0815428B2 (ja) | 1987-07-10 | 1987-07-10 | ナス科植物の土壌病害防除方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP62171055A JPH0815428B2 (ja) | 1987-07-10 | 1987-07-10 | ナス科植物の土壌病害防除方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS6416579A JPS6416579A (en) | 1989-01-20 |
| JPH0815428B2 true JPH0815428B2 (ja) | 1996-02-21 |
Family
ID=15916237
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP62171055A Expired - Lifetime JPH0815428B2 (ja) | 1987-07-10 | 1987-07-10 | ナス科植物の土壌病害防除方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH0815428B2 (ja) |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2612533B2 (ja) * | 1992-04-15 | 1997-05-21 | 日本たばこ産業株式会社 | シュードモナス属新菌株 |
-
1987
- 1987-07-10 JP JP62171055A patent/JPH0815428B2/ja not_active Expired - Lifetime
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS6416579A (en) | 1989-01-20 |
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