JP6486745B2 - 美白用組成物 - Google Patents
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Description
本発明は、Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドとティラピアの皮のコラーゲン加水分解物を含む美白用組成物に関する。また本発明は、Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドとティラピアの皮のコラーゲン加水分解物由来のジペプチドを含む美白用組成物に関する。
化粧料などに用いられる美白成分としてＬ−アスコルビン酸が著名である。Ｌ−アスコルビン酸は、チロシナーゼ酵素の働きによりメラニン色素が産生されることによるシミ、ソバカス、色黒を予防する。このような目的で使用される製剤として、Ｌ−アスコルビン酸のグルコース配糖体であるＬ−アスコルビン酸２グルコシドを配合した皮膚化粧料（特許文献１）、Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドとアミノ酸又はその誘導体を組み合わせて配合する皮膚外用剤（特許文献２）が安全な美白剤として広く利用されている。Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドは、水溶性が高く、細胞内でＬ−アスコルビン酸に変換されて、メラニン生成抑制作用、メラニン還元作用、メラニン排泄促進作用により美白効果を発揮する。
また、その他のアスコルビン酸誘導体や、コウジ酸、コウジ酸誘導体、ハイドロキノン誘導体なども美白剤として広く利用されている。
また、その他のアスコルビン酸誘導体や、コウジ酸、コウジ酸誘導体、ハイドロキノン誘導体なども美白剤として広く利用されている。
一方、より安全な美白剤をめざして種々の物質や組成物が探索され、それを利用した新たな美白剤が提案されている。特許文献３には、植物由来の美白剤として、青汁の原料であるケールの抽出物をメラニン生成抑制剤として利用する発明が記載されている。
また、特許文献４には、Ｌ−アスコルビン酸の効果を増強する成分が探索されており、その一つとしてグレープフルーツの抽出物がメラノサイト細胞におけるビタミンＣトランスポーター産生促進作用を有し、その作用によってＬ−アスコルビン酸の美白効果が増強されることを発見し、これを利用したアスコルビン酸グルコシドとグレープフルーツ抽出物とエキナセアを配合した美白用組成物が記載されている。
また特許文献５には、乳のホエータンパク質加水分解物を有効成分とする美白剤が記載されており、その活性の本体が平均ペプチド鎖長で２〜８のオリゴペプチドにあることが記載されている。特許文献６にはセリンプロテアーゼ阻害作用を有するジペプチド又はトリペプチドがアスコルビン酸と併用すると美白作用を示すことが記載されている。特許文献７には、ゼラチンをエンド型プロテアーゼとエキソ型プロテアーゼを組み合わせて加水分解して得られるペプチド混合物中に存在する特定の配列のジペプチド又はトリペプチドが、エンドセリン−１の発現を抑制し、メラノサイトのメラニン産生を抑制することが記載されている。特許文献８には、コラーゲンの加水分解物、あるいは類似ペプチドとミカン属植物抽出物を有効成分とする美白用の皮膚外用剤が提案されている。
また、特許文献４には、Ｌ−アスコルビン酸の効果を増強する成分が探索されており、その一つとしてグレープフルーツの抽出物がメラノサイト細胞におけるビタミンＣトランスポーター産生促進作用を有し、その作用によってＬ−アスコルビン酸の美白効果が増強されることを発見し、これを利用したアスコルビン酸グルコシドとグレープフルーツ抽出物とエキナセアを配合した美白用組成物が記載されている。
また特許文献５には、乳のホエータンパク質加水分解物を有効成分とする美白剤が記載されており、その活性の本体が平均ペプチド鎖長で２〜８のオリゴペプチドにあることが記載されている。特許文献６にはセリンプロテアーゼ阻害作用を有するジペプチド又はトリペプチドがアスコルビン酸と併用すると美白作用を示すことが記載されている。特許文献７には、ゼラチンをエンド型プロテアーゼとエキソ型プロテアーゼを組み合わせて加水分解して得られるペプチド混合物中に存在する特定の配列のジペプチド又はトリペプチドが、エンドセリン−１の発現を抑制し、メラノサイトのメラニン産生を抑制することが記載されている。特許文献８には、コラーゲンの加水分解物、あるいは類似ペプチドとミカン属植物抽出物を有効成分とする美白用の皮膚外用剤が提案されている。
また、近年皮膚の弾力性や、シワの改善を目的としてコラーゲンやコラーゲンの加水分解物を経口摂取することが行われており、「美容ドリンク」や「美肌飲料」などの名称でコラーゲンやコラーゲンの加水分解物を含む飲料が市販されている。そして、コラーゲンやコラーゲンの加水分解物を経口摂取すると特定のペプチドが血液中に出現することが知られている。さらに、そのペプチドが線維芽細胞のＩ型コラーゲンの産生を促進することが知られている（特許文献９）。特許文献１０にはサメの皮を原料とするコラーゲンペプチドの製造方法が記載されている。このような技術を利用し、魚類の皮を原料とした酵素分解物としては、サメの皮やサケの皮を原料としたものが知られている。また、ウシや豚のコラーゲンを原料とした酵素分解物が知られている。これらの酵素分解物は、コラーゲントリペプチドを６０％以上もの高濃度で含んでおり、コラーゲンペプチドとして食品や化粧料の原料として広く普及している。しかし、これらの公知のコラーゲンペプチドは、本発明が目的とする美白効果を有しないことが確認されている。
本発明者は、コラーゲンをコラゲナーゼで加水分解したときに出現する多数のトリペプチドやジペプチドを含む加水分解物について研究している。その過程でティラピアの皮由来の分解物がメラニン産生抑制作用を有し、さらにＬ−アスコルビン酸２グルコシドの美白効果を増強することを発見し、本発明を完成するにいたった。
したがって、本発明は、新たな美白用組成物を提供することを課題とする。
したがって、本発明は、新たな美白用組成物を提供することを課題とする。
本発明は、次の構成からなる。
（１）Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドとティラピアの皮のコラーゲン加水分解物を含み、
ティラピアの皮のコラーゲン加水分解物が次の特徴を有するものである美白用組成物。
（Ａ）ＨＰＬＣによるゲルろ過平均分子量 ：３００Ｄａ
（Ｂ）加水分解物中の乾燥物当たりのジペプチド含有量 ：２０〜４０質量％
（Ｃ）加水分解物中の乾燥物当たりのトリペプチド含有量：３０〜４５質量％
（Ｄ）メラノーマ細胞に対してメラニン産生抑制作用を示す。
（２）Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドと、Ｇｌｙ−Ｐｒｏ、Ｐｒｏ−Ｇｌｙ、Ｐｒｏ−Ｈｙｐ及びＨｙｐ−Ｇｌｙを含むティラピアの皮のコラーゲン加水分解物由来のジペプチドを含有する美白用組成物。
（３）Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドと、Ｐｒｏ−Ｇｌｙの配列を有するジペプチド及び／又はＰｒｏ−Ｈｙｐの配列を有するジペプチドを含む美白用組成物。
（４）（１）〜（３）のいずれかに記載の美白用組成物を含む美白用化粧料又は美白用医薬部外品。
（１）Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドとティラピアの皮のコラーゲン加水分解物を含み、
ティラピアの皮のコラーゲン加水分解物が次の特徴を有するものである美白用組成物。
（Ａ）ＨＰＬＣによるゲルろ過平均分子量 ：３００Ｄａ
（Ｂ）加水分解物中の乾燥物当たりのジペプチド含有量 ：２０〜４０質量％
（Ｃ）加水分解物中の乾燥物当たりのトリペプチド含有量：３０〜４５質量％
（Ｄ）メラノーマ細胞に対してメラニン産生抑制作用を示す。
（２）Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドと、Ｇｌｙ−Ｐｒｏ、Ｐｒｏ−Ｇｌｙ、Ｐｒｏ−Ｈｙｐ及びＨｙｐ−Ｇｌｙを含むティラピアの皮のコラーゲン加水分解物由来のジペプチドを含有する美白用組成物。
（３）Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドと、Ｐｒｏ−Ｇｌｙの配列を有するジペプチド及び／又はＰｒｏ−Ｈｙｐの配列を有するジペプチドを含む美白用組成物。
（４）（１）〜（３）のいずれかに記載の美白用組成物を含む美白用化粧料又は美白用医薬部外品。
本発明により、新たな美白用組成物が提供される。また本発明の美白用組成物は、従来Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドが美白効果を発揮しない濃度であっても、美白効果が得られるようになるため、Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドの使用量を低減することができる。またＬ−アスコルビン酸２グルコシドの美白効果を増強するため、より有効な美白用化粧料や美白用医薬部外品が提供される。
本発明は、Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドとティラピアの皮のコラーゲン加水分解物を含む美白用組成物、およびＬ−アスコルビン酸２グルコシドとティラピアの皮のコラーゲン加水分解物由来のジペプチドを含む美白用組成物に係るものである。
Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドは、アスコルビン酸にグルコースが結合した化合物であって、Ｌ−アスコルビン酸の２位の炭素にグルコースが結合した化合物である。Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドは公知の手法により得られるものであり、特許文献１に、美白用途について記載されている。市販されているＬ−アスコルビン酸２グルコシドとしては、例えば、株式会社林原の「Ａｓｃｏｒｂｉｃ ａｃｉｄ２−ｇｌｕｃｏｓｉｄｅ」を例示できる。医薬部外品として承認されるためには２質量%以上のアスコルビン酸グルコシドを安定に配合することが求められる。本発明では、２〜３質量％配合することが好ましい。
Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドは、アスコルビン酸にグルコースが結合した化合物であって、Ｌ−アスコルビン酸の２位の炭素にグルコースが結合した化合物である。Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドは公知の手法により得られるものであり、特許文献１に、美白用途について記載されている。市販されているＬ−アスコルビン酸２グルコシドとしては、例えば、株式会社林原の「Ａｓｃｏｒｂｉｃ ａｃｉｄ２−ｇｌｕｃｏｓｉｄｅ」を例示できる。医薬部外品として承認されるためには２質量%以上のアスコルビン酸グルコシドを安定に配合することが求められる。本発明では、２〜３質量％配合することが好ましい。
本発明でいうティラピアとは、ナイルティラピアをいう。
ナイルティラピアは、アフリカ原産の淡水性の食用魚で、シクリッド科（カワスズメ科）のナイルティラピア（Ｎｉｌｅ ｔｉｌａｐｉａ、Ｏｒｅｏｃｈｒｏｍｉｓ ｎｉｌｏｔｉｃｕｓ）に分類されるものであり、近年日本に導入され、流通名を「イズミダイ」又は「チカダイ」として、食用のために養殖されている。
本発明の美白用組成物、美白用化粧料又は美白用医薬部外品に用いるティラピアの皮のコラーゲン加水分解物は、このティラピアの魚皮を原料として調製されるものである。
魚類の皮を原料とした酵素分解物は、サメの皮やサケの皮を原料としたものが知られている。また、ウシや豚のコラーゲンを原料とした酵素分解物が知られている。しかし、これらの酵素分解物は上記したように、メラニン産生抑制作用を有しない。
ナイルティラピアは、アフリカ原産の淡水性の食用魚で、シクリッド科（カワスズメ科）のナイルティラピア（Ｎｉｌｅ ｔｉｌａｐｉａ、Ｏｒｅｏｃｈｒｏｍｉｓ ｎｉｌｏｔｉｃｕｓ）に分類されるものであり、近年日本に導入され、流通名を「イズミダイ」又は「チカダイ」として、食用のために養殖されている。
本発明の美白用組成物、美白用化粧料又は美白用医薬部外品に用いるティラピアの皮のコラーゲン加水分解物は、このティラピアの魚皮を原料として調製されるものである。
魚類の皮を原料とした酵素分解物は、サメの皮やサケの皮を原料としたものが知られている。また、ウシや豚のコラーゲンを原料とした酵素分解物が知られている。しかし、これらの酵素分解物は上記したように、メラニン産生抑制作用を有しない。
本発明におけるティラピア皮の加水分解物は、ティラピアの加工過程で廃棄されていた魚皮をそのまま、あるいは冷凍保存されていた魚皮を、酸又はコラゲナーゼやブロメラインによる酵素分解、あるいは両方を組み合わせて加水分解したものである。ゲルろ過ＨＰＬＣ法によって測定した場合、平均分子量が３００Ｄａを示す。ティラピア皮は、主成分としてコラーゲンを高濃度に含んでいる。したがってティラピアの皮のコラーゲン加水分解物には、コラーゲン由来のジペプチド、トリペプチド、トリペプチド以上のオリゴペプチドを高濃度に含んでいる。ティラピア皮の加水分解は、公知の酵素分解法、あるいは酸加水分解法と酵素分解法により行うことが好ましい。ティラピアの皮原料の溶解、分解は、通常はたんぱく質分解酵素を用いて行う。
たんぱく質分解酵素は、植物由来のものや、微生物由来のものが利用できる。酵素はエンド型、エキソ型いずれのタイプでも利用できる。たんぱく質分解酵素は、適宜選択すればよく、単独でまたは２種以上を組み合わせて使用することができる。たんぱく質分解酵素を２種以上用いる場合、各たんぱく質分解酵素を混合して用いても、別々に用いても、もしくは時間差を設けて混合して用いてもよい。
たんぱく質分解酵素は、植物由来のものや、微生物由来のものが利用できる。酵素はエンド型、エキソ型いずれのタイプでも利用できる。たんぱく質分解酵素は、適宜選択すればよく、単独でまたは２種以上を組み合わせて使用することができる。たんぱく質分解酵素を２種以上用いる場合、各たんぱく質分解酵素を混合して用いても、別々に用いても、もしくは時間差を設けて混合して用いてもよい。
酵素処理は、使用する酵素の至適ｐＨ、至適温度条件下で行うが、処理時間は使用する原料の水分含量や、原料片の大きさ、原料の容量と処理液の比率などから適切な条件を設定すればよい。酵素処理時間は、一般に、冷凍又は生皮原料の場合、数時間かそれ以上、乾燥原料では十数時間以上である。
前記たんぱく質分解酵素の活性は、一般的には、原料の皮中のたんぱく質１ｇに対して４００ユニット以上であることが好ましく、特に、２０００ユニット以上であることが好ましい。
酵素分解や酸による加水分解の終了の目安は、加水分解によって生成するトリペプチドとジペプチドの含有量を指標として判断する。本発明においては、原料とする全たんぱく質あたりジペプチドが２０質量％以上、トリペプチドが３０質量％以上となったとき、加水分解を終了させることが好ましい。なお、ジペプチド及びトリペプチドの生成量は、ＨＰＬＣを用いたゲルろ過クロマトグラフィーにジペプチドとトリペプチドに相当するピークのピーク面積よって確認することができる。
酵素分解や酸による加水分解の終了の目安は、加水分解によって生成するトリペプチドとジペプチドの含有量を指標として判断する。本発明においては、原料とする全たんぱく質あたりジペプチドが２０質量％以上、トリペプチドが３０質量％以上となったとき、加水分解を終了させることが好ましい。なお、ジペプチド及びトリペプチドの生成量は、ＨＰＬＣを用いたゲルろ過クロマトグラフィーにジペプチドとトリペプチドに相当するピークのピーク面積よって確認することができる。
本発明に係る酵素分解によって得られたティラピアの皮のコラーゲン加水分解物の溶液は、加熱により酵素を失活させることが好ましい。失活工程を行ったとき、混在する熱凝固性のたんぱく質により微小な懸濁物質や沈殿物質を生ずることがある。この現象を改善するため、失活工程でｐＨを酸性側とし、失活工程の後、前記皮の組織の分解により得られた加水分解物は、さらに精製処理を行うことが好ましい。この場合、失活工程のｐＨは３．８またはこれ以下が好ましい。加水分解溶液は、クエン酸やクエン酸ソーダ等を用いて中性〜弱酸性のｐＨに調整することが好ましい。精製処理には、例えば、珪藻土ろ過等を用いて不純物を除去することが好ましい。珪藻土などのろ過助剤を使用して、ティラピアの皮のコラーゲン加水分解物に含有されるコラーゲンペプチドなどを含むペプチド溶液と残渣とを分離する。また、塩濃度を低下させる場合には、カチオン交換樹脂、アニオン交換樹脂またはそれらの両方を用いて、脱イオン処理をおこなう。精製処理で得られるティラピアの皮のコラーゲン加水分解物は、溶液状態で良好な透明性を有する。得られた溶液は適切な乾燥方法、例えば食品素材などに広く用いられるスプレードライヤーを用いて容易に粉末化して製品とすることが出来る。
得られるティラピアの皮のコラーゲン加水分解物は、必要により活性炭などの吸着剤を使用して臭いを低減させることができる。
かくして得られることのできるティラピアの皮のコラーゲン加水分解物を乾燥させた乾燥物は、次の成分を含有していることで特定される。
窒素分 ：１３．５〜１８質量％
ＨＰＬＣによるゲルろ過平均分子量：３００Ｄａ
ジペプチド含有量 ：２０〜４０質量％
トリペプチド含有量 ：３０〜４５質量％
また、水に溶けやすく、熱によってゲル化しない。
加水分解物中に存在するジペプチドを分析した場合に、Ｇｌｙ−Ｐｒｏ、Ｐｒｏ−Ｇｌｙ、Ｐｒｏ−Ｈｙｐ、Ｈｙｐ−Ｇｌｙの配列を有するものが多く検出される。またトリペプチドとしては、Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｈｙｐ、Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ、Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ａｌａなどのいわゆるコラーゲントリペプチドの構造を有するものが検出される。各ペプチドのうちジペプチドは、加水分解物の乾燥物中に次の量が含有されている。
Ｇｌｙ−Ｐｒｏ：１０〜１２質量％
Ｐｒｏ−Ｇｌｙ：０．４〜０．６質量％
Ｐｒｏ−Ｈｙｐ：５〜７質量％
Ｈｙｐ−Ｇｌｙ：２．５〜３．５質量％
本発明の美白用組成物においては、ティラピアの皮のコラーゲン加水分解物をＬ−アスコルビン酸２グルコシドの１〜５０倍量、特に好ましくは１０〜２０倍量を含有させることで、Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドの美白作用を増強する。
窒素分 ：１３．５〜１８質量％
ＨＰＬＣによるゲルろ過平均分子量：３００Ｄａ
ジペプチド含有量 ：２０〜４０質量％
トリペプチド含有量 ：３０〜４５質量％
また、水に溶けやすく、熱によってゲル化しない。
加水分解物中に存在するジペプチドを分析した場合に、Ｇｌｙ−Ｐｒｏ、Ｐｒｏ−Ｇｌｙ、Ｐｒｏ−Ｈｙｐ、Ｈｙｐ−Ｇｌｙの配列を有するものが多く検出される。またトリペプチドとしては、Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｈｙｐ、Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ、Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ａｌａなどのいわゆるコラーゲントリペプチドの構造を有するものが検出される。各ペプチドのうちジペプチドは、加水分解物の乾燥物中に次の量が含有されている。
Ｇｌｙ−Ｐｒｏ：１０〜１２質量％
Ｐｒｏ−Ｇｌｙ：０．４〜０．６質量％
Ｐｒｏ−Ｈｙｐ：５〜７質量％
Ｈｙｐ−Ｇｌｙ：２．５〜３．５質量％
本発明の美白用組成物においては、ティラピアの皮のコラーゲン加水分解物をＬ−アスコルビン酸２グルコシドの１〜５０倍量、特に好ましくは１０〜２０倍量を含有させることで、Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドの美白作用を増強する。
本発明の第２の発明であるＬ−アスコルビン酸２グルコシドとティラピアの皮のコラーゲン加水分解物由来の１種以上のジペプチドを含む美白用組成物に用いるジペプチドは、前記のティラピアの皮のコラーゲン加水分解物をさらに、ゲルろ過クロマトグラフィー等によってジペプチドに相当する分子量２５０〜３００Ｄａの分子量の画分を分取して得ることができる。また下記の試験例で示すように、Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドの美白作用を促進するジペプチドであるＰｒｏ−Ｇｌｙ又はＰｒｏ−Ｈｙｐの配列を有する合成ペプチドを使用しても良い。
本発明の美白用組成物においては、ジペプチドあるいはＰｒｏ−Ｇｌｙ又はＰｒｏ−Ｈｙｐの配列を有する合成ペプチドをＬ−アスコルビン酸２グルコシドの１〜５０倍量、特に好ましくは１０〜２０倍量を含有させることで、Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドの美白作用を増強する。
本発明の美白用組成物においては、ジペプチドあるいはＰｒｏ−Ｇｌｙ又はＰｒｏ−Ｈｙｐの配列を有する合成ペプチドをＬ−アスコルビン酸２グルコシドの１〜５０倍量、特に好ましくは１０〜２０倍量を含有させることで、Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドの美白作用を増強する。
本発明に係る美白用組成物そのまま、美白用化粧料、美白用医薬部外品とすることができる。また、種々の剤型として投与することができる。例えば、経口投与剤としては錠剤、顆粒剤、散剤、カプセル剤、ソフトカプセル剤等の固形剤、溶液剤、懸濁剤、乳剤等の液剤、凍結乾燥製剤等が挙げられ、非経口投与剤としては、注射剤のほか、坐剤、噴霧剤、経皮吸収剤、外用剤、化粧用剤等の形態を挙げることができる。これらの製剤は製剤上の常套手段により調製することができる。上記の医薬用無毒性担体としては、例えば、グルコース、乳糖、ショ糖、澱粉、マンニトール、デキストリン、脂肪酸グリセリド、ポリエチレングリコール、ヒドロキシエチルデンプン、エチレングリコール、ポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステル、アミノ酸、アルブミン、水、生理食塩水、油脂等が挙げられる。また、必要に応じて、安定化剤、滑剤、湿潤剤、乳化剤、結合剤等の慣用の添加剤を適宜添加することができる。
本発明に係る美白用組成物、美白用化粧料、美白用医薬部外品において、Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドとティラピアの皮のコラーゲン加水分解物及びＬ−アスコルビン酸２グルコシドとティラピアの皮のコラーゲン加水分解物由来のジペプチドを含む美白用組成物やこれを配合した製剤の投与量は、患者の年齢、体重、症状、疾患の程度、投与スケジュール、製剤形態等により、適宜選択・決定されるが、例えば、１日あたりＬ−アスコルビン酸２グルコシドとして０．１〜１０ｍｇ／ｋｇ体重となるように投与するとき、この場合にティラピアの皮のコラーゲン加水分解物又はジペプチドとしては、１ｍｇ〜２００ｍｇ／ｋｇ体重を投与することとなる。また、この組成物又は製剤は、１日１〜数回に分けて投与することができる。
以下に、試験例、処方例を示して本発明を具体的に説明する。
＜メラニン産生抑制試験＞
本発明の美白用組成物のメラニン産生抑制効果を確認するため以下の試験を行った。
＜メラニン産生抑制試験＞
本発明の美白用組成物のメラニン産生抑制効果を確認するため以下の試験を行った。
試験１：Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドのメラニン産生抑制有効濃度確認試験
１）Ｌ−アスコルビン酸２グルコシド溶液の調製（陽性対照の試験溶液）
メラニン産生抑制作用が明らかなＬ−アスコルビン酸２グルコシドをＤｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ Ｐｈｏｓｐｈａｔｅ−Ｂｕｆｆｅｒｅｄ Ｓａｌｉｎｅｓ (Ｄ−ＰＢＳ) (Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ) に溶解し、培養時に所定の濃度になるようにあらかじめ希釈した溶液を調製した。
１）Ｌ−アスコルビン酸２グルコシド溶液の調製（陽性対照の試験溶液）
メラニン産生抑制作用が明らかなＬ−アスコルビン酸２グルコシドをＤｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ Ｐｈｏｓｐｈａｔｅ−Ｂｕｆｆｅｒｅｄ Ｓａｌｉｎｅｓ (Ｄ−ＰＢＳ) (Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ) に溶解し、培養時に所定の濃度になるようにあらかじめ希釈した溶液を調製した。
２）評価に用いる細胞
細胞株；マウスメラノーマＢ１６−Ｆ１０細胞株（理研サイネス）
細胞株；マウスメラノーマＢ１６−Ｆ１０細胞株（理研サイネス）
３）細胞培養
前記のマウスメラノーマＢ１６−Ｆ１０細胞株は、３７ ℃、５％二酸化炭素、９５％空気の雰囲気下にて培養を行った。培地は不活性化したウシ胎児血清(ＦＢＳ) (Ｈｙｃｌｏｎｅ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ)１０％、Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｎ−Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｉｎ(Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ)１％を添加したＤＭＥＭ ｈｉｇｈ ｇｌｕｃｏｓｅ, ｌｉｑｕｉｄ (ＤＭＥＭ) (Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ)を用いた。通常培養には１００ｍｍディッシュに細胞を播種し８０〜９０％コンフルエント時に０．０５％Ｔｒｙｐｓｉｎ−ＥＤＴＡ (Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ)にて剥離し継代を行った。
前記のマウスメラノーマＢ１６−Ｆ１０細胞株は、３７ ℃、５％二酸化炭素、９５％空気の雰囲気下にて培養を行った。培地は不活性化したウシ胎児血清(ＦＢＳ) (Ｈｙｃｌｏｎｅ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ)１０％、Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｎ−Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｉｎ(Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ)１％を添加したＤＭＥＭ ｈｉｇｈ ｇｌｕｃｏｓｅ, ｌｉｑｕｉｄ (ＤＭＥＭ) (Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ)を用いた。通常培養には１００ｍｍディッシュに細胞を播種し８０〜９０％コンフルエント時に０．０５％Ｔｒｙｐｓｉｎ−ＥＤＴＡ (Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ)にて剥離し継代を行った。
４）Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドによるメラニン産生抑制効果の測定
９６ｗｅｌｌプレートに、マウスメラノーマＢ１６−Ｆ１０細胞株を８×１０４ｃｅｌｌｓ/ｗｅｌｌになるように細胞密度を調整したＤＭＥＭ１００μＬを播種した。６時間前培養の後、最終濃度が、０、０．１２５、０．２５、０．５、１ｍｇ／ｍＬになるように希釈した３）に記載したＬ−アスコルビン酸２グルコシドの希釈液を添加して、さらに２日間培養行った。
培養終了後に、各ｗｅｌｌから上清を取り除き、細胞をＤ−ＰＢＳで洗浄の後、１％ ｓｏｄｉｕｍ ｄｏｄｅｃｙｌ ｓｕｌｆａｔｅ(和光純薬工業株式会社製)を含むＰＢＳ １５０μＬ添加し、超音波破砕機により細胞を破砕した。次いで、バイオドットを用いて細胞破砕液を全量ニトロセルロース膜でろ過し、メラニンを膜に吸着させた。吸着ブロットされたメラニン量を、画像処理ソフト「ｉｍａｇｅＪ（Ｒａｓｂａｎｄ, Ｗ.Ｓ., ＩｍａｇｅＪ, Ｕ. Ｓ. Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅｓ ｏｆ Ｈｅａｌｔｈ, Ｂｅｔｈｅｓｄａ, Ｍａｒｙｌａｎｄ, ＵＳＡ参照）」を用いて計測した。この数値を、次に述べる細胞生存率で除して各ｗｅｌｌにおけるメラニン産生量として算出した。
９６ｗｅｌｌプレートに、マウスメラノーマＢ１６−Ｆ１０細胞株を８×１０４ｃｅｌｌｓ/ｗｅｌｌになるように細胞密度を調整したＤＭＥＭ１００μＬを播種した。６時間前培養の後、最終濃度が、０、０．１２５、０．２５、０．５、１ｍｇ／ｍＬになるように希釈した３）に記載したＬ−アスコルビン酸２グルコシドの希釈液を添加して、さらに２日間培養行った。
培養終了後に、各ｗｅｌｌから上清を取り除き、細胞をＤ−ＰＢＳで洗浄の後、１％ ｓｏｄｉｕｍ ｄｏｄｅｃｙｌ ｓｕｌｆａｔｅ(和光純薬工業株式会社製)を含むＰＢＳ １５０μＬ添加し、超音波破砕機により細胞を破砕した。次いで、バイオドットを用いて細胞破砕液を全量ニトロセルロース膜でろ過し、メラニンを膜に吸着させた。吸着ブロットされたメラニン量を、画像処理ソフト「ｉｍａｇｅＪ（Ｒａｓｂａｎｄ, Ｗ.Ｓ., ＩｍａｇｅＪ, Ｕ. Ｓ. Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅｓ ｏｆ Ｈｅａｌｔｈ, Ｂｅｔｈｅｓｄａ, Ｍａｒｙｌａｎｄ, ＵＳＡ参照）」を用いて計測した。この数値を、次に述べる細胞生存率で除して各ｗｅｌｌにおけるメラニン産生量として算出した。
５）細胞生存率の測定
３）と同様にしてマウスメラノーマＢ１６−Ｆ１０細胞株を培養する。
すなわち、９６ｗｅｌｌプレートに、マウスメラノーマＢ１６−Ｆ１０細胞株を８×１０４ｃｅｌｌｓ/ｗｅｌｌになるように調整したＤＭＥＭ１００μＬを播種し、６時間前培養の後に、同様に希釈済みＬ−アスコルビン酸２グルコシド溶液を添加して２日間培養を行った。培養が終了後、上清を取り除きＤ−ＰＢＳで洗浄の後、再度Ｄ−ＰＢＳに５ｍｇ/ｍＬに溶解した３−[４,５−ｄｉｍｅｔｈｙｌｔｈｉａｚｏｌ−２−ｙｌ] −２,５−ｄｉｐｈｅｎｙｌｔｅｔｒａｚｏｌｉｕｍ ｂｒｏｍｉｄｅ(以下ＭＴＴ) (和光純薬工業株式会社製)を２０分の１量添加したＤＭＥＭ１００μＬを添加し、２時間インキュベートした。次いで、ＭＴＴ混合培地を除去した後、２−プロパノール (和光純薬工業株式会社製) １００μＬを各ｗｅｌｌに添加しマイクロプレートシェーカーにて３０分撹拌してホルマザンを溶解し、５７０ｎｍと６３０ｎｍの吸光度を測定した。細胞生存率はｃｏｎｔｒｏｌの吸光度（Ａ５７０−Ａ６３０）を１００％とし、サンプル添加時の吸光度 (Ａ５７０−Ａ６３０)から百分率を算出した。
３）と同様にしてマウスメラノーマＢ１６−Ｆ１０細胞株を培養する。
すなわち、９６ｗｅｌｌプレートに、マウスメラノーマＢ１６−Ｆ１０細胞株を８×１０４ｃｅｌｌｓ/ｗｅｌｌになるように調整したＤＭＥＭ１００μＬを播種し、６時間前培養の後に、同様に希釈済みＬ−アスコルビン酸２グルコシド溶液を添加して２日間培養を行った。培養が終了後、上清を取り除きＤ−ＰＢＳで洗浄の後、再度Ｄ−ＰＢＳに５ｍｇ/ｍＬに溶解した３−[４,５−ｄｉｍｅｔｈｙｌｔｈｉａｚｏｌ−２−ｙｌ] −２,５−ｄｉｐｈｅｎｙｌｔｅｔｒａｚｏｌｉｕｍ ｂｒｏｍｉｄｅ(以下ＭＴＴ) (和光純薬工業株式会社製)を２０分の１量添加したＤＭＥＭ１００μＬを添加し、２時間インキュベートした。次いで、ＭＴＴ混合培地を除去した後、２−プロパノール (和光純薬工業株式会社製) １００μＬを各ｗｅｌｌに添加しマイクロプレートシェーカーにて３０分撹拌してホルマザンを溶解し、５７０ｎｍと６３０ｎｍの吸光度を測定した。細胞生存率はｃｏｎｔｒｏｌの吸光度（Ａ５７０−Ａ６３０）を１００％とし、サンプル添加時の吸光度 (Ａ５７０−Ａ６３０)から百分率を算出した。
６）統計処理
Ｌ−アスコルビン酸２グルコシド濃度が０のときのメラニン産生量を１００％として、各濃度におけるメラニン産生量を百分率で求めた。得られたデータは、Ｌ−アスコルビン酸濃度が０のときの値（ｃｏｎｔｒｏｌ）に対する分散性をＦ検定にて確認後、等分散性と仮定できる場合Ｓｔｕｄｅｎｔ’ｓのｔ検定、仮定できない場合にはＷｅｌｃｈのｔ検定を行った。
Ｌ−アスコルビン酸２グルコシド濃度が０のときのメラニン産生量を１００％として、各濃度におけるメラニン産生量を百分率で求めた。得られたデータは、Ｌ−アスコルビン酸濃度が０のときの値（ｃｏｎｔｒｏｌ）に対する分散性をＦ検定にて確認後、等分散性と仮定できる場合Ｓｔｕｄｅｎｔ’ｓのｔ検定、仮定できない場合にはＷｅｌｃｈのｔ検定を行った。
７）結果
９６ｗｅｌｌの平均のメラニン産生量（Ｌ−アスコルビン酸２グルコシド無添加時のメラニン産生量を１００とする百分率）を図１に示す。
Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドは、本試験のメラノーマ細胞株を用いて試験を行うと、０．２５ｍｇ／ｍＬ以上の濃度において、濃度依存性でメラニン産生を抑制することが確認された。また０．１２５ｍｇ／ｍＬでメラニン産生のわずかな増加が確認されたことから、Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドのメラノーマ細胞に対する無作用濃度は０．１ｍｇ／ｍＬ以下であると予想された。
９６ｗｅｌｌの平均のメラニン産生量（Ｌ−アスコルビン酸２グルコシド無添加時のメラニン産生量を１００とする百分率）を図１に示す。
Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドは、本試験のメラノーマ細胞株を用いて試験を行うと、０．２５ｍｇ／ｍＬ以上の濃度において、濃度依存性でメラニン産生を抑制することが確認された。また０．１２５ｍｇ／ｍＬでメラニン産生のわずかな増加が確認されたことから、Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドのメラノーマ細胞に対する無作用濃度は０．１ｍｇ／ｍＬ以下であると予想された。
試験２：ティラピアの皮のコラーゲン加水分解物のメラニン産生抑制試験
１）試験試料
・ティラピアの皮のコラーゲン加水分解物
ティラピアの皮のコラーゲン加水分解物として、酵素分解物法によって調製した下記の表１に記載の成分を有する加水分解物を使用した。また比較対照として市販のトリペプチドを高含有するサメの皮由来のコラーゲン加水分解物ＣＴＰ−Ｆ（一丸ファルコス株式会社製）を用いた。
１）試験試料
・ティラピアの皮のコラーゲン加水分解物
ティラピアの皮のコラーゲン加水分解物として、酵素分解物法によって調製した下記の表１に記載の成分を有する加水分解物を使用した。また比較対照として市販のトリペプチドを高含有するサメの皮由来のコラーゲン加水分解物ＣＴＰ−Ｆ（一丸ファルコス株式会社製）を用いた。
２）評価に用いる細胞
細胞株；マウスメラノーマＢ１６−Ｆ１０細胞株（理研サイネス）
細胞株；マウスメラノーマＢ１６−Ｆ１０細胞株（理研サイネス）
３）細胞培養
前記の試験１と同様にマウスメラノーマＢ１６−Ｆ１０細胞株は、３７℃、５％二酸化炭素、９５％空気の雰囲気下にて培養を行った。培地は不活性化したウシ胎児血清(ＦＢＳ) (Ｈｙｃｌｏｎｅ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ)１０％、Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｎ−Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｉｎ(Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ)１％を添加したＤＭＥＭ ｈｉｇｈ ｇｌｕｃｏｓｅ, ｌｉｑｕｉｄ (ＤＭＥＭ) (Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ)を用いた。通常培養には１００ｍｍディッシュに細胞を播種し８０〜９０％コンフルエント時に０．０５％Ｔｒｙｐｓｉｎ−ＥＤＴＡ (Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ)にて剥離し継代を行った。
前記の試験１と同様にマウスメラノーマＢ１６−Ｆ１０細胞株は、３７℃、５％二酸化炭素、９５％空気の雰囲気下にて培養を行った。培地は不活性化したウシ胎児血清(ＦＢＳ) (Ｈｙｃｌｏｎｅ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ)１０％、Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｎ−Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｉｎ(Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ)１％を添加したＤＭＥＭ ｈｉｇｈ ｇｌｕｃｏｓｅ, ｌｉｑｕｉｄ (ＤＭＥＭ) (Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ)を用いた。通常培養には１００ｍｍディッシュに細胞を播種し８０〜９０％コンフルエント時に０．０５％Ｔｒｙｐｓｉｎ−ＥＤＴＡ (Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ)にて剥離し継代を行った。
４）メラニン産生抑制効果の測定
９６ｗｅｌｌプレートに、マウスメラノーマＢ１６−Ｆ１０細胞株を８×１０４ｃｅｌｌｓ/ｗｅｌｌになるように細胞密度を調整したＤＭＥＭ１００μＬを播種した。６時間前培養の後、最終濃度が、０、１．２５、２．５、５ｍｇ／ｍＬになるように希釈したティラピアの皮のコラーゲン加水分解物、トリペプチドを高含有するサメの皮由来のコラーゲン加水分解物を添加して、さらに２日間培養を行った。
培養終了後に、各ｗｅｌｌから上清を取り除き、細胞をＤ−ＰＢＳで洗浄の後、１％ ｓｏｄｉｕｍ ｄｏｄｅｃｙｌ ｓｕｌｆａｔｅ(和光純薬工業株式会社製)を含むＰＢＳ １５０μＬ添加し、超音波破砕機により細胞を破砕した。次いで、バイオドットを用いて細胞破砕液を全量ニトロセルロース膜でろ過し、メラニンを膜に吸着させた。吸着ブロットされたメラニン量を、画像処理ソフト「ｉｍａｇｅＪ（Ｒａｓｂａｎｄ, Ｗ.Ｓ., ＩｍａｇｅＪ, Ｕ. Ｓ. ＮａｔｉｏｎａｌＩｎｓｔｉｔｕｔｅｓ ｏｆ Ｈｅａｌｔｈ, Ｂｅｔｈｅｓｄａ, Ｍａｒｙｌａｎｄ, ＵＳＡ参照）」を用いて計測した。この数値を、次に述べる細胞生存率で除して各ｗｅｌｌにおけるメラニン産生量として算出した。
９６ｗｅｌｌプレートに、マウスメラノーマＢ１６−Ｆ１０細胞株を８×１０４ｃｅｌｌｓ/ｗｅｌｌになるように細胞密度を調整したＤＭＥＭ１００μＬを播種した。６時間前培養の後、最終濃度が、０、１．２５、２．５、５ｍｇ／ｍＬになるように希釈したティラピアの皮のコラーゲン加水分解物、トリペプチドを高含有するサメの皮由来のコラーゲン加水分解物を添加して、さらに２日間培養を行った。
培養終了後に、各ｗｅｌｌから上清を取り除き、細胞をＤ−ＰＢＳで洗浄の後、１％ ｓｏｄｉｕｍ ｄｏｄｅｃｙｌ ｓｕｌｆａｔｅ(和光純薬工業株式会社製)を含むＰＢＳ １５０μＬ添加し、超音波破砕機により細胞を破砕した。次いで、バイオドットを用いて細胞破砕液を全量ニトロセルロース膜でろ過し、メラニンを膜に吸着させた。吸着ブロットされたメラニン量を、画像処理ソフト「ｉｍａｇｅＪ（Ｒａｓｂａｎｄ, Ｗ.Ｓ., ＩｍａｇｅＪ, Ｕ. Ｓ. ＮａｔｉｏｎａｌＩｎｓｔｉｔｕｔｅｓ ｏｆ Ｈｅａｌｔｈ, Ｂｅｔｈｅｓｄａ, Ｍａｒｙｌａｎｄ, ＵＳＡ参照）」を用いて計測した。この数値を、次に述べる細胞生存率で除して各ｗｅｌｌにおけるメラニン産生量として算出した。
５）細胞生存率の測定
３）と同様にしてマウスメラノーマＢ１６−Ｆ１０細胞株を培養する。
すなわち、９６ｗｅｌｌプレートに、マウスメラノーマＢ１６−Ｆ１０細胞株を８×１０４ｃｅｌｌｓ/ｗｅｌｌになるように調整したＤＭＥＭ１００μＬを播種し、６時間前培養の後に、同様に希釈済みティラピアの皮のコラーゲン加水分解物、トリペプチドを高含有するサメの皮由来のコラーゲン加水分解物溶液を添加して２日間培養を行った。培養終了後、上清を取り除きＤ−ＰＢＳで洗浄の後、再度Ｄ−ＰＢＳに５ｍｇ/ｍＬに溶解した３−[４,５−ｄｉｍｅｔｈｙｌｔｈｉａｚｏｌ−２−ｙｌ] −２,５−ｄｉｐｈｅｎｙｌｔｅｔｒａｚｏｌｉｕｍ ｂｒｏｍｉｄｅ(以下ＭＴＴ) (和光純薬工業株式会社製)を２０分の１量添加したＤＭＥＭ１００μＬを添加し２時間インキュベートした。次いで、ＭＴＴ混合培地を除去した後、２−プロパノール (和光純薬工業株式会社製) １００μＬを各ｗｅｌｌに添加しマイクロプレートシェーカーにて３０分撹拌してホルマザンを溶解し、５７０ｎｍと６３０ｎｍの吸光度を測定した。細胞生存率はｃｏｎｔｒｏｌの吸光度（Ａ５７０−Ａ６３０）を１００％とし、サンプル添加時の吸光度 (Ａ５７０−Ａ６３０)から百分率を算出した。
３）と同様にしてマウスメラノーマＢ１６−Ｆ１０細胞株を培養する。
すなわち、９６ｗｅｌｌプレートに、マウスメラノーマＢ１６−Ｆ１０細胞株を８×１０４ｃｅｌｌｓ/ｗｅｌｌになるように調整したＤＭＥＭ１００μＬを播種し、６時間前培養の後に、同様に希釈済みティラピアの皮のコラーゲン加水分解物、トリペプチドを高含有するサメの皮由来のコラーゲン加水分解物溶液を添加して２日間培養を行った。培養終了後、上清を取り除きＤ−ＰＢＳで洗浄の後、再度Ｄ−ＰＢＳに５ｍｇ/ｍＬに溶解した３−[４,５−ｄｉｍｅｔｈｙｌｔｈｉａｚｏｌ−２−ｙｌ] −２,５−ｄｉｐｈｅｎｙｌｔｅｔｒａｚｏｌｉｕｍ ｂｒｏｍｉｄｅ(以下ＭＴＴ) (和光純薬工業株式会社製)を２０分の１量添加したＤＭＥＭ１００μＬを添加し２時間インキュベートした。次いで、ＭＴＴ混合培地を除去した後、２−プロパノール (和光純薬工業株式会社製) １００μＬを各ｗｅｌｌに添加しマイクロプレートシェーカーにて３０分撹拌してホルマザンを溶解し、５７０ｎｍと６３０ｎｍの吸光度を測定した。細胞生存率はｃｏｎｔｒｏｌの吸光度（Ａ５７０−Ａ６３０）を１００％とし、サンプル添加時の吸光度 (Ａ５７０−Ａ６３０)から百分率を算出した。
６）統計処理
ティラピアの皮のコラーゲン加水分解物又はトリペプチドを高含有するサメの皮由来のコラーゲン加水分解物濃度が０のときのメラニン産生量を１００％として、各濃度におけるメラニン産生量を百分率で求めた。得られたデータは、Ｌ−アスコルビン酸濃度が０のときの値（ｃｏｎｔｒｏｌ）に対する分散性をＦ検定にて確認後、等分散性と仮定できる場合Ｓｔｕｄｅｎｔ’ｓのｔ検定、仮定できない場合にはＷｅｌｃｈのｔ検定を行った。
ティラピアの皮のコラーゲン加水分解物又はトリペプチドを高含有するサメの皮由来のコラーゲン加水分解物濃度が０のときのメラニン産生量を１００％として、各濃度におけるメラニン産生量を百分率で求めた。得られたデータは、Ｌ−アスコルビン酸濃度が０のときの値（ｃｏｎｔｒｏｌ）に対する分散性をＦ検定にて確認後、等分散性と仮定できる場合Ｓｔｕｄｅｎｔ’ｓのｔ検定、仮定できない場合にはＷｅｌｃｈのｔ検定を行った。
７）結果
トリペプチドを高含有するサメの皮由来のコラーゲン加水分解物（ＣＴＰ−Ｆ）はメラニン産生に変化がなく、抑制作用は認められなかった。一方、ティラピアの皮のコラーゲン加水分解物はメラニン産生抑制が観察された。ティラピアの皮のコラーゲン加水分解物の９６ｗｅｌｌの平均のメラニン産生量（Ｌ−アスコルビン酸２グルコシド無添加時のメラニン産生量を１００とする百分率）を図２に示す。
ティラピアの皮のコラーゲン加水分解物の５ｍｇ／ｍＬが、Ｌ−アスコルビン酸２グルコシド０．５ｍｇ／ｍＬとほぼ同等のメラニン産生抑制能を有することが確認された。また、図２からこの作用はＬ−アスコルビン酸２グルコシドと同様に濃度依存性があることが明らかとなった。この作用はティラピアの皮のコラーゲン加水分解物に特有の作用であるものと考えられる。また効果の発現の境界値は１．２５ｍｇ／ｍＬであることがわかった。
トリペプチドを高含有するサメの皮由来のコラーゲン加水分解物（ＣＴＰ−Ｆ）はメラニン産生に変化がなく、抑制作用は認められなかった。一方、ティラピアの皮のコラーゲン加水分解物はメラニン産生抑制が観察された。ティラピアの皮のコラーゲン加水分解物の９６ｗｅｌｌの平均のメラニン産生量（Ｌ−アスコルビン酸２グルコシド無添加時のメラニン産生量を１００とする百分率）を図２に示す。
ティラピアの皮のコラーゲン加水分解物の５ｍｇ／ｍＬが、Ｌ−アスコルビン酸２グルコシド０．５ｍｇ／ｍＬとほぼ同等のメラニン産生抑制能を有することが確認された。また、図２からこの作用はＬ−アスコルビン酸２グルコシドと同様に濃度依存性があることが明らかとなった。この作用はティラピアの皮のコラーゲン加水分解物に特有の作用であるものと考えられる。また効果の発現の境界値は１．２５ｍｇ／ｍＬであることがわかった。
試験３：ティラピアの皮のコラーゲン加水分解物によるＬ−アスコルビン酸２グルコシドのメラニン産生抑制効果の増強作用確認試験
試験１、試験２の結果に基づいて、Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドの最小無作用量にティラピアの皮のコラーゲン加水分解物の最小無作用量を併用した場合のメラニン産生に及ぼす効果の確認試験を行った。
試験１、試験２の結果に基づいて、Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドの最小無作用量にティラピアの皮のコラーゲン加水分解物の最小無作用量を併用した場合のメラニン産生に及ぼす効果の確認試験を行った。
１）試験方法
試験１、試験２と同様にメラノーマＢ１６−Ｆ１０細胞株を培養し、これにＬ−アスコルビン酸２グルコシドを０、０．１ｍｇ／ｍＬになるように添加し、さらにティラピアの皮のコラーゲン加水分解物を１．２５ｍｇ／ｍＬになるように添加して培養し、メラニン産生量を測定した。培養条件、測定条件、データの解析条件は試験１、２と同様に実施した。また比較対照としてトリペプチドを高含有するサメの皮由来のコラーゲン加水分解物トリペプチドを高含有するサメの皮由来のコラーゲン加水分解物を同様の添加量、培養条件、測定条件、データの解析条件で行った。
試験１、試験２と同様にメラノーマＢ１６−Ｆ１０細胞株を培養し、これにＬ−アスコルビン酸２グルコシドを０、０．１ｍｇ／ｍＬになるように添加し、さらにティラピアの皮のコラーゲン加水分解物を１．２５ｍｇ／ｍＬになるように添加して培養し、メラニン産生量を測定した。培養条件、測定条件、データの解析条件は試験１、２と同様に実施した。また比較対照としてトリペプチドを高含有するサメの皮由来のコラーゲン加水分解物トリペプチドを高含有するサメの皮由来のコラーゲン加水分解物を同様の添加量、培養条件、測定条件、データの解析条件で行った。
２）結果
トリペプチドを高含有するサメの皮由来のコラーゲン加水分解物（ＣＴＰ−Ｆ）を添加した９６ｗｅｌｌの平均のメラニン産生量について、無添加の９６ｗｅｌｌ平均のメラニン産生量（Ｌ−アスコルビン酸２グルコシド無添加時のメラニン産生量を１００とする百分率）を図３に示す。トリペプチドを高含有するサメの皮由来のコラーゲン加水分解物（ＣＴＰ−Ｆ）は、図３に示すとおり、Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドの有無に係らず、Ｂ１６−Ｆ１０細胞株のメラニン産生には影響を及ぼさなかった。
ティラピアの皮のコラーゲン加水分解物を添加した９６ｗｅｌｌの平均のメラニン産生量について、無添加の９６ｗｅｌｌ平均のメラニン産生量（Ｌ−アスコルビン酸２グルコシド無添加時のメラニン産生量を１００とする百分率）を図４に示す。ティラピアの皮のコラーゲン加水分解物は、メラニン産生抑制作用が観察され、その効果は、Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドの単独添加の場合の０．５〜１ｍｇ／ｍＬに相当した。すなわちティラピアの皮のコラーゲン加水分解物は、Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドのメラニン産生抑制作用を５〜１０倍程度高めた。
以上の試験例１、２、３の結果から、Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドとティラピアの皮のコラーゲン加水分解物を含む美白用組成物は、Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドの美白作用が増強され、その結果Ｌ−アスコルビン酸の配合量を減少することができる。
トリペプチドを高含有するサメの皮由来のコラーゲン加水分解物（ＣＴＰ−Ｆ）を添加した９６ｗｅｌｌの平均のメラニン産生量について、無添加の９６ｗｅｌｌ平均のメラニン産生量（Ｌ−アスコルビン酸２グルコシド無添加時のメラニン産生量を１００とする百分率）を図３に示す。トリペプチドを高含有するサメの皮由来のコラーゲン加水分解物（ＣＴＰ−Ｆ）は、図３に示すとおり、Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドの有無に係らず、Ｂ１６−Ｆ１０細胞株のメラニン産生には影響を及ぼさなかった。
ティラピアの皮のコラーゲン加水分解物を添加した９６ｗｅｌｌの平均のメラニン産生量について、無添加の９６ｗｅｌｌ平均のメラニン産生量（Ｌ−アスコルビン酸２グルコシド無添加時のメラニン産生量を１００とする百分率）を図４に示す。ティラピアの皮のコラーゲン加水分解物は、メラニン産生抑制作用が観察され、その効果は、Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドの単独添加の場合の０．５〜１ｍｇ／ｍＬに相当した。すなわちティラピアの皮のコラーゲン加水分解物は、Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドのメラニン産生抑制作用を５〜１０倍程度高めた。
以上の試験例１、２、３の結果から、Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドとティラピアの皮のコラーゲン加水分解物を含む美白用組成物は、Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドの美白作用が増強され、その結果Ｌ−アスコルビン酸の配合量を減少することができる。
試験４：ティラピアの皮のコラーゲン加水分解物に含まれるジペプチドによるＬ−アスコルビン酸２グルコシドのメラニン産生抑制効果の促進作用確認試験
１）試験方法
試験３と同様の条件で、ティラピアの皮に含まれているコラーゲン加水分解物のジペプチドのうち、合成ペプチドＰｒｏ−Ｇｌｙ及びＰｒｏ−Ｈｙｐの作用を確認した。すなわちメラノーマＢ１６−Ｆ１０株を培養し、これにＬ−アスコルビン酸２グルコシドを０．１ｍｇ／ｍＬになるように添加し、さらにＰｒｏ−Ｇｌｙ又はＰｒｏ−Ｈｙｐを５ｍｇ／ｍＬになるように添加した後培養し、メラニン産生量を測定した。培養条件、測定条件、データの解析条件は試験１、２と同様に実施した。
１）試験方法
試験３と同様の条件で、ティラピアの皮に含まれているコラーゲン加水分解物のジペプチドのうち、合成ペプチドＰｒｏ−Ｇｌｙ及びＰｒｏ−Ｈｙｐの作用を確認した。すなわちメラノーマＢ１６−Ｆ１０株を培養し、これにＬ−アスコルビン酸２グルコシドを０．１ｍｇ／ｍＬになるように添加し、さらにＰｒｏ−Ｇｌｙ又はＰｒｏ−Ｈｙｐを５ｍｇ／ｍＬになるように添加した後培養し、メラニン産生量を測定した。培養条件、測定条件、データの解析条件は試験１、２と同様に実施した。
２）結果
合成ペプチドＰｒｏ−Ｇｌｙを添加した９６ｗｅｌｌの平均のメラニン産生量について、無添加の９６ｗｅｌｌ平均のメラニン産生量（Ｌ−アスコルビン酸２グルコシド無添加時のメラニン産生量を１００とする百分率）を図５に示す。Ｐｒｏ−Ｇｌｙは、メラニン産生抑制作用が観察され、その効果は、Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドの単独添加の場合の０．５〜１ｍｇ／ｍＬに相当した。すなわちジペプチドＰｒｏ−Ｇｌｙ５ｍｇ／ｍＬは、Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドのメラニン産生抑制作用を５〜１０倍程度高めた。
同じく、合成ペプチドＰｒｏ−Ｈｙｐを添加した９６ｗｅｌｌの平均のメラニン産生量について、無添加の９６ｗｅｌｌ平均のメラニン産生量（Ｌ−アスコルビン酸２グルコシド無添加時のメラニン産生量を１００とする百分率）を図６に示す。Ｐｒｏ−Ｈｙｐは、メラニン産生抑制が観察され、その効果は、Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドの単独添加の場合の０．５〜１ｍｇ／ｍＬに相当した。すなわちジペプチドＰｒｏ−Ｈｙｐ５ｍｇ／ｍＬは、Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドのメラニン産生抑制作用を５〜１０倍程度高めた。
合成ペプチドＰｒｏ−Ｇｌｙを添加した９６ｗｅｌｌの平均のメラニン産生量について、無添加の９６ｗｅｌｌ平均のメラニン産生量（Ｌ−アスコルビン酸２グルコシド無添加時のメラニン産生量を１００とする百分率）を図５に示す。Ｐｒｏ−Ｇｌｙは、メラニン産生抑制作用が観察され、その効果は、Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドの単独添加の場合の０．５〜１ｍｇ／ｍＬに相当した。すなわちジペプチドＰｒｏ−Ｇｌｙ５ｍｇ／ｍＬは、Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドのメラニン産生抑制作用を５〜１０倍程度高めた。
同じく、合成ペプチドＰｒｏ−Ｈｙｐを添加した９６ｗｅｌｌの平均のメラニン産生量について、無添加の９６ｗｅｌｌ平均のメラニン産生量（Ｌ−アスコルビン酸２グルコシド無添加時のメラニン産生量を１００とする百分率）を図６に示す。Ｐｒｏ−Ｈｙｐは、メラニン産生抑制が観察され、その効果は、Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドの単独添加の場合の０．５〜１ｍｇ／ｍＬに相当した。すなわちジペプチドＰｒｏ−Ｈｙｐ５ｍｇ／ｍＬは、Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドのメラニン産生抑制作用を５〜１０倍程度高めた。
試験４の結果、ティラピアの皮のコラーゲン加水分解物中のジペプチドは、Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドの美白作用を増強することが判明した。
以下にティラピアの皮のコラーゲン加水分解物（表１に記載のもの）を配合した外用クリーム、経口用錠剤、外用乳液の処方例を示す。この処方例は、目的によりティラピアの皮のコラーゲン加水分解物の配合量を適宜増減してもよい。
［処方例１］外用クリーム
下記の処方（単位は質量％）により、外用クリームを製造した。
（１） ベヘニルアルコール ６
（２） ステアリン酸 ２
（３） 水添ラノリン ４
（４） スクワラン ９
（５） オクチルドデカノール １０
（６） ＰＯＥ（２５）セチルアルコールエーテル ３
（７） モノステアリン酸グリセリン ２
（８） ティラピアの皮のコラーゲン加水分解物 １
（９） Ｌ−アスコルビン酸２グルコシド ０．５
（１０）防腐剤 適量
（１１）１，３ブチレングリコール ６
（１２）ＰＥＧ１５００ ４
（１３）精製水 残余
〔製法〕上記成分（１）〜（７）を８０℃に加熱溶解し油相とする。成分（８）〜（１３）を７０℃に加熱溶解し水相とする。油相に水相を徐々に加え乳化し、撹拌しながら４０℃まで冷却し、さらに３０℃まで撹拌冷却して外用クリームを得た。
［処方例１］外用クリーム
下記の処方（単位は質量％）により、外用クリームを製造した。
（１） ベヘニルアルコール ６
（２） ステアリン酸 ２
（３） 水添ラノリン ４
（４） スクワラン ９
（５） オクチルドデカノール １０
（６） ＰＯＥ（２５）セチルアルコールエーテル ３
（７） モノステアリン酸グリセリン ２
（８） ティラピアの皮のコラーゲン加水分解物 １
（９） Ｌ−アスコルビン酸２グルコシド ０．５
（１０）防腐剤 適量
（１１）１，３ブチレングリコール ６
（１２）ＰＥＧ１５００ ４
（１３）精製水 残余
〔製法〕上記成分（１）〜（７）を８０℃に加熱溶解し油相とする。成分（８）〜（１３）を７０℃に加熱溶解し水相とする。油相に水相を徐々に加え乳化し、撹拌しながら４０℃まで冷却し、さらに３０℃まで撹拌冷却して外用クリームを得た。
［処方例２］経口用錠剤
下記の処方（単位は質量％）に基づいて常法どおり、経口用錠剤を製造した。
（１） ティラピアの皮のコラーゲン加水分解物 ２
（２） Ｌ−アスコルビン酸２グルコシド ０．２
（３） 乳糖 ８２．８
（４） コーンスターチ １４
（５） グアーガム １
下記の処方（単位は質量％）に基づいて常法どおり、経口用錠剤を製造した。
（１） ティラピアの皮のコラーゲン加水分解物 ２
（２） Ｌ−アスコルビン酸２グルコシド ０．２
（３） 乳糖 ８２．８
（４） コーンスターチ １４
（５） グアーガム １
［処方例３］外用乳液
下記の処方（単位は質量％）により、外用乳液を製造した。
（１） ジプロピレングリコール ９
（２） ティラピアの皮のコラーゲン加水分解物 １
（３） Ｌ−アスコルビン酸２グルコシド ２
（４） （ヒドロキシエチルアクリル酸／アクリルジメチルタウリンＮａ）コポリマー
０．２
（５） スクワラン １
（６） ポリソルベート６０ ０．３
（７） ラウロイルグルタミン酸ジ（フィトステリル／オクチルドデシル）１
（８） グリセリン ５
（９） ジメチコン ５
（１０）精製水 残余
（１１）カルボマー ０．２
（１２）ベタイン ２
（１３）エタノール ３
（１４）水酸化カリウム ０．０６５
〔製法〕上記成分（５）〜（７）、（９）を８０℃に加熱溶解し油相とする。成分（１）〜（４）、（８）、（１０）〜（１２）を７０℃に加熱溶解し水相とする。油相に水相を徐々に加え乳化し、（１４）を（１０）の一部に撹拌溶解したものを加え、撹拌しながら３０℃まで冷却する。さらに成分（１３）を加え、外用乳液を得た。
下記の処方（単位は質量％）により、外用乳液を製造した。
（１） ジプロピレングリコール ９
（２） ティラピアの皮のコラーゲン加水分解物 １
（３） Ｌ−アスコルビン酸２グルコシド ２
（４） （ヒドロキシエチルアクリル酸／アクリルジメチルタウリンＮａ）コポリマー
０．２
（５） スクワラン １
（６） ポリソルベート６０ ０．３
（７） ラウロイルグルタミン酸ジ（フィトステリル／オクチルドデシル）１
（８） グリセリン ５
（９） ジメチコン ５
（１０）精製水 残余
（１１）カルボマー ０．２
（１２）ベタイン ２
（１３）エタノール ３
（１４）水酸化カリウム ０．０６５
〔製法〕上記成分（５）〜（７）、（９）を８０℃に加熱溶解し油相とする。成分（１）〜（４）、（８）、（１０）〜（１２）を７０℃に加熱溶解し水相とする。油相に水相を徐々に加え乳化し、（１４）を（１０）の一部に撹拌溶解したものを加え、撹拌しながら３０℃まで冷却する。さらに成分（１３）を加え、外用乳液を得た。
Claims (4)
- Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドとティラピアの皮のコラーゲン加水分解物を含み、 ティラピアの皮のコラーゲン加水分解物が次の特徴を有するものである美白用組成物。
（Ａ）ＨＰＬＣによるゲルろ過平均分子量 ：３００Ｄａ
（Ｂ）加水分解物中の乾燥物当たりのジペプチド含有量 ：２０〜４０質量％
（Ｃ）加水分解物中の乾燥物当たりのトリペプチド含有量：３０〜４５質量％
（Ｄ）メラノーマ細胞に対してメラニン産生抑制作用を示す。 - Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドと、Ｇｌｙ−Ｐｒｏ、Ｐｒｏ−Ｇｌｙ、Ｐｒｏ−Ｈｙｐ及びＨｙｐ−Ｇｌｙを含むティラピアの皮のコラーゲン加水分解物由来のジペプチドを含有する美白用組成物。
- Ｌ−アスコルビン酸２グルコシドと、Ｐｒｏ−Ｇｌｙの配列を有するジペプチド及び／又はＰｒｏ−Ｈｙｐの配列を有するジペプチドを含む美白用組成物。
- 請求項１〜３のいずれかに記載の美白用組成物を含む美白用化粧料又は美白用医薬部外品。
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